BIOLOGICAS CIENCIAS Colletotrichum gloesporioides Fusarium
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UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO
FACULTAD DE CIENCIAS BIOLOGICAS
ESCUELA ACADEMICO PROFESIONAL DE BIOLOGIA
“Control biológico in vitro de Colletotrichum gloesporioides
causante de la antracnosis frente a Clonostachys rosea, Fusarium
oxysporum y Trichoderma harzianum.”
AUTOR: Br. WALTER DANIEL FLORES BAZAURI
ASESOR: Dr. JULIO CHICO RUIZ
TRUJILLO-PERU
2016
TESIS
PARA OPTAR EL TITULO DE:
BIOLOGO
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AUTORIDADES DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO
RECTOR
Dr. Orlando Gonzáles Nieves
VICERRECTOR ACADÉMICO
Dr. Rubén Vera Véliz
VICERRECTOR DE INVESTIGACIÓN
Dr. Weyder Portocarrero Cárdenas
DECANO DE LA FACULTAD DE CIENCIAS BIOLOGICAS
Dr. Freddy Mejía Coico
SECRETARIO GENERAL DE LA FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS
Dr. Willian Zelada Estraver
DIRECTOR DE ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE CIENCIAS BIOLOGICAS
Dr. Freddy Pelaez Pelaez
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DEDICATORIA
A mi hija, Daniela Flores, una bendición de Dios que cambió mi vida.
A mi Madre, Roxana Bazauri, por sus ejemplos, cuidados y amor desinteresado; por
enseñarme que la vida no acaba, hasta que uno mismo lo decide.
A mi Esposa, Luz Delgado, por su amor, apoyo y paciencia.
A mi Padre, Walter Flores, por su apoyo incondicional y la forma tan peculiar de
enseñarme lecciones de vida.
A mi mamá Luisa y mi tía Esther Bazauri, que me enseñaron que a pesar de estar
apenado por tenerlas muy delicadas de salud uno debe enfocarse en sus metas y tratar
de regalarle una sonrisa no solo a la familia si no a ellas también.
Gracias.
Walter Daniel Flores Bazauri
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RECONOCIMIENTO
A la Universidad Nacional de Trujillo, por brindarme las bases de una buena educación
que se verán reflejadas en un futuro muy cercano.
A mi asesor Dr. Julio Chico Ruiz por su valiosa ayuda, paciencia, revisión y supervisión
del presente estudio.
Al Blgo. Carlos Quijano un gran docente y amigo que me brindo su ayuda incondicional.
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PRESENTACIÓN
Señores miembros del Jurado Dictaminador:
En cumplimiento con las disposiciones de reglamentos de grados y títulos de la Escuela
Académico Profesional de Ciencias Biológicas de la Universidad Nacional de Trujillo,
someto a vuestra consideración y evaluado criterio, el presente trabajo de investigación
científica titulada:
“Control biológico in vitro de Colletotrichum gloesporioides causante de la
antracnosis frente a Clonostachys rosea, Fusarium oxysporum y Trichoderma
harzianum.”
Con el cual cumplo con uno de los requisitos indispensables para obtener el título de
Biólogo.
Trujillo, Diciembre del 2016
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Br. Walter Daniel Flores Bazauri
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CERTITIFICACIÓN DEL ASESOR
El que suscribe, en calidad de profesor asesor de la tesis: “Control biológico in vitro de
Colletotrichum gloesporioides causante de la antracnosis frente a Clonostachys rosea,
Fusarium oxysporum y Trichoderma harzianum”, certifica que ésta ha sido desarrollada
de conformidad con los objetivos propuestos en su perfil académico y que el informe ha
sido revisado y acoge las observaciones y sugerencias alcanzadas.
Por lo tanto, autorizo al Br. Walter Daniel Flores Bazauri a continuar con el trámite de
reglamento correspondiente.
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Dr. Julio Chico Ruiz
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JURADO DICTAMINADOR
__________________________________
Dra. MARLENE RENE RODRIGUEZ ESPEJO
PRESIDENTE
__________________________________
Dr. ROGER VENEROS TERRONES
SECRETARIO
__________________________________
Dr. JULIO ROGER CHICO RUIZ
VOCAL
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CONTENIDO
Página
Autoridades de la Universidad Nacional de Trujillo ii
Dedicatoria iii
Reconocimiento iv
Presentación v
Certificación del asesor vi
Jurado Dictaminador vii
Contenido viii
Lista de tablas y figuras ix
Resumen xv
Abstract xvi
Introducción 1
Material y métodos 6
Resultados 13
Discusión 59
Conclusión 62
Referencias bibliográficas 63
Anexos 69
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LISTA DE TABLAS Y FIGURAS
Tabla 1. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Clonostachys rosea, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10° C 15
Figura 1. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs C. rosea en PDA a 10°C, tomado cada 24 horas por 12 días 15
Tabla 2. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Clonostachys rosea, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20° C 16
Figura 2. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs C. rosea en PDA a 20°C, tomado cada 24 horas por 12 días. …………………………………16
Tabla 3. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Clonostachys rosea, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30° C. ………………………17
Figura 3. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs C. rosea en PDA a 30°C, tomado cada 24 horas por 12 días. …………………………………17
Tabla 4. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Fusarium oxysporum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10° C. …………………………………18
Figura 4. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs F. oxysporum en PDA a 10°C, tomado cada 24 horas por 12 días. ……………………………18
Tabla 5. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Fusarium oxysporum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20° C. …………………………………19
Figura 5. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs F. oxysporum en PDA a 20°C, tomado cada 24 horas por 12 días. ……………………………19
Tabla 6. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Fusarium oxysporum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30° C………………………………….…20
Figura 6. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs F. oxysporum en PDA a 30°C, tomado cada 24 horas por 12 días. ……………………………20
Tabla 7. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Trichoderma harzianum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10° C. …………………21
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Figura 7. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs T. harzianum en PDA a 10°C, tomado cada 24 horas por 12 días. ……………………….21
Tabla 8. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Trichoderma harzianum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20° C. ………………22
Figura 8. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs T. harzianum en PDA a 20°C, tomado cada 24 horas por 12 días. ……………………,…22
Tabla 9. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Trichoderma harzianum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30° C. ………………23
Figura 9. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs T. harzianum en PDA a 30°C, tomado cada 24 horas por 12 días. …………………………………………………………………………………………….………………23
Tabla 10. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Clonostachys rosea, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10° C. ………………24
Figura 10. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs C. rosea en DSA a 10°C, tomado cada 24 horas por 12 días. …………………………………24
Tabla 11. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Clonostachys rosea, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20° C. ………………25
Figura 11. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs C. rosea en DSA a 20°C, tomado cada 24 horas por 12 días. …………………………..….…25
Tabla 12. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Clonostachys rosea, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30° C. ………………..26
Figura 12. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs C. rosea en DSA a 30°C, tomado cada 24 horas por 12 días. ………………….……26
Tabla 13. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Fusarium oxysporum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10° C. ……………………….27
Figura 13. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs F. oxysporum en DSA a 10°C, tomado cada 24 horas por 12 días. ……………………….27
Tabla 14. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Fusarium oxysporum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20° C. ……………………………28
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Figura 14. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs F. oxysporum en DSA a 20°C, tomado cada 24 horas por 12 días. ………………….……28
Tabla 15. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Fusarium oxysporum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30° C. ……………………….29
Figura 15. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs F. oxysporum en DSA a 30°C, tomado cada 24 horas por 12 días. …………………….…29
Tabla 16. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Trichoderma harzianum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10° C. .……30
Figura 16. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs T. harzianum en DSA a 10°C, tomado cada 24 horas por 12 días. ……………………….30
Tabla 17. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Trichoderma harzianum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20° C. …………31
Figura 17. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs T. harzianum en DSA a 20°C, tomado cada 24 horas por 12 días. ……………………….31
Tabla 18. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs Trichoderma harzianum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30° C. …………32
Figura 18. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C. gloesporioides vs T. harzianum en DSA a 30°C, tomado cada 24 horas por 12 días. ……………………….32
Tabla 19: Grado de antagonismo en cultivos duales de C. gloesporioides frente a C. rosea, F. oxysporum y T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10 °C y 12 días de evaluación, utilizando la escala de Bell. ……………………………………………………………..33
Tabla 20: Grado de antagonismo en cultivos duales de C. gloesporioides frente a C. rosea, F. oxysporum y T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20 °C y 12 días de evaluación, utilizando la escala de Bell. ……………………………………………………33
Tabla 21: Grado de antagonismo en cultivos duales de C. gloesporioides frente a C. rosea, F. oxysporum y T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30 °C y 12 días de evaluación, utilizando la escala de Bell. ……………………………………………………………..33
Tabla 22: Grado de antagonismo en cultivos duales de C. gloesporioides frente a C. rosea, F. oxysporum y T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10 °C y 12 días de evaluación, utilizando la escala de Bell. ………………………………………………………………………34
Tabla 23: Grado de antagonismo en cultivos duales de C. gloesporioides frente a C. rosea, F. oxysporum y T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20 °C y 12 días de evaluación, utilizando la escala de Bell. ……………………………………………………………..34
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Tabla 24: Grado de antagonismo en cultivos duales de C. gloesporioides frente a C. rosea, F. oxysporum y T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30 °C y 12 días de evaluación, utilizando la escala de Bell. ………………………………………………………………………34
Figura 19. Porcentaje de inhibición en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10°C, 20°C y 30°C de C. rosea, F. oxysporum y T. harzianum frente a Colletotrichum gloesporioides a los 12 días de evaluación. ………………………………………………………………………………..35
Figura 20. Porcentaje de inhibición en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10°C, 20°C y 30°C de C. rosea, F. oxysporum y T. harzianum frente a Colletotrichum gloesporioides a los 12 días de evaluación. ………………………………………………………………………………………….36
Tabla 25: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a C. rosea en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10 °C y 12 días de evaluación ………………37
Tabla 26: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a C. rosea en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10 °C ………………37
Tabla 27: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a C. rosea en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20 °C y 12 días de evaluación ………………38
Tabla 28: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a C. rosea en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20 °C ………………38
Tabla 29: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a C. rosea en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30 °C y 12 días de evaluación ………………39
Tabla 30: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a C. rosea en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30 °C ………………39
Tabla 31: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10°C y 12 días de evaluación. …………..40
Tabla 32: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10 °C…………….40
Tabla 33: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20°C y 12 días de evaluación. ……………41
Tabla 34: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20 °C……………...41
Tabla 35: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30°C y 12 días de evaluación. …………….42
Tabla 36: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30 °C …….42
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Tabla 37: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10°C y 12 días de evaluación. ……………..43
Tabla 38: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10 °C …….43
Tabla 39: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20°C y 12 días de evaluación. ……………44
Tabla 40: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20 °C……………..44
Tabla 41: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30°C y 12 días de evaluación. ……………45
Tabla 42: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30 °C. ……………45
Tabla 43: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a C. rosea en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10 °C y 12 días de evaluación. ………………46
Tabla 44: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a C. rosea en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10 °C. ………………46
Tabla 45: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a C. rosea en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20 °C y 12 días de evaluación ………………47
Tabla 46: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a C. rosea en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20 °C ………………47
Tabla 47: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a C. rosea en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30 °C y 12 días de evaluación. ………………48
Tabla 48: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a C. rosea en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30 °C. ………………48
Tabla 49: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10°C y 12 días de evaluación. ………………49
Tabla 50: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10 °C. ………………49
Tabla 51: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20°C y 12 días de evaluación. ………………50
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Tabla 52: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20 °C. ………………50
Tabla 53: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30°C y 12 días de evaluación. ……………...51
Tabla 54: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30 °C. ………………51
Tabla 55: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10°C y 12 días de evaluación. ………………52
Tabla 56: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10 °C. ………………52
Tabla 57: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20°C y 12 días de evaluación. ………………53
Tabla 58: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20 °C. ………………53
Tabla 59: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30°C y 12 días de evaluación. ………………54
Tabla 60: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C. gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30 °C. ………………54
Figura 21: Crecimiento de los monocultivos puros de A)C. rosea B)C. gloesporioides C)F. oxysporum y D)T. harzianum, a los 12 días de evaluación. …………………………………55
Figura 22: Crecimiento de los cultivos duales de a) C. rosea vs C. gloesporioides b) T. harzianum vs C. gloesporioides y c) F. oxysporum vs C. gloesporioides, a las 24 horas de crecimiento. …56
Figura 23: Crecimiento de los cultivos duales de A) C. rosea vs C. gloesporioides B) T. harzianum vs C. gloesporioides y C) F. oxysporum vs C. gloesporioides, a las 144 horas de crecimiento.…57
Figura 24: Crecimiento de los cultivos duales de A) C. rosea vs C. gloesporioides B) T. harzianum vs C. gloesporioides y C) F. oxysporum vs C. gloesporioides, a las 288 horas de crecimiento.…58
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RESUMEN
En el presente trabajo de investigación se evaluó el control biológico de Colletotrichum
gloeosporioides, que causa la antracnosis en cultivos de interés económico. El patógeno
se enfrentó a los siguientes microorganismos antagonistas: Clonostachys rosea,
Fusarium oxysporum y Trichoderma harzianum. Para ello se utilizó Agar Sabouraud
Dextrosa (DSA) y Agar Papa Dextrosa (PDA), a diferentes temperaturas y en cultivos
duales. Se evaluó: el porcentaje de inhibición, grado de antagonismo y la velocidad de
crecimiento de las colonias enfrentadas. Se encontró que el antagonista más efectivo
fue: Trichoderma harzianum, el cual alcanzó un grado 2 en la escala de Bell (75% de la
superficie del medio), en un medio de cultivo Agar Papa Dextrosa a 10°C 20°C y 30°C
a 3, 6, 9 y 12 días de desarrollo. Además, se demostró que C. gloesporioides alcanzó
un grado 3 en la escala de Bell (50% de la superficie del medio) cuando enfrentó a C.
rosea y F. oxysporum, tanto a 10°C. 20°C y 30°C en los diferentes medios de cultivo
Agar Sabouraud Dextrosa y Agar Papa Dextrosa, concluyendo así que: El mejor
controlador biológico de C. gloeosporioides fué T. harzianum alcanzando un grado 2 en
PDA y DSA según la escala de Bell a 10°C, 20°C y 30°C; que la acción antagónica de
C. rosea y F. oxysporum alcanzaron un grado 3 en PDA y DSA según la escala de Bell
a 10°C, 20°C y 30°C frente al crecimiento de C. gloeosporioides; que el mayor
porcentaje de inhibición del crecimiento de C. gloeosporioides fué también para T.
harzianum con un 65.12% a 30°C en PDA mientras que en el medio de cultivo DSA a
30°C el mayor porcentaje de inhibición de C. gloeosporioides fue para C. rosea con un
27.35%, determinándose así que la temperatura no influye en la determinación del
control antagónico(escala de Bell) pero frente al porcentaje de inhibición existe una
influencia de la temperatura. Demostrando de esta manera que Colletotrichum
gloeosporioides, es un hongo cuyo potencial patógeno es una fuente amplia aún por
investigar.
Palabras clave: Antagonismo, antracnosis, Coletotrichum gloesporioides,
Clonostachys rosea, Fusarium oxysporum, Trichoderma harzianum.
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ABSTRACT
In this research the biological control of Colletotrichum gloeosporioides, which causes
anthracnose in crops of economic interest, was evaluated. The pathogen faced the
following antagonistic microorganisms: Clonostachys rosea, Fusarium oxysporum and
Trichoderma harzianum. Agar Sabouraud Dextrose (DSA) and Agar Papa Dextrosa
(PDA) were used at different temperatures and in dual cultures. The percentage of
inhibition, degree of antagonism and the rate of growth of the colonies were evaluated.
