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UNIVERSIDAD NACIONAL DE PIURA
FACULTAD DE INGENIERIA PESQUERA
DEPARTAMENTO ACADEMICO DE INGENIERIA PESQUERA
PROYECTO DE TESIS
CULTIVO DE LANGOSTINO BLANCO Litopenaeus vannamei
(Boone, 1931), MEDIANTE SIEMBRA CON PRE CRIA EN
ESTANQUES DE TIERRA, ABASTECIDOS CON AGUA DE
REGADÍO, EN EL CASERIO MIRAFLORES DEL DISTRITO DE
BELLAVISTA DE LA UNIÓN, SECHURA, AÑO 2012.
PRESENTADA POR : ZAPATA FERNANDEZ MIGUEL ÁNGEL
ASESORADA POR : ING. JOSE PAICO CHERO, M.Sc.
PIURA, 2014
PROYECTO DE TESIS
1.- INTRODUCCION:
La camaronicultura en agua dulce es una actividad que cada día adquiere
mayor importancia económica y una oportunidad real de negocio e incluso en
lugares alejados de la costa, es una excelente alternativa para muchos de los
proyectos de acuicultura rural promovidos por los gobiernos de turno o en
particular por empresarios que buscan alta rentabilidad. La tecnología
disponible y nuestros conocimientos nos permiten producir en diferentes
sistemas y medios, así como integrar los cultivos acuícolas con la agricultura,
hoy es altamente factible producir camarón cerca de las grandes ciudades y
ofrecerlo verdaderamente fresco en los principales centros de consumo.
Es una alternativa de solución integral para una parte significativa del sector
agrícola ya que hace más rentables y sustentables las actividades
agropecuarias. Es una ventana de oportunidad real, tanto para los productores
que estén dispuestos a adoptar nuevas tecnologías y reconvertir sus cultivos,
como para los que ya participan en la industria acuícola.
2.- EL PROBLEMA DE INVESTIGACION:
2.1.- UBICACIÓN DONDE SE EJECUTARA EL PROYECTO:
El proyecto de investigación se realizara en el caserío de Miraflores del distrito
de Bellavista de la Unión específicamente en el terreno agrícola de propiedad
del Sr. Jimmy Vilela Pingo.
La localización de dicha área se encuentra en:
Distrito : Bellavista de la Unión.
Provincia : Sechura
Departamento : Piura
País : Perú
2.2.- TIEMPO DE EJECUCION DEL PROYECTO:
El tiempo de ejecución del proyecto es de aproximadamente cuatro meses.
3.- JUSTIFICACION:
La integración
entre los cultivos agrícolas y acuícolas, permite mejorar la
rentabilidad y sustentabilidad de las actividades agropecuarias, mediante un
modelo de producción que optimiza el aprovechamiento de los recursos
como son el suelo y el agua. El agua usada en la acuicultura es
enriquecida por los desechos metabólicos de los organismos cultivados, al
ser reutilizada en la agricultura mejora la condición del suelo, aporta materia
orgánica y varios
nutrientes, especialmente compuestos nitrogenados altamente disponibles
para los vegetales.
Si tomamos en cuenta la sobre-explotación de los recursos hidrobiológicos
marinos, asimismo la contaminación generada por la instalación de nuevas
empresas industriales sobre todo mineras que han empezado sus actividades
en nuestra bahía de Sechura nos damos cuenta que dentro de poco nos
estaremos enfrentando a una gran escases de alimentos de origen marino o
dulceacuícolas , es así como se busca nuevas alternativas de desarrollo tanto
para la provincia así como para la región, la acuicultura surge como solución
para el abastecimiento de alimentos fresco y sobre todo nutritivos que
satisfagan las necesidades de la población local.
Consientes que la agricultura en nuestra zona no se toma como una actividad
de altas rentabilidad sino como una actividad de subsistencia es por eso que la
acuicultura o camaronicultura se presenta como alternativa complementaria y a
la vez teniendo en cuenta que en lugares donde se desarrolla ayuda a mejorar
la calidad de vida de sus pobladores que lo practican.
El presente trabajo de investigación se realizará con la finalidad obtener
resultados sobre el cultivo de Langostino blanco L itopenaeus vannamei
(Bonne, 1931) mediante siembra con pre cría, utilizando aguas de regadío, en
el cual se tendrá muy en cuenta el registro de su velocidad de crecimiento, los
rendimientos de biomasa y el manejo de los parámetros del agua de regadío.
Mediante la interpretación de los resultados determinaremos la conveniencia de
este sistema de cultivo.
4.- OBJETIVOS:
4.1. OBJETIVO GENERAL:
Evaluar el rendimiento del Cultivo de Langostino blanco L itopenaeus
vannamei. (Boone, 1931), bajo un sistema de siembra con pre cría en
estanques de tierra, abastecidos con agua de regadío en un periodo de
cuatro meses.
4.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS:
Determinar el rendimiento en peso y sobrevivencia del langostino blanco
Litopenaeus vannamei (Bonne, 1931), durante el cultivo en los
estanques de tierra.
Determinar peso, longitud, tasa de crecimiento en peso, tasa de
crecimiento en longitud, rendimiento en biomasa, sobrevivencia,
relación talla - peso del langostino blanco Litopenaeus vannamei
(Bonne, 1931), durante el cultivo en los estanques.
Evaluar los parámetros de oxígeno, temperatura, y pH, registrados
durante el cultivo en los estanques de tierra.
5.- ANTECEDENTES BIBLIOGRAFICOS:
El camarón del pacífico L. vannamei, es la especie de peneidos que se
cultivan con mayor intensidad en América debido al mayor conocimiento
de su cultivo y a los altos rendimientos. Recientemente se han
implementado cultivos de esta especie en agua dulce o salinidades muy
bajas. (Allen, 2000; Scarpa, 1998, 1999,2000).
P. vannamei, tiene el potencial de crecer tan rápido como P. monodon (3
g/semana) hasta 20 gramos (que es la talla máxima usualmente cultivada
de P. vannamei) bajo condiciones de cultivo intensivo (hasta 150/m2).
Puede inclusive seguir creciendo aunque más lento (particularmente los
machos) hasta 1 g/semana por encima de los 20 g (Wyban y Sweeny,
1991).
En los estanques asiáticos de cultivo comercial, Tailandia e Indonesia
alcanzan tasas de 1,0–1,5 g/semana (con un 80–90 por ciento de
sobrevivencia) en estanques de alta densidad (60–150/m2). En contraste, el
crecimiento (y sobrevivencia) de P. monodon en Tailandia ha decaído en
los últimos cinco años de 1,2 a 1,0 g/semana (y de 55 por ciento a 45 por
ciento de sobrevivencia) (Chamberlain, 2003) probablemente debido a la
gran presencia de enfermedades y/o al entrecruzamiento genético P.
stylirostris puede crecer tan rápido y tanto como el P. vannamei.
Existe una relación negativa entre la densidad de siembra en los estanques
de engorde y el peso corporal y la supervivencia de los individuos. Ello
resulta por factores relacionados con la disponibilidad de espacio y
alimento, canibalismo y aspectos relativos a la calidad del agua. Cuando
aumenta la densidad disminuye la concentración del oxígeno disuelto,
aumentan los compuestos nitrogenados y baja el pH, además se acumulan
sedimentos orgánicos indeseables (Palomino et al., 2001; Rose et al.,
2001; Arnoldet al., 2006; Araneda et al., 2008; Cuvin-Aralar, 2009).
La pre cría de las post-larvas es recomendable antes de la siembra en
estanques de engorde para que el camarón termine su metamorfosis y su
adaptación a estas condiciones (trece and Yates 1990).
Con respecto a la salinidad, se ha determinado que el camarón L.
vannamei puede tolerar un amplio intervalo de esta, pasando desde
condiciones de agua dulce (0.5–2.0 g/L) hasta hipersalinas (60 g/L)
(Sternet al., 1990; Saoudet al., 2003). Boyd (1989) reporto que
salinidades entre 15 y 25 g/L son ideales para este crustáceo. (Samocha
et al., 2004) mostraron que este crustáceo cultivado con agua de baja
salinidad (<3 g/L), crece hasta 14 g mientras que Davis et al., (2004)
usando agua de menor salinidad (2.0 g/L) alcanzaron a producir 12
toneladas/ha. Experiencias en México indican que a nivel comercial, este
crustáceo puede cultivarse exitosamente en agua de baja salinidad (0.5-5.0
g/L), (Tamayo 1998; Van Wyket al., 1999).
