BM-3.Empaquetament Del DNA

18
Tema 6: Empaquetament del DNA 1. Empaquetament del genoma en virus i procariotes Com ja sabem els virus estan formats per càpsides que englovan el material genètic. Aquesta capside te un espai reduït i per tant el genoma a part de ser reduït de per si també haurà de presentar mecanismes per empaquetarse 1.1 Virus del mosaic del tabac Càpsida: Presenta una simetria helicoïdal i esta formada per una proteïna que es troba repetida n vegades. Aquesta proteïna presenta una forma triangular i te la capacitat d’associarse amb el RNA, per tant la càpsida es formarà al voltant del material genètic i permetrà que aquest s’empaqueti Segons les condicions del medi de pH i força iònica la proteïna pot estar sola, formant petits agregats, discs plans o helicoides o directament una hèlix. La hèlix es formar aper la unió de diversos helicoides i posteriorment s ‘ompliran els forats que quedin. Plegament del DNA: Si observem amb una fotogrfia podem veure que mentre es forma la càpsida els dos extrems del RNA es comporta de manera diferent. Ja que en un inici es veu una càpsida molt petita amb poc RNA associat i el extrem 3’ serà mes llarg que el 5’. Mentre es va formant la càpsida el extrem 3’ s’anirà escurçant mentre que el curt es mantindrà amb la mateixa longitud. Aquest fet es degut a que el extrem 3’ s’anirà enrotllant gracies a la càpsida. Finalment el extrem 5’ també entrarà. 1.2 Bacteriofag Càpsida: Presenten un simetria complexa. En aquest cas primer es formarà la càpsida icosaèdrica, permetrà l’entrada del DNA i per tant el seu empaquetament, i posteriorment s’unirà amb la part helicoïdal. Plegament del DNA: En aquest cas com ja hem dit tindrem la capside icosaèdrica formada. Aquesta presenta un complex proteic especial que es capaç d’internalitzar la molècula de DNA mitjançant canvis de conformació provocats per la hidròlisi de l’ATP que permeten que tot el complex vagi girant i que per tant baixi entrant el DNA. Es a dir funciona com un tornillo (DNA) i una femella (complex proteic) S’han realitzats estudis de nanotecnologies que hem permès estudiar aquest mecanisme d’empaquetament. El experiment utilitzava pinses òptiques en les quals un extrem de la pinsà presentava unit la càpsida icosaèdrica i l’altre una molècula de DNA mitjançant biotinaestreptovidina. D’aquesta manera s’ha pogut mesurar la força de tracció que fa el complex proteic sobre el DNA i també la cinètica de l’entrada del DNA

description

Tema 3Professor: Ramon DabanAssignatura: Biologia Molecular

Transcript of BM-3.Empaquetament Del DNA

Page 1: BM-3.Empaquetament Del DNA

Tema  6:  Empaquetament  del  DNA  

1.  Empaquetament  del  genoma  en  virus  i  procariotes    

Com  ja  sabem  els  virus  estan   formats  per  càpsides  que  englovan  el  material  genètic.  Aquesta  capside  te  un  espai  reduït  i  per  tant  el  genoma  a  part  de  ser  reduït  de  per  si  també  haurà  de  presentar  mecanismes  per  empaquetar-­‐se  

1.1  Virus  del  mosaic  del  tabac  Càpsida:  Presenta  una  simetria  helicoïdal  i  esta  formada  per  una  proteïna  que  es  troba  repetida  n  vegades.  Aquesta  proteïna  presenta  una   forma   triangular   i   te   la   capacitat  d’associar-­‐se  amb  el  RNA,  per  tant  la  càpsida  es  formarà  al  voltant  del  material  genètic  i  permetrà  que  aquest  s’empaqueti  Segons  les  condicions  del  medi  de  pH  i  força  iònica  la  proteïna  pot  estar  sola,  formant  petits   agregats,   discs   plans   o   helicoides   o   directament   una   hèlix.   La   hèlix   es   formar  aper  la  unió  de  diversos  helicoides  i  posteriorment  s  ‘ompliran  els  forats  que  quedin.    Plegament   del   DNA:   Si   observem   amb   una   fotogrfia   podem   veure   que   mentre   es  forma  la  càpsida  els  dos  extrems  del  RNA  es  comporta  de  manera  diferent.  Ja  que  en  un  inici  es  veu  una  càpsida  molt  petita  amb  poc  RNA  associat  i  el  extrem  3’  serà  mes  llarg  que  el  5’.  Mentre  es  va  formant  la  càpsida  el  extrem  3’  s’anirà  escurçant  mentre  que  el  curt  es  mantindrà  amb  la  mateixa  longitud.  Aquest  fet  es  degut  a  que  el  extrem  3’  s’anirà  enrotllant  gracies  a  la  càpsida.  Finalment  el  extrem  5’  també  entrarà.    

   

1.2  Bacteriofag  Càpsida:  Presenten  un  simetria  complexa.  En  aquest  cas  primer  es  formarà  la  càpsida  icosaèdrica,   permetrà   l’entrada   del   DNA   i   per   tant   el   seu   empaquetament,   i  posteriorment  s’unirà  amb  la  part  helicoïdal.    Plegament   del   DNA:   En   aquest   cas   com   ja   hem   dit   tindrem   la   capside   icosaèdrica  formada.  Aquesta  presenta  un  complex  proteic  especial  que  es  capaç  d’internalitzar  la  molècula  de  DNA  mitjançant  canvis  de  conformació  provocats  per  la  hidròlisi  de  l’ATP  que  permeten  que  tot  el  complex  vagi  girant  i  que  per  tant  baixi  entrant  el  DNA.  Es  a  dir  funciona  com  un  tornillo  (DNA)  i  una  femella  (complex  proteic)  S’han   realitzats   estudis   de   nanotecnologies   que   hem   permès   estudiar   aquest  mecanisme  d’empaquetament.  El  experiment  utilitzava  pinses  òptiques  en  les  quals  un  extrem  de  la  pinsà  presentava  unit  la  càpsida  icosaèdrica  i  l’altre  una  molècula  de  DNA  mitjançant   biotina-­‐estreptovidina.   D’aquesta  manera   s’ha   pogut  mesurar   la   força   de  tracció  que  fa  el  complex  proteic  sobre  el  DNA  i  també  la  cinètica  de  l’entrada  del  DNA  

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.4

-------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.4

-------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.5

-------------------------------------------------------------------------------------------------

Page 2: BM-3.Empaquetament Del DNA

sent   que   aquesta   va   disminuït   com   més   DNA   ja   es   troba   en   el   interior   fins   que   la  velocitat  es  0.      

       

 

2.  Empaquetament  del  DNA  en  procariotes  Les   cèl·∙lules   eucariotes   no   presenten   nucli   però   també   han   de   tenir   el   seu   DNA  empaquetat  ja  que  sinó  no  hi  cabria  en  el  interior  de  la  cèl·∙lula.    Empaquetament:  El  empaquetament  te  lloc  en  el  nucleoide  i  en  dos  nivells:  

• Proteines:  S’anomenen  histone-­‐like  que   tenen   la  propietat  d’unir-­‐se  al  DNA   i  provoca  que  aquest  s’enrotlli  al  seu  voltat.    

• Llaçades:  Worcel  a  més  a  més  va  proposar  que  DNA  de  les  procariotes  estava  formant  una  mena  de  llaçades.  Aquesta  conclusió  la  va  extrapolar  quan  va  fer  estudis   de   sedimentació   del   DNA   de   E.coli   i   va   veure   que   presentava   un  coeficient  de  sedimentació  molt  gran   (1500).  Aquest  coeficient  era  molt  mes  gran  del  que  s’esperava  i  l’única  raó  de  ser  era  perquè  el  DNA  tenia  que  estar  empaquetat.   A   continuació   va   tractar   el   DNA   amb   DNAasa   1   que   provoca  nikacio  del  DNA   i  va  veure  que  el  coeficient  de  sedimentació  disminuïa,  però  en  canvi  quan  el  tractava  amb  el  BrEt  que  s’intercalava  amb  el  DNA  va  veure  que  el  coeficient  de  sedimentació  en  primer  lloc  disminuïa  i  despres  tornava  a  augmentar.   Per   tant   aquest   DNA   havia   de   presentar   una   estructura   de  plegament   que   presentes   topologia,   com   la   llaçada,     ja   que   la   nikació   la  relaxava   i   la  BrEt  el   relaxava  primer  però  despres  el  eia  enrotllar   cap  al  altre  canto.  

