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TECNICA DEL ENSILADO BIOLOGICO DE RESIDUOS DE PESCADO PARA RACION ANIMALPalmira Padilla Pérez *1. PRESENTACIONEl ensilado biológico de residuos de pescado, es sin duda una alternativapara subsistir la harina de pescado y la harina de carne en la preparación deraciones para aves, peces, ganado vacuno, porcinos, ovino, y otros animales.La mayor importancia del ensilado radica en su utilización para la formulación deraciones de bajo costo y alto valor nutricional. Puede ser utilizado en lapiscicultura, disminuyendo de ese modo los costos de producción.Para la obtención del ensilado biológico son utilizados residuos de pescadoresultantes del fileteado, así como aquellos peces impropios para el consumo.En su elaboración se usa un fermento biológico en base a vegetales ricos enbacterias lácticas que fermentan los azúcares y producen ácido láctico.Como consecuencia de este proceso hay preservación del residuo evitándose eldeterioro y produciéndose la hidrólisis parcial de las proteínas.El ensilado biológico de residuos de pescado tiene un elevado valor nutricional,semejándose con la composición de la materia prima que le origina.El objetivo principal de está técnica es contribuir al desarrollo de la ganadería, laavicultura y la piscicultura regional, a través de la formulación de racioneseficientes y de bajo costo, utilizándose el ensilado biológico de residuos depescado como principal fuente de proteína.* Investigadora del Instituto de Investigaciones de la Amazonía Peruana - IIAPP. PADILLA P.1482. INDICACIONES GENERALES PARA LA TECNICA DEL ENSILADO2.1 Elaboración del fermento biológicoSegún recomendaciones de la FAO (1985), son utilizados los siguientesingredientes:- Repollo 41%- Papaya 31%- Harina de trigo 17%- Sal de cocina 3%- Vinagre 8%La papaya y el repollo son molidos, homogenizados y mezclados con la harinade trigo, sal y vinagre. La mezcla, después de la homogenización, es colocadaen bolsa plástica creando condiciones anaeróbicas.El período de incubación es de tres a siete días a temperatura ambiente. Cada 24horas es homogenizada la mezcla.2.1.1 Variaciones de pH y acidez del ácido láctico en el fermento biológicoLas variaciones de pH y de acidez llegan a su ápice con tres días defermentación alcanzando un pH de 3.5 y una acidez de 4.6%. Al llegar aeste nivel, el fermento puede ser utilizado.Para ampliar las posibilidades de la producción del ensilado, se puedehacer variar los componentes de la formulación del fermento, utilizándosecol, almidón de yuca, harina de trigo, piña y jugo de limón, para sustituirel vinagre (Lessi et al., 1992).TECNICA DEL ENSILADO BIOLOGICO DE RESIDUOS DE PESCADO
PARA RACION ANIMAL1492.2 Obtención del ensilado biológicoPara garantizar una buena homogenización del producto, se muele el residuode pescado y la masa resultante se mezcla con los siguientes ingredientes en lasproporciones siguientes:- Harina de trigo 30% p/p*- Sal de cocina 4% p/p- Fermento biológico 10% p/pEsta mezcla se homogeniza con una espátula de madera y es acondicionada enun balde o bandeja plástica cubierta con lámina plástica o impermeable paracrear condiciones anaeróbicas, dejándose un período de incubación de tres a seisdías a temperatura ambiente.Cada 24 horas se realiza la homogenización con una espátula de madera.Después de cinco días de hidrólisis, el ensilado es expuesto al sol.2.2.1 Variaciones del pH y acidez del ensiladoEl uso del fermento biológico permite efectuar variaciones de pH y la acidezde la mezcla en el molido de residuos de pescado, harina de trigo y sal. Lasbacterias lácticas productoras de ácido láctico utilizan la harina de trigocomo fuente de carbohidratos para continuar fermentando el medio.Con este procedimiento se evita el desarrollo de otros microorganismosputrefactores, ya que el pescado no contiene carbohidratos suficientes paraproducir una fermentación con cambios de pH y acidez del ácido láctico quepreserve el molido de residuo de pescado.Después del tercer día de incubación el pH y la acidez del ensilado comienzaa estabilizarse en 4.7 y 4.0%, respectivamente (Ximenes-Carneiro, 1991;Lessi et al., 1992 y Padilla, 1995).2.3 Características organolépticasSe basan en el aroma, color, consistencia y sabor (Bertullo, 1992).