Según FAO, se utilizan densidades de 80–160 PL/m2, los estanques se
hacen heterotróficos y se forman flóculos de bacterias, que son
consumidos por los camarones, reduciendo la dependencia de alimentos
altos tanto en proteínas como en tasa de conversión alimenticia
incrementándose la eficiencia costo-beneficio. Esos sistemas han logrado
una producción de 8–50 000 kg/ha/cosecha en Belice e Indonesia. Las
densidades varían entre 60 y 300 PL/m 2. Se requiere una aireación
continua de 1 HP/400–600 kg de camarón cosechado, para la oxigenación
y circulación del agua. La alimentación se basa en dietas artificiales
suministradas 4 a 5 veces diarias. Los factores de conversión alimenticia
fluctúan entre 1,4 y 1,8:1.
El camarón del pacífico L.vannamei, es la especie de peneidos que se
cultivan con mayor intensidad en América debido al mayor conocimiento
de su cultivo y a los altos rendimientos. Recientemente se han
implementado cultivos de esta especie en agua dulce o salinidades muy
bajas. (Allen, 2000; Scarpa, 1998, 1999,2000), con salinidades de 0.23 a
11 ‰ se reportan rendimientos de 0.45-4.39 Kg/m², Sobrevivencia de 65-
100 % y un Factor de Conversión Alimenticia (FCA) de 0.7 a 2.3,
(Samocha, 2002; Saoud 2000).
Entre las ventajas del cultivo en agua dulce cabe señalar la posibilidad de
extender la camaronicultura tierra adentro, lejos de áreas costeras en
donde los virus ocurren naturalmente en el ambiente y en donde, por la
distancia entre las granjas, surgen conflictos generados por el uso común
de tomas de agua y recirculan efluentes que incrementan la posibilidad de
la introducción y la diseminación de patógenos, (Joryet al 2003).
El método de alimentación es mediante el uso de "comederos",
ampliamente difundido por sus ventajas en el manejo técnico, en el impacto
ambiental y en el control de enfermedades. Este método evita el
desperdicio de alimento y por consiguiente mantiene la limpieza del fondo
del estanque. El número promedio de “comederos” colocados es de 20 por
ha. (Yépez V, 2002)
Saborío y Román (2002) Investigó que durante el inicio del ciclo de
engorde se emplean alimentos artificiales con un 35% de proteínas a
medida que el camarón va creciendo su nivel proteico disminuye de un 20
a un 25% de proteínas hasta la cosecha.
La aclimatación antes de la siembra, se hace controlando los parámetros
fisicoquímicos haciendo un recambio de agua cada 30 a 60 minutos, con el
objetivo de que el camarón no se estrese y se aclimate paulatinamente
desde el agua de transporte al agua del estanque a sembrar, verificando la
supervivencia de las post-larvas (Saborio y Román, 2002).
Es preferible sembrar en la mañana transportando las larvas durante la
noche, estas deben estar tres días en el laboratorio; la salinidad no debe
variar en más de 3ppm, (Chanratchakool, et al., 1995).
En contraste con los sistemas cerrados, en los sistemas de cultivo
semi intensivos hechos en estanques de 50,000 m² se han producido 0.300
kg/m² a una densidad inicial de 26 post-larvas/m², una sobrevivencia
de 90%, un peso promedio de 13 g en 125 días y un factor de
conversión alimenticia de 1.32:1, (Ricardo Anaya 2005), También se
han obtenido producciones de 0.304 kg/m² con densidades de siembra de
15 post-larvas/m², haciendo primero una cosecha parcial de camarones
de 0.154 kg/m² a un peso de 18 g y una cosecha final de 0.150
kg/m² con un peso de 35 g, con lo que se obtiene una sobrevivencia
promedio de 84% en un periodo de 200 días y un factor de
conversión alimentario de 1.7:1 (Ricardo Anaya 2005, según experiencia
personal en Sonora, 2001).
En cambio Flores y Rodríguez (1995), reportan en un cultivo de camarón
P. setiferus , con una densidad de siembra de 50 post-larvas/m², y peso de
0.2 g al momento de la siembra a más de 13 g al momento de la cosecha,
con tasa de crecimiento de 0.56 g/semana, y datos similares los registró
(Aragón y García 1996), con densidad de siembra de 24 post-larvas/m², y
38 post-larvas/m² de camarón blanco L. vannamei y peso promedio de
0.003 g, y 0.3492 g respectivamente; reportaron un peso promedio al final
del cultivo de 13.99 g y 14.47 g en cada caso, con un incremento semanal
de 0.8 g y 0.78 g para cada tratamiento.
El efecto de la frecuencia de alimentación sobre el crecimiento del camarón
blanco L. vannamei, en sistema intensivo (estanques rústicos), fue
comparado por (Robertson et al., (1993), observando que existe
correlación entre el crecimiento y la frecuencia de alimentación. Una vez
por día incrementa 1.62%, dos veces por día 1.66% y cuatro veces por día
incrementa 1.71%. Por otro lado, si se alimenta una solo vez por la noche
se incrementa 1.64% al día. Con lo anterior se determinó que el organismo
crece mejor con cuatro raciones al día como mínimo y también si se
alimenta con una solo ración durante la noche.
Luna (2005), citando a otros autores considera que: “en EEUU se
realizaron experimentos a escala comercial sobre cultivo de P. vannamei
en un sistema de tres fases (pre-cría, pre-engorde y engorde) con
recirculación de agua dulce, procedente de un pozo; las post-larvas se
mantuvieron en un estanque de aclimatación/aislamiento a una densidad
de 1 351 ind/m2, por una semana, período en el cual se ambientaron al
agua dulce, obteniendo 80% de supervivencia
En un cultivo de camarón blanco L. vannamei, sembrado a una densidad
de 15.4 individuos/m², con duración de 98 días, (Spanopoulos y Zarco
1995), estimaron un incremento de peso individual de 1.06 g semanales, la
mortalidad global de 35.1% y un factor de conversión alimenticia de 1.61.
En cambio (Clifford, 1994), obtuvo en un cultivo semi-intensivo de L.
vannamei con una densidad de siembra de 18 a 22 post-larvas/m² un
rendimiento de 2,363 Kg/Ha, con un peso promedio de 18.5 g, en un
tiempo de cultivo de 85 días; una tasa de conversión alimenticia de 0.59 y
una tasa de crecimiento promedio de 1.52 g/semana.
P. vannamei tolera un amplio rango de salinidad, desde 0,5–45 ppm, se
siente cómodo entre 7–34 ppm pero crece particularmente bien en bajas
salinidades entre 10–15 ppm (donde el medio y la hemolinfa son
isosmóticos) (Wyban y Sweeny, 1991). Esta facultad lo convierte en un
buen candidato para el cultivo tierra dentro que en los últimos años se ha
vuelto muy común en Asia y América Latina. Por ejemplo un alto porcentaje
de P. vannamei chino se cultiva tierra dentro en sitios de agua dulce y su
producción es mucho mayor que la de especies indígenas.
6.- HIPOTESIS:
6.1.-HIPOTESIS GENERAL:
Existirá una alta sobrevivencia y rendimiento en peso en el cultivo de langostino
blanco (Litopenaeus vannamei), bajo el sistema de Pre cría, en un tiempo de
cuatro meses.
7.-METODOLOGIA: METODOS Y MATERIALES:
MATERIAL BIOLOGICO:
Se va a sembrar langostino blanco (Litopenaeus vannamei) en una cantidad de
90,000 alevines con un peso promedio de 0.016 gramos, que se obtendrán de
las piscinas de aclimatación ubicadas en el local de la biblioteca municipal del
centro poblado de San Clemente, los mismos que fueron adquiridos del
laboratorio MARINA AZUL SAC. Cancas – Tumbes.
