bacteriologia y g banco de sangre
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Sepsis Asociada a Transfusión
Porcentaje5 - 25 %
2.2 - 4.5 %
0.1 %
< 0.1 %
Año 1930 - 1940
1950
1970
2000
La Ley General de salud establece que todo producto debe ser:
Eficaz SeguroInocuoLibre de contaminación
bacteriana
Contaminación Exógena:
Piel (donante) Proceso Almacenamiento Transporte Baño María
Contaminación Exógena por Bacterias de la Piel:
Staphylococcus epidermidisPseudomonas fluorescensBacillus cereusStreptococcus sp.Serratia marcescensEscherichia coliEnterobacter cloacae
Contaminación Exógena
Material: Bolsas, Tubos y Anticoagulantes (S. marcescens)
Baño María: Agua (P. aeruginosa, Burkholderia cepacia)
Contaminación Endógena:( NOM. 003-SSA2-1993 )
Tuberculosis pulmonar
BrucelosisLepraCandidiasisSepticemiaListeriosis
NeumoníaMeningitisAbsceso cerebralSifilisGonorreaInf. por
Chlamydia
Contaminación Endógena:(Donante con bacteremia asintomática)
Osteomielitis. (Salmonella enterica)Infecciones gastrointestinales.Extracción dental.Terapia con antibióticos.Bacteremia (Brucella y Bartonella)
Contaminación Endógena en Plaquetas
Staphylococcus epidermidisPseudomonas aeruginosaPseudomonas fluorescensBacillus cereusStaphylococcus aureusEscherichia coli
Contaminación Endógena por Endotoxinas de Bacterias Psicrófilas
Glóbulos Rojos:Yersinia enterocoliticaEscherichia coliCitrobacter freundiiPseudomonas fluorescens
Sepsis
SchockHemoglobinuriaCIDFalla RenalCalambres AbdominalesResequedad de PielVómito y DiarreaOtros
FACTORES QUE ORIGINAN UNA CONTAMINACIÓN
No se lava bien el área de trabajo. El material no se encuentra bien empaquetado
y su manejo dentro del área de trabajo contamina el ambiente.
Existe flujo de personal de unas áreas a otras o ingreso de personal externo.
El personal no cumple con los procedimientos de fabricación y come en el sitio de trabajo.
Es indispensable usar
espacios de trabajo adecuados donde se
minimicen los riesgos de contaminación
cruzada durante su proceso.
CONTROL EN LA RECOLECCIÓN DE SANGRE
La sangre que va a ser donada debe
ser colectada por personal entrenado,
bajo la supervisión de un médico
calificado, utilizando un sistema
cerrado de bolsa plásticas, mediante
métodos asépticos y haciendo una
sola punción venosa limpia.
TÉCNICA DE SANGRADO
La sangría debe efectuarse en un ambiente tranquilo y limpio.
El personal que va a realizar la recoleccion de sangre debe verificar que el material y el equipo sea el apropiado.
Seleccionar la mejor vena para la punción
Limpiar un área de 5 cm. En el sitio de la punción con :jabón-alcohol (70%) isodine con movimientos circulares del centro hacia fuera.
ASEPSIA
Control Microbiológico del Área de Trabajo
Las principales fuentes de contaminación son debidas al flujo de materiales, equipo y personal.
Control Microbiológicodel Área de Sangrado
Brazo de donador pre asepsia post asepsia Mesa Soluciones Jabón Isodine Reposet Guantes Pinzas Tijeras Torunderos
Control Microbiológico de Fracciones Sanguíneas
Sangre TotalPaquete globularConcentrado PlaquetarioPlasmaCrioprecipitadosPOOL de Crioprecipitados reconstituidosPaquete eritrocitario lavado pre
post
Es indispensable que el área donde se realizan las pruebas de control micro-biológico cuente con los requisitos mismos de control, para evitar resultados falsos positivos.
Laboratorio de Bacteriología:
Control Bacteriológico:
Toma de sangre del donante (brazo), Tijeras, Sillón....etc.
Bolsas de sangre y/o sus derivados.
Campana de flujo laminar.
PRUEBAS MICROBIOLÓGICAS
Los estudios de valoración pueden ser analizados desde el punto de vista cualitativo y cuantitativo
Muestreo del brazo
Análisis Cualitativo(antes y después de la asepsia)
Muestrear con hisopos distintos
por arrastre, la zona en donde se
realizará la asepsia del brazo del donador
antes y después de realizar la técnica.
Por cada muestreo se utilizan
dos hisopos uno para aerobios
y otro para anaerobios.
M u estr eo d e l B r a zoA n á lis is C u a lita t iv o(a nte s y d e sp ué s d e la a se p s ia )
IdentificaciónBioquím ica
Agar SangreAerobios
18 hrs / 37°C
IdentificaicónBioquím ica
Agar Sangre (H y M )Anaerobios
48 hrs / 37°CAtm ósfera anaeróbica
IdentificaciónBioquím ica
Caldo T ioglicolatoResiem bra
(24h, 48 h y 7 días)Agar Sangre
Hisopobrazo del donador
Análisis Cuantitativo(antes y después de la asepsia)
Leer núm ero decolonias, m ultiplicar por 10
y reportar UFC/m l
Pasar 1 m l a una caja PetriAdicionar 20 m l de Agar
cuenta estandard
Hisopo en 10 m lCaldo Soyatripticaseína
Calcular % de disminución de colonias del área aséptica
Así como se realizo este estudio para el donador
de la misma forma se deberá tomar muestra de la
mesa de trabajo, reposet, soluciones, guantes del
personal, pinzas, tijeras, torunderos o cualquier
otro material en uso.
“Proceder a realizar el reporte.”
Muestreo de la Sangre Totaly sus Derivados
Identificación bioquím ica
Incubar a 37°CResiem bra 24, 48 hrs y 7 días
Aerobios:Un m l de m uestra en 9 m l de CST con
SPS (.025 - .05% ), piridoxina, NAD yhem ina
Identificación bioquím ica
Incubar a 37°C atm . anaeróbicaResiem bra a 24, 48 hrs y 7 días
Anaerobios:Un m l de m uestra en 9 m l de CST con
SPS (.025 - .05% ), piridoxina, NAD,hem ina y m enadiona
Hom ogenizar la bolsadesechar los prim eros 5 m l
Muestreo de la Campana deFlujo Laminar
Incubar las placas a 37°Cpor 24 a 72 hrs
Se distribuyen 10 placas deagar sangre y se dejan 15 m in.
La cam pana se pone afuncionar m ínim o 30 m in
antes del m uestreo
Se realiza una vez al mes como mínimo
Medidas para Eliminar Sepsis Bacteriana asociada a Transfusión
Extensión de pbas. screening del donadorReducción del tiempo de conservación de
componentes sanguíneosModificación de técnicas en recolección y
proceso de la sangreProgramas de control de calidadScreening bacteriológico