It was found that the most effective antagonist was Trichoderma harzianum, which
reached a degree 2 on the Bell scale (75% of the medium surface), in a culture medium
Papa Dextrose Agar at 10°C 20°C and 30°C to 3, 6, 9 and 12 days of development. In
addition, it was demonstrated that C. gloesporioides reached a degree 3 on the Bell scale
(50% of the surface of the medium) when it faced C. rosea and F. oxysporum, both at
10°C. 20°C and 30°C in the different culture media Sabouraud Agar Dextrose and Papa
Dextrose Agar, concluding that: The best biological controller of C. gloeosporioides was
T. harzianum reaching a grade 2 in PDA and DSA according to the scale of Bell at 10°C,
20°C and 30°C; That the antagonistic action of C. rosea and F. oxysporum reached a
grade 3 in PDA and DSA according to the Bell scale at 10° C, 20° C and 30°C against
the growth of C. gloeosporioides; That the highest percentage of growth inhibition of C.
gloeosporioides was also for T. harzianum with 65.12% at 30 ° C in PDA whereas in the
DSA culture medium at 30° C the highest percentage of inhibition of C. gloeosporioides
was for C. rosea with 27.35%, thus determining that the temperature does not influence
the determination of the antagonistic control (Bell scale) but against the percentage of
inhibition there is a influence of the temperature. Proving this way that Colletotrichum
gloeosporioides, is a fungus whose pathogenic potential is a wide-ranging source yet to
be investigated.
Keywords: Antagonism, anthracnose, Coletotrichum gloesporioides, Clonostachys
rosea, Fusarium oxysporum, Trichoderma harzianum.
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INTRODUCCION
Las enfermedades producidas por hongos fitopatógenos causan pérdidas severas en la
agricultura 1; estas mismas consisten en la reducción de la calidad y/o la cantidad de la
cosecha obtenida2. La forma tradicional para el control de las enfermedades en cultivos
es la aplicación de productos químicos, pero debido a su composición resultan tóxicos
e inespecíficos, ya que además de eliminar los organismos fitopatógenos, dañan la flora
del suelo 3. Por ello es necesaria la búsqueda de alternativas orientadas al manejo de
agentes antagonistas que sean eficientes y compatibles con el ambiente 4.
El uso de pesticidas en la agricultura ha sufrido restricciones, especialmente en vista de
los residuos en los alimentos, las poblaciones seleccionadas de patógenos resistentes,
la contaminación ambiental y los riesgos para la salud humana. El uso de productos
químicos a nivel agrícola en Perú se ha visto muy sobrecargado en los últimos años, y
se prevé que su utilización en el futuro sea más extensa. Por lo tanto, se requiere una
acción alternativa y eficiente en el control de enfermedades de las plantas, tales como
el control biológico. El control biológico es una estrategia de control más compatible con
la conservación del medio ambiente y útil en aquellas enfermedades para las que no
existen otras medidas fitosanitarias, o simplemente para poder reducir el empleo de
pesticidas; sin embargo, muestra una serie de deficiencias y limitaciones que se deben
solucionar para incrementar su aceptación en la agricultura actual. Aunque la cantidad
de antagonistas de microorganismos productos comerciales es aún pequeño, lo que
representa el 1% del mercado mundial de pesticidas, fungicidas, mientras que
representan aproximadamente el 15% del mercado, el uso de agentes de control
biológico está creciendo, especialmente en el contexto de la gestión integrada de
enfermedades5.
Con el uso de antagonistas se puede reducir la necesidad de la aplicación de fungicidas,
combinando el producto químico con la aplicación de estos agentes de control y, en
consecuencia, reduciendo la posibilidad de selección de cepas de patógenos resistentes
a los fungicidas, que hace que el control más estable y sostenible5, 6. Por otra parte, hay
una reducción de los residuos químicos en los alimentos, una menor exposición a los
pesticidas de aplicadores y menos contaminación ambiental7.
Agentes de control biológico, así como reducir el efecto de los agentes patógenos de
las plantas, pueden promover otros efectos beneficiosos, que incluyen la mejora de las
condiciones fisiológicas, la reducción de estrés abiótico, mejorado eficiencia
fotosintética, el aumento de la absorción de agua y la asimilación de nutrientes, lo que
hace las plantas más sanas y productivas8. El desarrollo de plantas con resistencia
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genética, ofrece la mejor estrategia práctica y económica para el manejo de la
enfermedad9; sin embargo, la presencia de nuevas razas de patógenos limita esta última
estrategia10. Otra alternativa para el control de la enfermedad es el control biológico
utilizando microorganismos antagonistas como bacterias y hongos. Diversas
investigaciones han demostrado que el control biológico a través del uso de hongos y
bacterias benéficas es una alternativa potencial al uso de fungicidas y/o fumigantes.
Los hongos endófitos, aquellos que viven en el interior de los tejidos del hospedante sin
causarle daño alguno, tienen potencial como controladores biológicos de algunas
enfermedades de plantas. El control biológico (CB) se presenta como una alternativa
eficaz, económica y libre de riesgo frente a los numerosos y crecientes problemas
derivados del uso indiscriminado de agroquímicos. Son productos naturales y forman
parte del ecosistema, poseen baja toxicidad, nula patogenicidad sobre la fauna benéfica,
no generan resistencia en las plagas, la forma de aplicación es fácil y segura, tiene fácil
establecimiento en los cultivos, contribuyen a la recuperación de las propiedades
biológicas de los suelos, mientras reducen la acción de una enfermedad previenen la
aparición de otras. En el CB de enfermedades se utilizan microorganismos antagonistas
en el sitio de infección11, antes o después de que se presenten los fitopatógenos que
interfieren en su supervivencia. Se busca además del control, lograr la seguridad
alimentaria de adquirir alimentos libres de tóxicos y llevar una vida sana. Para esto, es
necesario conocer a los organismos benéficos, aprender de sus hábitos e identificar la
función que tienen para regular las poblaciones dañinas y reducir así el uso de
plaguicidas10, 11. El Control biológico consiste en la utilización de enemigos naturales
(predatores, parasitoides, entomopatógenos y antagonistas) para controlar a la
población de una plaga o enfermedad, que produce daño a las plantas, describiéndose
a diversas bacterias, nematodos y hongos como organismos controladores biológicos
de un amplio número de plagas y de organismos patógenos de vegetales.12
Existe un gran número de factores biológicos y ambientales que dominan las
interacciones entre el hongo patógeno y el antagonista, afectando al control biológico
de la enfermedad. Uno de los factores ambientales de mayor importancia, en la
interacción patógeno-antagonista, es la temperatura. La actividad antagonista de T.
harzianum, C. rosea y F. oxysporum puede variar con la temperatura. La síntesis y la
actividad de los antibióticos producidos por estos antagonistas13 y la colonización de la
rizosfera por alguno de estos antagonistas, como por ejemplo T. hazianum14, se ve
afectada por la temperatura. Podemos encontrar diferencias en la temperatura óptima
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de crecimiento de estos antagonistas15, aunque a juzgar por múltiples estudios
realizados en laboratorio ésta se encuentra principalmente en el rango de 25°C-30°C16.
Dentro del control biológico se han descrito el uso de diversos hongos antagonistas,
tales como: Trichoderma sp, Ulocladium oudemansii, Mucor sp, Panicilium sp y
Clonostachys rosea; además de nematodos y bacterias.17 Para el presente trabajo se
ha elegido a: Clonostachys rosea, Fusarium oxysporum y Trichoderma harzianum,
hongos con bastante potencial antagónico, con excepción de F. oxysporum el cuál se
desconoce aún su poder antagónico, y utilizados en varios experimentos como
controladores biológicos a nivel mundial pero que no son muy utilizados en el Perú.18, 19,
20, 21
Clonostachys rosea, hongo Hyphomycete ampliamente distribuido que a menudo actúa
como un parásito de otros hongos del suelo y el cual también ha sido reportado como
un parásito potencial contra nematodos e insectos. C. rosea es un saprófito común en
todo el mundo, con efectos destructivos en diversos hongos fitopatógenos, es decir,
presenta acción antagónica contra una amplia variedad de agentes fúngicos, dicha
actividad está relacionada con la secreción de celulasas, β-1,3- glucanasas, proteasas
e incluidas las quitinasas, las cuales actúan degradando las hifas de otros hongos.22 Los
mecanismos de biocontrol atribuidos a C. rosea, son: micoparasitismo, competencia por
los nutrientes y antibiosis, siendo el micoparasitismo el principal mecanismo de acción
de este hongo; este biocontrolador cubre al hongo, ataca y penetra en sus células,
causándole un daño extensivo alterando y degradando la pared celular, causa retracción
de la membrana plasmática y desorganización del citoplasma.23, 24, 25
Trichoderma harzianum es un hongo que está presente en casi todos los suelos
agrícolas y otros hábitats como madera en descomposición. Pertenece a los
Deuteromycetes que presentan conidióforos complejos y altamente ramificados en
forma piramidal o cónica, desde donde se desprenden esporas circulares hialinas, las
colonias presentan un crecimiento rápido, al comienzo el micelio es blanco algodonoso
para posteriormente tornarse de color verde oscuro o verde limón característico de este
género, comprende varias especies: T. harzianum, T. viride, T. artroviride, T. koningii,
T. hamalum y otras especies son parte de un suelo saludable y pueden ser aislados
comúnmente. Unas pocas cepas de Trichoderma harzianum han demostrado suprimir
el desarrollo de fitopatógenos, por lo cual ha sido la más estudiada entre numerosos
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agentes de control biológico, por sus características de antagonismo en condiciones
naturales; además, se comporta como hiperparásito frente a un amplio rango de
fitopatógenos; entre los cuales, están Alternaria solani, Botrytis cinérea, Fusarium
oxysporum, Phytophotora capsici, Phytium sp, Rhizoctonia solani, Sclerotium
cepivorium, entre otros. 26,27 Trichoderma harzianum como antagonista tiene diferentes
mecanismos de acción, entre los que se encuentran el micoparasitismo, la competencia
por el sustrato y nutrientes, y la actividad antibiótica producida por metabolitos que
inhiben la actividad parasítica de los fitopatógenos. Se ha demostrado que Trichoderma
es capaz de colonizar las flores de algunos cultivos agrícolas desplazando al patógeno
de su habitual sitio de infección, lo que constituye la principal forma de antagonismo
contra algunos fitopatógenos; además, produce enzimas líticas (quitinasas y
gluconasas) capaces de degradar la pared celular de estos patógenos.28,29
Por otro lado, tenemos a Fusarium oxysporum es un hongo cosmopolita que existe en
muchas formas patogénicas, parasitando más de 100 especies de plantas
Gimnospermas y Angiospermas, gracias a los diversos mecanismos que tiene el hongo
para vencer las defensas de muchas plantas30. Se caracteriza por producir colonias de
rápido crecimiento, con una tasa diaria cercana a un centímetro en medio Papa Agar
Dextrosa (PDA) a temperatura ambiente. La morfología de las colonias es muy variable
y puede presentar dos tipos: una de tipo micelial caracterizada por la producción de
abundante micelio aéreo, algodonoso, con una coloración variable, de blanco a rosado
durazno, pero usualmente con un tinte púrpura o violeta más intenso en la superficie del
agar y pocas microconidias31 y una de tipo pionotal con la formación de poco o ningún
micelio aéreo y abundantes microconidias. Existe una gran diversidad de cepas de
Fusarium spp., de las cuales algunas son patogénicas y su gran mayoría son saprófitas,
pueden ser utilizadas como controladores biológicos. Existen más de 76 cepas de
Fusarium oxysporum reportadas que causan enfermedad32. Los géneros de hongos
Ceratocystis spp., Verticillium spp y Fusarium spp son los tres géneros que pueden
afectar el sistema vascular de las plantas. Es causante principalmente de la Fusariosis
o marchitez vascular, que es la principal enfermedad causada por este patógeno33. La
Fusariosis o Marchitez Vascular del cafeto "Root rot", produce una desintegración o
pudrición de parte o todo el sistema radicular de la planta34. Cuando los daños son
severos Fusarium oxysporum puede destruir el sistema radical en más de 90%35.
En Latinoamérica como en el resto del mundo, existen numerosos hongos que son
parásitos obligados o facultativos de las plantas, y constituyen la principal causa de
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infecciones y enfermedades en ellas. En el Perú el panorama es parecido,
encontrándose una gran variedad de hongos que atacan a plantas de interés
económico. Varios son los hongos que afectan a la planta, entre éstos tenemos a
Colletotrichum sp, Phytophtora sp, Rhizoctonia sp, Fusarium sp, Rhizopues sp, Pythium
sp, Botrytis sp, Cladosporium sp, Alternaria sp y Penicillium sp.
Colletotrichum gloeosporioides es un moho que forma conidios simples, aunque
alargados y conidios hialinos, que son unicelulares, céreos y generalmente de color
oscuro. Es una especie de interés en los alimentos, ya que produce la antracnosis
(manchas pardas/negras) en muchos cultivos de importancia económica, como mangos
y papayas36, cítricos, guanábana, aguacate, café, cultivos ornamentales, entre otros37.
Entre las enfermedades poscosecha del mango, palto, la antracnosis es prevalente en
las zonas húmedas y muy húmedas de crecimiento, la incidencia de esta enfermedad
puede llegar a casi el 100% de los frutos bajo estas condiciones38.
La antracnosis de mango es una de las enfermedades más serias de este cultivo. El
daño puede ocurrir en hojas, tallos y panículas florales, siendo el más el daño en los
frutos39. Su efecto es limitante en la producción, debido a que ocasiona grandes
pérdidas de frutos en el campo; durante la cosecha y poscosecha en algunos años ha
afectado más del 50% de la producción mundial40.
Por lo expuesto, el objetivo del presente trabajo fue determinar el mejor controlador
biológico sobre el crecimiento de Colletotrichum gloesporioides causante de la
actracnosis.
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MATERIAL Y METODOS
I. MATERIAL BIOLÓGICO:
La cepa certificada de: Clonostachys rosea y Trichoderma harzianum
fueron adquiridas del Servicio Nacional de Sanidad Agraria (SENASA). (Figura
1).
Figura 1: Cepa de Clonostachys rosea proporcionada por el Servicio Nacional de
Sanidad Agraria (SENASA).
Los cultivos de: Fusarium oxysporum fueron obtenidos de cultivo de tomate
y Colletotrichum gloesporioides fueron obtenidos de cultivo de palto,
proporcionados por la cátedra de Fitopatología, área de Ciencias Biológicas de
la Universidad Nacional de Trujillo.
II. DETERMINACIÓN DE LOS HONGOS
Se tomaron muestras del micelio de cada hongo y se hizo un preparado en fresco,
se observó al microscopio a 400x para reconocer sus características morfológicas.
Se utilizaron claves taxonómicas para su determinación. (Anexos 70, 71, 72 y 73)
III. PROCEDIMIENTOS
A. Preparación del medio de cultivo “Agar Papa Dextrosa”
Se pesó 10 gr de papa, debidamente picada y se colocó en un matraz que
contenga 100 ml de agua. Se llevó a la cocina y se movió secuencialmente hasta
que la papa se disolvió por completo, con la papa disuelta se procedió a filtrar la
muestra a fin de tener la base de nuestro agar. Con la filtración obtenida se
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mezcló con los 3 gr de azúcar y se llevó a la estufa nuevamente y se agregó de
a pocos el agar, una vez disuelto el agar se cubrió la tapa del matraz con papel
aluminio y se llevó a la autoclave por un periodo de tiempo estimado de 30 min.