7.1.- TIPO DE INVESTIGACION:
Se considera un tipo de investigación de carácter BASICA.
7.2.- EL DISEÑO DE LA INVESTIGACION:
7.3.- MÉTODOS E INSTRUMENTOS:
7.3.1 MATERIALES:
Malla finas (Cálcales) de diferente tamaño.
Comederos circulares de 70 cm.
Atarraya de 3m de diámetro de un ¼ de pulgada de malla.
Recipientes plásticos: baldes, jarras, bateas, coladeras.
Malla plástica, filtros de malla.
Manga Red anchovetera para cosecha.
7.3.2 EQUIPOS:
Peachimetro digital PH 3 marca Aquatic Ecosystem.
Termómetro +/-0.1 º C.
Balanza analítica +/-0.1gr.
Oximetro DO6 Marca Aquatic Ecosystem
Cámara digital marca Canon 14.5 Mp.
Disco de secchi.
Carcinometro.
7.3.3 INSUMOS:
Alimento balanceado formato pre cría, KR1 y KR2 marca Nicovita.
7.4.- TIPOS Y TÉCNICAS DE MUESTREO: 7.5.- METODOS Y TECNICAS:
8.- CRONOGRAMA:
MESES
ACTIVIDAD
1°
mes
2°
mes
3°
mes
4°
mes
5°
mes
6°
mes
7°
mes
8°
mes
9°
mes
Idea Del Proyecto X
Revisión
Bibliográfica
X X X X X X X
Presentación del
anteproyecto
X
Fase Experimental
muestreos
X X X
Análisis y
procesamiento de
datos campo
X X X
Redacción y
presentación De
Informe
X X X
Revisión final del
informe
X
Presentación y
Sustentación de
tesis
X
9.- PRESUPUESTO:
Rubro
Costos de Producción
Cant. Und. P.U Nuevos soles
(S/.)
Compra alevines 180 millar 26.8 1393.6
Flete 52 3 156.00
Subtotal 1549.6
Personal
Guardián 1 120 10 1200
Subtotal 1200.00
Insumos
Agua 0.5 Ha 340 170.00
Alimento 1,500 kg 3.6 5400.00
Subtotal 5570.00
Tipeos e Impresión 180 4 0.84 604.8
Fotos, filmación, otros 25 1 28 500.00
Subtotal 1004.8
Total 9324.4
SON: NUEVE MIL TRESCIENTOS VEINTICINCO NUEVOS SOLES.
EQUIVALENCIA DEL DOLAR: $1 = S/. 2.8
SON: TRES MIL DOSCIENTOS SETENTA DOLARES AMERICANO
10.- BIBLIOGRAFIA:
El camarón del pacífico L. vannamei, es la especie de peneidos que se
cultivan con mayor intensidad en América debido al mayor conocimiento
de su cultivo y a los altos rendimientos. Recientemente se han
implementado cultivos de esta especie en agua dulce o salinidades muy
bajas. (Allen, 2000; Scarpa, 1998, 1999,2000).
Según FAO, se utilizan densidades de 80–160 PL/m2, los estanques se
hacen heterotróficos y se forman flóculos de bacterias, que son
consumidos por los camarones, reduciendo la dependencia de alimentos
altos tanto en proteínas como en tasa de conversión alimenticia
incrementándose la eficiencia costo-beneficio. Esos sistemas han logrado
una producción de 8–50 000 kg/ha/cosecha en Belice e Indonesia. Las
densidades varían entre 60 y 300 PL/m 2. Se requiere una aireación
continua de 1 HP/400–600 kg de camarón cosechado, para la oxigenación
y circulación del agua. La alimentación se basa en dietas artificiales
suministradas 4 a 5 veces diarias. Los factores de conversión alimenticia
fluctúan entre 1,4 y 1,8:1.
P. vannamei, tiene el potencial de crecer tan rápido como P. monodon (3
g/semana) hasta 20 gramos (que es la talla máxima usualmente cultivada
de P. vannamei) bajo condiciones de cultivo intensivo (hasta 150/m2).
Puede inclusive seguir creciendo aunque más lento (particularmente los
machos) hasta 1 g/semana por encima de los 20 g (Wyban y Sweeny,
1991).
6.1 Ubicación Geográfica:
El proyecto de investigación se desarrollará en el Distrito de Bellavista de la
Unión, en el caserío de Miraflores específicamente en el terreno agrícola de
propiedad del Sr.Jimmy VilelaPingo.
La localización de dicha área se encuentra en:
Distrito: Bellavista de la Unión.
Provincia: Sechura
Departamento: Piura
País: Perú
6.2 Periodo experimental:
Cuatro meses, que comprende la siembra y cosecha del cultivo en la fase de engorde
6.3 La especie a Cultivar.
Se va a sembrar langostino Blanco (Litopenaeusvannamei) en una cantidad de
90000 juveniles con un peso promedio de 0.016 gramos.
6.4 Materiales y equipos
6.4.1 Materiales:
Malla finas(Cálcales) de diferente tamaño
Comederos circulares de 70 cm.
Atarraya de 3m de diámetro de un ¼ de pulgada de malla
Recipientes plásticos: baldes, jarras, bateas, coladeras
Malla plástica, filtros de malla.
Manga Red anchovetera para cosecha.
6.4.2 Equipos:
Peachimetro digital PH 3 marca AquaticEcosystem
Cámaradigital. Marca Canon 14.5 Mp
Disco de secchi.
Carcinometro.
6.4.3 Insumos:
Análisis de dureza y alcalinidad del agua
Agua de regadío por gravedad
Alimento balanceado FormatoPrecria, KR1 y KR2 Marca
Nicovita
6.4.4 Material biológico:
90,000 juveniles de Litopenaeusvannameide 0.016 gramos
en peso promedio, que se obtendrán de las piscinas de
aclimatación ubicadas en el local de la biblioteca municipal
del centro poblado de San Clemente, los mismos que fueron
adquiridos del laboratorio MARINA AZUL SAC. Cancas –
Tumbes.
6.5 Acondicionamiento de unidad experimental.
La unidad experimental será el estanque de tierra con los ejemplares de
langostino blanco, 1 estanque de 1342 m² en donde se realizara la pre cria y
otro de 768 m².donde se realizara el trasplante al final de la precria.
Estanque 2
Largo32
metros.Ancho 24 metros
Altura 2 metros
Área = 768 m²
Estanque 1
Largo61
metros.Ancho 22metros
Altura 2metros
Área = 1342 m²
6.6. La preparación de estanques
Se tendrán en cuenta los siguientes pasos:
1. Sellar las compuertas con tablas, nylon y tierra para evitar la perdida del
agua.
2. Limpiar las entradas de agua, y bordas de crustáceos, cirrípedos y
maleza que se encontrara presente.
3. Eliminar los desechos orgánicos con un cargador frontal de la
municipalidad distrital de Bellavista de la Unión.
4. Aplicar 500 kg/ha de hidróxido de calcio antes de rastrear.
5. Rastrear tratando de dar dos vueltas al fondo, terminado el rastreado
proceder a perfilar esquinas y reforzar bordes.
6. Instalar filtros en las entradas de 800 micras en perfectas condiciones,
en las compuertas de salida instalar filtros de ¼ recubiertos con malla de
gorra 2,500 micras y recubiertos de nylon.
7. Tres días antes de la siembra aplicar 12 kg/ha de nitrato de sodio, con la
finalidad de promover el fitobentos 12 kg/ha de silicatos y 12/ha de
fósforo para estabilizar la productividad primaria.
8. El nivel para la siembra debe estar en 80 cm tomando como nivel
referencial el promedio de la batimetría.
9. En el transcurso de los primeros diez días post siembra completar el
nivel de trabajo de cada piscina.
6.7 Acondicionamiento de los estanques
La preparación de los estanques se realizará una semana antes de la siembra
de pre-cría a engorde; a esto se suma el llenado de agua a los estanques
antes de la siembra del langostino, con la finalidad de subsanar las averías y
mejorar las condiciones en que se puedan encontrar, protegiendo los ingresos
y salidas del agua de los predadores y fuga del animal colocando mallas o
filtros en las salidas e ingresos de agua.