                   

3.  Empaquetament  del  DNA  en  el  nucli.  Cromatida  Cromatina:   Pels   químics   es   tot   aquell   material   que   podem   extreure   del   nucli   d’una  cèl·∙lula  eucariota  i  pels  histològics  es  tot  allò  que  es  tenyeix  amb  un  colorant  bàsica  en  el  nucli.    La  cromatina  dons  no  es  DNA  sol  sinó  que  també  inclou:  

• RNA  

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.1

-------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.2

-------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.3

-------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.6

-------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.7

-------------------------------------------------------------------------------------------------

Page 3: BM-3.Empaquetament Del DNA

• Proteïnes  no  histoniques  que  depenen  del  estat  metabòlic    • Histones:  Les  histones  es  troben  en  la  mateixa  proporció  que  el  DNA  i  això  es  

perquè  es  troben  sempre  associat  en  ell.  Per  tant  en  el  nucli  el  DNA  mai  esta  sol  sinó  que  sempre  esta  unit  a  histones.    

3.Histones  Definició:  Son  unes  proteïnes  que  poden  associar-­‐se  el  DNA.  Aquesta  associació  es  pot  fer  la  presencia  d’una  gran  quantitat  d’aa  carregats  positivament  com  poden  ser  l’Arg  i  la  Lys  que  li  permeten  fer  interaccions  electrostàtiques  amb  el  DNA.  D’aquesta  manera  quan  afegim  una   concentració   2M  de  NaCl   capaç  d’apantallar   les   carregues   les  H  es  dissocien  amb  el  DNA  Tipus:  Existeixen  5  tipus  de  histones:  H1,  H2A,  H2B,  H3  i  H4.  D’aquestes  podem  veure  com  la  H1  presenta  una  massa  molecular  el  doble  que  totes   les  altres   i  presenta  una  gran   quantitat   de   Lys   en   comparació   amb   la   de   Arg,   mentre   que   totes   les   altres  presenten  un  pes  molecular  molt  semblant  i  una  proporció  de  Arg  i  Lys  semblant.    La  sequencia  d’aa  esta  molt  conservada  en  totes  les  (H3  i  H4  les  que  més)  menys  en  la  H1,   i  actualment  es   la  proteïna  mes  conservada  que  coneixem.    Aquest   fet  demostra  que  tots  els  aa  de  la  seqüencia  de  les  H  son  molt  importants  per  tal  de  realitzar  la  seva  funció  estructural  en  el  DNA  i  que  un  sol  canvi  fa  que  el  individu  no  pugui  prosperar.  Ex:   Entre   una   seqüencia   de   H4   de   vedella   i   de   pèsol   nomeshi   ha   un   canvi   de   tipus  conservatiu  entre  una  Ile  per  una  Arg    

3.1  Estructura  de  les  histones  Proteolisi:  Es  va  realitzar  típic  assaig  estructural  de  proteïnes  com  pot  ser  la  proteòlisis  suau.  Els  resultats  van  ser  que  existien  zones  que  es  degradaven  i  per  tant  no  estaven  protegides   però   d’altres   que   si   que   es   degradaven   i   per   tant   tenien   que   estar  protegide.  A  més  a  més  van  veure  que  les  zones  que  es  degradaven  eren  riques  en  Lys  i  Arg  i  les  que  no  es  degradaven  eren  riques  an  aa  apolars.    Estructura:   A   partir   dels   resultat   anteriors   podem   dir   que   les   H   presenten   una  estructura  formada  per  una  forma  globular  (�)formada  per  residus  apolars  i  una  forma  no  globular  (+)  formada  per  residus  de  Arg  i  Lys  principalment.    En  el  cas  de  la  histona  H1  aquesta  regió  no  globular  es  troba  en  els  dos  extrems  de  la  seqüencia  i  per  tant  diem  que  presenta  una  cua  N-­‐ter  i  una  cua  C-­‐ter  (seran  les  zones  mes  variables  en  seqüencia).  En  canvi   la  resta  de  histones  nomes  presenta  una  regió  no  globular  en  el  extrem  N-­‐ter  i  per  aquest  motiu  direm  que  presenta  una  cua  N-­‐ter.                    

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.9

-------------------------------------------------------------------------------------------------

Page 4: BM-3.Empaquetament Del DNA

3.2  Modificacions  postradiccionals  en  les  H  Tipus:   Existeixen   diferents   tipus   de   modificacions   i   cada   una   d’elles   te   un   efecte  diferent  

• Metilació:  es  produexen  en  les  Lys  i  son  capaços  d’apantellar  la  carrega  per  no  eliminar-­‐la  i  per  tant  tenen  un  efecte  neutre.  Poden  arribar  ha  haver-­‐hi  fins  a  3  metilacions    

• Fosforilació:   Es   produeix   en   les   Ser   i   les   Thr.   Es   una   carrega   negativa   que  provoca   canvis   en   la   interacció   entre   H   i   DNA   i   per   tant   canvis   en  l’empaquetament    

• Acetilació:  Es  produix  en  Lys.  Son  capaços  d’eliminar  una  carrega  negativa  i  per  tant   provoca   canvis   en   la   interacció   entre   H   i   DNA   i   per   tant   canvis   en  l’empaquetament.  D’aquesta  manera  es  pot  regular  l’expressió  gènica  i  podem  afiramar  que  

o Desasetilases:  Provoquen  la  desacetilacio  de  les  Lys,  conseqüentment  es  guanya  una  carrega  positiva   i  per   tant  empaqueta  mes  el  DNA.  Com  a  conseqüència   hi   ha   una   repressió   de   l’expressió   gènica.   Per   tant   son  aquets  enzims  seran  coneguts  com  repressors    

o Acetilacio  Provoquen   la  acetilació  de   les   Lys,   conseqüentment  es  perd  una   carrega   positiva   i   per   tant   desempaqueta   mes   el   DNA.   Com   a  conseqüència   hi   ha   una   activació   de   l’expressió   gènica.   Per   tant   son  aquets  enzims  seran  coneguts  com  coactivadors  

Localització:  Les  modificacions  postraduccionals  sempre  es  duen  a  terme  en  les  cues    

 

4.  Nucleosoma  

4.1  Primers  descripció  del  nuclosoma  Definició:  Es  va  descriure  que  la    presenta  una  certa  estructura  basada  en  una  seria  de  repeticions  unides  per  un  fragment  de  DNA  d’uns  200pb  Hewish   i   Burgonye:  Eren  dos  científics  australians  que  estaven   investigant  nucleases  endògenes,   i  específicament  amb  endonucleases  de   fetge.  Una  de   les  digestions  que  van   fer   sobre   cromatina   la   van   separar   amb   un   gel   electroforètic   i   van   observar   un  patró  de  bandes  repetiu  que  tenia  que  ser  resultat  d’una  col·∙lecció  de  fragments  amb  longituds  constants.  Aquest  patró  no  era  esperat  ja  que  si  es  una  nucleasa  endogen  el  que   caldria   esperar   es   un   conjunt   de   fragments   tots   ells   amb   longituds  diferents  i  per  tant  que  es  crees  una  llapisada.  Val  a  dir  que  aquest  patró  ja  va  estar  descrit  per  altres  científica  però  mai  ningú  s’havia  preguntat  perquè  passava.  La  seva  hipòtesis  es  va  basar  en  que  la  cromatina  tenia  que   tenir   una   estructura   senzilla   que   es   bases   en   un   conjunt   de  subunitats   repetides   i   seperades   entre   elles   per   un   espai   físic   suficient  perquè  la  nucleasa  pogués  fer  la  digestió.  Segons  l’anàlisi  del  gel,   l’espai  físic  havia  de  ser  de  200pb.    Cal  remarcar  que  no  treballàvem  amb  la  nucleasa  microcoal  

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.9

-------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.9

-------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.9

-------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.10

-------------------------------------------------------------------------------------------------

Page 5: BM-3.Empaquetament Del DNA

4.2  Estudis  de  microscòpia  òptica    Olins&Olins:  Van  realitzar  un  xoc  osmòtic  a  les  cèl·∙lules,  es  a  dir,  les  van  col·∙locar  en  un  medi  sense  sal  (aigua  pura)  i  com  a  conseqüència  tant  les  cèl·∙lules  com  els  nuclis  van  rebentar.   El   material   del   nucli   que   van   obtenir   el   van   observar   per   microscòpia  electrònica  i  van  poder  veure  que  existien  una  meda  de  boletes  que  presentaven  uns  10nm  al  qual  els  i  envoltava  i  unia  una  mena  de  fil  que  podia  ser  el  DNA.  Hem  de   remarcar   que   aquesta   estructura   no   es   pot   estudiar   per   difracció   de   raig   X  (actualment   nomes   s’ha   pogut   resoldre   una   part   del   nucleosoma)   i   per   tant   hem  d’utilitzar   tècniques   estructurals   indirectes.   Per   aquest   motiu   l’empaquetament   del  DNA  ha  sigut  un  tema  molt  important  en  la  BM  ja  que  es  requereix  d’imaginació  i  de  moltes  tècniques  diferents.          