* p/p = Peso del pescadoP. PADILLA P.150Durante las primeras 24 horas el ensilado presenta un color rosado, indicandoel desarrollo inicial de las bacterias putrefactoras. Después del segundo día lamezcla va oscureciendo, su consistencia es pastosa y el olor se asemeja al desardina en conserva. Estas características van cambiando de acuerdo a laacción de las bacterias productoras de ácido láctico, dando como resultado eldescenso del pH, el ascenso de la acidez y la hidrolización de las proteínas.Las variaciones del pH y del tenor de acidez por un lado benefician lahidrólisis de las proteínas y por otro lado inhiben el crecimiento de lasbacterias putrefactoras. A los cinco días, el ensilado tiene un color castañooscuro, textura casi líquida y sabor agridulce.2.4 Secado y almacenado del ensiladoA los cinco días del preparado, el ensilado se expone al sol por 24 a 48 horas ohasta alcanzar una humedad de 5%, la cual va a representar un rendimiento del50% del peso inicial. Después se coloca en bolsas plásticas y se almacena enun lugar con poca humedad y protegido de la acción directa del sol, hasta elmomento de su utilización.
Conviene secar el producto, pues cuanto mayor sea el contenido de agua en elensilado, menor será la concentración de nutrientes. Asimismo, el elevadotenor de humedad puede causar problemas de proliferación de hongos (Villelade Andrade, 1989).TECNICA DEL ENSILADO BIOLOGICO DE RESIDUOS DE PESCADOPARA RACION ANIMAL1513. BIBLIOGRAFIABERTULLO, E. 1992. Ensilado de pescado en la pesquería artesanal. En: 2ª.Consulta de Expertos Sobre Tecnología de Productos Pesqueros en AméricaLatina. Montevideo (Uruguay) 11-15 de Diciembre de 1989. Informe depesca 441. Supl. Roma. FAO. 368 pp.FAO, 1985. Relatório de Tecnología e controle de Qualidade de Productos dePesca. Praia. Rep. de Cabo Verde, 27/11 a 11/12 de 1984. Roma. 24 pp.LESSI, E.; XIMENES - CARNEIRO, A. R.; LUPIN, H.M. 1992. Obtenciónde ensilado biológico de pescado. En: 2ª Consulta de Expertos sobreTecnología de productos pesqueros en América Latina. Montevideo(Uruguay), 11-15 de Diciembre de 1989. Informe de pesca 441. Supl.Roma. FAO. 368 pp.PADILLA P., P. P. 1995. Influência do Ensilado Biológico de Peixe e do Peixecozido no Crescimento e Composiçâo Corporal de Alevinos de Tambaqui,Colossoma macropomum (Cuvier,1818). Manaus (Brasil): Instituto Nacionalde Pesquisas da Amazônia/Fundaçâo Universidade de Amazonas.Dissertacao de Mestrado. 76 pp.VILLELA DE ANDRADE, M.F.; LESSI, E. y FRANQUEIRA DA SILVA,J.M. 1989. Obtención de ensilado de resíduo de sardina, Sardinellabrasiliensis y su empleo en la formulación de raciones de mínimo costopara aves. En: Consulta de Expertos sobre Tecnología de productosPesqueros en América Latina 2. Montevideo. Roma. FAO. 19 pp.XIMENES - CARNEIRO, A. R. 1991. Elaboraçâo e uso de ensilado biológico depescado na alimentaçâo de alevinos de tambaqui, Colossoma macropomum(Cuvier, 1818). Manaus (Brasil): Instituto Nacional de Pesquisas daAmazônia/Fundaçâo Universidade de Amazonas. Dissertaçâo de Mestrado.81pp.
REDVET. Revista electrónica de Veterinaria 1695-7504
2007 Volumen VIII Número 9
REDVET Rev. electrón. vet. http://www.veterinaria.org/revistas/redvet
Vol. VIII, Nº 9, Septiembre/2007– http://www.veterinaria.org/revistas/redvet/n090907.html
Evaluación del ensilado químico de pescado en la alimentación de
Clarias gariepinus (Burchell, 1822) - Fish chemical silage evaluation in
Clarias gariepinus (Burchell, 1822) feeding
Toledo Pérez, J.1 Botello León, A. 2 y Llanes Iglesias, J E. 1.