6.8Procedencia de Post-larvas y siembra en Pre-cría
Una vez terminada la etapa de aclimatación, los langostinos seránsembrados al
estanque de pre-cría. Se procederá a cosechar las piscinas de aclimatación
previo muestreo mediante contaje gravimétrico, además de registrar las los
parámetros del agua, la cosecha se empezará, por pasar una malla de 100
micras alrededor de las piscinas se concentrará todos los animales en una sola
masa y se procederá a pesar para posteriormente en el recipiente en el que se
encuentran contenidos llevarlos al tanque que los transportará hasta el
estanque de pre-cría, el tanque de transporte, contará con un volumen de agua
de aproximadamente 600 litros como resultado de la mezcla de agua de la
piscina de aclimatación y de la piscina de abastecimiento, el nivel de oxigeno
en el agua de transporte se manejará de la siguiente manera: abasteciéndola
con una tanque de oxigeno puro, mediante una manguera de aproximadamente
un centímetro de diámetro. La siembra en el estanque se realizará previa
aclimatación de la larva esto se hará con la finalidad de equilibrar la
temperatura y el pH del agua tanto del agua de transporte como la del
estanque de destino, los cuales deben de estar dentro de los siguientes
parámetros:
PH.- deberá encontrarse dentro de los rangos de: no mayor de 8.5 ni
debajo de 8.0.
Verificado los parámetros antes de la siembra se procede a bajar el nivel del
tanque que transporta la larva al 50% utilizando baldes de 20 litros con malla
de 500 micras., luego se procederá a subir el mismo nivel de agua retirado con
la finalidad de ir aclimatando las post-larva a sembrar.
Terminada esta aclimatación esperar 30 minutos que se acondicione la larva y
proceder a sembrar, al momento de sembrar la larva se utiliza mangueras de
tres pulgadas de diámetro, las cuales deben se colocarán por el operario de
siembra sobre el nivel del agua, Se debe tomar muestras de la larva antes de
aclimatar para las pruebas de estrés y larva post aclimatada para las pruebas
de sobrevivencia, las cuales se harán mediante una jaula de sobrevivencia
mediante la siembra de 100 individuos.
Cumplidas las 24 horas de sembrada la larva se deben revisar la jaula, para
evaluar la sobrevivencia.
La densidad a sembrar en el estanque de pre-cría será de 90 individuos/m2.
6.9 Procedencia de juveniles y trasplante a engorde
Se procederá a desaguar el estanque realizando la cosecha por desagüe con
una manga de malla en forma de U el cual recibirá a los langostinos, se tomara
una muestra con un colador y una vez recolectado cierto número de animales,
se estima la cantidad por el método volumétrico (ver formula “a” ), extrayendo
muestras en cada estanque. Para el trasplante, se utilizara cajas de tecno por y
baldes con agua y un colador por caja, las cuales serán llevadas a los
estanques de engorde, previa aclimatación se van liberando los animales en
diferentes zonas del estanque para una buena distribución de estos en el
cuerpo de agua.
Método volumétrico:
Fuente: Propia. Formula: “a”
6.10. Alimentación en Precria y engorde.
La alimentación se hará de la siguiente manera de acuerdo a protocolo de
alimentación basada en experiencias similares:
Durante los Primeros 7 días:
Terminada la siembra es importante aplicar el 50% de la dosis de alimento del
día, la alimentación está pre determinada por la tabla de alimentación.para esto
se utilizará un alimento de pre-cría de 1,000 pellet/gr, el porcentaje de 35%
Del día 10 al 28 de cultivo:
Se continúa con la tabla de alimentación pero se realiza un cambio en el
tamaño de pellet, 350 pellet/gr y 35% de proteína es el ideal para esta talla.
Del día 29 al 56 de cultivo:
Se dosifica la alimentación basado en la lectura de tractos y evaluación de
testigos, es importante utilizar un alimento de 100 pellet/gr y 35% de proteína,
los incrementos son cada dos días en las cantidades sugeridas por la tabla de
alimentación.
Del día 59 al 120 de cultivo:
En esta etapa se realiza el cambio de pellet, 50 pellet/gr y 30% de proteína.
Técnica de alimentación:
Durante los primeros catorce días de siembra la alimentación estará dividida en
cuatro partes iguales y los horarios son: 7 am, 10 am, 13 pm, 16 pm.
El boleo se efectuará durante los primeros 10 días solo por la orilla, después la
alimentación es en líneas donde el 90% se realizará en comederos solo el 10%
del boleo es por orilla hasta llegado 20 días.
Después del día 20 se inicia una alimentación con tres dosis iguales y los
horarios son: 8 am, 12 m, 16 pm.
Desde el día 18 se inicia la lectura de tracto digestivo y la alimentación es fija
hasta el día 21, al día 22 la alimentación inicia el ascenso, hasta la cosecha.
6.11 Monitoreo de las características físicas y químicas del agua.
El tiempo de cultivo para esta fase de precría será de 30 dias, el llenado de los
estanques se realizará dos días antes de la siembra con agua procedente del
canal Miraflores, que tiene un tirante de 1.2 m. No se fertilizará el estanque y
el recambio de agua se hará cada mes con un promedio del 30% del volumen
total del agua, aumentando o disminuyendo el recambio sólo si fuera necesario
según las variaciones de los parámetros físicos químicos y biológicos los
cuales son: alcalinidad y dureza cada 15 días, oxígeno disuelto, pH y
temperatura diariamente in situ. La transparencia del agua se medirá con el
disco de Secchi al medio día. Para las características químicas como la
alcalinidad y dureza se determinarán con reactivos en laboratorio de la
Facultad de Ingeniería Pesquera de la Universidad Nacional de Piura.
6.12 Controles biométricos
Los controles biométricos se realizarán semanalmente utilizando muestras
aleatorias (150 juveniles) obtenidas con una atarraya de 3 m de diámetro, el
primer control se realizará a los 15 días; se registrarán los pesos promedios de
cada muestreo y se realizará los controles sanitarios por observación directa
del tracto digestivo, coloración y movilidad de la especie. Se procesarán los
datos mediante las siguientes formulas:
Porcentaje de sobrevivencia.
Porcentaje de sobrevivencia = N° final de individuos x 100 N° inicial de individuos
Fuente: Cruz et al., 1993 Formula: “b”
Tasa de conversión alimenticia (FCA):
Fuente: Propia. Formula: “c”
En donde:
Pa = Peso del alimento (en base seca)
Bo = Biomasa inicial.
Bt = Biomasa final.
Porcentaje de crecimiento semanal.
Porcentaje crecimiento semanal = 100 x (peso final – peso inicial) T (dias)
Fuente: Ricker, 1975. Formula: “d”
Biomasa.
B= N individuos x Peso promedio del individuo
Fuente:Ricker, 1975.Formula: “e”
6.13. Cosecha
Una vez que el langostino crece, engorda y alcanza la talla comercial en el
tiempo de su cultivo, se inicia la faena de pesca esperando que el animal
alcance un promedio de 15 g con talla 12 cm . La cosecha se realizará por
vaciado total y captura en el monje ayudado por una manga de paño
anchovetero que permite capturar a los adultos, en la parte posterior del monje.
Se hace un muestreo para conocer el tamaño y condiciones del animal; y si
están listos los langostinos son extraídos y colocados en gavetas con suficiente
hielo para disminuir la temperatura y muera por choque térmico.
6.14. Diseño experimental:
Se realizara una prueba de hipótesis para saber si se logro el peso esperado
de 15 gr al final del periodo de cultivo.
Así mismo se realizaran análisis estadísticos como regresión lineal y
promedios, mediana y moda del conjunto de datos obtenidos.
I.- GENERALIDADES
1.- TITULO:
CULTIVO DE LANGOSTINO BLANCO Litopenaeusvannamei, (Boone,
1931), MEDIANTE SIEMBRA CON PRE CRIA EN ESTANQUES DE
TIERRA, ABASTECIDOS CON AGUA DE REGADÍO EN EL CASERIO
MIRAFLORES DEL DISTRITO DE BELLAVISTA DE LA UNIÓN,
SECHURA, 2012.