4.3  Estudis  del  complex  de  Histones  del  nuclosoma  Definició:   Les   histones   nucleosomiques,   es   a   dir,   H2A,H2B,   H3   i   H4,     en   condicions  fisiològiques   tenen   la   capacitat   de   formar   un   octàmer.   Aquest   octàmer   esta   format  per:  

• Tetramer  de  H3  i  H4  • Dos  dímers  de  H2A  i  H2B  

Kornenberg:  Va  estudiar  el  comportament  del  les  histones  nucleosomiques  i  va  veure  que  quan  aquestes  no  es  trobaven  en  condicions  fisiològiques  formaven  un  octàmer  a  partir  de  dos  copies  de  cada  histona.  Per  analitzar  be  aquest  octàmer  va  col·∙locar  les  H  en   condicions   fisiològiques   (0,2M  NaCl)   ja   que   quan   feia   una   gel   filtració   (Sephadex  G100)  i  després  mirava  l’absorbància  veia  com  es  formaven  dos  pics  diferents  un  d’ells  format   per   H3H4   i   l’altre   a   H2AH2B   malgrat   que   totes   les   H   presentaven   un   pes  molecular  igual.    La  hipòtesis  que  va  crear  va  ser  que  H3H4  generava  un  tetràmer  mentre  que  H2AH2B  formava  dímers.    Aquesta   hipòtesis   va   estar   demostrada   quan   es   va   fer   un   estudi   d’entrecreuament  químic   (croos-­‐link)   mitjançant   dimetilsuberimidat.   Aquesta   molecula   era   capaç  d’establir   un   enllaç   en   els   seus   dos   extrems   amb   dos   amines   diferents,   per   tant   es  capaç  d’unir  de  forma  covalent  dos  proteïnes  que  estan  unides  de  forma  no  covalent.  Van   afegir   aquest   reactiu   en   una   solució   d’H3   i   H4   nucleosomiques   en   codicions  fisiològiques  i  amb  una  concentració  suficient  perquè  es  crees  una  col·∙lació  entre  H3  i  H4   no   unides   i   H3H4   unides   en   les   diferents   formes   o   combinacions   possibles.     i  posteriorment  van   fer  un  gel  electroforètic  amb  SDS   (desnaturalitzant)   i  els   resultats  van  demostrar  que  es  van  formar  monòmers,  dímers,  trímers,  i  tetràmers.  Quan  es  va  repetir  el  procés  amb  l’H2A  i  H2B  nomes  es  van  veure  dímers  i  monòmers.    La  rao  per   la  qual  quan  les  concentracions  salines  son  elevades  es  forma  un  octàmer  segurament   es   deuen   a   que   d’aquesta   manera   les   H   poden   neutralitzar   millor   les  carregues  que  hi  han  en  el  medi.  Això  mateix  es  el  que  deu  pasar  quan  una  H  es  troba  amb  el  DNA  ja  que  aquest  te  carregues  negatives  igual  que  el  Cl      

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.10

-------------------------------------------------------------------------------------------------

Page 6: BM-3.Empaquetament Del DNA

             

4.4  Model  estructural  del  nucleosoma  Definició:  Va  ser  un  model  proposat  per  Kornenberg  a  partir  de  tota  la  informació  que  es  tenia  del  nucleosoma  fins  al    1974.  Descriu  que  el  nuclosoma  es  un  compost  format  per  200pb  que  conte  un  octàmer  d’H  format  per  2  parelles  de  H2A,  H2B,  H3  i  H4  i  una  sola  subunitat  de  H1  (en  alguns  teixits  es  diu  H5)      Malgrat   no   va   estar   definit   per   Kornenberg   hem   de   definir   que   el   nucleosoma   esta  format   per   la   partícula   nucli   i   el   DNA-­‐linker.   LA   partícula   nucli   esta   formada   pel  octàmer  d’H  i  146pb  i  el  DNA-­‐linker  esta  entre  mig  de  dos  octàmers  d’H  i  esta  formada  per  60pb  

4.5  Estudis  de  la  situació  del  DNA  en  la  partícula  nucli  Definició:  El  DNA  es  troba  per  fora  del  octàmer  d’H.  Esta  formant  dos  voltes    Noll:   Es   va   tractar   la   cromatina   amb   DNAasa   1   i   va   fer   un   gel   electroforètic  desnaturalitzant.  En  aquest  es  van  veure  un  patró  de  bandes  separades  entre  elles  per  10pb  (una  volta  de  hèlix)  al  llarg  de  les  146pb  que  formava  el  nucleosoma,  per  tant,  e  DNA  nomes  pot  estar  per  fora  ja  que  si  esta  per  dintre  no  veuriam  cap  tall,  i  si  estigues  mig  a  mig  a  fora  hi  hauria  una  zona  sense  talls                      Luther:  Es  va  tractar  nucleosomes  que  presentaven  DNA  amb  el  seu  extrem  5’  marcat  radioactivamen  amb  DNAsa  1  durant  un   temps  prolongat   i  posteriorment  va   fer  una  electroforesis  amb  un  gel  desnaturalitzant  i  una  autoradiografia.  En  el  els  gels  es  podia  veure  moltes  bandes  i  o  llapisades    però  en  canvi  hi  havia  zones  en  les  quals  no  hi  havia  cap  banda  independentment  del  temps  d’exposició  amb  la  DNAasa1,  per  tant  aquestes  zones  eren  inaccessibles.  Aquets  llocs  eren  el  30,  60,  80,  110  i  140  en  els  dos  cantons  Mitjançant  el  estudi  de  molts  gels  electroforètics  diferents  i  aplicant  matemàtiques  va  poder   determinar   quines   eren   les   zones   de   tall   mes   probable.   Va   representar   les  probabilitats  de  tall  al  llarg  de  les  140pb  de  la  partícula    i  va  veure  que  existia  un  eix  de  simetria   rotacional  binari  amb  un   interval  entre  els   iguals  de  80..  Per   tant  si  hi  havia  una   eix   de   simetria   rotacional   binaria   degut   a   la   protecció   que   feia   el   nucleosoma,  aquest  tenia  que  presentar  una  estructura  acorde  amb  això.    

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.11

-------------------------------------------------------------------------------------------------JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.11

-------------------------------------------------------------------------------------------------

Page 7: BM-3.Empaquetament Del DNA

                 La  conclusió  va  ser  que  el  DNA  feia  una  volta  i  3/4  per  fora  del  nucleosoma  i  que  cada  volta  ocupava  80  pb  d’aquesta  manera  la  simetria  rotacional  binaria  es  creava  perquè  els  iguals  estaven  un  a  sobre  dels  altres                

4.5  Primers  cristalls  de  nucleosoma  Klug:   Eren   uns   cristalls     de   molt   baixa   resolució   però   que   combinats   amb   altres  resultats   obtinguts   per   altre   gent   que   va   utilitzar   difreccio   de   neutros   va   permetre  confirmar  l’estructura  descrita  per  Luther.    La  difracció  de  neutrons  presenta  la  capacitat  de  seleccionar  si  es  vol  veure  la  proteïna  o  el  DNA  depenen  del  medi.  Es  va  poder  veure  que  la  helicoide  del  DNA  presentava  un  diàmetre  més  gran  que  no  pas  el  que  feia  la  proteïna  i  que  aquest  donava  1  volta  i  3/4  al  seu  voltant  i  que  el  gir  era   levogir.   També   va   poder   determinar   que   l’alçada   del   octàmer   era   de   6nm   i   el  diàmetre  era  de  11nm  i  si  contem  el  DNA  serà  de  13nm  

   

4.6  Topologia  Funció   dels   nucleosomes   en   topologia:   Es   va   fer   un   experiment   en   el   qual   es   van  utilitzar   una   col·∙lecció   de   solucions   de   DNA   circular   covalentment   tancat   amb   una  concentració  creixent  de  H   i  una  col·∙lecció   idèntica  però  a   la  qual  hi  havíem  afegit   la  topoisomerasa  I  (ells  l’hi  diuen  untwiting  extract).  A  continuacio  fem  una  electroforesis  amb  un  gel  d’agarosa  i  podem  veure  que  en  les  carrils  de  les  solucions  sense  topo  (n)  que  efectivament  les  H  son  capaces  de  produir-­‐me  un  enrotllament  que  fa  que  el  DNA  migri  mes,  però   si  mirem  els   carrils  de   les   solucions  amb   topo  podem  veure  que  els  

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.12

-------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.12

-------------------------------------------------------------------------------------------------JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.12

-------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.13

------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.13

------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.13

------------------------------------------------------------------------------------------------