Finalmente, con total asepsia y siguiendo una modificación del procedimiento
propuesto por Echandi41 se procedió a verter el contenido de nuestra preparación
en las respectivas cajas Petri ayudándonos por el calor de los mecheros. (Figura
2).
Figura 2: Preparación de medio de cultivo Agar Papa dextrosa, dispensados en placas
Petri con ayuda del calor de los mecheros.
B. Preparación del medio de cultivo “Agar Sabouraud Dextrosa”
Se disolvió los componentes del medio en agua destilada., siguiendo las
instrucciones del fabricante se añadió 3gr de Agar Sabouraud Dextrosa en 100
ml agua destilada para conseguir el medio deseado. Se calentó el preparado
hasta la ebullición del mismo agitando de vez en cuando, para asegurar una
completa disolución del agar. Se cubrió el matraz con un tapón de algodón y
papel de aluminio. Finalmente se llevó a esterilizar a la autoclave durante 15-20
minutos. Una vez esterilizado se dispersó en placas Petri estériles, en presencia
del calor de los mecheros y se dejó en reposar hasta que solidifique. (Figura 3).
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Figura 3: Preparación de medio de cultivo Agar Sabouraud dextrosa, dispensados en
placas Petri con ayuda del calor de los mecheros.
C. Aislamiento de Controladores Biológicos
a) Aislamiento y obtención de Clonostachys rosea42
La cepa del hongo estaba formada por pequeños papeles dentro de un
frasco aislado. Se extrajo un papel con ayuda de una pinza punta fina
para luego sembrarlo en una placa Petri con Agar Sabouraud Dextrosa.
A continuación, se le agregó dos gotas de agua destilada, se esperó por
dos minutos para finalmente arrastrar por todas las superficies de la placa
Petri, según el instrucitvo adjunto establecido por el Servicio Nacional de
Sanidad Agrícola (SENASA).
b) Aislamiento y obtención de Fusarium oxysporum
La obtención y aislamiento de Fusarium oxysporum, se realizó a partir de
tomates infectados de este hongo y siguiendo una modificación del
procedimiento propuesto por Tuite43, dicho cultivo y procedimiento fue
proporcionado y previamente identificado por la cátedra del área de
Fitopatología, Facultad de Ciencias Biológicas de la Universidad
Nacional de Trujillo. (Figura 4).
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Figura 4: Tomate con síntomas de ataque por Fusarium oxysporum.
c) Aislamiento y obtención de Trichoderma harzianum42
El aislamiento y obtención de Trichoderma harzianum se realizó
siguiendo el procedimiento correspondiente, establecido por el Servicio
Nacional de Sanidad Agrícola (SENASA), (Figura 5).
Figura 5: Trichoderma harzianum creciendo sobre granos de arroz, enviado por el
Servicio Nacional de Sanidad Agraria (SENASA).
D. Aislamiento y cultivo del hongo fitopatógeno C. gloeosporioides de
Persea americana “palta”
A partir del tejido vegetal enfermo se aisló al patógeno. Se tomaron trozos
de la zona enferma para incrementar las oportunidades de aislar al patógeno.
Los trozos de tejido vegetal se sometieron a una desinfección superficial con
alcohol etílico al 70% por 30 segundos, lavamos con agua destilada, luego
se utilizó lejía al 2% por 5 minutos. Se lavó con agua destilada tres veces, se
secó con papel filtro estéril y se sembró en las respectivas cajas Petri que
contenían agar papa, para luego proceder a su replicación (Figura 6).
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Figura 6: Persea americana “Palto” con síntomas de ataque por Colletotrichum
gloesporioides.
E. Control biológico in vitro (Prueba de antagonismo o cultivos duales)44
Se colocaron en puntos opuestos de placas Petri con medio de cultivo, en
distintas placas, micelios de siete días de desarrollo de: Colletotrichum
gloeosporioides y en el otro extremo, micelios de: Clonostachys rosea,
Fusarium oxysporum y Trichoderma harzianum, respectivamente, de siete
días de crecimiento también, siguiendo la metodología descrita por
Acevedo53. Posteriormente, los cultivos se incubaron a temperaturas de
10°C, 20°C y 30°C, durante 7 días, haciéndose mediciones cada 24 horas
del crecimiento micelial correspondiente.
AGAR PAPA DEXTROSA
10° C 20° C 30° C
COMBINACIONES TRATAMIENTOS
T. harzianum (Monocultivo) T1
C. rosea (Monocultivo) T2
F. oxysporum (Monocultivo) T3
C. gloeosporioides (Monocultivo) T4
C. rosea vs C. gloeosporioides (Cultivo dual) T1 x T4 = T5
F. oxysporum vs C. gloeosporioides (Cultivo dual) T2 x T4 = T6
T. harzianum vs C. gloeosporioides (Cultivo dual) T3 x T4 = T7
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Para el diseño experimental45, se realizó al azar, con un número de 21
tratamientos y 3 repeticiones por tratamiento sometidos a diferentes medios
de cultivo y distintas temperaturas, incluyendo a un testigo (control) de cada
uno, haciendo un total de 126 tratamientos.
F. Evaluación
El antagonismo de los hongos empleados frente a Colletotrichum
gloeosporioides se determinaron después de 5 días de crecimiento de los
cultivos enfrentados, se midieron los micelios colocados en las placas Petri
en puntos opuestos entre sí de los hongos antagonistas frente a C.
gloeosporioides y se incubaron a diferentes temperaturas de: 10°C, 20°C y
30°C. Después de 12 días del período de incubación del crecimiento del
patógeno se registró y calculó el porcentaje de inhibición en relación con su
control46.
Porcentaje de inhibición del crecimiento micelial se calculó según una
modificación de la ecuación47:
AGAR SABOURAUD DEXTROSA
10° C 20° C 30° C
COMBINACIONES TRATAMIENTOS
T. harzianum (Monocultivo) T1
C. rosea (Monocultivo) T2
F. oxysporum (Monocultivo) T3
C. gloeosporioides (Monocultivo) T4
C. rosea vs C. gloeosporioides (Cultivo dual) T1 x T4 = T5
F. oxysporum vs C. gloeosporioides (Cultivo dual) T2 x T4 = T6
T. harzianum vs C. gloeosporioides (Cultivo dual) T3 x T4 = T7
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Donde, L es la inhibición del crecimiento micelial, C es la medición del
crecimiento micelial del patógeno en control, T es la medición del crecimiento
micelial del patógeno en presencia de antagonistas.
Para indicar los posibles mecanismos de acción como el: Micoparasitismo,
antibiosis y competencia por nutrientes de: Clonostachys rosea, Fusarium
oxysporum y Trichoderma harzianum, frente a Colletotrichum gloesporioides
se realizaron observaciones macroscópicas de los cultivos duales,
tomándose como indicador la invasión del antagonista sobre la superficie del
micelio del hongo fitopatógeno, teniéndose como referencia la escala de Bell
et al citada en Ezziyyani 47; con la siguiente calificación:
G. Análisis estadísticos
Una vez obtenidas las mediciones correspondientes se procedió a realizar
los análisis estadísticos utilizando: Desviación estándar (DE), promedio (X),
análisis de varianza (ANAVA) y la prueba de Tukey.
GRADO MECANISMO DE ACCIÓN
PORCENTAJE DE
CUBRIMIENTO DEL
ANTAGONISTA DE LA
SUPERFICIE DEL MEDIO
1
El antagonista ocupa completamente la
superficie del medio de cultivo cubriendo
totalmente al patógeno.
100 %
2
El antagonista llega a sobrepasar las dos
terceras partes de la superficie del medio de
cultivo.
75 %
3
El antagonista y el patógeno colonizan cada
uno aproximadamente la mitad de la
superficie del medio y ninguno parece
dominar al otro.
50 %
4
El patógeno sobrepasa al crecimiento del
antagonista colonizando tres cuartas partes
de la caja Petri.
25 %
5 El agente fitopatógeno llega a cubrir
totalmente la placa Petri. 0 %
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RESULTADOS
Según la comparación diaria del crecimiento promedio del hongo fitopátógeno frente al
crecimiento promedio de los hongos antagonistas de cada cultivo dual, en distintos
medios de cultivos y diferentes temperaturas, se determinó lo siguiente: En las tablas
N° 1, 2 y 3 del enfrentamiento de C. gloesporioides frente a C. rosea, que corresponden
a 10°C, 20°C y 30°C de temperatura respectivamente en Agar Papa Dextrosa(PDA), se
puede observar que el crecimiento del antagonista siempre es mayor a la del patógeno
tanto en la prueba de antagonismo y prueba control de ambos hongos, observando que
el medio de cultivo PDA no afecta el crecimiento de estos hongos. En cambio, en las
tablas N° 10, 11 y 12 del enfrentamiento de C. gloesporioides frente a C. rosea, que
corresponden a 10°C, 20°C y 30°C de temperatura respectivamente en Agar Sabouraud
Dextrosa(DSA), se puede observar que: a diferencia de los resultados anteriores el
crecimiento del patógeno, fue mayor en relación a su antagonista tanto en la prueba de
antagonismo y prueba control de ambos hongos.
En las tablas N° 4, 5 y 6 del enfrentamiento de C. gloesporioides frente a F. oxysporum,
que corresponden a 10°C, 20°C y 30°C de temperatura respectivamente en Agar Papa
Dextrosa(PDA), se puede observar que el crecimiento del antagonista siempre es mayor
a la del patógeno tanto en la prueba de antagonismo y prueba control de ambos hongos,
observando que el medio de cultivo PDA no afecta el crecimiento de estos hongos. Para
las tablas N° 13, 14 y 15 del enfrentamiento de C. gloesporioides frente a F. oxysporum
a 10°C, 20°C y 30°C respectivamente en Agar Sabouraud Dextrosa(DSA), se puede
observar un ligero incremento en el desarrollo del patógeno en relación a su antagonista
en la prueba de antagonismo realizada, así como en la prueba control.
Las tablas N° 7, 8 y 9 del enfrentamiento de C. gloesporioides frente a T. harzianum,
que corresponden a 10°C, 20°C y 30°C de temperatura respectivamente en Agar Papa
Dextrosa(PDA), se puede observar que el desarrollo del antagonista es muy notorio en
relación al desarrollo del fitopatógeno tanto en la prueba de antagonismo y la prueba
control de ambos hongos enfrentados, observando que el medio de cultivo PDA no
afecta el crecimiento de estos hongos. Sin embargo, en las tablas N° 16 que
corresponde a 10°C del enfretamiento de C. gloesporioides frente a T. harzianum en
Agar Sabouraud Dextrosa(DSA), se observa que el desarrollo del antagonista es mayor
que del fitopatógeno, pero en las tablas N° 17 y 18 en DSA de este enfrentamiento se
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puede observar que el antagonista es ligeramente menor en relación al desarrollo del
patógeno, evidenciando la acción de algún factor en el desarrollo normal del
antagonista.
En la tabla N° 21, que correspode a la determinación del grado de antagonismo para C.
gloesporioides frente a T. harzianum es de clase 2, caracterizado por la invasión del
antagonista por lo menos en 3/4 partes del medio de cultivo frente al patógeno en Agar
Papa Dextrosa (PDA). Para el resto de enfrentamientos, tablas N° 19 y 20 en PDA &
21,22 y 23 en Agar Sabaouraud Dextrosa (DSA) se determinó que pertenecen a la clase
3, caracterizados por la invasión de las 2/4 partes del patógeno frente a sus antagonistas
en los distintos medios de cultivo.
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Tabla 1. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Clonostachys rosea, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada
24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10° C.
Figura 1. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs C. rosea en PDA a 10°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides C. rosea C. gloesporioides C. rosea
3 1.1 1.0 1.2 1.2
6 1.4 1.4 1.6 2.0
9 1.5 1.8 1.8 2.9
12 1.8 2.2 1.9 3.6
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DÍAS DE EVALUACIÓN
CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN PDA A 10° C
Antagonismo C. gloesporioides Antagonismo C. rosea
Control C. gloesporioides Control C. rosea
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Tabla 2. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Clonostachys rosea, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada
24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20° C.
Figura 2. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs C. rosea en PDA a 20°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
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DIAS DE EVALUACIÓN
CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN PDA A 20° C
Antagonismo de C. gloesporioides Antagonismo de C. rosea
Control de C. gloesporioides Control de C. rosea
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides C. rosea C. gloesporioides C. rosea
3 1.1 0.9 1.4 1.8
6 1.7 1.4 2.2 3.4
9 2.6 2.4 2.9 4.7
12 3.4 3.3 4.2 5.5
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Tabla 3. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Clonostachys rosea, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada
24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30° C.
Figura 3. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs C. rosea en PDA a 30°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
0
0.5
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DIAS DE EVALUACIÓN
CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN PDA A 30° C
Antagonismo C. gloesporioides Antagonismo C. rosea
Control C. gloesporioides Control C. rosea
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides C. rosea C. gloesporioides C. rosea
3 1 1.1 1.2 1.4
6 1.3 1.4 1.9 2.3
9 1.7 1.9 3 3.4
12 2.7 2.9 4.2 4.6
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Tabla 4. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Fusarium oxysporum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada
24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10° C.
Figura 4. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs F. oxysporum en PDA a 10°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
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0.5
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DIAS DE EVALUACIÓN
CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN PDA A 10° C
Antagonismo C. gloesporioides Antagonismo F. oxysporum
Control C. gloesporioides Control F. oxysporum
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides F. oxysporum C. gloesporioides F. oxysporum
3 0.9 0.9 1.2 1.5
6 1.2 1.3 1.6 2.6
9 1.3 1.4 1.8 3.3
12 1.4 1.5 1.9 4.1
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Tabla 5. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Fusarium oxysporum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada
24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20° C.
Figura 5. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs F. oxysporum en PDA a 20°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
0
1
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CM
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DIAS DE EVALUACIÓN
CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN PDA A 20° C
Antagonismo C. gloesporioides Antagonismo F. oxysporum
Control C. gloesporioides Control F. oxysporum
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides F. oxysporum C. gloesporioides F. oxysporum
3 1.0 1.4 1.4 2.0
6 1.6 2.6 2.2 4.3
9 2.3 3.7 2.9 5.7
12 3.2 4.7 4.2 6.6
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Tabla 6. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Fusarium oxysporum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada
24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30° C.
Figura 6. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs F. oxysporum en PDA a 30°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
0
1
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DIAS DE EVALUACIÓN
CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN PDA A 30° C
Antagonismo C. gloesporioides Antagonismo F. oxysporum
Control C. gloesporioides Control F. oxysporum
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides F. oxysporum C. gloesporioides F. oxysporum
3 0.9 1.1 1.2 2.2
6 1.3 1.7 1.9 4.2
9 1.8 2.2 3.0 5.9
12 2.6 3.5 4.2 7.3
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Tabla 7. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Trichoderma harzianum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado
cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10° C.
Figura 7. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs T. harzianum en PDA a 10°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
0
0.5
1
1.5
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2.5
3
3.5
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DIAS DE EVALUACIÓN
CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN PDA A 10° C
Antagonismo C. gloesporioides Antagonismo T. harzianum
Control C. gloesporioides Control T. harzianum
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides T. harzianum C. gloesporioides T. harzianum
3 0.7 1.1 1.2 1.3
6 0.7 1.5 1.6 2.2
9 0.9 1.9 1.8 3.2
12 1.2 2.4 1.9 3.9
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Tabla 8. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Trichoderma harzianum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado
cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20° C.