2.- FACULTAD:
Ingeniería Pesquera
3.- DEPARTAMENTO ACADEMICO:
Departamento Académico de Ingeniería Pesquera
4.- RESPONSABLES:
Patrocinador:Ing. Víctor Hugo Juárez Peña. M.Sc.
Copatrocinador:Ing. Máximo Sandoval Cruz. M.Sc.
Ejecutor:Kiko OmarJiménez Ruiz.
5.- TIPO DE INVESTIGACIÓN:
Básica.
6.- UBICACIÓN DONDE SE EJECUTARA EL ANTEPROYECTO:
La investigación se realizara en el caserío de Miraflores del distrito de Bellavista de La Unión - Provincia de Sechura -Departamento de Piura
7.- Tiempo de ejecución:
El tiempo de duración según cronograma de actividades es de
aproximadamente cinco meses; cuatro meses la fase experimental y un
mes trabajo de gabinete.
II.- JUSTIFICACION
La camaronicultura en agua dulce es una actividad que cada día adquiere
mayor importancia económica y una oportunidad real de negocio e incluso en
lugares alejados de la costa, es una excelente alternativa para muchos de los
proyectos de acuicultura rural promovidos por los gobiernosde turno o en
particular por empresarios que buscan alta rentabilidad. La tecnología
disponible y nuestros conocimientos nos permiten producir en diferentes
sistemas y medios, así como integrar los cultivos acuícolas con la
agricultura,Hoy es altamente factible producir camarón cerca de las grandes
ciudades y ofrecerlo verdaderamente fresco en los principales centros de
consumo.
Es una alternativa de solución integral para una parte significativa del sector
agrícola ya que hace más rentables y sustentables las actividades
agropecuarias. Es una ventana deoportunidad real, tanto para los productores
que estén dispuestos a adoptar nuevastecnologías y reconvertir sus cultivos,
como para los que ya participan en la industria acuícola.
Como es sabido, la energía, fertilizantes y los combustibles usados para el
bombeo,impactan los costos de producción en todas las actividades; por
eso, la integración entre los cultivos agrícolas y acuícolas, permite
mejorar la rentabilidad ysustentabilidad de las actividades agropecuarias,
mediante un modelo de producción que optimiza el aprovechamiento de los
recursos suelo y agua. El agua usada en la acuacultura es enriquecida
por los desechos metabólicos de los organismos cultivados, al ser
reutilizada en la agricultura mejora la condición del suelo, aporta materia
orgánica y varios nutrientes, especialmente compuestos nitrogenados
altamente disponibles para los vegetales.
Si tomamos en cuenta la sobre-explotación de los recursos hidrobiológicos
marinos, asimismo la contaminación generada por la instalación de nuevas
empresas industriales sobre todo mineras que han empezado sus actividades
en nuestra bahía de Sechura nos damos cuenta que dentro de poco nos
estaremos enfrentando a una gran escases de alimentos de origen marino o
dulceacuícolas , es así como se busca nuevas alternativas de desarrollo tanto
para la provincia así como para la región,la acuicultura surge como solución
para el abastecimiento de alimentos fresco y sobre todo nutritivosque
satisfagan las necesidades de la población local
Consientes que la agricultura en nuestra zona no se toma como una actividad
de altas rentabilidad sino como una actividad de subsistencia es por eso que la
acuicultura o camaronicultura se presenta como alternativa complementaria y a
la vez teniendo en cuenta que en lugares donde se desarrolla ayuda a mejorar
la calidad de vida de sus pobladores que lo practican.
El presente trabajo de investigación se realizará con la finalidad obtener
resultados sobre el cultivo deLangostino Blanco Litopenaeusvannamei
(Bonne, 1931) mediante siembra con pre cria, utilizando aguas de regadío, en
el cual se tendrá muy en cuenta el registro de su velocidad de crecimiento, los
rendimientos de biomasa y el manejo de los parámetros del agua de regadío.
Mediante la interpretación de los resultados determinaremos la conveniencia de
este sistema de cultivo.
III. HIPÓTESIS:
3.1.-HIPOTESIS DE LA INVESTIGACION
Existirá unaaltasobrevivenciay rendimientoen peso en el cultivo de langostino
blanco(Litopenaeusvannamei), bajo el sistema de Precria, en un tiempo de
cuatro meses.
3.2.-HIPOTESIS NULA
No existirá unalto rendimientoen pesoy sobrevivenciaen el cultivo de
langostino blanco(Litopenaeusvannamei),en el sistema de Precria, en un
tiempo de cuatro meses.
IV.- OBJETIVOS:
4.1. OBJETIVO GENERAL:
Evaluar el rendimiento del Cultivo de Langostino blanco
litopenaeusvannamei. (Boone, 1931), bajo un sistema de siembra con
pre cría en estanques de tierra, abastecidoscon agua de regadío en un
periodo de cuatro meses.
4.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS:
Determinar el rendimiento en pesoy sobrevivencia del langostino blanco
Litopenaeusvannamei(Bonne, 1931), durante el cultivo en los
estanques de tierra.
Determinar peso, longitud, tasa de crecimiento en peso, tasa de
crecimiento en longitud, rendimiento en biomasa, sobrevivencia,
relación talla - peso del langostino blanco
Litopenaeusvannamei(Bonne, 1931), durante el cultivo en los
estanques.
Evaluar los parámetros de oxigeno, temperatura, y pH, registrados
durante el cultivo en los estanques de tierra.
Determinar el factor de conversión alimenticia durante el cultivo en los
estanques.
V.- ANTECEDENTES BIBLIOGRÁFICOS:
El camarón del pacífico L.vannamei, es la especie de peneidos que se
cultivan con mayor intensidad en América debido al mayor conocimiento
de su cultivo y a los altos rendimientos. Recientemente se han
implementado cultivos de esta especie en agua dulce o salinidades muy
bajas. (Allen, 2000; Scarpa, 1998, 1999,2000).
P. vannamei, tiene el potencial de crecer tan rápido como P. monodon (3
g/semana) hasta 20 gramos (que es la talla máxima usualmente cultivada
de P. vannamei) bajo condiciones de cultivo intensivo (hasta 150/m2).
Puede inclusive seguir creciendo aunque más lento (particularmente los
machos) hasta 1 g/semana por encima de los 20 g (Wyban y Sweeny,
1991).
En los estanques asiáticos de cultivo comercial, Tailandia e Indonesia
alcanzan tasas de 1,0–1,5 g/semana (con un 80–90 por ciento de
sobrevivencia) en estanques de alta densidad (60–150/m2). En contraste, el
crecimiento (y sobrevivencia) de P. monodon en Tailandia ha decaído en
los últimos cinco años de 1,2 a 1,0 g/semana (y de 55 por ciento a 45 por
ciento de sobrevivencia) (Chamberlain, 2003) probablemente debido a la
gran presencia de enfermedades y/o al entrecruzamiento genético (Cuadro
5). P. stylirostris puede crecer tan rápido y tanto como el P. vannamei.
Existe una relación negativa entre la densidad de siembra en los estanques
de engorda y el peso corporal y la supervivencia de los individuos. Ello
resulta por factores relacionados con la disponibilidad de espacio y
alimento, canibalismo y aspectos relativos a la calidad del agua.Cuando
aumenta la densidad disminuye la concentración del oxígeno disuelto,
aumentan los compuestos nitrogenados y baja el pH, además se acumulan
sedimentos orgánicos indeseables (Palomino et al., 2001; Rose et al.,
2001; Arnoldet al., 2006; Araneda et al., 2008; Cuvin-Aralar, 2009).
La precria de las post-larvas es recomendable antes de la siembra en
estanques de engorda para que el camaron termine su metamorfosis y su
adaptación a estas condiciones (trece and Yates 1990).