Page 8: BM-3.Empaquetament Del DNA

carrils   que   tenen  menys   histona   (a)   la   topo   es   capaç   de   relaxar   però   els   carrils   que  tenen  mes  histona  la  topo  no  es  capaç  de  relaxar.  Això   es   degut   a   que     quan   el   DNA   s’enrotlla   en   la   partícula   nucli   fa   uns   girs   capa   a  l’esquerra  que  han  de  ser  compensats  per  uns  girs  a  la  dreta  en  les  zones  que  no  hi  ha  histones  i  la  relaxació  de  la  topo  I  nomes  es  pot  fer  per  zones  del  DNA  en  les  quals  no  hi  ha  histones   i  per   tant  quan   la   concentració  d’H  es  elevada  no  es  podrà  produir   la  relaxació.                Paradoxa  del  valor  de  L  en  el  nuclosoma:  Com  ja  hem  vist  en  la  partícula  nucli  es  creen  dos  voltes  tiroïdals  levogires  i  per  tant  això  crea    un  W=-­‐2  i  faria  que  el  DNA  no  associat  a  H  tingues  un  valor  de  W=+2.    Posteriorment  van  analitzar   la   topologia   i  per   fer-­‐nos  una   idea  del  procediemnt  hem  de  imaginar  un  DNA  circular  relaxat  amb  un  valor  de  L=20  i  un  valor  de  T=20  i  per  tant  W=0.   A   continuació   es   col·∙loca   un   sol   ocamer   d’H   i   això   crea   que   el   DNA   es  superentrolli.  Poseteriorment  aplcas  una  topo  I  que  es  capaç  de  relaxar  el  DNA  que  es  troba  sense  H  i  finalment  eleimnas  el  nucleosoma  i  com  a  resultat  obtens  un  DNA  amb  un   valor   L=19   degut   a   que  ΔW   ara   es   de   -­‐1,   i   no   pas  ΔW=-­‐2   que   es   el   que   caldria  esperar.                Això  va  generar  el  que  es  coneix  com  a  Paradoxa  del  valor  de  L  en  el  nuclosoma.  Per  tal  de  poder  trobar  una  solució  es  va  proposar  que  realment  ΔW=-­‐2  i  que  per  tant  si  ΔL=-­‐1  ΔT=+1  per  tant  el  nuclosoma  ha  de  ser  capaç  de  fer  variar  el  pb/volta  de  10,5  a  10,  es  a  dir  fer  variar  l’estructura  secundaria  del  DNA    ja  que:            El   motiu   pel   qual   el   nucleosoma   provoqui   un   ΔL=-­‐1   es   segurament   degut   a   que  d’aquesta  manera   no   es   produeix   un   superenrotllament   tant   pronunciat   que   podria  tenir  associat  problemes  topològics.    

4.7  Plegament  del  DNA  en  el  nucleosoma  4.7.1  Seqüencia  de  plegament    Definició:    El  DNA  ha  de  fer  un  gran  corbament  quan  s’uneix  a  les  histones  ja  que  dona  dos  voltes  en  146pb.  Aquest  corbament  tant  pronunciat  provoca  que  les  bases  del  que  

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.14

------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.14

------------------------------------------------------------------------------------------------

Page 9: BM-3.Empaquetament Del DNA

estan  tocant  la  histona  presentin  una  distancia  entre  bases  de  0,3,  mentre  que  les  que  es   troben   en   el   exterior   presenten   una   distancia   entre   bases   de   0,4.   La   distancia  recordem   que   ha   de   ser   de   0,34,   per   tant   cap   dels   dos   esta   estable.   Per   tant   es  necessari  esbrinar  si  hi  ha  alguna  preferència  en  la  estructura  en  la  seqüencia  del  DNA  que  ficiliti  més  o  menys  el  plegament      Travers:   Va   analitzar   la   seqüencia  de  DNA  de  187  nucleosomes  agafats   a   l’atzar   i   va  determinar   quines   probabilitats   hi   havia   que   un   nucleòsid   o   grup   de   nuclosids   es  trobes  en   cada  posició.   El   que   va  obtenir   era  un  gràfic  de  146pb  que  presentava  un  altre   cop   un   eix   de   simetria.   Es   representaven   per   una   banda   la   sequencia  GC   i   per  l’altra  al  TTAA  i  es  veia  una  distribució  sinosoidal  en  que  la  longitud  entre  els  pics  era  de  10pb  i  que  els  dos  gràfics  estaven  en  antifase.              Per   tant   va   determinar   que   qualsevol   seqüencia   es   capaç   de   formar   un   nucleosoma  pero  que  el  nucleosoma  atacarà  el  DNA  per  aquella  posició  en  la  qual  en  el  interior  del  corbament   i   trobem  T   i  A   i  en  el  exterior  G   i  C.  Per  tant  podem  dir  que   la  histona  te  preferències  anisotropiqes  

         

     4.7.2  Repulsions  en  el  plegament    Es  coneix  que  el  octàmer  tenen  una  carrega  global  de  142(+)  i  en  canvi  el  DNA  te  una  carrega   global   de   146(-­‐)·∙2=292(-­‐).   Per   tant   la   H   apantalla   nomes   la   mitat   de   les  carregues  però  en  canvi  aquest  corbament  permet  que  les  carregues  de  la  cara  que  no  esta   en   contacte   amb  el   octàmer   i   que   per   tant   no   estan   apantallades   estiguin  mes  separades  entre  si,  conseqüentment  hi  ha  menys  repulsió  i  això  fa  que  el  plegament  es  pugui  veure  facilitat.    

4.8  Disposició  de  les  H  en  el  nucleosoma    Definició:  Es  basa  en  conèixer  quines  H   interaccionen  amb  el  DNA  i  com  aquestes  es  disposen  en   l’octàmer  d’H.  El  problema  però  es  que   fins   fa  molt  poc  no  es  va  poder  cristal·∙litzar  el  nucleosoma.      Mirzabekov:   Utilitza   un   reactiu   anomenat   Me2SO4   que   era   capaç   de   fer   un   enllaç  covalent  amb  la  His  i  posteriorment  provoca  el  trencamentr  del  enllaç  fosfodièster  en    la  cadena  de  DNA  just  per  la  base  a  la  qual  s’ha  unit.              

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.15

------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.15

------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.16

------------------------------------------------------------------------------------------------

Page 10: BM-3.Empaquetament Del DNA

 Va  marcar  radioactivament  els  extrems  5’  i  a  continuació  va  col·∙locar  aquest  reactiu  en  una   solució   que   contenia  DNA   unit   a   histones   amb   una   concentració   i   un   temps   de  reacció  que  com  a  resultat  va  obtenir  una  col·∙lecció  de  fragments  diferents  units  a  les  diferents  H  del  nuclosoma  (un  sense  cap  unió,  un  amb  unió  a  H3,  un  amb  unió  a  H4..)  A  continuació  va  realitzar  una  electroforesis  bidimensional  en  la  qual:  

• Primera   dimensió:   Es   capaç   de   separar   segons   la   mida   diferents   cadenes   de  DNA   unides   a   les   histones.   Per   tant   els   que   corrin   mes   serà   aquells   que  presenten  un  fragment  de  DNA  més  curt   i  els  que  corrin  menys  seran  els  que  presenten  un  fragment  de  DNA  més  llarg.    Hem   de   tenir   en   compte   però   que   depenen   de   la   H   a   la   que   va   unida   dos  fragment  de  la  mateixa  mida  pot  corre  mes  o  menys  pero  la  diferencia  es  tant  petita  que  la  considerem  negligible  

• Segona  dimensió:  Apliquem  un  tractament  capaç  d’eliminar  el  DNA  i  tornem  a  separar  segons   la  mida.  Per  tant  podrem  separar   les  diferents  histones   ja  que  cadascuna  presenta  una  massa  molecular  diferent  i  per  tant  de  menys  migració  tenim  H3,  H2A,  H2B  i  H4  

Posteriorment  fem  una  autoradiografia.                  Analitzant  els  resultats  va  poder  fer  un  mapa  de  la  posicio  de  les  histones  respecte  a  la  seva   interacció   amb   el   DNA.   Lògicament   te   mapa   també  presenta  una  simetria   i  on  es  veu  que  una  mateixa  histona  pot  interaccionar  a  diferents  llocs.  Podem  veure  que  hi  ha  zonen  en  les  qusl  no  hi  ha  intereccio  i  aquest  fet  es  logic  ja  que  realment  el  DNA  te  una  estrucctura  tridimensional  que  imposibilita  que  la  totalitat    cara  interna  del  DNA  intereccioni  amb  la  H    

     

     

4.9  Resolució  de  l’estructura  de  l’octamer  Aron   Klug:   Va   aconseguir   cocristalls   de   octàmers   de   H   sense   DNA   a   partir   de   crear  solucions  de  H  a  molt  alta  concentració  fins  al  punt  de  formar  agragats.  El  resultat  el  va  observar  per  microscòpia  electrònica  i  va  determinar  els  següents  paràmetres:  

• La  histona  presenta  una  estructura  en  falca  • Presenta  una  simetria  binaria  

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.17

------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.18

------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.18

------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.18

------------------------------------------------------------------------------------------------

Page 11: BM-3.Empaquetament Del DNA

• Va   reafirma   els   resultats   de   Mirzavec   en   la   col·∙locació   de   les   diferents   H  respecte  la  intereccio  amb  el  DNA  