1
Centro de Preparación Acuícola Mampostón. Carretera Central km 41,
Morales, San José de las Lajas. La Habana. Cuba. sjtens41@yahoo.com
2
Facultad de Medicina Veterinaria. Universidad de Granma. Bayamo,
Provincia Granma, Cuba.
R7EDVET: 2007, Vol. VIII Nº 9
Recibido: 12 Junio 2007 / Referencia: 09012_REDVET / Aceptado: 16 Agosto 2007 / Publicado: 01 Septiembre
2007
Está disponible en http://www.veterinaria.org/revistas/redvet/n090907.html concretamente en
http://www.veterinaria.org/revistas/redvet/n090907/090723.pdf
REDVET® Revista Electrónica de Veterinaria está editada por Veterinaria Organización®.
Se autoriza la difusión y reenvío siempre que enlace con Veterinaria.org® http://www.veterinaria.org y con
REDVET® - http://www.veterinaria.org/revistas/redvet
Resumen
Con el objetivo de evaluar el efecto biológico y económico del ensilado químico de pescado,
como única fuente de proteína animal en la alimentación de alevines de Clarias gariepinus, se
ensilo manchuelo entero (Opisthonema oglinum), con tres combinaciones de ácidos orgánicos
e inorgánicos: 3% de ácido fórmico; 2% ácido sulfúrico 98% y 2% de ácido fórmico y un
tercer ensilado con 2,6% de ácido fosfórico y 2,6% de ácido cítrico. Con cada ensilado se
confecciono una dieta húmeda, las cuales fueron comparadas con un Alimento Comercial en
la alimentación de alevines de Clarias gariepinus durante 60 días. En los resultados obtenidos
no hubo diferencias significativas (P>0.05) en los indicadores de crecimiento, utilización del
alimento y supervivencia al sustituir totalmente la harina de pescado por los ensilados
químicos de pescado. El análisis económico mostró un ahorro de 20 a 30% de los costos de
producción por concepto de alimentación.
Palabras claves: alimentación, Clarias, ensilado químico de pescado
Ab stra ct
The objetive of this work was to evaluate the biologic and economic effects of chemical fish
silage as a unique animal protein source in Clarias gariepinus feeding. Ensiled Opisthonema
oglinum with three combinations of organic and inorganic acids: 3% of formic acid; 2%
sulfuric acid 98% and 2% formic acid and other with 2,6% phosphoric acid and 2,6% of citric
acid. From each silage moist diets was prepared and were compared with comercial foods in
Clarias gariepinus feeding during 60 days. There were not significant differences (P>0.05), in
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growth, feed utilization and survival indicators. The economic analysis showed a cost
production sabe between 20 and 30%.
Key Words: feeding, clarias, chemical fish silage.
INTRODUCCION
En 1999 se inicia en Cuba la introducción y desarrollo de dos especies de pez gato africano
(Clarias gariepinus y Clarias macrocephalus) para aumentar las producciones de pescado de
agua dulce y suplir de proteína de alta calidad a la población. La estrategia de alimentación
para estos peces se trazó a partir de los desechos generados en las industrias procesadoras
de pescado, como única fuente de proteína animal, puesto que son peces de bajo valor
comercial y la harina de pescado (principal fuente de proteína animal utilizada en alimentos
acuícola) es adquirida a 1200,00 – 1300,00 USD/tonelada en el mercado internacional.
En el Centro de Preparación Acuícola Mampostón se desarrollan dos metodologías para la
conservación de los desechos de pescado destinados a la alimentación de estos peces. Una
consiste en la adición de un 15% de miel final (peso/peso) y 3% de yogurt comercial
(peso/peso) como inoculo de bacterias lácticas (ensilado biológico) y la segunda
adicionándole un 16% de una melaza acidificada PROTEOLABR (ensilado bioquímico). Uno de
los problemas confrontados con estas tecnologías de conservación es la utilización de la miel
final debido a las transformaciones del sector azucarero. En tal sentido el objetivo de este
trabajo es evaluar el efecto biológico y económico de la inclusión de los desechos de
pescados ensilados con varios ácidos orgánicos e inorgánicos (ensilados químicos de
pescado) en dietas húmedas para la alimentación de alevines de Clarias gariepinus.