Con respecto a la salinidad, se ha determinado que el camaronL.
vannameipuede tolerar un amplio intervalo de esta, pasando desde
condiciones de agua dulce (0.5–2.0 g/L) hasta hipersalinas (60 g/L)
(Sternet al., 1990; Saoudet al., 2003). Boyd (1989) reporto que salinidades
entre 15 y 25 g/L son ideales para este crustaceo. Samochaet al., (2004)
mostraron que este crustaceo cultivado con agua de baja salinidad (<3
g/L), crece hasta 14 g mientras que Davis et al., (2004) usando agua de
menor salinidad (2.0 g/L) alcanzaron a producir 12 toneladas/ha.
Experiencias en Mexico indican que a nivel comercial, este crustaceo
puede cultivarse exitosamente en agua de baja salinidad (0.5-5.0 g/L)
(Tamayo 1998; Van Wyket al.,1999).
Según FAO, se utilizan densidades de 80–160 PL/m2 , los estanques se
hacen heterotróficos y se forman flóculos de bacterias, que son
consumidos por los camarones, reduciendo la dependencia de alimentos
altos tanto en proteínas como en tasa de conversión alimenticia
incrementándose la eficiencia costo-beneficio. Esos sistemas han logrado
una producción de 8–50 000 kg/ha/cosecha en Belice e Indonesia. Las
densidades varían entre 60 y 300 PL/m 2 . Se requiere una aireación
continua de 1 HP/400–600 kg de camarón cosechado, para la oxigenación
y circulación del agua. La alimentación se basa en dietas artificiales
suministradas 4 a 5 veces diarias. Los factores de conversión alimenticia
fluctúan entre 1,4 y 1,8:1.
Por ejemplo en cultivos extensivos de P. monodon se colocan 20/30
semillas/m2 (Primavera y Apud, 1980); en Ecuador en granjas de P.
stylirostris y P. vannamei se estabulan entre 100 y 200 animales/m2 (Yoong
Basurto y Reinoso Naranjo, 1982). La experiencia perso. nal indica para las
dos especies mencionadas una densidad de 120 camarcnes/m2, aunque en
algunas granjas ésta suele ser de 20–25/m2. En algunos criaderos de perú
la densidad inicial de postlarvas de P. vannamei se encuentra en los
100/m2. Los animales permanecen en los precriaderos entre 30 y 60 días,
hasta alcanzar pesos que varían entre 0.5 y 4g.
Cuando se iniciaron las actiyidades de cría de camarones en las primeras
épocas era común suministrar alimentos naturales: así por ejemplo en los
precriaderos de Japón se utilizaba carne de almeja molida (Shigeno, 1975)
para alimentar P. japonicus; mientras que en los estanques de crecimiento
el mismo autor obtenía buenos resultados con mejillón azul y la almeja
“short-neckedclam”, también se utilizan y se han usado algunas variedades
de cangrejos, eufáusidos, anchoítas, caballa, etc. En el caso del camarón
argentino Artemesialonginaris se obtiene un buen crecimiento alimentando
con trozos de calamar (López y Fenucci, 1987).
El camarón del pacífico L.vannamei, es la especie de peneidos que se
cultivan con mayor intensidad en America debido al mayor conocimiento
de su cultivo y a los altos rendimientos. Recientemente se han
implementado cultivos de esta especie en agua dulce o salinidades muy
bajas. (Allen, 2000; Scarpa, 1998, 1999,2000), con salinidades de 0.23 a
11 ‰ se reportan rendimientos de 0.45-4.39 Kg/m², Sobrevivencia de 65-
100 % y un Factor de Conversión Alimenticia (FCA) de 0.7 a 2.3,
(Samocha, 2002; Saoud 2000).
Entre las ventajas del cultivo en agua dulce cabe señalar la posibilidad de
extender la camaronicultura tierra adentro, lejos de áreas costeras en
donde los virus ocurren naturalmente en el ambiente y en donde, por la
distancia entre las granjas, surgen conflictos generados por el uso común
de tomas de agua y recirculan efluentes que incrementan la posibilidad de
la introducción y la diseminación de patógenos, Joryet al (2003).
El método de alimentación es mediante el uso de "comederos",
ampliamente difundido por sus ventajas en el manejo técnico, en el impacto
ambiental y en el control de enfermedades.Este método evita el desperdicio
de alimento y por consiguiente mantiene la limpieza del fondo del estanque.
El número promedio de “comederos” colocados es de 20 por ha.( Yépez V,
2002)
Para otra importante especie como P. vannamei, Smith et al., (1985)
postulan que el crecimiento de ejemplares pequeños parece depender del
nivel de proteína en la dieta, En cuanto aP.vannamei se comienza
suministrando le a animales de 1.5 g de peso medio alrededor del 20% de
su biomasa, 4% para camarones de 10 g y 3% para tallas superiores a los
14 g (Chamberlain et al., 1981).
Saborio y Roman(2002) Investigó que durante el inicio del ciclo de engorde
se emplean alimentos artificiales con un 35% de proteínas a medida que el
camarón va creciendo su nivel proteico disminuye de un 20 a un 25% de
proteínas hasta la cosecha.
La aclimatación antes de la siembra, se hace controlando los parámetros
fisicoquímicos haciendo un recambio de agua de agua cada 30 a 60
minutos, con el objetivo de que el camarón no se estrese y se aclimate
paulatinamente desde el agua de transporte al agua del estanque a
sembrar, verificando la supervivencia de las post-larvas (Saborio y Ramon,
2002).
Es preferible sembrar en la mañana transportando las larvas durante la
noche, estas deben estar tres días en el laboratorio; la salinidad no debe
variar en más de 3ppm, (Chanratchakool, et al., 1995).
En contraste con los sistemas cerrados, en los sistemas de cultivo
semiintensivos hechos en estanques de 50,000 m² se han producido 0.300
kg/m² a una densidad inicial de 26 postlarvas/m², una sobrevivencia
de 90%, un peso promedio de 13 g en 125 días y un factor de
conversión alimenticia de 1.32:1, (Ricardo Anaya 2005, según
experiencia personal en Sonora, 2002). También se han obtenido
producciones de 0.304 kg/m² con densidades de siembra de 15
postlarvas/m², haciendo primero una cosecha parcial de camarones de
0.154 kg/m² a un peso de 18 g y una cosecha final de 0.150 kg/m²
con un peso de 35 g, con lo que se obtiene una sobrevivencia
promedio de 84% en un periodo de 200 días y un factor de
conversión alimentario de 1.7:1 (Ricardo Anaya 2005, según experiencia
personal en Sonora, 2001).
En cambio Flores y Rodríguez (1995), reportan en un cultivo de camarón
P. setiferus, con una densidad de siembra de 50 post-larvas/m², y peso de
0.2 g almomento de la siembra a más de 13 g al momento de la cosecha,
con tasa de crecimiento de 0.56 g/semana, y datos similares los registró
Aragón y García (1996), con densidad de siembra de 24 post-larvas/m², y
38 post-larvas/m² de camarón blanco L. vannamei y peso promedio de
0.003 g, y 0.3492 g respectivamente; reportaron un peso promedio al final
del cultivo de 13.99 g y 14.47 g en cada caso, con un incremento semanal
de 0.8 g y 0.78 g para cada tratamiento.
El efecto de la frecuencia de alimentación sobre el crecimiento del camarón
blanco L. vannamei, en sistema intensivo (estanques rústicos), fue
comparado por Robertson et al., (1993), observando que existe correlación
entre el crecimiento y la frecuencia de alimentación. Una vez por día
incrementa 1.62%, dos veces por día 1.66% y cuatro veces por día
incrementa 1.71%. Por otro lado, si se alimenta una solo vez por la noche
se incrementa 1.64% al día. Con lo anterior se determinó que el organismo
crece mejor con cuatro raciones al día como mínimo y también si se
alimenta con una solo ración durante la noche.
Miranda et al (2008), en Venezuela realizaron cultivo de langostino blanco
(Litopenaeusvannamei) en agua dulce en un estanque de 969 m² a una
densidad de 42 Pls/m², dicho cultivo tuvo una duración de 94 días en donde
se obtuvo 10.66 ± 0,42 g. con una sobrevivencia de 65.19 % y un
rendimiento 2.579,98 kg/ha/ciclo. En lo cual concluyeron que obtenían
resultados similares a los obtenían cuando cultivaban con agua de mar.