Figura 8. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs T. harzianum en PDA a 20°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
0
1
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3
4
5
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3 6 9 12
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DIAS DE EVALUACIÓN
CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN PDA A 20° C
Antagonismo C. gloesporioides Antagonismo T. harzianum
Control C. gloesporioides Control T. harzianum
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides T. harzianum C. gloesporioides T. harzianum
3 0.8 1.4 1.4 1.5
6 1.1 1.7 2.2 3.4
9 1.9 2.4 2.9 4.2
12 2.8 3.3 4.2 5.1
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Tabla 9. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Trichoderma harzianum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado
cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30° C.
Figura 9. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs T. harzianum en PDA a 30°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
0
1
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DIAS DE EVALUACIÓN
CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN PDA A 30° C
Antagonismo C. gloesporioides Antagonismo T. harzianum
Control C. gloesporioides Control T. harzianum
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides T. harzianum C. gloesporioides T. harzianum
3 0.7 2.2 1.2 2.8
6 0.7 4.4 1.9 5.2
9 0.9 5.2 3.0 6.7
12 1.3 6.5 4.2 8.8
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Tabla 10. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Clonostachys rosea, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada
24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10° C.
Figura 10. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs C. rosea en DSA a 10°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
0
0.2
0.4
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0.8
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1.6
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DIAS DE EVALUACIÓN
CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN DSA A 10° C
Antagonismo C. gloesporioides Antagonismo C. rosea
Control C. gloesporioides Control C. rosea
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides C. rosea C. gloesporioides C. rosea
3 1.0 0.9 1.1 1.2
6 1.2 1.0 1.2 1.3
9 1.2 1.1 1.5 1.3
12 1.3 1.2 1.7 1.4
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Tabla 11. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Clonostachys rosea, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada
24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20° C.
Figura 11. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs C. rosea en DSA a 20°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
0
1
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CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN DSA A 20° C
Antagonismo C. gloesporioides Antagonismo C. rosea
Control C. gloesporioides Control C. rosea
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides C. rosea C. gloesporioides C. rosea
3 2.2 1.6 2.3 1.9
6 3.6 3.0 5.2 3.4
9 5.0 4.0 6.9 4.6
12 6.3 5.1 8.4 5.4
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Tabla 12. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Clonostachys rosea, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada
24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30° C.
Figura 12. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs C. rosea en DSA a 30°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
0
1
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DIAS DE EVALUACIÓN
CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN DSA A 30° C
Antagonismo C. gloesporioides Antagonismo C. rosea
Control C. gloesporioides Control C. rosea
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides C. rosea C. gloesporioides C. rosea
3 2.1 1.9 2.6 2.0
6 3.6 3.0 5.3 3.9
9 4.8 4.0 6.7 5.4
12 5.7 4.9 7.7 6.3
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Tabla 13. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Fusarium oxysporum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada
24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10° C.
Figura 13. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs F. oxysporum en DSA a 10°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
0
0.5
1
1.5
2
2.5
3
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CM
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DIAS DE EVALUACIÓN
CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN DSA A 10° C
Antagonismo C. gloesporioides Antagonismo F. oxysporum
Control C. gloesporioides Control F. oxysporum
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides F. oxysporum C. gloesporioides F. oxysporum
3 1.0 0.9 1.1 0.9
6 1.2 1.0 1.2 1.3
9 1.2 1.1 1.5 1.9
12 1.3 1.2 1.7 2.4
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Tabla 14. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Fusarium oxysporum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada
24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20° C.
Figura 14. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs F. oxysporum en DSA a 20°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
3 6 9 12
CR
ECIM
IEN
TO (
CM
)
DIAS DE EVALUACIÓN
CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN DSA A 20° C
Antagonismo C. gloesporioides Antagonismo F. oxysporum
Control C. gloesporioides Control F. oxysporum
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides F. oxysporum C. gloesporioides F. oxysporum
3 2.0 1.7 2.3 2.0
6 4.2 3.6 5.2 4.3
9 5.9 4.9 6.9 5.9
12 7.4 6.1 8.4 7.4
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Tabla 15. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Fusarium oxysporum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado cada
24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30° C.
Figura 15. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs F. oxysporum en DSA a 30°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
3 6 9 12
CR
ECIM
IEN
TO (
CM
)
DIAS DE EVALUACIÓN
CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN DSA A 30° C
Antagonismo C. gloesporioides Antagonismo F. oxysporum
Control C. gloesporioides Control F. oxysporum
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides F. oxysporum C. gloesporioides F. oxysporum
3 2.4 1.4 2.6 2.2
6 4.1 3.3 5.3 4.8
9 5.4 4.2 6.7 5.8
12 6.6 5.4 7.7 6.4
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Tabla 16. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Trichoderma harzianum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado
cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a
10° C.
Figura 16. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs T. harzianum en DSA a 10°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
0
0.5
1
1.5
2
2.5
3
3.5
3 6 9 12
CR
ECIM
IEN
TO (
CM
)
DIAS DE EVALUACIÓN
CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN DSA A 10° C
Antagonismo C. gloesporioides Antagonismo T. harzianum
Control C. gloesporioides Control T. harzianum
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides T. harzianum C. gloesporioides T. harzianum
3 1.0 1.1 1.1 1.2
6 1.2 1.6 1.2 1.9
9 1.5 2.1 1.5 2.5
12 1.7 2.4 1.7 3.3
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Tabla 17. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Trichoderma harzianum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado
cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a
20° C.
Figura 17. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs T. harzianum en DSA a 20°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
3 6 9 12
CR
ECIM
IEN
TO (
CM
)
DIAS DE EVALUACIÓN
CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN DSA A 20° C
Antagonismo C. gloesporioides Antagonismo T. harzianum
Control C. gloesporioides Control T. harzianum
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides T. harzianum C. gloesporioides T. harzianum
3 2.3 2.3 2.3 2.4
6 3.8 3.8 5.2 3.9
9 5.6 5.5 6.9 5.5
12 7.2 7.2 8.4 7.1
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Tabla 18. Promedio del crecimiento en centímetros de Colletotrichum gloesporioides vs
Trichoderma harzianum, en prueba de antagonismo y su respectivo control, tomado
cada 24 horas hasta los 12 días de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a
30° C.
Figura 18. Crecimiento de la prueba control y prueba de antagonismo (cm) de C.
gloesporioides vs T. harzianum en DSA a 30°C, tomado cada 24 horas por 12 días.
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
3 6 9 12
CR
ECIM
IEN
TO (
CM
)
DIAS DE EVALUACIÓN
CRECIMIENTO CONTROL Y PRUEBA DE ANTAGONISMO EN DSA A 30° C
Antagonismo C. gloesporioides Antagonismo T. harzianum
Control C. gloesporioides Control T. harzianum
PRUEBA DE ANTAGONISMO PRUEBA CONTROL
DÍAS C. gloesporioides T. harzianum C. gloesporioides T. harzianum
3 2.4 2.2 2.6 2.4
6 4.0 3.8 5.3 4.7
9 5.4 4.9 6.7 5.9
12 6.5 6 7.7 7.2
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Tabla 19: Grado de antagonismo en cultivos duales de C. gloesporioides frente a C.
rosea, F. oxysporum y T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10 °C y 12 días de
evaluación, utilizando la escala de Bell.
TRATAMIENTOS HONGOS ANTAGONISTAS GRADO DE
ANTAGONISMO
T5 Clonostachys rosea 3
T6 Fusarium oxysporum 3
T7 Trichoderma harzianum 3
Tabla 20: Grado de antagonismo en cultivos duales de C. gloesporioides frente a C.
rosea, F. oxysporum y T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20 °C y 12 días de
evaluación, utilizando la escala de Bell.
TRATAMIENTOS HONGOS ANTAGONISTAS GRADO DE
ANTAGONISMO
T5 Clonostachys rosea 3
T6 Fusarium oxysporum 3
T7 Trichoderma harzianum 3
Tabla 21: Grado de antagonismo en cultivos duales de C. gloesporioides frente a C.
rosea, F. oxysporum y T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30 °C y 12 días de
evaluación, utilizando la escala de Bell.
TRATAMIENTOS HONGOS ANTAGONISTAS GRADO DE
ANTAGONISMO
T5 Clonostachys rosea 3
T6 Fusarium oxysporum 3
T7 Trichoderma harzianum 2
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Tabla 22: Grado de antagonismo en cultivos duales de C. gloesporioides frente a C.
rosea, F. oxysporum y T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10 °C y 12
días de evaluación, utilizando la escala de Bell.
TRATAMIENTOS HONGOS ANTAGONISTAS GRADO DE
ANTAGONISMO
T5 Clonostachys rosea 3
T6 Fusarium oxysporum 3
T7 Trichoderma harzianum 3
Tabla 23: Grado de antagonismo en cultivos duales de C. gloesporioides frente a C.
rosea, F. oxysporum y T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20 °C y 12
días de evaluación, utilizando la escala de Bell.
TRATAMIENTOS HONGOS ANTAGONISTAS GRADO DE
ANTAGONISMO
T5 Clonostachys rosea 3
T6 Fusarium oxysporum 3
T7 Trichoderma harzianum 3
Tabla 24: Grado de antagonismo en cultivos duales de C. gloesporioides frente a C.
rosea, F. oxysporum y T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30 °C y 12
días de evaluación, utilizando la escala de Bell.
TRATAMIENTOS HONGOS ANTAGONISTAS GRADO DE
ANTAGONISMO
T5 Clonostachys rosea 3
T6 Fusarium oxysporum 3
T7 Trichoderma harzianum 3
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Figura 19. Porcentaje de inhibición en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10°C, 20°C y 30°C de C. rosea, F. oxysporum y T. harzianum frente a
Colletotrichum gloesporioides a los 12 días de evaluación.
A los 10°C de evaluación C. rosea, F. oxysporum y T. harzianum enfrentados a C. gloesporioides en medio de cultivo PDA presentaron un porcentaje de inhibición de 11.04%; 26.38% y 46.01% respectivamente, mientras que a los 20°C presentaron un porcentaje de inhibición de 17.91%; 24.25% y 38.43% y a los 30°C de evaluación presentaron un porcentaje de inhibición de 34.88%; 36.05% y 65.12% respectivamente.
11.04294479
17.91044776
34.88372093
26.380368124.25373134
36.04651163
46.01226994
38.43283582
65.11627907
0
10
20
30
40
50
60
70
10°C 20°C 30°CPO
RC
ENTA
JE D
E IN
HIB
ICIÓ
N D
EL C
REC
IMIE
NTO
(%
)
TEMPERATURA USADA A LOS 12 DÍAS DE EVALUACIÓN
PORCENTAJE DE INHIBICIÓN DE C. GLOESPORIOIDES FRENTE A SUS ANTAGONISTAS
C. rosea
F. oxysporum
T. harzianum
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Figura 20. Porcentaje de inhibición en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10°C, 20°C y 30°C de C. rosea, F. oxysporum y T. harzianum frente a
Colletotrichum gloesporioides a los 12 días de evaluación.
A los 10°C de evaluación C. rosea, F. oxysporum y T. harzianum enfrentados a C. gloesporioides en medio de cultivo DSA presentaron un porcentaje de inhibición de 14.19%; 14.55% y 1.81% respectivamente, mientras que a los 20°C presentaron un porcentaje de inhibición de 24.56%; 14.47% y 17.11% y a los 30°C de evaluación presentaron un porcentaje de inhibición de 27.35%; 17.04% y 17.93% respectivamente.
14.18181818
24.56140351
27.35426009
14.54545455 14.47368421
17.04035874
1.818181818
17.1052631617.93721973
0
5
10
15
20
25
30
10°C 20°C 30°C
PO
RC
ENTA
JE D
E IN
HIB
ICIÓ
N D
EL C
REC
IMIE
NTO
(%
)
TEMPERATURA USADA A LOS 12 DÍAS DE EVALUACIÓN
PORCENTAJE DE INHIBICIÓN DE C. GLOESPORIOIDES FRENTE A SUS ANTAGONISTAS
C. rosea
F. oxysporum
T. harzianum
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Tabla 25: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a C. rosea en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10 °C y 12 días de evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 0.245 3 0.0816667 2.84 0.0826
Intra grupos 0.345 12 0.02875
Total (Corr.) 0.59 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a C. rosea en DSA 10 °C. La
razón-F, que en este caso es igual a 2.84058, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado intra-
grupos. Puesto que el valor-P de la razón-F es mayor o igual que 0.05, no existe una diferencia estadísticamente
significativa entre la media de crecimiento 10 °C entre un nivel de tratamiento y otro, con un nivel del 95.0% de
confianza.
Tabla 26: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a C. rosea en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides - C. gloesporioides (Dual) 0.2 0.357044
C. gloesporioides - C. rosea 0.075 0.357044 C. gloesporioides - C. rosea (Dual) 0.325 0.357044 C. gloesporioides (Dual) - C. rosea -0.125 0.357044 C. gloesporioides (Dual) - C. rosea (Dual) 0.125 0.357044 C. rosea - C. rosea (Dual) 0.25 0.357044 * indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a C. rosea en DSA a 10 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, donde no se encontraron diferencias
estadísticamente significativas entre cualquier par de medias, con un nivel del 95.0% de confianza. En el cuadro
de TRATAMIENTOS, se identificó un grupo homogéneo, según la alineación de “X” en columna, donde tampoco
existe diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan una misma columna de
“X”. Con el método de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son significativamente
diferentes, cuando la diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
C. rosea (Dual) 4 1.05 X C. gloesporioides (Dual) 4 1.175 X C. rosea 4 1.3 X C. gloesporioides 4 1.375 X
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Tabla 27: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a C. rosea en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20 °C y 12 días de evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 11.8069 3 3.93562 1.08 0.3927
Intra grupos 43.5425 12 3.62854
Total (Corr.) 55.3494 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a C. rosea en DSA 20 °C. La
razón-F, que en este caso es igual a 1.08463, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado intra-
grupos. Puesto que el valor-P de la razón-F es mayor o igual que 0.05, no existe una diferencia estadísticamente
significativa entre la media de crecimiento 20 °C entre un nivel de tratamiento y otro, con un nivel del 95.0% de
confianza.
Tabla 28: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a C. rosea en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides - C. gloesporioides (Dual) 1.425 4.01115
C. gloesporioides - C. rosea 1.875 4.01115 C. gloesporioides - C. rosea (Dual) 2.275 4.01115 C. gloesporioides (Dual) - C. rosea 0.45 4.01115 C. gloesporioides (Dual) - C. rosea (Dual) 0.85 4.01115 C. rosea - C. rosea (Dual) 0.4 4.01115 * indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a C. rosea en DSA a 20 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, donde no se encontraron diferencias
estadísticamente significativas entre cualquier par de medias, con un nivel del 95.0% de confianza. En el cuadro
de TRATAMIENTOS, se identificó un grupo homogéneo, según la alineación de “X” en columna, donde tampoco
existe diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan una misma columna de
“X”. Con el método de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son significativamente
diferentes, cuando la diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
C. rosea (Dual) 4 3.425 X C. rosea 4 3.825 X C. gloesporioides (Dual) 4 4.275 X C. gloesporioides 4 5.7 X
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Tabla 29: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a C. rosea en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30 °C y 12 días de evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 9.60688 3 3.20229 1.02 0.4175
Intra grupos 37.6275 12 3.13562
Total (Corr.) 47.2344 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a C. rosea en DSA 30 °C. La
razón-F, que en este caso es igual a 1.02126, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado intra-
grupos. Puesto que el valor-P de la razón-F es mayor o igual que 0.05, no existe una diferencia estadísticamente
significativa entre la media de crecimiento 30 °C entre un nivel de tratamiento y otro, con un nivel del 95.0% de
confianza.