MATERIALES Y METODOS.
El trabajo se realizo en la Planta de Investigación – Producción de Alimentos no
Convencionales para Peces, del Centro de Preparación Acuícola Mampostón.
Preparación de las dietas experimentales.
Se empleó machuelo entero (Opisthonema oglinum, Lesueur, 1817), los cuales fueron
molidos en un molino de carne JAVAR 32 a un tamaño de partícula de 1cm. La pasta
obtenida se homogenizó y fue dividida en tres porciones iguales. A la primera se le adiciono
3,5% (peso/volumen) de ácido fórmico 98%; la segunda con 2% de ácido sulfúrico 98%
(peso/volumen), y 2% de ácido fórmico 98% (peso/volumen) y la tercera se mezcló con
2,6% ácidos fosfórico 96% (peso/volumen), 2,6% de ácido cítrico (peso/peso) y 0,1% de
benzoato de sodio. El mezclaje de cada pasta de pescado con sus respectivos ácidos fue
realizado en una mezcladora HOBART M-600 durante 10 minutos y fue almacenado durante 7
días (Fagbenro y Jauncey, 1993), en potes plásticos de 5 L con tapa a temperatura
ambiente.
Se evaluaron 3 dietas experimentales (húmedas) con cada uno de los EQ, las cuales fueron
comparadas con el Alimento Comercial (20% de harina de pescado). Para la preparación de
las dietas experimentales se molinaron las harinas vegetales (soya, trigo y salvado de trigo)
aproximadamente a 50 micras y fueron mezcladas en una mezcladora HOBART M-600
durante 5 minutos según las proporciones establecidas en la Tabla 1. Al cabo de este tiempo
le era incluido el EQ (base humedad) dejándose 10 minutos de mezclado. La peletización de
las dietas se llevó a cabo en el molino de carne con un disco de 2 mm de diámetro,
confeccionándose 5 kg por tratamiento, los cuales se conservaron en recipientes
herméticamente cerrados a temperatura de -10o C.
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Tabla 1. Composición porcentual y química de las dietas experimentales.
I n g r ed i en t e s
EF (acido fórmico)
ESF( ácido sulfúrico y fórmico)
EFC(ácido fosfórico y cítrico)
Harina de pescado
Harina de soya
Harina de trigo
Salvado de trigo
Aceite de soya
Premezcla de vitaminas y minerales.
Dextrana
Total
Humedad (%)
Proteína bruta (%)
Energía digestible (kcal/kg)
Tasa proteína / energía (mg/kcal)
Para el bioensayo, se utilizaron alevines de pez gato africano (Clarias gariepinus Burchell,
1822) de 4.91±0.05g de peso promedio inicial, los cuales fueron distribuidos al azar en 12
tanques circulares de fibra de vidrio con capacidad de 200 L de agua (3
réplicas/tratamiento). En cada tanque se colocaron 20 peces. El flujo de agua se estandarizó
a razón de 0.50 l/ min. Diariamente se registraba la temperatura y la concentración de
dioxígeno disuelto antes de cada alimentación con un oxímetro HANNA. Cada 10 días se
determinaron los valores de nitritos y nitratos, por medio de un potenciómetro Hidrocheck.
La tasa de adición de alimento fue calculada a 1,60 g proteína bruta/ 100 g peso vivo,
correspondiendo 7,48% del peso corporal/día para las dietas húmedas (D2, D3 y D4) y
5,48% para la control, las cuales fueron suministradas en dos raciones al día (9:30 y
16:00h) durante 60 días. Cada 15 días, los peces fueron pesados para el ajuste de la ración
y evaluar los siguientes indicadores nutricionales: Pesos finales (PF), Incremento de peso
diario (IPD) = PF – PI / t., Factor de Conversión Alimentario (base húmeda)
(FCAH)=Alimento añadido (base húmeda)/Ganancia peso, Factor de Conversión Alimentario,
base seca (FCAS) = Alimento añadido (base seca)/Ganancia peso y Supervivencia (S)= No.