Luna (2005), citando a otros autores considera que: “…en EEUU se
realizaron experimentos a escala comercial sobre cultivo de P. vannamei
en un sistema de tres fases (pre-cría, pre-engorde y engorde) con
recirculación de agua dulce, procedente de un pozo; las post-larvas se
mantuvieron en un estanque de aclimatación/aislamiento a una densidad
de 1 351 ind/m2, por una semana, período en el cual se ambientaron al
agua dulce, obteniendo 80% de supervivencia
En otro estudio Samocha et al., (1998), realizaron un cultivo de juveniles
con peso inicial 2.26 g y densidad de siembra de 27.5 juveniles/m²,
probaron salinidades de 2‰, 4‰ y 8‰ durante 70 días en tanques con
recirculación semicerrada; logrando pesos promedio entre 19.0-19.28 g,
con una tasa de crecimiento semanal de 1.67 a 1.7 g.
En un cultivo de camarón blanco L. vannamei, sembrado a una densidad
de 15.4 individuos/m², con duración de 98 días, Spanopoulos y Zarco
(1995), estimaron un incremento de peso individual de 1.06 g semanales, la
mortalidad global de 35.1% y un factor de conversión alimenticia de 1.61.
En cambio Clifford, (1994), obtuvo en un cultivo semi-intensivo de L.
vannamei con una densidad de siembra de 18 a 22 post-larvas/m² un
rendimiento de 2,363 Kg/Ha, con un peso promedio de 18.5 g, en un
tiempo de cultivo de 85 días; una tasa de conversión alimenticia de 0.59 y
una tasa de crecimiento promedio de 1.52 g/semana.
En Sonora, Martínez et al., (1995), experimentaron el cultivo de camarón
blanco L. vannamei, con diferentes recambios de agua. Encontraron que
con recambios del 10 al 15%, el crecimiento, supervivencia o producción no
disminuía.
P. vannamei, resiste densidades de cultivo muy elevadas más allá de
150/m2y en ocasiones hasta 400/m2en estanques con recirculación
controlada. Aunque tales sistemas de cultivo intensivo requieren un grado
de control más elevado de los parámetros ambientales, permiten la
producción de un gran número de camarones en áreas limitadas,
resultando una mejor productividad por unidad de área que la que se
obtiene actualmente con P. monodon en Asia.
P. vannamei tolera un amplio rango de salinidad, desde 0,5–45 ppt, se
siente cómodo entre 7–34 ppt pero crece particularmente bien en bajas
salinidades entre 10–15 ppt (donde el medio y la hemolinfa son
isosmóticos) (Wyban y Sweeny, 1991). Esta facultad lo convierte en un
buen candidato para el cultivo tierra dentro que en los últimos años se ha
vuelto muy común en Asia y América Latina. Por ejemplo un alto porcentaje
de P. vannamei chino se cultiva tierra dentro en sitios de agua dulce y su
producción es mucho mayor que la de especies indígenas.
VI.- MATERIAL Y METODOS
6.1 Ubicación Geográfica:
El proyecto de investigación se desarrollará en el Distrito de Bellavista de la
Unión, en el caserío de Miraflores específicamente en el terreno agrícola de
propiedad del Sr.Jimmy VilelaPingo.
La localización de dicha área se encuentra en:
Distrito: Bellavista de la Unión.
Provincia: Sechura
Departamento: Piura
País: Perú
6.2 Periodo experimental:
Cuatro meses, que comprende la siembra y cosecha del cultivo en la fase de engorde
6.3 La especie a Cultivar.
Se va a sembrar langostino Blanco (Litopenaeusvannamei) en una cantidad de
90000 juveniles con un peso promedio de 0.016 gramos.
6.4 Materiales y equipos
6.4.1 Materiales:
Malla finas(Cálcales) de diferente tamaño
Comederos circulares de 70 cm.
Atarraya de 3m de diámetro de un ¼ de pulgada de malla
Recipientes plásticos: baldes, jarras, bateas, coladeras
Malla plástica, filtros de malla.
Manga Red anchovetera para cosecha.
6.4.2 Equipos:
Peachimetro digital PH 3 marca AquaticEcosystem
Termómetro +/-0.1 º C
Balanza analítica +/-0.1gr
Oximetro DO6 Marca AquaticEcosystem
Cámaradigital. Marca Canon 14.5 Mp
Disco de secchi.
Carcinometro.
6.4.5 Insumos:
Análisis de dureza y alcalinidad del agua
Agua de regadío por gravedad
Alimento balanceado FormatoPrecria, KR1 y KR2 Marca
Nicovita
6.4.6 Material biológico:
90,000 juveniles de Litopenaeusvannameide 0.016 gramos
en peso promedio, que se obtendrán de las piscinas de
aclimatación ubicadas en el local de la biblioteca municipal
del centro poblado de San Clemente, los mismos que fueron
adquiridos del laboratorio MARINA AZUL SAC. Cancas –
Tumbes.
6.5 Acondicionamiento de unidad experimental.
La unidad experimental será el estanque de tierra con los ejemplares de
langostino blanco, 1 estanque de 1342 m² en donde se realizara la pre cria y
otro de 768 m².donde se realizara el trasplante al final de la precria.
6.7. La preparación de estanques
Se tendrán en cuenta los siguientes pasos:
Estanque 2
Largo32
metros.Ancho 24 metros
Altura 2 metros
Área = 768 m²
Estanque 1
Largo61
metros.Ancho 22metros
Altura 2metros
Área = 1342 m²
10.Sellar las compuertas con tablas, nylon y tierra para evitar la perdida del
agua.
11.Limpiar las entradas de agua, y bordas de crustáceos, cirrípedos y
maleza que se encontrara presente.
12.Eliminar los desechos orgánicos con un cargador frontal de la
municipalidad distrital de Bellavista de la Unión.
13.Aplicar 500 kg/ha de hidróxido de calcio antes de rastrear.
14.Rastrear tratando de dar dos vueltas al fondo, terminado el rastreado
proceder a perfilar esquinas y reforzar bordes.
15. Instalar filtros en las entradas de 800 micras en perfectas condiciones,
en las compuertas de salida instalar filtros de ¼ recubiertos con malla de
gorra 2,500 micras y recubiertos de nylon.
16.Tres días antes de la siembra aplicar 12 kg/ha de nitrato de sodio, con la
finalidad de promover el fitobentos 12 kg/ha de silicatos y 12/ha de
fósforo para estabilizar la productividad primaria.
17.El nivel para la siembra debe estar en 80 cm tomando como nivel
referencial el promedio de la batimetría.
18.En el transcurso de los primeros diez días post siembra completar el
nivel de trabajo de cada piscina.
6.7 Acondicionamiento de los estanques
La preparación de los estanques se realizará una semana antes de la siembra
de pre-cría a engorde; a esto se suma el llenado de agua a los estanques
antes de la siembra del langostino, con la finalidad de subsanar las averías y
mejorar las condiciones en que se puedan encontrar, protegiendo los ingresos
y salidas del agua de los predadores y fuga del animal colocando mallas o
filtros en las salidas e ingresos de agua.
6.9Procedencia de Post-larvas y siembra en Pre-cría
Una vez terminada la etapa de aclimatación, los langostinos seránsembrados al
estanque de pre-cría. Se procederá a cosechar las piscinas de aclimatación
previo muestreo mediante contaje gravimétrico, además de registrar las los
parámetros del agua, la cosecha se empezará, por pasar una malla de 100
micras alrededor de las piscinas se concentrará todos los animales en una sola
masa y se procederá a pesar para posteriormente en el recipiente en el que se
encuentran contenidos llevarlos al tanque que los transportará hasta el
estanque de pre-cría, el tanque de transporte, contará con un volumen de agua
de aproximadamente 600 litros como resultado de la mezcla de agua de la
piscina de aclimatación y de la piscina de abastecimiento, el nivel de oxigeno
en el agua de transporte se manejará de la siguiente manera: abasteciéndola
con una tanque de oxigeno puro, mediante una manguera de aproximadamente
un centímetro de diámetro. La siembra en el estanque se realizará previa
aclimatación de la larva esto se hará con la finalidad de equilibrar la
temperatura y el pH del agua tanto del agua de transporte como la del
estanque de destino, los cuales deben de estar dentro de los siguientes
parámetros:
PH.- deberá encontrarse dentro de los rangos de: no mayor de 8.5 ni
debajo de 8.0.