Tabla 30: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a C. rosea en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides - C. gloesporioides (Dual) 1.525 3.72876
C. gloesporioides - C. rosea 1.175 3.72876 C. gloesporioides - C. rosea (Dual) 2.125 3.72876 C. gloesporioides (Dual) - C. rosea -0.35 3.72876 C. gloesporioides (Dual) - C. rosea (Dual) 0.6 3.72876 C. rosea - C. rosea (Dual) 0.95 3.72876 * indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a C. rosea en DSA a 30 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, donde no se encontraron diferencias
estadísticamente significativas entre cualquier par de medias, con un nivel del 95.0% de confianza. En el cuadro
de TRATAMIENTOS, se identificó un grupo homogéneo, según la alineación de “X” en columna, donde tampoco
existe diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan una misma columna de
“X”. Con el método de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son significativamente
diferentes, cuando la diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
C. rosea (Dual) 4 3.45 X C. gloesporioides (Dual) 4 4.05 X C. rosea 4 4.40 X C. gloesporioides 4 5.575 X
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Tabla 31: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a F. oxysporum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10°C y 12 días de
evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 0.756875 3 0.252292 1.85 0.1911
Intra grupos 1.6325 12 0.136042
Total (Corr.) 2.38937 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en DSA 10 °C.
La razón-F, que en este caso es igual a 1.85452, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado intra-
grupos. Puesto que el valor-P de la razón-F es mayor o igual que 0.05, no existe una diferencia estadísticamente
significativa entre la media de crecimiento 10 °C entre un nivel de tratamiento y otro, con un nivel del 95.0% de
confianza.
Tabla 32: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides - C. gloesporioides (Dual) 0.2 0.776673
C. gloesporioides - F. oxysporum -0.25 0.776673 C. gloesporioides - F. oxysporum (Dual) 0.325 0.776673 C. gloesporioides (Dual) - F. oxysporum -0.45 0.776673 C. gloesporioides (Dual) - F. oxysporum (Dual) 0.125 0.776673 F. oxysporum - F. oxysporum (Dual) 0.575 0.776673 * indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en DSA a 10 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, donde no se encontraron diferencias
estadísticamente significativas entre cualquier par de medias, con un nivel del 95.0% de confianza. En el cuadro
de TRATAMIENTOS, se identificó un grupo homogéneo, según la alineación de “X” en columna, donde tampoco
existe diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan una misma columna de
“X”. Con el método de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son significativamente
diferentes, cuando la diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
F. oxysporum (Dual) 4 1.05 X C. gloesporioides (Dual) 4 1.175 X C. gloesporioides 4 1.375 X F. oxysporum 4 1.625 X
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Tabla 33: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a F. oxysporum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20°C y 12 días de
evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 5.2825 3 1.76083 0.33 0.8014
Intra grupos 63.355 12 5.27958
Total (Corr.) 68.6375 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en DSA 20 °C.
La razón-F, que en este caso es igual a 0.333517, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado
intra-grupos. Puesto que el valor-P de la razón-F es mayor o igual que 0.05, no existe una diferencia
estadísticamente significativa entre la media de crecimiento 20 °C entre un nivel de tratamiento y otro, con un nivel
del 95.0% de confianza.
Tabla 34: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides - C. gloesporioides (Dual) 0.825 4.83841
C. gloesporioides - F. oxysporum 0.8 4.83841 C. gloesporioides - F. oxysporum (Dual) 1.625 4.83841 C. gloesporioides (Dual) - F. oxysporum -0.025 4.83841 C. gloesporioides (Dual) - F. oxysporum (Dual) 0.8 4.83841 F. oxysporum - F. oxysporum (Dual) 0.825 4.83841 * indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en DSA a 20 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, donde no se encontraron diferencias
estadísticamente significativas entre cualquier par de medias, con un nivel del 95.0% de confianza. En el cuadro
de TRATAMIENTOS, se identificó un grupo homogéneo, según la alineación de “X” en columna, donde tampoco
existe diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan una misma columna de
“X”. Con el método de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son significativamente
diferentes, cuando la diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
F. oxysporum (Dual) 4 4.075 X C. gloesporioides (Dual) 4 4.875 X C. gloesporioides 4 5.7 X F. oxysporum 4 4.9 X
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Tabla 35: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a F. oxysporum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30°C y 12 días de
evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 8.13687 3 2.71229 0.75 0.5420
Intra grupos 43.2825 12 3.60688
Total (Corr.) 51.4194 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en DSA 30 °C.
La razón-F, que en este caso es igual a 0.751978, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado
intra-grupos. Puesto que el valor-P de la razón-F es mayor o igual que 0.05, no existe una diferencia
estadísticamente significativa entre la media de crecimiento 30 °C entre un nivel de tratamiento y otro, con un nivel
del 95.0% de confianza.
Tabla 36: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides - C. gloesporioides (Dual) 0.95 2.92598
C. gloesporioides - F. oxysporum 0.775 2.92598 C. gloesporioides - F. oxysporum (Dual) 2.0 2.92598 C. gloesporioides (Dual) - F. oxysporum -0.175 2.92598 C. gloesporioides (Dual) - F. oxysporum (Dual) 1.05 2.92598 F. oxysporum - F. oxysporum (Dual) 1.225 2.92598 * indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en DSA a 30 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, donde no se encontraron diferencias
estadísticamente significativas entre cualquier par de medias, con un nivel del 95.0% de confianza. En el cuadro
de TRATAMIENTOS, se identificó un grupo homogéneo, según la alineación de “X” en columna, donde tampoco
existe diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan una misma columna de
“X”. Con el método de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son significativamente
diferentes, cuando la diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
F. oxysporum (Dual) 4 3.575 X C. gloesporioides (Dual) 4 4.625 X C. gloesporioides 4 5.575 X F. oxysporum 4 4.8 X
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Tabla 37: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10°C y 12 días de
evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 0.996875 3 0.332292 6.79 0.0063
Intra grupos 0.5875 12 0.0489583
Total (Corr.) 1.58438 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a T. harzianum en DSA 10 °C.
La razón-F, que en este caso es igual a 6.78723, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado intra-
grupos. Puesto que el valor-P de la prueba-F es menor que 0.05, existe una diferencia estadísticamente
significativa entre la media de crecimiento 10 °C entre un nivel de tratamientos y otro, con un nivel del 95.0% de
confianza.
Tabla 38: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 10 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides - C. gloesporioides (Dual) 0.025 0.46925
C. gloesporioides - T. harzianum 0.425 0.46925 C. gloesporioides - T. harzianum (Dual) * 0.575 0.46925 C. gloesporioides (Dual) - T. harzianum 0.4 0.46925 C. gloesporioides (Dual) - T. harzianum (Dual) * 0.55 0.46925 T. harzianum - T. harzianum (Dual) 0.15 0.46925 * indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a T. harzianum en DSA a 10 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, El asterisco que se encuentra al lado de los 2 pares
indica que estos pares muestran diferencias estadísticamente significativas con un nivel del 95.0% de confianza.
En el cuadro de TRATAMIENTOS, se identificó un grupo homogéneo, según la alineación de “X” en columna,
donde tampoco existe diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan una misma
columna de “X”. Con el Método de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son
significativamente diferentes, cuando la diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
T. harzianum (Dual) 4 0.8 X C. gloesporioides (Dual) 4 1.35 X C. gloesporioides 4 1.375 X T. harzianum 4 0.95 XX
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Tabla 39: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20°C y 12 días de
evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 9.9725 3 3.32417 0.72 0.5601
Intra grupos 55.565 12 4.63042
Total (Corr.) 65.5375 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a T. harzianum en DSA 20 °C.
La razón-F, que en este caso es igual a 0.717898, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado
intra-grupos. Puesto que el valor-P de la razón-F es mayor o igual que 0.05, no existe una diferencia
estadísticamente significativa entre la media de crecimiento 20 °C entre un nivel de tratamientos y otro, con un
nivel del 95.0% de confianza.
Tabla 40: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 20 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides - C. gloesporioides (Dual) 0.975 4.53119
C. gloesporioides - T. harzianum 1.15 4.53119 C. gloesporioides - T. harzianum (Dual) 2.225 4.53119 C. gloesporioides (Dual) - T. harzianum 0.175 4.53119 C. gloesporioides (Dual) - T. harzianum (Dual) 1.25 4.53119 T. harzianum - T. harzianum (Dual) 1.075 4.53119 * indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a T. harzianum en DSA a 20 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, No hay diferencias estadísticamente significativas
entre cualquier par de medias, con un nivel del 95.0% de confianza. En el cuadro de TRATAMIENTOS, se
identificó un grupo homogéneo, según la alineación de “X” en columna, donde tampoco existe diferencias
estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan una misma columna de “X”. Con el Método
de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son significativamente diferentes, cuando la
diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
T. harzianum (Dual) 4 3.475 X C. gloesporioides (Dual) 4 4.725 X C. gloesporioides 4 5.7 X T. harzianum 4 4.55 X
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Tabla 41: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30°C y 12 días de
evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 9.38 3 3.12667 0.85 0.4936
Intra grupos 44.21 12 3.68417
Total (Corr.) 53.59 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a T. harzianum en DSA 30 °C.
La razón-F, que en este caso es igual a 0.848677, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado
intra-grupos. Puesto que el valor-P de la razón-F es mayor o igual que 0.05, no existe una diferencia
estadísticamente significativa entre la media de crecimiento 30 °C entre un nivel de tratamientos y otro, con un
nivel del 95.0% de confianza.
Tabla 42: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) a 30 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides - C. gloesporioides (Dual) 1.0 4.04177
C. gloesporioides - T. harzianum 0.85 4.04177 C. gloesporioides - T. harzianum (Dual) 2.15 4.04177 C. gloesporioides (Dual) - T. harzianum -0.15 4.04177 C. gloesporioides (Dual) - T. harzianum (Dual) 1.15 4.04177 T. harzianum - T. harzianum (Dual) 1.3 4.04177 * indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a T. harzianum en DSA a 30 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, donde no existe diferencias estadísticamente
significativas entre cualquier par de medias, con un nivel del 95.0% de confianza. En el cuadro de
TRATAMIENTOS, se identificó un grupo homogéneo, según la alineación de “X” en columna, donde tampoco
existe diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan una misma columna de
“X”. Con el método de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son significativamente
diferentes, cuando la diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
T. harzianum (Dual) 4 3.425 X C. gloesporioides (Dual) 4 4.575 X C. gloesporioides 4 5.575 X T. harzianum 4 4.725 X
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Tabla 43: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a C. rosea en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10 °C y 12 días de evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 2.325 3 0.775 2.01 0.1662
Intra grupos 4.625 12 0.385417
Total (Corr.) 6.95 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a C. rosea en PDA 10 °C. La
razón-F, que en este caso es igual a 2.01081, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado intra-
grupos. Puesto que el valor-P de la razón-F es mayor o igual que 0.05, no existe una diferencia estadísticamente
significativa entre la media de crecimiento 10 °C entre un nivel de tratamientos y otro, con un nivel del 95.0% de
confianza.
Tabla 44: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a C. rosea en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides (Dual) - C. rosea -0.975 1.30728
C. gloesporioides (Dual) - C. rosea (Dual) -0.15 1.30728 C. gloesporioides (Dual) - C.gloesporioides -0.175 1.30728 C. rosea - C. rosea (Dual) 0.825 1.30728 C. rosea - C.gloesporioides 0.8 1.30728 C. rosea (Dual) - C.gloesporioides -0.025 1.30728 * indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a C. rosea en PDA a 10 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, donde no se encontraron diferencias
estadísticamente significativas entre cualquier par de medias, con un nivel del 95.0% de confianza. En el cuadro
de TRATAMIENTOS, se identificó un grupo homogéneo, según la alineación de “X” en columna, donde tampoco
existe diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan una misma columna de
“X”. Con el método de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son significativamente
diferentes, cuando la diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
C. gloesporioides (Dual) 4 1.45 X C. rosea (Dual) 4 1.6 X C.gloesporioides 4 1.625 X C. rosea 4 2.425 X
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Tabla 45: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a C. rosea en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20 °C y 12 días de evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 8.24688 3 2.74896 1.78 0.2049
Intra grupos 18.5575 12 1.54646
Total (Corr.) 26.8044 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a C. rosea en PDA 20 °C. La
razón-F, que en este caso es igual a 1.77758, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado intra
grupos. Puesto que el valor-P de la razón-F es mayor o igual que 0.05, no existe una diferencia estadísticamente
significativa entre la media de crecimiento 20 °C entre un nivel de tratamientos y otro, con un nivel del 95.0% de
confianza.
Tabla 46: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a C. rosea en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides (Dual) - C. rosea -1.65 2.61861
C. gloesporioides (Dual) - C. rosea (Dual) 0.2 2.61861 C. gloesporioides (Dual) - C. gloesporioides -0.475 2.61861 C. rosea - C. rosea (Dual) 1.85 2.61861 C. rosea - C. gloesporioides 1.175 2.61861 C. rosea (Dual) - C. gloesporioides -0.675 2.61861 * indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a C. rosea en PDA a 20 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, donde no se encontraron diferencias
estadísticamente significativas entre cualquier par de medias, con un nivel del 95.0% de confianza. En el cuadro
de TRATAMIENTOS, se identificó un grupo homogéneo, según la alineación de “X” en columna, donde tampoco
existe diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan una misma columna de
“X”. Con el método de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son significativamente
diferentes, cuando la diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
C. rosea (Dual) 4 2.0 X C. gloesporioides (Dual) 4 2.2 X C. gloesporioides 4 2.675 X C. rosea 4 3.85 X
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Tabla 47: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a C. rosea en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30 °C y 12 días de evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 4.29 3 1.43 1.19 0.3552
Intra grupos 14.43 12 1.2025
Total (Corr.) 18.72 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a C. rosea en PDA 30 °C. La
razón-F, que en este caso es igual a 1.18919, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado intra-
grupos. Puesto que el valor-P de la razón-F es mayor o igual que 0.05, no existe una diferencia estadísticamente
significativa entre la media de crecimiento 30 °C entre un nivel de tratamientos y otro, con un nivel del 95.0% de
confianza.
Tabla 48: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a C. rosea en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides (Dual) - C. rosea -1.25 2.30911
C. gloesporioides (Dual) - C. rosea (Dual) -0.15 2.30911 C. gloesporioides (Dual) - C.gloesporioides -0.9 2.30911 C. rosea - C. rosea (Dual) 1.1 2.30911 C. rosea - C.gloesporioides 0.35 2.30911 C. rosea (Dual) - C.gloesporioides -0.75 2.30911 * indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a C. rosea en PDA a 30 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, donde no se encontraron diferencias
estadísticamente significativas entre cualquier par de medias, con un nivel del 95.0% de confianza. En el cuadro
de TRATAMIENTOS, se identificó un grupo homogéneo, según la alineación de “X” en columna, donde tampoco
existe diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan una misma columna de
“X”. Con el método de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son significativamente
diferentes, cuando la diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
C. gloesporioides (Dual) 4 1.675 X C. rosea (Dual) 4 1.825 X C.gloesporioides 4 2.575 X C. rosea 4 2.925 X
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49
Tabla 49: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a F. oxysporum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10°C y 12 días de evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 7.23687 3 2.41229 6.76 0.0064
Intra grupos 4.2825 12 0.356875
Total (Corr.) 11.5194 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en PDA 10 °C.