Animales finales/ No. Animales iniciales x 100. A estos indicadores se les realizó una prueba
de normalidad y homogeneidad de varianza y un análisis de varianza de clasificación simple.
Las medias fueron comparadas por la prueba de comparación múltiple de Duncan por medio
del paquete STATISTICA® para Windows, versión 6.0 del 2000.
Las determinaciones químicas se realizaron por la A.O.A.C (1990): Materia Seca (MS):
Desecación en estufa a 105 0C hasta peso constante. Proteína Bruta (PB): Por Kjeldahl
utilizando el factor 6.25. Extracto Etéreo (EE): Por Soxhlet utilizando éter de petróleo a 40-
60 0C y Extracto Libre de Nitrógeno (ELN) por diferencia. La energía digestible (ED), se
calculó utilizando los siguientes factores de conversión: 3.00 Kcal/g para carbohidratos (no
leguminosa) y 2.00 (leguminosa), 4.25 proteína animal, 3.80 proteína vegetal y 8.00 para
lípidos.
Para determinar la evaluación costo-beneficio de los EQ y las dietas experimentales utilizadas
se tomaron los valores de las fichas de costo establecido para la Planta Piloto de
Investigación y Producción de Alimentos No Convencionales del CPAM, cuya capacidad diaria
es de 3 toneladas de EQ y 5 toneladas de alimentos húmedos considerándose todos los días
del año.
D1
(Control)
-
-
-
20
20
20
31
3
1
5
100
10.57
29.25
2 784
105.06
D2
(AF)
D3
(ASF)
40
-
-
-
18
12
27
2
1
-
100
33.61
21.40
2 172
98.49
-
40
-
-
18
12
27
2
1
-
100
33.60
21.46
2 173
98.81
D4
(AFC)
-
-
40
-
18
12
27
2
1
-
100
33.56
21.30
2 173
98.10
3
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RESULTADOS Y DISCUSIÓN.
Los resultados experimentales que se obtuvieron en el bioensayo con las dietas
experimentales durante los 60 días de alimentación se muestran en la Tabla 3.
Tabla 3. Resultados obtenidos con las dietas experimentales.
Indicadores
PI (g)
PF (g)
IPD (g/día)
FCAH
FCAS
Supervivencia (%)
ES± = Error Estándar ±. Los valores con letras diferentes dentro de las filas, son estadísticamente diferentes (P<0.05).
El ANOVA mostró que los indicadores de crecimiento (PF y IPD) en los distintos tratamientos
no presentaron diferencias significativas (P>0.05). Resultados similares fueron obtenidos por
Fagbenro y Fasakin (1996), utilizando ácidos cítrico y propiónico para ensilar vísceras de
aves, las cuales incluyeron en dietas para alevines de Clarias gariepinus. Los IPD (g/día)
fueron de 0.62 y 0.68 con las dietas experimentales, los cuales son similares (0,69) a los
reportados por Fagbenro y Jauncey (1994) en alevines de Clarias gariepinus, utilizando
harina de ensilado de pescado.
El FCA (base húmeda), presentó diferencias significativas (P<0.05) entre el control (1.33)
con respecto a los restantes tratamientos, donde se obtuvieron valores de 1.77 a 1.79. Sin
embargo, en base seca, no presentó diferencias significativas (P>0.05), para las diferentes
dietas empleadas. Por lo que estas diferencias están atribuidas a los contenidos de humedad
entre la dieta control (10.57%) y las restantes dietas con EQ (33.00%). Anteriormente,
Fagbenro y Jauncey (1994) alimentaron alevines de Clarias gariepinus con dietas húmedas
en las que se incluyó ensilados de pescado y obtuvieron valores más elevados en este
indicador (2.44 a 2.55).
Estos resultados positivos están dados por igualar el consumo de proteína en todos los
tratamientos, modificándose para esto la tasa de adición del alimento en función de la
cantidad de alimento a ingerir (gramos de proteína bruta/ 100 g de peso vivo). De esta
forma, los bajos niveles proteicos de las dietas con EQ (en base húmeda), se compensaron
con una mayor tasa de adición de alimento.