1984:  Es  realitzen  uns  cristalls  de  la  partícula  nucli    amb  millor  qualitat  i  que  inclouen  el  DNA   i   ens   permeten   fer   cristal·∙lografia.   La   imatge   presenta   una   alta   resolució   per  identificar  el  DNA  pero  en  canvi  una  resolució  mes  baixa  per  veure  el  octàmer  d’H.  Per  tant  es  un  cristall  que  va  servir  per:  

• Confirmar  les  mides:  11nm  de  diàmetre  i  5,7nm  d’alçada  • Confirmar  que  el  DNA  esta  per  fora    • Les  zones  protegides  per  l’acció  de  la  DNAasa  I  no  son  com  a  resultat  de  que  el  

DNA  es  trobi  protegit  per  les  H  sinó  perquè  aquestes  son  capaces  de  produir-­‐li  una   distorsió   en   la   estructura   que   fa   que   no   pugui   ser   reconeguda   per   la  DNAasa  I    

Moudrianakis:  Es  vana  aconseguir  un  cristall  perfectes  de  octàmers  de  H  en   les  qual  ses   pot   identificar   perfectament   la   seva   estructura.   Cal   descar   que   les   cues   no   les  podem  veure  ja  que  aquestes  son  molt  flexibles.    

• Disposició  de  les  histones  en  l’octamer:  Aquest  esta  format  per  una  part  central  a   la   qual   tenim   el   tetràmer   de   H3H4   i   dos   extrems   formats   per   un   dímer  H2AH2B  

         

• Motius   estructurals   de   les   H:   Presenten   un  motiu   anomenat  motiu   H   que   es  basa  en  una  hèlix-­‐α  curta  loop  una  hèlix-­‐α  llarga  un  loop  i  una  hèlix-­‐α  curta  

• Interaccions  de  les  H:  Interaccionen  entre  elles  mateixes  i  amb  el  soc  petit  del  DNA.   Les   carregues   positives   del   octàmer   es   col·∙loquen   de   tal   manera   que  formen   el   que   es   coneix   com   a   rampa   helicoïdal   i   d’aquesta  manera   permet  que  el  DNA  adopti  aquesta  estructura  al  voltat  del  octàmer.    

             

5.  Empaquetament  del  DNA  i  replicació  o  transcripció  

5.1  Introducció  a  la  replicació  amb  presencia  de  nuclosomes    Jose  Maria     Sogo:  Estudia   imatges  de  microscòpia  electrònica  de  molècules  de  DNA  que   havien   estat   en   un  medi   amb  presencia   de   psoralent   i   a   continuació   fèiem  una  desnaturalització.  El  psoralent  es  capaç  d’unir  covalentment   les  dues  cadenes  com  ja  vam   veure   i   per   tant   es   capaç   de   que   en   condicions   desnaturalitzant   es   conservi  l’estructura  de  doble  cadena,    però  en  presencia  de  nucleosomes  el  psoralent  no  pot  unir  les  dues  cadenes.    

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.20

------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.20

------------------------------------------------------------------------------------------------

Page 12: BM-3.Empaquetament Del DNA

Per   tant   si   observem   un   DNA   que   contenia   nucleosomes   podrem   veure   que   en   les  zones   que   hi   havia   nucleosomes   hi   veurem  unes   bombolles   de   ssDNA.   Cal   remarcar  que  aquest  fet  serà  observable  en  el  DNA  que  estigui  nickat  ja  que  el  DNA  CCC  no  es  desnaturalitzarà.    En   els   DNA   que   s’estaven   produint   una   replicació   es   pot   veure   com   les   bombolles  creades  pels  nucleosomes  es  troben  immediatament  després  i  abans  de  la  forqueta  de  replicació.  Conseqüentment  ens  indica  que  poden  haver-­‐hi  diverses  estratègies  en  vers  la  replicació  i  els  nucleosomes  

• Que  el  octàmer  es  dissocià   just  abans  de  que  passi   la  polimerasa   i  es   torna  a  associar  just  despres  de  que  així  pasat  la  polimerasa  

• Que  la  polimerasa  es  capaç  de  replicar  el  DNA  donant  la  volta  a  la  hèlix  que  fa  el  DNA  en  el  nucleosoma      

• Que  la  polimerasa  es  capaç  de  replicar  el  DNA  sense  que  es  dissociï  el  octàmer  però  que  sigui  capaç  de  linealitzar-­‐lo,  es  a  dir,  eliminar  les  volta  i  1/3  que  fa    

           

5.2  Comprovació  de  la  teoria    Jackob:  Per  comprovar  quina  de  la  teoria  es  la  que  realment  passa  durant  la  replicació  es  va  utilitzar  un  DNA  unit  a  histones  que  es  va  fer  replicar  en  un  medi  que  contenia  la  polimerasa   i   un   conjunt   de   H   marcades   radioactivament.   Una   vegada   realitzada   la  replicació  podien  succeir  dues  coses:    

• El  octàmer  estarà  format  per  un  conjunt  histones  no  marcades   i  per  tant  vol  dir  que  aquest  octàmer  no  es  dissocia  com  a  conseqüència  de  la  replicació,  es  a  dir  que  es  conservaven    

• El   octàmer   estarà   format   per   un   conjunt   de   histones   marcades   i   altres   no  marcades  i  per  tant  vol  dir  que  aquest  octàmer  es  dissocia  i  es  torna  a  associar  com  a  conseqüència  de  la  replicació,  es  a  dir  que  no  es  conservaven    

El  que  es  va  observar  va  ser  la  segona  opció  per  tant  es  va  confirmar  la  teoria  de  que  el  octàmer   es   dissocià   just   abans   de   que   passi   la   polimerasa   i   es   torna   a   associar   just  després  de  que  així  passat  la  polimerasa              

5.3  Mecanisme  de  associació  i  reassociació  Daban:  Utilitza   la  seqüencia  del  nucleosoma  que   ja  havíem  seqüenciat  anteriorment.  Aquest  seqüencia  s’ha  l’hi  ha  inserit  un  promotor  per  la  T7RNA  pol  que  es  una  RNApol  vírica  i  estarà  unida  a  un  nucleosoma.  D’aquesta  manera  es  podrà  estudiar  el  procés  de  replicació  o  traducció  en  la  forma  mínima  de  plegament  (tamplate  cromatínic  mínim).  Aquesta  seqüencia  es  coneguda  com  a  NX1P7.    

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.24

------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.26

------------------------------------------------------------------------------------------------

Page 13: BM-3.Empaquetament Del DNA

També   utilitzaré   un   gel   electroforètic   anomenat   de   retardament   o   de   nucloproteina  que   es   capaç   de   analitzar   tots   els   productes   d’una   transcripció  mes   la   presencia   de  proteïnes  i  proteïna-­‐DNA.  Per  tant  tenim  una  banda  pel  DNA-­‐pur,  una  banda  pel  RNA,  una  banda  per  el  DNA  unit  a  H  i  una  banda  que  no  entre  en  el  gel  i  que  correspon  a  un  agregat  de  nucleosomes  amb  excés  de  H.    Posteriorment  es  ban  comparar  les  bandes  que  apareixien  en  presencia  o  no  de  la  RNA  polT7.   El   que   es   va   veure   era   que   sense   la   presencia   de   RNA   pol   tenim   DNA   no  associat,  DNA  associat  al  nuclosoma  i  agregat  de  H,.  Però  en  presencia  de  la  RNApol  es  veu  com  ha  aparegut  una  banda  de  mes  corresponent  a  RNA,  per  tant  es  afirma  que  hi  ha   hagut   transcripció   a   més   a   més   veiem   que   a   banda   que   pertant   al   DNA   unit   al  nucloeoma  s’ha  fet  mes  prima  i  que  la  del  DNA  lliure    i  la  del  agregat  de  H  s’ha  fet  mes  gran  i  intensa.                    Per  tant  mentre  que  quan  no  hi  havia  RNA  pol  es  mantenia  un  equilibri  entre  el  DNA  associat  a  histones  i  el  DNA  no  associat  a  histones,  la  presencia  de  la  RNA  pol  crea  que  el  DNA  associat  a  histones  es  dissoci  però  aquestes  histones  formaran  un  agregat  que  serà   molt   estable   i   per   tant   quan   acabi   la   replicació   no   retornaran   a   formar   DNA  associat  a  histones.    Conseqüentment  la  teoria  que  es  va  desenvolupar  amb  altres  dades  experimentals  es  que  in  vivo  aquest  fenomen  d’agregació  també  s’ucceix  però  que  el  agregat  no  es  tant  estable  com  el  de  in  vitro  i  per  tant  es  dissocia  ràpidament  i  això  permet  que  es  pugui  tornar  a   formar   ràpidament  DNA  associat  a  histones.  Aquesta   idea   te  molta   lògica  si  pensem  en  les  grans  concentracions  de  DNA  que  hi  han  en  els  nuclis.                  