La razón-F, que en este caso es igual a 6.75949, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado intra-
grupos. Puesto que el valor-P de la prueba-F es menor que 0.05, existe una diferencia estadísticamente
significativa entre la media de crecimiento 10 °C entre un nivel de tratamientos y otro, con un nivel del 95.0% de
confianza.
Tabla 50: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides - C. gloesporioides (Dual) 0.425 1.25794
C. gloesporioides - F. oxysporum -1.25 1.25794 C. gloesporioides - F. oxysporum (Dual) 0.35 1.25794 C. gloesporioides (Dual)- F. oxysporum * -1.675 1.25794 C. gloesporioides (Dual) - F. oxysporum (Dual) -0.075 1.25794 F. oxysporum - F. oxysporum (Dual) * 1.6 1.25794 * indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en PDA a 10 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, donde el asterisco que se encuentra al lado de los
2 pares indica que estos pares muestran diferencias estadísticamente significativas con un nivel del 95.0% de
confianza. En el cuadro de TRATAMIENTOS, se han identificado 2 grupos homogéneos según la alineación de
las “X” en columnas. No existen diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan
una misma columna de “X”. Con el Método de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son
significativamente diferentes, cuando la diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
C. gloesporioides (Dual) 4 1.2 X F. oxysporum (Dual) 4 1.275 X C. gloesporioides 4 1.625 XX F. oxysporum 4 2.875 X
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Tabla 51: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a F. oxysporum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20°C y 12 días de evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 14.9525 3 4.98417 2.39 0.1197
Intra grupos 25.025 12 2.08542
Total (Corr.) 39.9775 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en PDA 20 °C.
La razón-F, que en este caso es igual a 2.39001, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado intra-
grupos. Puesto que el valor-P de la razón-F es mayor o igual que 0.05, no existe una diferencia estadísticamente
significativa entre la media de crecimiento 20 °C entre un nivel de tratamientos y otro, con un nivel del 95.0% de
confianza.
Tabla 52: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides - C. gloesporioides (Dual) 0.65 3.04088
C. gloesporioides - F. oxysporum -1.975 3.04088 C. gloesporioides - F. oxysporum (Dual) -0.425 3.04088 C. gloesporioides (Dual) - F. oxysporum -2.625 3.04088 C. gloesporioides (Dual) - F. oxysporum (Dual) -1.075 3.04088 F. oxysporum - F. oxysporum (Dual) 1.55 3.04088 * indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en PDA a 20 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, donde no se encontraron diferencias
estadísticamente significativas entre cualquier par de medias, con un nivel del 95.0% de confianza. En el cuadro
de TRATAMIENTOS, se identificó un grupo homogéneo, según la alineación de “X” en columna, donde tampoco
existe diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan una misma columna de
“X”. Con el Método de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son significativamente
diferentes, cuando la diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
C. gloesporioides (Dual) 4 2.025 X C. gloesporioides 4 2.675 X F. oxysporum (Dual) 4 3.1 X F. oxysporum 4 4.65 X
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Tabla 53: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a F. oxysporum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30°C y 12 días de evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 24.9525 3 8.3175 4.08 0.0326
Intra grupos 24.445 12 2.03708
Total (Corr.) 49.3975 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en PDA 30 °C.
La razón-F, que en este caso es igual a 4.08304, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado intra-
grupos. Puesto que el valor-P de la prueba-F es menor que 0.05, existe una diferencia estadísticamente
significativa entre la media de crecimiento 30 °C entre un nivel de tratamientos y otro, con un nivel del 95.0% de
confianza.
Tabla 54: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a F. oxysporum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides - C. gloesporioides (Dual) 0.925 3.00543
C. gloesporioides - F. oxysporum -2.325 3.00543 C. gloesporioides - F. oxysporum (Dual) 0.45 3.00543 C. gloesporioides (Dual) - F. oxysporum * -3.25 3.00543 C. gloesporioides (Dual) - F. oxysporum (Dual) -0.475 3.00543 F. oxysporum - F. oxysporum (Dual) 2.775 3.00543 * indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a F. oxysporum en PDA a 30 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, donde se ha colocado un asterisco junto a 1 par,
indicando que este par muestra diferencias estadísticamente significativas con un nivel del 95.0% de confianza.
En el cuadro de TRATAMIENTOS, se han identificado 2 grupos homogéneos según la alineación de las “X” en
columnas, No existen diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan una misma
columna de “X”. Con el método de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son
significativamente diferentes, cuando la diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
C. gloesporioides (Dual) 4 1.65 X F. oxysporum (Dual) 4 2.125 XX C. gloesporioides 4 2.575 XX F. oxysporum 4 4.9 X
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Tabla 55: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10°C y 12 días de evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 6.35187 3 2.11729 4.82 0.0199
Intra grupos 5.2725 12 0.439375
Total (Corr.) 11.6244 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a T. harzianum en PDA 10 °C.
La razón-F, que en este caso es igual a 4.81887, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado intra-
grupos. Puesto que el valor-P de la prueba-F es menor que 0.05, existe una diferencia estadísticamente
significativa entre la media de crecimiento 10 °C entre un nivel de tratamientos y otro, con un nivel del 95.0% de
confianza.
Tabla 56: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 10 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides - C. gloesporioides Antagonismo 0.75 1.39579
C. gloesporioides - T. harzianum -1.025 1.39579
C. gloesporioides - T. harzianum Antagonismo -0.1 1.39579
C. gloesporioides Antagonismo - T. harzianum * -1.775 1.39579
C. gloesporioides Antagonismo - T. harzianum Antagonismo -0.85 1.39579
T. harzianum - T. harzianum Antagonismo 0.925 1.39579
* indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a T. harzianum en PDA a 10 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, donde se ha colocado un asterisco junto a 1 par,
indicando que este par muestra diferencias estadísticamente significativas con un nivel del 95.0% de confianza.
En el cuadro de TRATAMIENTOS, se han identificado 2 grupos homogéneos según la alineación de las “X” en
columnas. No existen diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan una misma
columna de “X”. Con el método de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son
significativamente diferentes, cuando la diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
C. gloesporioides Antagonismo 4 0.875 X
C. gloesporioides 4 1.625 XX
T. harzianum Antagonismo 4 1.725 XX
T. harzianum 4 2.65 X
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Tabla 57: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20°C y 12 días de evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 7.77687 3 2.59229 1.97 0.1731
Intra grupos 15.8275 12 1.31896
Total (Corr.) 23.6044 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a T. harzianum en PDA 20 °C.
La razón-F, que en este caso es igual a 1.96541, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado intra-
grupos. Puesto que el valor-P de la razón-F es mayor o igual que 0.05, no existe una diferencia estadísticamente
significativa entre la media de crecimiento 20 °C entre un nivel de tratamientos y otro, con un nivel del 95.0% de
confianza.
Tabla 58: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 20 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides - C. gloesporioides Antagonismo 1.025 2.41834
C. gloesporioides - T. harzianum -0.875 2.41834 C. gloesporioides - T. harzianum Antagonismo 0.475 2.41834 C. gloesporioides Antagonismo - T. harzianum -1.9 2.41834 C. gloesporioides Antagonismo - T. harzianum Antagonismo
-0.55 2.41834
T. harzianum - T. harzianum Antagonismo 1.35 2.41834 * indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a T. harzianum en PDA a 20 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, donde no existe diferencias estadísticamente
significativas entre cualquier par de medias, con un nivel del 95.0% de confianza. En el cuadro de
TRATAMIENTOS, se identificó un grupo homogéneo, según la alineación de “X” en columna, donde tampoco
existe diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan una misma columna de
“X”. Con el método de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son significativamente
diferentes, cuando la diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
C. gloesporioides Antagonismo 4 1.65 X T. harzianum Antagonismo 4 2.2 X C. gloesporioides 4 2.675 X T. harzianum 4 3.55 X
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Tabla 59: Análisis de Varianza (ANOVA) del crecimiento promedio de C. gloesporioides
frente a T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30°C y 12 días de evaluación.
ANALISIS DE VARIANZA
Fuente Suma de
Cuadrados GL
Cuadrado Medio
Razón-F Valor-P
Entre grupos 57.6419 3 19.214 6.72 0.0065
Intra grupos 34.3225 12 2.86021
Total (Corr.) 91.9644 15
A los 12 días de evaluación del crecimiento promedio de C. gloesporioides frente a T. harzianum en PDA 30 °C.
La razón-F, que en este caso es igual a 6.71768, es el cociente entre el estimado entre-grupos y el estimado intra-
grupos. Puesto que el valor-P de la prueba-F es menor que 0.05, existe una diferencia estadísticamente
significativa entre la media de crecimiento 30 °C entre un nivel de tratamientos y otro, con un nivel del 95.0% de
confianza.
Tabla 60: Comparación de las mediciones (Promedio) de los halos de inhibición de C.
gloesporioides frente a T. harzianum en Agar Papa Dextrosa (PDA) a 30 °C.
CONTRASTE Sig. Diferencia +/- Límites
C. gloesporioides - C. gloesporioides Antagonismo 1.675 3.56124
C. gloesporioides - T. harzianum -3.3 3.56124 C. gloesporioides - T. harzianum Antagonismo -2.0 3.56124 C. gloesporioides Antagonismo - T. harzianum * -4.975 3.56124 C. gloesporioides Antagonismo - T. harzianum Antagonismo
* -3.675 3.56124
T. harzianum - T. harzianum Antagonismo 1.3 3.56124 * indica una diferencia significativa.
Al comparar las medias de C. gloesporioides frente a T. harzianum en PDA a 30 °C, en el cuadro de CONTRASTE
muestra las diferencias estimadas entre cada par de medias, donde el asterisco que se encuentra al lado de los
2 pares indica que estos pares muestran diferencias estadísticamente significativas con un nivel del 95.0% de
confianza. En el cuadro de TRATAMIENTOS, se han identificado 2 grupos homogéneos según la alineación de
las “X” en columnas. No existen diferencias estadísticamente significativas entre aquellos niveles que compartan
una misma columna de “X”. Con el método de Tukey existe un riesgo del 5.0% al decir que uno o más pares son
significativamente diferentes, cuando la diferencia real es igual a 0.
PORCENTAJE TUKEY HSD
TRATAMIENTO Casos Media Grupos Homogéneos
C. gloesporioides Antagonismo 4 0.9 X C. gloesporioides 4 2.575 XX T. harzianum Antagonismo 4 4.575 X T. harzianum 4 5.875 X
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55
Figura 21: Crecimiento de los monocultivos puros de A) C. rosea B) C.
gloesporioides C) F. oxysporum y D) T. harzianum, a los 12 días de evaluación
en Agar Papa Dextrosa y Agar Sabouraud Dextrosa.
El crecimiento de los cultivos de C. rosea, F. oxysporum y C. gloesporioides
llegan a ocupar la totalidad de la placa Petri, mientras que el crecimiento de T.
harzianum no llega a ocupar la totalidad de la placa.
A B
D C
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= Línea media de la placa Petri
Figura 22: Crecimiento de los cultivos duales de a) C. rosea vs C. gloesporioides
b) T. harzianum vs C. gloesporioides y c) F. oxysporum vs C. gloesporioides, a
un 1 día de crecimiento en Agar Sabouraud Dextrosa.
El crecimiento de los cultivos duales de los hongos: C. gloesporioides, C. rosea,
F. oxysporum y T. harzianum enfrentados, crecieron de forma muy irregular en
comparación a lo largo de la siembra a las 24 horas de su crecimiento.
a b
c
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= Línea media de la placa Petri
Figura 23: Crecimiento de los cultivos duales de A) C. rosea vs C.
gloesporioides B) T. harzianum vs C. gloesporioides y C) F. oxysporum vs C.
gloesporioides, a 6 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa.
El crecimiento de los cultivos duales de los hongos: C. gloesporioides, C. rosea,
F. oxysporum y T. harzianum enfrentados, crecieron de forma muy irregular en
comparación a lo largo de la siembra a los 6 días de crecimiento.
A B
C
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= Línea media de la placa Petri
Figura 24: Crecimiento de los cultivos duales de A) C. rosea vs C. gloesporioides
B) T. harzianum vs C. gloesporioides y C) F. oxysporum vs C. gloesporioides, a
12 días de crecimiento en Agar Papa Dextrosa.
El crecimiento de los cultivos duales de los hongos: C. gloesporioides, C. rosea,
F. oxysporum y T. harzianum enfrentados, crecieron de forma muy irregular en
comparación a lo largo de los 12 días de crecimiento.
A B
C
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DISCUSIÓN
De acuerdo con los resultados registrados en esta investigación, detallan que tanto
controladores como fitopatógenos son limitados por la temperatura y el medio de cultivo,
en donde se evidencia la teoría planteada por Luque63, que determinó que esto se debe
a diversos factores como: Las características de los fitopatógenos (grosor de hifas),
humedad y temperatura usada en el medio de cultivo, son factores que crean resistencia
a los antagonistas y deformaciones irregulares a lo largo de la experiencia, en tanto la
investigación de Morales García64, indicaba que la temperatura óptima de desarrollo en
condiciones in vitro para C. gloesporioides es de 20 a 30°C, igual a esta investigación,
en donde el hongo se desarrolla en menor tiempo de lo esperado, impidiendo así el
avance de cualquier antagonista.
De acuerdo con los datos registrados en las tablas N°1, 2 y 3 & 10, 11 y 12, la
disminución del crecimiento micelial del biocontrolador C. rosea en la prueba de
antagonismo realizada a 10°C, 20°C y 30°C en los medios de cultivo Agar Papa
Dextrosa (PDA) & Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) respectivamente; Chavez17 &
Papavizas22, demostraron en sus respectivas investigaciones que esto se debe a que
entre las condiciones que pueden afectar el desempeño de G. roseum (=C. rosea) como
biocontrolador está: La temperatura y el tiempo de siembra del antagonista que delimitó
el crecimiento de este biocontrolador, que en condiciones ambientales favorables, para
los autores mencionados el antagonista incrementa su actividad supresiva según se
incrementa la temperatura de 10° C a 25 °C y a partir de los 15 °C la germinación de los
conidios del biocontrolador es mayor al 80%, incrementándose también con el aumento
de temperatura. Worsatit54 en cambio, relacionó la no efectividad de este antagonista,
con la cantidad de metabolitos producidos por C. rosea en una prueba de antagonismo,
donde depende de los nutrimentos y no siempre está relacionada con la habilidad para
controlar alguna enfermedad. Tal y como se pueden observar gráficamente en las
figuras: 1, 2 y 3 en PDA & 10, 11 y 12 en DSA.