Respecto a esto, Llanes (2003) evaluó esta misma tecnología en tilapia roja (Oreochromis
sp.), sometiendo a los peces a una misma tasa de alimentación (8% del peso corporal/día),
sin tener en cuenta las diferencias de PB entre las dietas experimentales y el control y obtuvo
diferencias significativas en el crecimiento pero igual conversión alimentaría (base húmeda).
Este autor recomendó que cuando se adicione alimento húmedo la tasa de adición de
alimento se calcule en función del alimento a ingerir (gramos de proteína bruta / 100g peso
vivo) y de esta forma cuantificar el consumo de materia seca que aporte los requerimientos
nutricionales de la especie para no afectar el crecimiento.
En la Figura 1 se muestra los pesos promedio de los alevines de Clarias gariepinus en los
diferentes muestreos durante los 60 días de alimentación.
D1
(control)
4.95
42.19
0.62
1.33a
1.18
93.3
D2
(AF)
4.90
45.78
0.68
1.78b
1.18
96.7
ES±
0.08
2.69
0.01
0.01
0.01
1.67
D3
(ASF)
4.90
44.65
0.66
1.79b
1.19
96.7
ES±
0.08
4.99
0.02
0.01
0.01
1.67
D4
(AFC)
4.89
43.93
0.65
1.77b
1.17
93.3
ES±
0.08
5.00
0.04
0.02
0.01
1.67
ES±
0.08
4.26
0.03
0.02
0.01
1.67
4
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55
50
45
40
35
30
Peso (g)
25
20
15
10
5
0
-5
Control
DF
DSF
DFC
0
15
Tiempo (días)
30
45
60
Figura 1. Comportamiento de los pesos de los peces experimentales (medias ±
Error Estándar) durante los 60 días de experimentación.
La supervivencia fue alta en todos los tratamientos (93-96%), lo que muestra que son peces
muy resistentes a las condiciones de cultivo intensivo y manejo.
La temperatura del agua oscilo de 26 a 29 0C y como promedio fue de 27.97 0C. La
concentración de dioxígeno disuelto fue de 4.5 mg / L como promedio durante el
experimento. Los nitratos registraron valores de 0.10 a 0.13 ppm y los nitritos de 0.42 a
0.45 ppm. Todos estos valores están dentro del rango fisiológico para el cultivo de esta
especie según Viveen et al., (1985).
En la Tabla 4, se presenta un análisis del costo-beneficio de la utilización de los diferentes EQ
experimentales como única fuente de proteína animal en la dieta de las Clarias gariepinus.
Como se puede apreciar los costos más elevados por conceptos de alimentación se obtienen
con la dieta control (486.31 USD), existiendo un ahorro de 147,13; 158,58 y 99,88 con las
dietas D2, D3 y D4 respectivamente.
Tabla 4. Relación costo-beneficio con las dietas experimentales.
Dietas
Costo
(Tonelada, TM)
USD
365.65
190.55
183.09
218.32
Control
D2 (AF)
D3(ASF)
D4(AFC)
Con el empleo de los ensilados químicos de pescado es posible ahorrar hasta un 32.61% con
respecto a la dieta control, por conceptos de alimentación, lo cual coinciden con Parín y
Zugarramurdi (1994) en un análisis técnico-económico que se realizó al emplear dietas con
ensilados de pescado como sustituto de la harina de pescado en raciones de animales en
América Latina.
MN
-
57.65
57.65
57.65
sto para producir una TM
Clarias.
FCA
USD
486.31
339.18
327.73
386.43
1.33
1.78
1.79
1.77
MN
-
102.62
103.19
102.04
Ahorro
USD/TM
-
147.13
158.58
99.88
Relativo
%
-
30.25
32.61
20.54
5
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Según los resultados de este trabajo, se puede concluir que los ensilados químicos de
pescado pueden ser incluidos en dietas húmedas para Clarias gariepinus como única fuente
de proteína animal sin afectar los indicadores de crecimiento, utilización del alimento y
supervivencia, además de reducir los costos por concepto de alimentación en los cultivo
intensivos.
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del Ensilado de Pescado. Tratamiento y utilización de los residuos de origen animal,
pesquero y alimentario en la alimentación animal. Memorias del Taller Regional
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