5.4  Com  la  polimerasa  pot  trencar  el  octamer  Per  tal  de  que  la  polimerasa  pugui  provocar  la  dissociació  del  octàmer  es  necessari  que  aquets  actui  com  una  pala  i  per  això  necessita:  

• Punt  d’ancoratge:  Tant  la  DNApol  en  el  procés  de  replicació  com  la  RNApol  en  el   procés  de   transcripció   engloben  un  uns  15pb  que   ja   aparellades.  Aquestes  bases  permeten  que  la  polimerasa  no  tiri  cap  enrere  

• Energia:   Cada   vegada   que   s’uneix   un   nucleòtid   es   produeix   l’alliberació   d’un  pirofosfat  que  permet  donar  l’energia  suficient  perquè  la  pol  abansi  una  posicio  cap  endavant  per  atacar  la  següent  base    

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.25

------------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.25

------------------------------------------------------------------------------------------------

Page 14: BM-3.Empaquetament Del DNA

Per  tant  diem  que  la  pol  fa  una  força  motor.    

6.  Estructures  d’ordre  superior    Definició:  Son  un  conjunt  d’estructures  que  es   forment  a  partir  de   l’unio  de  diversos  cromosomes  i  que  permeten  garantir  el  empaquetament  

6.1  Histona  H1  Es  una  proteïna  que  no  es  troba  en  el  octàmer  de  histones  i  que  sabem  que  s’uneix  al  DNA  linker  i  permet  que  aquest  pugui  adoptar  estructures  d’ordres  superiors    S’ha  pogut  cristal·∙litzar  la  part  globular  de  la  H1  després  de  sotmetre  la  a  una  proteòlisi  que  fos  capaç  d’eliminar  les  dues  cues  (C-­‐ter  i  N-­‐ter).    Mitjançant  la  difracció  de  raig  X    s’ha  pogut  determinar  que  aquesta  molècula  presenta  un   motiu   hèlix-­‐turn-­‐helix   que   es   molt   recorrent   en   proteïnes   de   reconeixement   de  DNA  ja  que  una  de  les  hèlix  (en  el  cas  de  la  H1  es  la  hèlix  III)  es  capaç  d’inserir-­‐se  en  el  solc  gran  del  DNA  i  realitzat  ponts  d’H  amb  les  bases  (en  el  cas  de  la  H1  els  ponts  d’H  seran  inespecífics).  Algunes  de  les  proteïnes  que  tenen  aques  motiu  són  proteïna  CAP  (relacionada   amb   l’operon)   que   es   capaç   de   reconèixer   seqüencies   especifiques   de  DNA  i  d’altres  proteïnes  d’interacció  especifica,  però  cal  remarcar  que   la  H1  a  grosso  modo  fa  una  interacció  inespecífica.      

6.2  Grau  d’empaquetament    Longitud   del   DNA   en   el   interior   de   la   cèl·∙lula:   Tenint   en   compte   que   3Gb   podem  determinar  que:  

36𝐺𝑏 ·1 · 10!𝑝𝑏1𝐺𝑏 ·

0,34𝑛𝑚1𝑝𝑏 ≈ 1 · 10!𝜇𝑚 = 1𝑚  

Per   tant   tenim  1m  de  DNA  que  ha  de   fer   entrar   en  el   nucli   i   per   això  necessitem  el  empaquetament.  Cal  remarcar  que  hi  han  organismes  que  contenen  10m  de  DNA    Packing  Ratio:  Es  una  formula  per  calcular  i  poder  comparar  el  grau  d’empaquetament  

   Per  tant  podem  veure  com  el  DNA  es  capaç  d’empaquetar-­‐se  o  de  disminuir  10.000  la  seva  longitud.  Si  mirem  quin  es  el  grau  d’empaquetament  en  el  nucleosoma  

𝐿𝑜𝑛𝑔𝑖𝑡𝑢𝑑  𝑑𝑒𝑙  𝐷𝑁𝐴  𝑒𝑛  𝑒𝑙  𝑛𝑢𝑐𝑙𝑒𝑜𝑠𝑜𝑚𝑎 =  200𝑝𝑏 ·0,34𝑛𝑚1𝑝𝑏 = 68𝑛𝑚    

             

Page 15: BM-3.Empaquetament Del DNA

 Per   tant  podem  veure  com  amb  els  nucleosomes    aconseguim  empaquetar  nomes  7  vegades   el  DNA   i   en   realitat   esta   empaquetat   10.000   vegades,   per   tant   es   necessari  que  existeixin  altres  estructures  d’empaquetament    

6.3  Observació  de  les  estructures  d’ordre  superior  Cristal·∙lografia:  No  es  pot  formar  cristalls  perquè  presenten  una  estructura  que  no  es  regular,    molt  heterogènia,  amb  un  gran  pm.  Microscopi   electrònic:   Per   tal   de   poder   observar   els   diferents   nivells   estructurals   es  necessari  que  controli  la  concentració  iònica  del  medi  ja  que  aquestes  sals  son  capaces  de  regular  el  empaquetament.  Entre  elles  es  troben  el  Na,  K  i  Mg,  aquest  últim  te  un  paper  estructural  molt  important  gracies  a  la  seva  divalència.  D’aquesta  manera:  

• Més  concentració  de  sals:  Fibra  de  10nm  • Menys  concentració    de  sals:  Fibra  de  30nm  

Per  tant  a  més  concentració  més  grau  d’empaquetament.    

6.4  Nivells  dels  graus  d’ordre  superior  Si  mirem  de  menys  empaquetament  a  mes  empaquetament  podem  veure  que:  

• Fibra  de  10  nm  (diamentre  del  nucleosoma)  o  collaret  de  perles    • Fibra  de  30nm  o  solenoide  • Llaçades  • Cromosoma  metafasic    

6.5.1  Models  de  la  fibra  de  30nm  Solenoide   o   plegament   helicoïdal   d’un   sol   origen:   La   fibra  de  10nm  s’estructura  en  forma  de  hèlix  d’un  sol  origen  en  la  qual  els  nucleosomes  es  col·∙loquen  un  al  costat  de  l’altre   i   tenen  un   pas   de   rosca   de   6   nucleosomes/volta.   El   DNA   linker   esta   corbat   al  voltant  de  les  partícules  nucli   i  pasa  d’un  solenoide  a  un  altre  perquè  com  ja  hem  dit  aquets  estan  contigus.  Per  tant  aquesta  fibra  te  un  forat  al  mig                      Model  cinta  helicoïdal:  S’observa  un  intermediari  entre  la  fibra  de  10nm  i  la  solenoide  que  es  una  estrucrtura  en  zig-­‐zag  i  per  tant  si  aquesta  forma  una  estructura  helicoïdal  el  DNA  linker  quedarà  paral·∙lel  al  eix  de  la  helicoide.  Per  tant  aquesta  fibra  te  un  forat  al  mig                

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.30

----------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.30

----------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.30

----------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.30

----------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.30

----------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.29

-----------------------------------------------------------------------------------------------

Page 16: BM-3.Empaquetament Del DNA

     Model   linker   creuat:   La   helicoide   es   forma   a   partir   de   dues   fibres,   es   a   dir,   de   dos  origen,   i   d’aquesta  manera  es   com  si   en   ves  de   tenir  una   fibra  de  10nm   tota  en   fila  tinguéssim   dues   fibres   de   10nm   en   paral·∙leles   on   el   linker   fa   zig-­‐zag   i   cadascuna  d’aquestes  fibres  formes  una  hèlix.  El  DNA  linker  es  trobarà  justament  al  mig.  Per  tant  aquesta  fibra  no  te  un  forat  al  mig                  Model   de   super-­‐beats:   La   fibra   de   30nm   no   es   continua   formada   per   diverses  agrupacions   de   nucleosoma   que   no   segueixen   cap   ordre.   El   DNA   linker   uniria   les  diverses  agrupacions                    Model   del   solenoide   interdigitat:   En  grup  del  Daban  va  poder  veure  que   la   fibra  de      30nm  era  molt  mes  compacte  del  que  realment  mostraven  els  altres  models  es  a  dir  que  tenen  mes  nucleosomes  per  unitat  de  longitud.                      6.5.2  Cromosoma  metafísic    Leanli:  Observa  un  cromosoma  metafasic  amb  un  medi  d’aigua  pura  es  a  dir,  amb  una  concentració  salina  igual  a  0.  S’observa  com  li  surten  petits  “pels”  en  el  cromosoma.                