A demás en las tablas N° 4, 5 y 6 & 13, 14 y 15, de la prueba de antagonismo realizada
a 10°C, 20°C y 30°C en los medios de cultivo Agar Papa Dextrosa (PDA) y Agar
Sabouraud Dextrosa (DSA) respectivamente, nos muestra la clara competencia por
nutrientes de F. oxysporum frente a C. gloesporioides, donde el crecimiento de este
hongo usado como antagonista, se limita ya que, según Fletcher56 & Nelson57, no
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60
revelaron la patogenicidad exacta de Fusarium oxysporum fuera de un género
hospedante, el hongo presenta características importantes sobre muchas plantas no
hospedantes, al igual que la sobrevivencia saprofítica en el suelo y tener una
temperatura óptima de desarrollo entre 25 y 30ºC, pero concluyeron que ejerce solo
cierta competencia por nutrientes en vez de un antagonismo en condiciones in vitro.
Debe tenerse en cuenta; sin embargo, que son estudios llevados a cabo en condiciones
in vitro, las cuales pueden diferir marcadamente de las condiciones de campo. Lo antes
mencionado se puede observar gráficamente en las figuras N° 4, 5 y 6 en PDA & 13, 14
y 15 en DSA.
Mientras que en las tablas N° 7, 8 y 9 & 16, 17 y 18, de la prueba de antagonismo
realizada a 10°C, 20°C y 30°C en los medios de cultivo Agar Papa Dextrosa (PDA) y
Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) respectivamente, nos muestra el claro antagonismo
demostrado por T. harzianum sobre C. gloesporioides, en las tablas 7 y 8, pero de
manera más clara en la tabla 9, donde, Fernandez58 por ejemplo, sostiene que el género
Trichoderma es un agente de control biológico muy eficiente puesto que presenta alta
velocidad de crecimiento, abundante esporulación y una amplia gama de sustratos
donde pueden crecer debido a la riqueza de enzimas que posee; además, menciona
que la habilidad de Trichoderma como excelente competir por espacio y recursos
nutricionales se debe a la presencia en forma natural de este hongo en diferentes tipos
de suelos que evidencia el amplio rango de hospedante de este antagonista. Al
respecto, Mont 42, refiere que T. harzianum tiene una alta capacidad de competencia por
el sustrato; como consecuencia de ello, el organismo afectado tiende a entrar en un
estado de latencia, que podría ser por deficiencia de nutrientes o la presencia de cierto
nivel de sustancias inhibitorias, lo cual impide que siga creciendo; coincidiendo, con una
parte de los resultados obtenidos en la presente investigación. Asimismo, Ezziyyani59
refiere que T. harzianum presenta una gran adaptabilidad a diferentes temperaturas del
medio ambiente, pudiendo crecer y reproducirse normalmente hasta los 35°C, a este
nivel estas enzimas juegan un importante papel en el micoparasitismo. Al respecto,
Harman60complementó lo anterior y especificó que la temperatura y humedad son
considerados como parámetros de importancia en la distribución natural de este
antagonista en el suelo; por la alta presencia de saprófitos que compiten por espacio y
alimento, considerando a Trichoderma como un competidor agresivo; Papavizas61. Tal
y como las podemos observar gráficamente en las figuras N° 7, 8 y 9 en PDA.
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Asimismo, las tablas N° 19,20 y 21 & 22,23 y 24, nos evidencia la resistencia de C.
gloesporioides frente a C. rosea, Fusarium oxysporum y Trichoderma harzianum sólo
en el medio Agar Sabouraud Dextrosa, que nos indicó la resistencia de este fitopatógeno
ya que probablemente contribuyó a la expresión de resistencia, debido a que existen
muchas posibilidades de que surjan alteraciones en algunos procesos metabólicos que
son gobernados por un número reducido de genes como la cuantificación del
crecimiento micelial, germinación de esporas en medio de cultivo adicionado con
fungicidas, y pruebas in vivo de la efectividad biológica de dichos productos, como lo
demostró en sus investigaciones Delp65 & Dekker66. Las características antes
mencionadas las podemos observar gráficamente en las figuras N° 22, 23 y 24
respectivamente.
Asimismo, la figura N° 19 y 20, nos muestra el porcentaje de inhibición obtenido por
Colletotrichum gloesporioides que obtuvo frente a C. rosea, F. oxysporum y T.
harzianum en un medio de cultivo PDA presentaron un porcentaje de inhibición de
11.04%, 26.38% y 46.01% respectivamente, mientras que a los 20°C presentaron un
porcentaje de inhibición de 17.91%, 24.25% y 38.43% y a los 30°C de evaluación
presentaron un porcentaje de inhibición de 34.88%, 36.05% y 65.12% respectivamente.,
mientras que medio en el medio de cultivo DSA presentaron un porcentaje de inhibición
de 14.19%, 14.55% y 1.81% respectivamente, mientras que a los 20°C presentaron un
porcentaje de inhibición de 24.56%, 14.47% y 17.11% y a los 30°C de evaluación
presentaron un porcentaje de inhibición de 27.35%, 17.04% y 17.93% respectivamente;
donde estos datos obtenidos se pueden vincular a la siembra del fitopatógeno realizada
con 24 horas de anticipación frente a su antagonista en condiciones in vitro, donde a
medida que desarrollaba la colonia del patógeno en relación a sus antagonistas mayor
era el porcentaje de inhibición frente a estos antagonistas.
El estudio de Colletotrichum gloesporioides es muy limitado en nuestra región y poco
conocido sobre todo en el Perú. Hasta el momento los resultados indican la gran
capacidad de resistencia de este fitopatógeno causante de la antracnosis en distintos
alimentos cosechados en nuestro país frente a algunos antagonistas, por lo cual este
trabajo es un modelo a seguir para seguir investigando en busca de biocontroladores
para los distintos tipos de hongos fitopatógenos que causan daño económico en la
agricultura peruana.
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CONCLUSIONES
El mejor controlador biológico de C. gloesporioides fue T. harziaum en el medio de
cultivo Agar Papa Dextrosa (PDA) y Agar Sabouraud Dextrosa (DSA) con un grado
2 según la escala de Bell en las temperturas de 10°C, 20°C y 30°C.
La acción antagónica de C. rosea y F. oxysporum frente a C. gloesporioides alcanzó
un grado 3 en la escala de Bell en los medios de cultivo PDA y DSA en las
temperaturas de 10°C, 20°C y 30°C.
El mayor porcentaje de inhibición del crecimiento de C. gloesporioides también fue
para T. harzianum con un 65.12% en medio de cultivo PDA respecto a 34.88% para
C. rosea y 36.05% para F. oxysporum para la temperatura de 30°C.
El mayor porcentaje de inhibición del crecimiento de C. gloesporioides en medio de
cultivo DSA fue para C. rosea con 27.35% respecto a los 17.04% de F. oxysporum
y 17.93% de T. harzianum.
La temperatura no influye en la determinación del control antagónico (escala de
Bell) pero frente al porcentaje de inhibición si existe una influencia de la
temperatura, donde se determinó que a mayor temperatura existe mayor porcentaje
de inhibición.
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ANEXOS
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Figura 8: Aislamiento de C. rosea, siguiendo el procedimiento de SENASA
3. Obtención del cultivo
puro de C. rosea
4. Observación de C. rosea
mediante microcultivos.
1. Frasco conteniendo
cepas de C. rosea. 2. Siembra de C. rosea
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Figura 9: Aislamiento de T. harzianum, siguiendo el procedimiento de SENASA
1. Cepas de T. harzianum
enviados por SENASA
3. Obtención de cultivo
puro de T. harzianum
4. Observación de T.
harzianum mediante
microcultivos.
2. Siembra de T.
harzianum
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Figura 10: Aislamiento, obtención y observación microscópica del cultivo puro de F. oxysporum.
2. Fruto con síntomas de
ataque F. oxysporum
1. Siembra de F.
oxysporum
3. Cultivo puro de F.
oxysporum
4. Observación
microscópica de F.
oxysporum
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Figura 11: Aislamiento, obtención y observación microscópica del cultivo puro de C. gloesporioides.
1. Cáscara de palto
infectada por el ataque
de C. gloesporioides
2. Siembra de C.
gloesporioides
3. Obtención de cultivo
puro de C. gloesporioides 4. Observación
microscópica de C.
gloesporioides
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Figura 12: Procedimiento de dispersión y temperaturas sometidas de las Placas Petri en estudio.
DISPERSIÓN DE PLACAS DE AGAR
SABOURAUD & AGAR PAPA. CRECIMIENTO DE HONGOS EN
PLACAS PETRI SOMETIDAS A 10° C.
CRECIMIENTO DE HONGOS EN
PLACAS PETRI SOMETIDAS A 20° C
(AMBIENTE).
CRECIMIENTO DE HONGOS EN
PLACAS PETRI SOMETIDAS A
30° C.
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Figura 13: Identificación de las muestras microscópica de los hongos antagonistas como fitopatógenos.
.
MATERIALES USADOS EN LA
OBSERVACIÓN MICROSCOPICA
COLORANTE VERDE DE METILO
USADO PARA LA FIJACIÓN DE LA
MUESTRA
MUESTRAS FIJADAS Y PREPARADAS
EN FRESCO PARA SU OBSERVACIÓN.
OBSERVACIÓN A TRAVES DEL
MICROSCOPIO DE LAS MUESTRAS
EN FRESCO PREPARADAS.
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Tabla 1: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 10°C de temperatura, en Agar Papa
dextrosa de medio de cultivo y 3 días de evaluación.
Tabla 2: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 10°C de temperatura, en Agar Papa
dextrosa de medio de cultivo y 6 días de evaluación.
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 1.2 1.3 1.0 1.0 0.8 0.9 0.6 0.8 0.9 0.9 0.9 1.0 0.5 0.4 0.9 0.8 0.7 0.8 0.6 1.0 1.0 1.0
2 1.2 1.5 1.2 1.2 0.9 1.0 1.0 0.9 1.0 1.0 1.0 1.0 0.9 1.2 1.0 0.9 0.9 0.8 1.1 0.8 1.2 1.2
3 1.3 1.8 1.7 1.4 0.9 1.1 0.7 1.2 1.1 1.1 1.0 1.0 0.7 2.2 1.1 1.0 1.1 0.9 0.6 1.0 1.4 1.4
PROM. 1.2 1.5 1.3 1.2 0.9 0.9 0.7 1.1 1.1 1.0
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 1.5 2.1 1.9 1.7 1.0 1.3 0.7 1.2 1.2 1.2 1.1 1.2 0.7 2.2 1.2 1.1 1.2 1.1 0.6 1.0 1.5 1.6
2 1.6 2.8 2.2 2.0 1.1 1.3 0.7 1.2 1.2 1.3 1.1 1.3 0.9 2.3 1.3 1.2 1.3 1.2 0.6 1.1 1.6 1.7
3 1.7 2.9 2.6 2.4 1.2 1.5 0.7 1.3 1.2 1.4 1.1 1.3 1.1 2.5 1.4 1.3 1.4 1.2 0.6 1.1 1.6 1.9
PROM. 1.6 2.6 2.2 2.0 1.2 1.3 0.7 1.5 1.4 1.4
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Tabla 3: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 10°C de temperatura, en Agar Papa
dextrosa de medio de cultivo y 9 días de evaluación.
Tabla 4: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 10°C de temperatura, en Agar Papa
dextrosa de medio de cultivo y 12 días de evaluación.
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 1.7 3.1 2.9 2.6 1.2 1.6 0.7 1.4 1.2 1.5 1.1 1.3 1.2 2.6 1.5 1.4 1.5 1.2 0.6 1.1 1.8 2.0
2 1.8 3.3 3.2 2.9 1.3 1.6 0.8 1.5 1.2 1.6 1.1 1.3 1.3 2.9 1.6 1.5 1.6 1.3 0.7 1.2 1.8 2.1
3 1.8 3.5 3.5 3.1 1.3 1.7 0.8 1.6 1.3 1.7 1.1 1.4 1.4 3.1 1.6 1.7 1.7 1.3 0.8 1.4 1.9 2.3
PROM. 1.8 3.3 3.2 2.9 1.3 1.4 0.9 1.9 1.5 1.8
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 1.8 3.9 3.7 3.4 1.4 1.7 0.9 1.7 1.4 1.8 1.2 1.4 1.5 3.3 1.7 1.9 1.7 1.3 0.8 1.5 2.1 2.5
2 1.9 4.1 3.9 3.6 1.4 1.7 1.0 1.9 1.5 1.9 1.2 1.4 1.6 3.7 1.8 2.1 1.8 1.4 0.9 1.6 2.2 2.7
3 1.9 4.3 4.1 3.9 1.5 1.8 1.1 2.0 1.6 2.0 1.2 1.4 1.7 4.0 1.8 2.3 1.0 1.5 1.0 1.9 2.5 2.9
PROM. 1.9 4.1 3.9 3.6 1.4 1.5 1.2 2.4 1.8 2.2
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Tabla 5: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 20°C de temperatura, en Agar Papa
dextrosa de medio de cultivo y 3 días de evaluación.
Tabla 6: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 20°C de temperatura, en Agar Papa
dextrosa de medio de cultivo y 6 días de evaluación.
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 1.1 1.3 1.2 1.1 1.0 1.0 0.9 1.0 0.8 0.9 0.9 1.1 0.7 1.5 1.0 0.8 0.7 1.3 0.6 1.4 0.9 0.7
2 1.4 2.1 1.6 1.8 1.2 1.2 1.0 1.3 1.0 1.0 1.0 1.3 0.7 1.5 1.2 0.9 0.9 1.9 0.6 1.5 1.1 0.8
3 1.8 2.7 1.8 2.4 1.5 1.3 1.3 1.7 1.1 0.9 1.1 1.6 0.8 1.5 1.4 1.1 0.9 2.3 0.6 1.5 1.2 1.0
PROM. 1.4 2.0 1.5 1.8 1.0 1.4 0.8 1.4 1.1 0.9
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 1.9 3.1 3.4 2.7 1.8 1.6 1.4 1.8 1.4 1.1 1.3 1.8 0.8 1.5 1.6 1.3 1.0 2.8 0.9 1.5 1.3 1.2
2 2.2 4.7 3.4 3.2 2.1 1.7 1.5 1.9 1.7 1.3 1.5 2.1 1.0 1.5 1.9 1.7 1.1 3.9 0.9 1.7 1.5 1.4
3 2.5 5.2 3.5 4.3 2.3 1.9 1.6 1.9 1.9 1.5 1.7 2.7 1.1 1.6 2.1 1.9 1.3 4.5 0.9 1.8 1.7 1.6
PROM. 2.2 4.3 3.4 3.4 1.6 2.6 1.1 1.7 1.7 1.4
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Tabla 7: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 20°C de temperatura, en Agar Papa
dextrosa de medio de cultivo y 9 días de evaluación.
Tabla 8: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 20°C de temperatura, en Agar Papa
dextrosa de medio de cultivo y 12 días de evaluación.
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 2.7 5.4 3.9 4.5 2.6 2.2 1.9 2.3 2.2 1.8 1.9 3.0 1.4 1.9 2.5 2.4 1.5 4.9 1.3 2.1 2.0 1.9
2 2.9 5.7 4.2 4.7 2.9 2.5 2.3 2.6 2.4 2.0 2.1 3.6 1.7 2.2 2.9 2.8 1.8 5.1 1.6 2.5 2.3 2.1
3 3.1 5.9 4.5 4.9 3.1 2.7 2.8 3.0 2.9 2.4 2.5 3.9 2.0 2.5 3.4 3.3 1.9 5.3 1.9 2.9 2.6 2.5
PROM. 2.9 5.7 4.2 4.7 2.3 3.7 1.9 2.4 2.6 2.4
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 3.6 6.3 4.8 5.2 3.5 2.9 3.3 3.4 3.1 2.7 2.8 4.3 2.2 2.7 3.7 3.6 2.3 5.7 2.1 3.1 2.9 2.8
2 4.1 6.5 5.1 5.5 3.9 3.2 3.6 3.7 3.2 3.0 3.0 4.7 2.2 2.9 3.9 3.8 2.6 6.0 2.3 3.3 3.0 3.1
3 4.9 6.9 5.4 5.9 4.2 3.9 4.1 4.0 3.4 3.3 3.5 5.3 2.7 3.1 4.3 4.1 3.0 6.3 2.5 3.5 3.2 3.7
PROM. 4.2 6.6 5.1 5.5 3.2 4.7 2.8 3.3 3.4 3.3
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Tabla 9: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 30°C de temperatura, en Agar Papa
dextrosa de medio de cultivo y 3 días de evaluación.