Verificado los parámetros antes de la siembra se procede a bajar el nivel del
tanque que transporta la larva al 50% utilizando baldes de 20 litros con malla
de 500 micras., luego se procederá a subir el mismo nivel de agua retirado con
la finalidad de ir aclimatando las post-larva a sembrar.
Terminada esta aclimatación esperar 30 minutos que se acondicione la larva y
proceder a sembrar, al momento de sembrar la larva se utiliza mangueras de
tres pulgadas de diámetro, las cuales deben se colocarán por el operario de
siembra sobre el nivel del agua, Se debe tomar muestras de la larva antes de
aclimatar para las pruebas de estrés y larva post aclimatada para las pruebas
de sobrevivencia, las cuales se harán mediante una jaula de sobrevivencia
mediante la siembra de 100 individuos.
Cumplidas las 24 horas de sembrada la larva se deben revisar la jaula, para
evaluar la sobrevivencia.
La densidad a sembrar en el estanque de pre-cría será de 90 individuos/m2.
6.9 Procedencia de juveniles y trasplante a engorde
Se procederá a desaguar el estanque realizando la cosecha por desagüe con
una manga de malla en forma de U el cual recibirá a los langostinos, se tomara
una muestra con un colador y una vez recolectado cierto número de animales,
se estima la cantidad por el método volumétrico (ver formula “a” ), extrayendo
muestras en cada estanque. Para el trasplante, se utilizara cajas de tecno por y
baldes con agua y un colador por caja, las cuales serán llevadas a los
estanques de engorde, previa aclimatación se van liberando los animales en
diferentes zonas del estanque para una buena distribución de estos en el
cuerpo de agua.
Método volumétrico:
Fuente: Propia. Formula: “a”
6.10. Alimentación en Precria y engorde.
La alimentación se hará de la siguiente manera de acuerdo a protocolo de
alimentación basada en experiencias similares:
Durante los Primeros 7 días:
Terminada la siembra es importante aplicar el 50% de la dosis de alimento del
día, la alimentación está pre determinada por la tabla de alimentación.para esto
se utilizará un alimento de pre-cría de 1,000 pellet/gr, el porcentaje de 35%
Del día 10 al 28 de cultivo:
Se continúa con la tabla de alimentación pero se realiza un cambio en el
tamaño de pellet, 350 pellet/gr y 35% de proteína es el ideal para esta talla.
Del día 29 al 56 de cultivo:
Se dosifica la alimentación basado en la lectura de tractos y evaluación de
testigos, es importante utilizar un alimento de 100 pellet/gr y 35% de proteína,
los incrementos son cada dos días en las cantidades sugeridas por la tabla de
alimentación.
Del día 59 al 120 de cultivo:
En esta etapa se realiza el cambio de pellet, 50 pellet/gr y 30% de proteína.
Técnica de alimentación:
Durante los primeros catorce días de siembra la alimentación estará dividida en
cuatro partes iguales y los horarios son: 7 am, 10 am, 13 pm, 16 pm.
El boleo se efectuará durante los primeros 10 días solo por la orilla, después la
alimentación es en líneas donde el 90% se realizará en comederos solo el 10%
del boleo es por orilla hasta llegado 20 días.
Después del día 20 se inicia una alimentación con tres dosis iguales y los
horarios son: 8 am, 12 m, 16 pm.
Desde el día 18 se inicia la lectura de tracto digestivo y la alimentación es fija
hasta el día 21, al día 22 la alimentación inicia el ascenso, hasta la cosecha.
6.11 Monitoreo de las características físicas y químicas del agua.
El tiempo de cultivo para esta fase de precría será de 30 dias, el llenado de los
estanques se realizará dos días antes de la siembra con agua procedente del
canal Miraflores, que tiene un tirante de 1.2 m. No se fertilizará el estanque y
el recambio de agua se hará cada mes con un promedio del 30% del volumen
total del agua, aumentando o disminuyendo el recambio sólo si fuera necesario
según las variaciones de los parámetros físicos químicos y biológicos los
cuales son: alcalinidad y dureza cada 15 días, oxígeno disuelto, pH y
temperatura diariamente in situ. La transparencia del agua se medirá con el
disco de Secchi al medio día. Para las características químicas como la
alcalinidad y dureza se determinarán con reactivos en laboratorio de la
Facultad de Ingeniería Pesquera de la Universidad Nacional de Piura.
6.12 Controles biométricos
Los controles biométricos se realizarán semanalmente utilizando muestras
aleatorias (150 juveniles) obtenidas con una atarraya de 3 m de diámetro, el
primer control se realizará a los 15 días; se registrarán los pesos promedios de
cada muestreo y se realizará los controles sanitarios por observación directa
del tracto digestivo, coloración y movilidad de la especie. Se procesarán los
datos mediante las siguientes formulas:
Porcentaje de sobrevivencia.
Porcentaje de sobrevivencia = N° final de individuos x 100 N° inicial de individuos
Fuente: Cruz et al., 1993 Formula: “b”
Tasa de conversión alimenticia (FCA):
Fuente: Propia. Formula: “c”
En donde:
Pa = Peso del alimento (en base seca)
Bo = Biomasa inicial.
Bt = Biomasa final.
Porcentaje de crecimiento semanal.
Porcentaje crecimiento semanal = 100 x (peso final – peso inicial) T (dias)
Fuente: Ricker, 1975. Formula: “d”
Biomasa.
B= N individuos x Peso promedio del individuo
Fuente:Ricker, 1975.Formula: “e”
6.13. Cosecha
Una vez que el langostino crece, engorda y alcanza la talla comercial en el
tiempo de su cultivo, se inicia la faena de pesca esperando que el animal
alcance un promedio de 15 g con talla 12 cm . La cosecha se realizará por
vaciado total y captura en el monje ayudado por una manga de paño
anchovetero que permite capturar a los adultos, en la parte posterior del monje.
Se hace un muestreo para conocer el tamaño y condiciones del animal; y si
están listos los langostinos son extraídos y colocados en gavetas con suficiente
hielo para disminuir la temperatura y muera por choque térmico.
6.14. Diseño experimental:
Se realizara una prueba de hipótesis para saber si se logro el peso esperado
de 15 gr al final del periodo de cultivo.
Así mismo se realizaran análisis estadísticos como regresión lineal y
promedios, mediana y moda del conjunto de datos obtenidos.
V.-CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES:
MESES
ACTIVIDAD
1°
mes
2°
mes
3°
mes
4°
mes
5°
mes
6°
mes
7°
mes
8°
mes
9°
mes
Idea Del Proyecto X
Revisión
Bibliográfica
X X X X X X X
Presentación del
anteproyecto
X
Fase Experimental
muestreos
X X X
Análisis y
procesamiento de
datos campo
X X X
Redacción y
presentación De
Informe
X X X
Revisión final del
informe
X
Presentación y
Sustentación de
tesis
X
VI.-PRESUPUESTO
Rubro
Costos de Producción
Cant. Und. P.U Nuevos soles
(S/.)
Compra Juveniles 180 millar 26.8 1393.6
Flete 52 3 156.00
Subtotal 1549.6
Personal
Guardián 1 120 10 1200
Subtotal 1200.00
Insumos
Agua 0.5 Ha 340 170.00
alimento 1,500 kg 3.6 5400.00
Subtotal 5570.00
Tipeosy Impresión 180 4 0.84 604.8
Fotos, filmación, otros 25 1 28 500.00
Subtotal 1004.8
Total 9324.4
SON: NUEVE MIL TRESCIENTOS VEINTICINCO NUEVOS SOLES.
EQUIVALENCIA DEL DOLAR: $1 = S/. 2.8
SON: TRES MIL DOSCIENTOS SETENTA DOLARES AMERICANO
VII. BIBLIOGRAFIA
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http://redalyc.uaemex.mx/redalyc/pdf/461/46112896001.pdf