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.30

----------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.30

----------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.30

----------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.30

----------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.31

----------------------------------------------------------------------------------------------

JR.D

aban BIO

LOG

IA MO

LEC

ULA

R

Figura 6.32

-----------------------------------------------------------------------------------------------

Page 17: BM-3.Empaquetament Del DNA

 Posteriorment  elimina  les  histones  del  medi  i  observa  el  cromosoma  a  més  ampliació  i  va  veure  com  les  fibres  estaven  formant  llaçades  al  voltant  d’una  estructura  a  al  qual  ell  va  anomenar  scaffold.  Per  això  ell  va  anomenar  aquest  model  llaçades  radials.    La  seva  teoria  era  que  el  scaffold  esta  format  per  proteïnes  no  histoniques  que  serviran  per  organitza  i  fer  de  vestidor  al  cromosoma                        Aquest   model   es   una   teoria   ja   que   per   tal   de   poder-­‐ho   observar   vàren   tindre   que  utilitzar   condicions   desnaturalitzats   i   eliminar   per   complert   les   histones   per   tant   no  podem  assegurar  que  això  passi  a  nivell  fisiològic    Per  aquest  mateix  motiu  es  va  torna  a  repetir  el  experiment  pero  aquesta  vegada  en  presencia   d’histones   i   va   poder   reafirmar   que   existien   unes   llaçades   al   voltat   d’una  estructura  que  podia  ser  el  scaffold.  Aquestes   llaçades  es  feien  a  partir  de  la  fibra  de  30nm    Conexio  nucli   interfàsic-­‐nucli  metafasic:  Es  va  fer  una  preparació  de  nuclis  en  el  qual  es  van  eliminar  totes  les  proteïnes  del  interior  del  nucli  i  tot  el  material  genètic.  Es  va  observar   per   microscopi   electronic   i   el   que   es   va   veure   era   una   estructura   que  recordava  molt  el  nucli.  També  es  va  poder  observar  que  hi  havien  zones  del  DNA  en  el  cromosoma  que  eren  molt  resistents  a  la  degradació.            Per  tant  la  seva  conclusió  va  ser  que  existia  una  matriu  en  el  nucli  interfàsic  que  seria  la   que   posteriorment   formarà   el   scaffold.   Aquesta   matriu   ja   presentava   unides   les  diferents  llaçades  mitjançant  seqüencies  especifiques  però  aquestes  es  trobaven  molt  separades  entre  elles,  però  durant  la  mitosi  quan  el  nucli  desapareix  aquesta  matriu  es  va   ajuntant   i   junt   ara   les   diferents   llaçades.       Les   sequencies   d’unio   a   la  matriu   o   al  scaffold  són:    

• SAR:  Unió  a  scaffold    • MAR:  Unió  a  matriu  

           Composició   del   scaffold:   En   el   nucli   la   proteïna   no   histonica   que   s’hi   troba   en  mes  concentració  es   la   topo   II   i  una  anomenada  SMC.  Per   tant  aquestes  dues  potser  que  

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.33

----------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.33

----------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.33

----------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.35

----------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.36

----------------------------------------------------------------------------------------------

Page 18: BM-3.Empaquetament Del DNA

tinguin  una  doble  funció  i  que  durant  la  divisió  cèl·∙lula  siguin  les  que  estiguin  presents  en  el  scaffold.    Es  sap  que  el  scaffold  pot  contenir  mes  de  100  proteïnes  diferents.  Martio:  Rebutja   la  teoria  del  model  de  les   llaçades  radials.  Agafa  un  cromosoma  pels  dos   extrems   amb   unes   micropipetes   molt   petites   i   el   tiba   el   màxim   que   pot.  Posteriorment   digereix   amb   nucleasa  microcoal   i   veu   com   l’estructura   no   es  manté  recta   sinó   que   es   va   corbant   i   finalment   es   trenca.   Si   hi   hagués   un   scaffold   això   no  podria  passar            

7.  Model  capes  primes.  Daban  Definició:   Els   cromosomes   metafísics   s’organitzen   en   lamines   de   6nm   (alçada  nucleosoma)  apilades  una  al   costat  de   l’altre   i  perpendiculars  al  eix  de   la   cromàtide.  Aquestes   lamines   estan   formades   per   interdigitacions   entre   diferents   capes   ja   que  d’aquesta  manera  s’aconsegueix  un  alt  grau  d’empaquetament.    

         

     Aquestes   lamines   es   van   formant   progressivament   ja   que   primer   s’omple   tota   una  capa   i   després   s’omple   la   següent   capa   i   això   fa   que   realment   les   capes   estiguin  connectades  entre  elles  i  formin  un  helicoide  com  pot  ser  una  rampa  d’un  pàrquing                  Per   tal   de   poder   veure   aquestes   imatges   es   necessari   aplicar   unes   condicions   poc  desnaturalitzants  al  cromosoma  i  després  observar-­‐los  sense  presencia  de  ions.    

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.37

----------------------------------------------------------------------------------------------

JR.Daban BIOLOGIA MOLECULAR Figura 6.37

----------------------------------------------------------------------------------------------BIOLOGIA

AVENÇOS

L'activitat genètica en els micronuclis: es potconsiderar realment perdut el DNAmicronuclear?

Aquesta recerca ha estudiat la naturalesa delsmicronuclis, estructures produïde per irregularitatsen el procés de divisió cel·lular. Els resultatsindiquen que la pròpia naturalesa dels micronuclisés la responsable de la destinació que pateixen, elquè suposa un avenç important en el coneixementd'aquestes estructures utilitzades per detectarinestabilitats cromosòmiques.[+]

AVENÇOS

Un fàrmac redueix en ratolins la por causadaper traumes previs

Haver viscut una experiència traumàtica afavoreix lapersistència de la por associada a un estímulaversiu, una por condicionada que es pot alleujar enratolins amb una sola dosi de 7,8-dihidroxiflavona,un derivat flavonoide que potencia nousaprenentatges emocionals. El fàrmac podria sereficaç per tractar trastorns d'estrès post traumàtic,de pànic i fòbies en persones.[+]

AVENÇOS

La virulència del Streptococcus suis queda aldescobert

Investigadors de la UAB, amb col·laboració amb elGREMIP de Quebec, han aconseguit produir unsmutants de Streptococcus suis amb unadesregularització en el transport de zinc i de ferroque han mostrat una capacitat infecciosa moltatenuada. Aquesta recerca obre les portes per aldesenvolupament de vacunes efectives contraaquest patogen.[+]

AVENÇOS

Lluitar contra els virus a les granges seguint laseva evolució filogenètica

La irrupció de l'anàlisi genètica com a mètode dediagnosi de malalties ha suposat un avenç importantdel que la indústria ramadera s'està beneficiant.L'estudi de les seqüències de nucleòtids dels viruspermet fer reconstruccions filogenètiques quepermetran deduir característiques d'aquests agentspatògens, podent seguir l'evolució del virus i traçarl'origen d'un brot.[+]

A A A Contrast +/- Castellano | English CERCA

ACTIVITATS TESIS ENTREVISTES AVENÇOS A FONS

09/2010 - Nou model estructural en capes primes per al cromosomametafàsic

Experiments realitzats fent servir molt diverses tècniques de microscòpia hanpermès als investigadors del Laboratori de Cromatina de la UAB descobrir que,durant la divisió cel·lular, els cromosomes tenen el DNA empaquetat dins d’unesestructures planes que estan formades de moltes capes molt primes. Aquestesestructures planes estan apilades, omplen tot el volum dels cromosomes iprobablement estan orientades perpendicularment respecte a l’eix central de lescromàtides.

Referències

"Dense chromatin plates in metaphase chromosomes". I. Gállego, P. Castro-Hartmann,J.M. Caravaca, S. Caño i J.R. Daban. European Biophysics Journal, 38 (2009) 503-522.

"Irregular orientation of nucleosomes in the well-defined chromatin plates of metaphasechromosomes". P. Castro-Hartmann, M. Milla i J.R. Daban. Biochemistry, 49 (2010)4043-4050.

En un treball previ del nostre laboratori varem observar plaques formades per vàriescapes a l’entorn de cromosomes humans parcialment desnaturalitzats en presència deconcentracions iòniques properes a les que existeixen en la metafase. Aquesta inesperadaobservació ens ha portat a realitzar una extensa investigació sobre aquestes estructureslaminars. Els nostres resultats de microscòpia electrònica de transmissió (TEM) mostrenque les plaques també es poden veure en els cromosomes metafàsics de pollastre, unaespècie evolutivament molt allunyada dels humans. Hem observat que la simple diluciódels cromosomes amb solucions hiposmòtiques pot transformar tota la cromàtida enplaques esteses multilaminars. A partir d’aquests resultats hem suggerit que elscromosomes condensats estan formats per plaques de cromatina apilades i perpendicularsa l’eix de les cromàtides. Els cromosomes natius són molt compactes; per això les plaquestan sols es poden veure quan els cromosomes estan parcialment desnaturalitzats.