Tabla 10: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 30°C de temperatura, en Agar Papa
dextrosa de medio de cultivo y 6 días de evaluación.
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 1.1 1.4 1.3 1.2 0.7 0.8 0.6 1.1 0.9 1.0 0.5 1.1 0.7 1.2 0.8 0.9 0.9 1.0 0.5 1.1 1.0 1.1
2 1.2 2.2 3.1 1.4 0.9 1.0 0.7 2.1 1.0 1.1 0.6 1.3 0.7 2.3 0.9 1.0 1.0 1.1 0.6 2.7 1.1 1.2
3 1.3 2.9 3.9 1.7 1.1 1.2 0.7 2.7 1.1 1.2 0.8 1.4 0.7 3.6 1.0 1.1 1.2 1.3 0.7 3.1 1.2 1.3
PROM. 1.2 2.2 2.8 1.4 0.9 1.1 0.7 2.2 1.0 1.1
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 1.5 3.6 4.4 2.0 1.2 1.4 0.7 4.6 1.2 1.3 0.9 1.6 0.7 3.8 1.1 1.2 1.3 1.5 0.5 3.6 1.3 1.4
2 1.8 4.1 5.3 2.3 1.3 1.6 0.7 5.6 1.3 1.4 1.1 1.8 0.7 4.0 1.2 1.3 1.4 1.7 0.6 3.8 1.4 1.5
3 2.3 5.0 5.9 2.5 1.4 1.7 0.7 5.9 1.4 1.5 1.2 1.9 0.7 4.4 1.3 1.4 1.5 1.8 0.6 3.9 1.5 1.6
PROM. 1.9 4.2 5.2 2.3 1.3 1.7 0.7 4.4 1.3 1.4
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Tabla 11: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 30°C de temperatura, en Agar Papa
dextrosa de medio de cultivo y 9 días de evaluación.
Tabla 12: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 30°C de temperatura, en Agar Papa
dextrosa de medio de cultivo y 12 días de evaluación.
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 2.6 5.4 6.1 2.9 1.6 1.9 0.8 6.1 1.6 1.8 1.4 2.1 0.8 4.7 1.4 1.5 1.8 2.0 0.7 4.1 1.7 1.9
2 2.9 5.9 6.8 3.4 1.8 2.2 0.9 6.4 1.8 2.0 1.6 2.3 0.9 4.9 1.6 1.8 2.0 2.1 0.8 4.3 1.9 2.1
3 3.4 6.3 7.3 3.8 1.9 2.5 1.0 6.7 1.9 2.2 1.7 2.7 1.0 5.1 1.7 1.9 2.2 2.2 0.9 4.7 2.1 2.3
PROM. 3.0 5.9 6.7 3.4 1.8 2.2 0.9 5.2 1.7 1.9
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 3.7 6.9 7.5 4.3 2.1 2.7 1.2 7.1 2.1 2.5 1.9 3.1 1.2 5.6 1.9 2.1 2.7 2.8 1.0 5.1 2.6 2.9
2 4.2 7.3 9.3 4.6 2.5 3.1 1.3 7.8 2.7 2.9 2.3 3.8 1.3 6.3 2.0 2.4 3.1 2.8 1.1 5.4 3.2 3.3
3 4.8 7.8 9.5 5.0 2.7 3.6 1.5 8.2 3.4 3.5 2.5 4.9 1.5 7.0 2.3 2.6 4.0 4.3 1.2 5.7 3.9 4.0
PROM. 4.2 7.3 8.8 4.6 2.6 3.5 1.3 6.5 2.7 2.9
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Tabla 13: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 10°C de temperatura, en Agar
Sabouraud Dextrosa de medio de cultivo y 3 días de evaluación.
Tabla 14: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 10°C de temperatura, en Agar
Sabouraud Dextrosa de medio de cultivo y 6 días de evaluación.
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 1.1 0.9 1.0 1.2 1.1 1.4 0.9 0.8 0.7 1.1 0.8 1.4 0.9 0.9 1.0 0.9 0.7 1.1 1.2 1.1 0.9 0.9
2 1.1 0.9 1.1 1.2 1.0 1.4 1.0 1.0 0.9 1.0 0.8 1.4 0.9 1.0 1.1 0.9 0.7 1.0 1.1 1.2 0.9 0.9
3 1.1 1.0 1.5 1.3 1.0 1.4 1.0 1.3 1.1 1.0 0.8 1.4 0.9 1.2 1.1 0.9 0.8 1.0 1.2 1.5 0.9 0.9
PROM. 1.1 0.9 1.2 1.2 0.9 1.3 1.0 1.1 1.0 0.9
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 1.1 1.0 1.7 1.3 1.1 1.4 1.0 1.5 1.1 1.0 0.9 1.4 0.9 1.4 1.1 0.9 0.9 1.0 1.2 1.6 0.9 0.9
2 1.2 1.3 1.9 1.3 1.3 1.6 1.1 1.6 1.2 1.0 1.1 1.4 1.2 1.5 1.2 0.9 1.1 1.3 1.3 1.7 0.9 1.0
3 1.3 1.5 2.0 1.3 1.4 1.8 1.3 1.8 1.2 1.1 1.2 1.5 1.5 1.7 1.3 0.9 1.3 1.6 1.4 1.9 0.9 1.0
PROM. 1.2 1.3 1.9 1.3 1.2 1.6 1.2 1.6 1.2 1.0
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Tabla 15: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 10°C de temperatura, en Agar
Sabouraud Dextrosa de medio de cultivo y 9 días de evaluación.
Tabla 16: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 10°C de temperatura, en Agar
Sabouraud Dextrosa de medio de cultivo y 12 días de evaluación.
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 1.4 1.7 2.1 1.3 1.4 1.9 1.4 1.9 1.2 1.1 1.2 1.5 1.5 1.8 1.3 0.9 1.2 1.6 1.4 2.0 0.9 1.0
2 1.5 1.9 2.6 1.3 1.5 2.0 1.5 2.0 1.3 1.2 1.2 1.6 1.6 1.9 1.3 0.9 1.2 1.7 1.5 2.3 0.9 1.1
3 1.5 2.0 2.9 1.4 1.5 2.1 1.6 2.1 1.3 1.2 1.2 1.6 1.6 2.0 1.4 1.0 1.2 1.8 1.5 2.5 0.9 1.1
PROM. 1.5 1.9 2.5 1.3 1.3 1.8 1.5 2.1 1.2 1.1
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 1.6 2.3 3.1 1.4 1.5 2.2 1.6 2.2 1.4 1.3 1.3 1.7 1.7 2.1 1.4 1.0 1.3 1.9 1.6 2.7 1.0 1.1
2 1.7 2.4 3.3 1.4 1.5 2.3 1.6 2.3 1.1 1.3 1.3 1.8 1.7 2.2 1.4 1.0 1.3 1.9 1.7 2.8 1.0 1.1
3 1.7 2.6 3.5 1.5 1.5 2.4 1.6 2.4 1.6 1.4 1.3 1.8 1.7 2.3 1.5 1.1 1.3 2.0 1.7 2.9 1.0 1.1
PROM. 1.7 2.4 3.3 1.4 1.4 2.0 1.7 2.4 1.3 1.2
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Tabla 17: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 20°C de temperatura, en Agar
Sabouraud Dextrosa de medio de cultivo y 3 días de evaluación.
Tabla 18: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 20°C de temperatura, en Agar
Sabouraud Dextrosa de medio de cultivo y 6 días de evaluación.
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 1.4 1.3 1.5 1.0 1.2 0.9 1.2 1.4 1.3 0.8 1.3 1.1 1.4 1.5 1.3 1.2 1.4 1.5 1.6 1.6 1.4 1.3
2 2.4 1.8 2.6 2.2 2.1 1.3 2.2 2.4 2.5 1.0 2.2 1.2 2.4 2.5 2.1 2.4 2.3 2.1 2.8 2.7 2.6 1.7
3 3.1 2.9 3.0 2.5 2.4 1.9 2.6 2.8 2.8 1.2 2.6 2.2 2.8 2.7 2.4 2.6 2.7 3.1 3.3 3.3 3.2 2.3
PROM. 2.3 2.0 2.4 1.9 2.0 1.7 2.3 2.3 2.2 1.6
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 4.2 3.5 3.2 2.9 3.3 2.4 2.8 3.0 3.1 2.3 3.5 3.3 3.1 3.1 2.9 2.7 4.1 4.2 3.9 3.6 3.4 3.3
2 5.3 4.3 3.8 3.3 3.7 2.9 3.2 3.6 3.5 2.5 4.3 3.4 3.7 3.8 3.2 2.9 4.4 4.5 4.5 4.0 3.9 3.6
3 6.1 5.2 4.6 4.1 4.2 3.1 3.9 4.2 3.9 2.8 5.1 3.5 4.2 4.3 4.1 3.2 5.5 4.8 5.3 4.9 4.6 4.0
PROM. 5.2 4.3 3.9 3.4 4.2 3.6 3.8 3.8 3.6 3.0
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Tabla 19: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 20°C de temperatura, en Agar
Sabouraud Dextrosa de medio de cultivo y 9 días de evaluación.
Tabla 20: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 20°C de temperatura, en Agar
Sabouraud Dextrosa de medio de cultivo y 12 días de evaluación.
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 6.3 5.6 5.0 4.3 4.4 3.9 4.1 4.3 3.1 5.6 4.6 5.0 5.1 4.6 3.6 6.1 5.3 6.1 5.2 5.1 4.3
2 7.0 5.9 5.5 4.6 4.8 4.1 4.4 4.9 4.9 3.4 6.0 4.8 5.3 5.6 5.0 3.9 6.8 5.7 7.3 5.9 5.4 4.6
3 7.5 6.3 6.0 4.9 5.2 4.4 4.9 5.5 5.1 3.9 6.4 5.1 5.9 6.3 5.2 4.3 7.6 6.2 7.7 6.5 5.8 4.9
PROM. 6.9 5.9 5.5 4.6 5.9 4.9 5.6 5.5 5.0 4.0
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 7.9 6.8 6.4 5.2 5.8 4.9 5.2 6.0 5.4 4.3 6.9 5.7 6.3 6.7 5.7 4.8 8.0 6.5 7.9 6.9 6.4 5.1
2 8.4 7.2 7.0 5.4 6.4 5.3 6.1 6.5 5.9 4.7 7.3 6.1 7.0 7.3 6.5 5.1 8.5 7.0 8.2 7.5 7.1 5.4
3 9.0 8.3 7.8 5.7 6.9 5.6 7.0 7.3 6.3 5.0 7.8 6.3 8.2 8.2 5.9 5.3 9.1 7.9 9.1 8.0 7.8 5.8
PROM. 8.4 7.4 7.1 5.4 7.4 6.1 7.2 7.2 6.3 5.1
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Tabla 21: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 30°C de temperatura, en Agar
Sabouraud Dextrosa de medio de cultivo y 3 días de evaluación.
Tabla 22: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 30°C de temperatura, en Agar
Sabouraud Dextrosa de medio de cultivo y 6 días de evaluación.
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 1.6 1.3 1.5 1.4 1.3 0.9 1.4 1.5 1.3 1.0 1.4 1.2 1.5 1.4 1.5 1.2 1.6 1.1 1.8 1.8 1.1 1.9
2 2.7 2.2 2.5 1.9 2.3 1.0 2.4 2.3 2.3 1.6 2.5 1.4 2.6 2.2 2.5 1.9 2.7 1.3 2.8 2.5 2.1 2.2
3 3.4 3.2 3.2 2.7 2.9 1.0 2.4 2.7 2.7 2.2 3.1 1.5 2.8 2.6 3.0 2.4 3.4 3.1 3.5 3.2 2.5 2.8
PROM. 2.6 2.2 2.4 2.0 2.4 1.4 2.4 2.2 2.1 1.9
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 4.2 4.5 3.9 3.3 3.9 3.1 2.9 3.2 3.0 2.4 3.4 3.3 3.2 3.0 3.2 2.8 3.6 3.3 4.1 3.9 2.9 3.1
2 5.5 4.8 4.7 3.9 4.3 3.1 3.4 3.6 3.3 2.5 3.8 3.3 3.9 3.5 3.9 2.9 4.0 3.4 4.8 4.4 3.1 3.7
3 6.1 5.1 5.6 4.4 5.1 3.1 3.8 4.0 4.1 2.8 4.3 3.5 4.3 3.9 4.7 2.9 4.7 3.6 5.5 4.6 3.8 4.1
PROM. 5.3 4.8 4.7 3.9 4.1 3.3 4.0 3.8 3.6 3
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Tabla 23: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 30°C de temperatura, en Agar
Sabouraud Dextrosa de medio de cultivo y 9 días de evaluación.
Tabla 24: Crecimiento del diámetro de la colonia de los monocultivos y cultivos duales de C.
gloesporioides, F. oxysporum, T. harzianum y C. rosea, a 30°C de temperatura, en Agar
Sabouraud Dextrosa de medio de cultivo y 12 días de evaluación.
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 6.5 5.4 5.5 4.9 5.5 3.3 4.1 4.3 4.6 3.1 4.6 3.8 4.8 4.1 4.9 3.3 5.0 4.1 6.1 5.0 4.1 4.5
2 6.7 5.9 5.9 5.4 5.9 3.7 4.5 4.9 4.7 3.4 4.8 4.2 5.2 4.5 5.1 3.7 5.4 4.7 6.5 5.3 4.5 4.8
3 6.9 6.1 6.3 5.8 6.3 4.0 4.9 5.4 4.8 3.7 5.1 4.6 5.7 4.9 5.3 4.0 6.0 5.1 6.9 5.6 4.9 5.1
PROM. 6.7 5.8 5.9 5.4 5.4 4.2 5.4 4.9 4.8 4.0
MONOCULTIVO CULTIVO DUAL
TRAT. T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7
REP. C. gloes F. oxys T. harzi C. rosea C. gloes F. oxys C. gloes T. harzi C. gloes C. rosea
1 7.0 6.3 6.6 6.1 6.6 4.2 5.3 5.8 5.1 4.0 5.6 5.0 6.0 5.4 5.7 4.3 6.3 5.6 7.2 5.7 5.2 5.4
2 7.7 6.4 7.2 6.3 7.1 4.6 5.6 6.2 5.4 4.3 5.9 5.4 6.4 5.7 6.1 4.6 6.7 6.1 7.5 5.9 5.6 5.7
3 8.4 6.5 7.9 6.4 7.6 4.9 6.0 6.6 5.9 4.6 6.4 5.8 6.8 6.3 6.6 4.9 7.0 6.6 7.8 6.5 6.1 6.0
PROM. 7.7 6.4 7.2 6.3 6.6 5.4 6.5 6.0 5.7 4.9
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