Hem emprat microscòpia de força atòmica (AFM) per obtenir imatges i per investigar lespropietats mecàniques de les plaques directament en medi aquós. Les plaques tenen ungruix petit (aproximadament 6 nm) però són compactes i resistents a la penetració de lasonda del microscopi; es necessita una força de 5 nN per a la completa penetració de laplaca amb la punta de la sonda. La incubació amb medis de molt baixa concentració iònicaprovoca l’emanació de fibres de cromatina exclusivament a la perifèria de les plaques.Aquest estudis demostren que el filament de cromatina es troba fortament lligat a leszones internes de les plaques.

Hem investigat l’estructura de les plaques mitjançant microscòpia electrònica de rastreig(SEM), criomicroscòpia electrònica i tomografia electrònica. Les reconstruccionstridimensionals obtingudes en els estudis de tomografia indiquen que les plaques tenenuna superfície llisa, sense estructures repetitives que puguin ésser interpretades com aorganitzacions regulars dels nucleosomes.

També hem estudiat els cromosomes dins de cèl·lules metafàsiques en solució aquosamitjançant microscòpia de polarització. Els resultats mostren que els cromosomes no sónbirefringents en condicions iòniques similars a les emprades amb les plaques. Aquestaobservació és incompatible amb l’existència de columnes paral·leles de nucleosomes dinsels cromosomes.

No hem detectat doncs cap orientació regular dels nucleosomes, però els nostres resultatsindiquen que la cromatina en els cromosomes natius està organitzada formant plaquesben definides. Per poder justificar el petit gruix que hem observat per les plaques, hemsuggerit que molt probablement hi ha una interdigitació de les successives capes. Pensemque la compactació aconseguida és necessària per la transferència segura del DNAgenòmic a les cèl·lules filles durant la mitosi. El model de les plaques primes aporta unainterpretació completament nova de l’estructura del cromosoma metafàsic. El nostremodel dóna les bases físiques per poder explicar de manera senzilla la formació de lesbandes dels cromosomes que són estudiades en les anàlisis citogenètiques.

Les imatges de TEM, SEM, i de criomicroscòpia i tomografia electrònica han estatobtingudes al Servei de Microscòpia de la UAB, les imatges d’AFM i els espectres de forçaals Serveis Científico-Tècnics de la UB, i les imatges de microscòpia de polarització alServei de Tractament i Anàlisi d’Imatges de la UAB.

Nou model estructural en capes primes per al cromosoma metafàsic U... http://www.uab.cat/servlet/Satellite?cid=1096481464166&pagename...

1 de 2 12/04/2011 19:49

BIOLOGIA

AVENÇOS

L'activitat genètica en els micronuclis: es potconsiderar realment perdut el DNAmicronuclear?

Aquesta recerca ha estudiat la naturalesa delsmicronuclis, estructures produïde per irregularitatsen el procés de divisió cel·lular. Els resultatsindiquen que la pròpia naturalesa dels micronuclisés la responsable de la destinació que pateixen, elquè suposa un avenç important en el coneixementd'aquestes estructures utilitzades per detectarinestabilitats cromosòmiques.[+]

AVENÇOS

Un fàrmac redueix en ratolins la por causadaper traumes previs

Haver viscut una experiència traumàtica afavoreix lapersistència de la por associada a un estímulaversiu, una por condicionada que es pot alleujar enratolins amb una sola dosi de 7,8-dihidroxiflavona,un derivat flavonoide que potencia nousaprenentatges emocionals. El fàrmac podria sereficaç per tractar trastorns d'estrès post traumàtic,de pànic i fòbies en persones.[+]

AVENÇOS

La virulència del Streptococcus suis queda aldescobert

Investigadors de la UAB, amb col·laboració amb elGREMIP de Quebec, han aconseguit produir unsmutants de Streptococcus suis amb unadesregularització en el transport de zinc i de ferroque han mostrat una capacitat infecciosa moltatenuada. Aquesta recerca obre les portes per aldesenvolupament de vacunes efectives contraaquest patogen.[+]

AVENÇOS

Lluitar contra els virus a les granges seguint laseva evolució filogenètica

La irrupció de l'anàlisi genètica com a mètode dediagnosi de malalties ha suposat un avenç importantdel que la indústria ramadera s'està beneficiant.L'estudi de les seqüències de nucleòtids dels viruspermet fer reconstruccions filogenètiques quepermetran deduir característiques d'aquests agentspatògens, podent seguir l'evolució del virus i traçarl'origen d'un brot.[+]

A A A Contrast +/- Castellano | English CERCA

ACTIVITATS TESIS ENTREVISTES AVENÇOS A FONS

09/2010 - Nou model estructural en capes primes per al cromosomametafàsic

Experiments realitzats fent servir molt diverses tècniques de microscòpia hanpermès als investigadors del Laboratori de Cromatina de la UAB descobrir que,durant la divisió cel·lular, els cromosomes tenen el DNA empaquetat dins d’unesestructures planes que estan formades de moltes capes molt primes. Aquestesestructures planes estan apilades, omplen tot el volum dels cromosomes iprobablement estan orientades perpendicularment respecte a l’eix central de lescromàtides.

Referències

"Dense chromatin plates in metaphase chromosomes". I. Gállego, P. Castro-Hartmann,J.M. Caravaca, S. Caño i J.R. Daban. European Biophysics Journal, 38 (2009) 503-522.

"Irregular orientation of nucleosomes in the well-defined chromatin plates of metaphasechromosomes". P. Castro-Hartmann, M. Milla i J.R. Daban. Biochemistry, 49 (2010)4043-4050.

En un treball previ del nostre laboratori varem observar plaques formades per vàriescapes a l’entorn de cromosomes humans parcialment desnaturalitzats en presència deconcentracions iòniques properes a les que existeixen en la metafase. Aquesta inesperadaobservació ens ha portat a realitzar una extensa investigació sobre aquestes estructureslaminars. Els nostres resultats de microscòpia electrònica de transmissió (TEM) mostrenque les plaques també es poden veure en els cromosomes metafàsics de pollastre, unaespècie evolutivament molt allunyada dels humans. Hem observat que la simple diluciódels cromosomes amb solucions hiposmòtiques pot transformar tota la cromàtida enplaques esteses multilaminars. A partir d’aquests resultats hem suggerit que elscromosomes condensats estan formats per plaques de cromatina apilades i perpendicularsa l’eix de les cromàtides. Els cromosomes natius són molt compactes; per això les plaquestan sols es poden veure quan els cromosomes estan parcialment desnaturalitzats.

Hem emprat microscòpia de força atòmica (AFM) per obtenir imatges i per investigar lespropietats mecàniques de les plaques directament en medi aquós. Les plaques tenen ungruix petit (aproximadament 6 nm) però són compactes i resistents a la penetració de lasonda del microscopi; es necessita una força de 5 nN per a la completa penetració de laplaca amb la punta de la sonda. La incubació amb medis de molt baixa concentració iònicaprovoca l’emanació de fibres de cromatina exclusivament a la perifèria de les plaques.Aquest estudis demostren que el filament de cromatina es troba fortament lligat a leszones internes de les plaques.

Hem investigat l’estructura de les plaques mitjançant microscòpia electrònica de rastreig(SEM), criomicroscòpia electrònica i tomografia electrònica. Les reconstruccionstridimensionals obtingudes en els estudis de tomografia indiquen que les plaques tenenuna superfície llisa, sense estructures repetitives que puguin ésser interpretades com aorganitzacions regulars dels nucleosomes.

També hem estudiat els cromosomes dins de cèl·lules metafàsiques en solució aquosamitjançant microscòpia de polarització. Els resultats mostren que els cromosomes no sónbirefringents en condicions iòniques similars a les emprades amb les plaques. Aquestaobservació és incompatible amb l’existència de columnes paral·leles de nucleosomes dinsels cromosomes.

No hem detectat doncs cap orientació regular dels nucleosomes, però els nostres resultatsindiquen que la cromatina en els cromosomes natius està organitzada formant plaquesben definides. Per poder justificar el petit gruix que hem observat per les plaques, hemsuggerit que molt probablement hi ha una interdigitació de les successives capes. Pensemque la compactació aconseguida és necessària per la transferència segura del DNAgenòmic a les cèl·lules filles durant la mitosi. El model de les plaques primes aporta unainterpretació completament nova de l’estructura del cromosoma metafàsic. El nostremodel dóna les bases físiques per poder explicar de manera senzilla la formació de lesbandes dels cromosomes que són estudiades en les anàlisis citogenètiques.

Les imatges de TEM, SEM, i de criomicroscòpia i tomografia electrònica han estatobtingudes al Servei de Microscòpia de la UAB, les imatges d’AFM i els espectres de forçaals Serveis Científico-Tècnics de la UB, i les imatges de microscòpia de polarització alServei de Tractament i Anàlisi d’Imatges de la UAB.

Nou model estructural en capes primes per al cromosoma metafàsic U... http://www.uab.cat/servlet/Satellite?cid=1096481464166&pagename...

1 de 2 12/04/2011 19:49