I. Introducción

A. Marco teórico

La interacción biológica entre un parásito y su hospedador es el tipo de

interacción interespecífica más especializada y recibe nombre de

parasitismo. El parásito vive a expensas del hospedador, se alienta de

sus tejidos o sustancias metabólicas.

La interacción hospedador- parasito suele ser muy compleja e involucra

entre otras, características genéticas, biológicas y ecológicas. Esta

relación se manifiesta por lo específico que es hacia su hospedador.

El daño relativo que sufre el hospedador varía dependiendo de condición

general del individuo. Los parásitos pueden modificar la supervivencia de

sus hospedadores, ya bien sea de forma directa, matando al

hospedador: o indirectamente, cuando aumenta su vulnerabilidad frente

a otros microorganismos. También pueden alterar la capacidad

reproductiva y la tasa de crecimiento.

La parasitosis en particular se localizan en ambientes llamados focos

naturales. Son unidades ecológicas o porciones de un cierto paisaje,

que incluyen una comunidad de animales formadas por el parásito,

vectores, hospedadores y el ambiente externo factible para su

persistencia.

La Fasciola hepática pertenece al Phylum: Platyhelminthes, Clase:

Trematoda, Subclase: Digenea, Orden: Echinostomata, Superfamilia:

Echinostomatoidea.

El ciclo de vida de los digeneos involucra un hospedador definitivo, en

general un vertebrado, donde el parásito alcanza la madurez sexual, por

lo menos un hospedador intermediario, donde se produce la

multiplicación larval (esporoquiste, redias y cercarias) y estadios de vida

libre (miracidios y cercarias). El primer hospedador intermediario

generalmente es un caracol con respecto al cual los digeneos poseen

una gran especificidad. El estadio infectivo para el hospedador definitivo

es la metacercaria y para el primer hospedador intermediario, el

miracidio.

Si bien el hospedador intermediario juega un rol fundamental en el ciclo

de transmisión porque el parásito se multiplica asexualmente en él y

aumenta en forma exponencial el número de larvas. Para entender el

modo de transmisión en este tipo de ciclos es esencial conocer la

biología de los hospedadores intermediarios y definitivos. Más aún, la

dinámica de transmisión de las infecciones por digeneos sólo puede ser

comprendida teniendo en cuenta los factores abióticos que regulan las

poblaciones de hospedadores intermediarios y aquellos que influyen en

el desarrollo de los estadios de vida libre del parásito.

1. Ciclo de vida de Facciola hepática

El ciclo de vida de F. hepática puede dividirse en tres fases:

A) dentro del hospedador definitivo (juveniles, adultos y huevos)

B) dentro del hospedador intermediario (esporoquistes, redias y

cercarias)

C) en el medio ambiente (huevos, miracidios, cercarias y

metacercarias).

Con respecto a los hospedadores intermedios, la Facciola hepática

necesita estar en su estado miracidio para comenzar su infección.

Los miracidios, al igual que otros estadios larvales de vida libre no se

alimentan, por lo que tienen aprox. 24 horas antes de que se acaben

sus reservas para encontrar y penetrar en el caracol. Los miracidios

de F. hepática poseen fototropismo positivo y geotropismo negativo,

lo cual les facilita encontrar al caracol, ya que los lymneidos suelen

vivir en los bordes de arroyos o pequeños cuerpos de agua y en

ambientes con poca profundidad. La penetración del miracidio ocurre

por cualquier parte del cuerpo del caracol aunque es más exitosa por

la cavidad pulmonar. En el caracol se produce la multiplicación

asexual de Facciola hepática. Dentro del caracol el miracidio se

transforma en el siguiente estadio larval, el esporoquiste que migra

hacia el hepatopáncreas. El esporoquiste tiene forma de bolsa y

contiene masas de células germinales que darán origen a las redias.

Las redias maduras abandonan el esporoquiste rompiendo su pared

del cuerpo y se desarrollan en el mismo caracol. Miden entre 1 y 3

mm, poseen una boca, una faringe y un intestino ciego y se

alimentan de los tejidos del caracol, causándole daños importantes

en el aparato digestivo y reproductor.

Las redias poseen células germinales en el extremo posterior de su

cuerpo a partir de las cuales se desarrollan las cercarias. Cuando las

condiciones ambientales son desfavorables las redias pueden

producir una segunda generación de redias, retrasando la producción

de cercarias hasta que mejoren las condiciones. Por cada miracidio

que penetra en el caracol pueden desarrollarse entre 800 y 4.000

cercarias. Las cercarías maduras abandonan las redias y rompen el

tejido del caracol saliendo al medio ambiente. La salida de las

cercarias suele ocurrir entre las 4 y 7 semanas posteriores al ingreso

de los miracidios y es estimulada por la luz, debido a que éstas

poseen fototropismo positivo. La temperatura óptima para la salida de

las cercarias coincide con la temperatura a la cual el caracol alcanza

su máxima actividad. Las cercarias son el segundo estadio de vida

libre en el ciclo de Facciola hepática y al igual que los miracidios no

se alimentan, por lo que su expectativa de vida (24 horas

aproximadamente) depende, entre otros factores, de la temperatura

externa y de la cantidad de glucógeno y grasas que acumularon

durante su fase en el caracol. Al aumentar la temperatura en el

ambiente, aumenta la cantidad e intensidad de los movimientos y, en

consecuencia, disminuyen más rápidamente sus reservas. Una vez

en el agua las cercarias se dirigen hacia la superficie y nadan

activamente en busca de un lugar donde enquistarse. Para hacerlo

se adhieren a hojas, piedras, superficie del agua, donde pierden la

cola y secretan una sustancia gelatinosa que las cubre y las protege.

Los quistes o metacercarias son el estadio infectivo para el

hospedador definitivo y constituyen formas de resistencia, ya que

bajo determinadas condiciones pueden sobrevivir y permanecer

infectivas por mucho tiempo.

2. Características de la infección por Facciola hepática en el hospedador intermediario

Fasciola hepática posee una gran especificidad hacia su hospedador

intermediario ya que sólo se desarrolla en caracoles de la familia

Lymnaeidae. Estos caracoles están distribuidos en todo el mundo

aunque son más abundantes en las zonas templadas del Hemisferio

Norte. Son caracoles pulmonados, en su mayoría anfibios, capaces

de vivir sobre el fango aunque existen algunas especies más

acuáticas que se desarrollan a varios centímetros de profundidad.

Habitan una gran variedad de ambientes dulceacuícolas temporarios

y permanentes, poco profundos, de aguas claras con poca corriente,

etc. No todas las especies de lymneidos son igualmente susceptibles

a Facciola hepática y tanto los factores extrínsecos (condiciones

ambientales de cada región) como los intrínsecos (estado nutricional,

tamaño, madurez sexual, etc.) influyen en el rol de cada especie

como hospedador intermediario. Algunos lymneidos actúan como el

hospedador intermediario principal de Facciola hepática y otros

juegan un rol secundario en la transmisión del parásito. En la mayoría

de los países de América del Sur Lymnaea viatrix, L. cubensis y L.

truncatula están identificadas como los principales hospedadores de

Facciola hepática.

Los moluscos de la familia Lymnaeidae que se comportan como

huéspedes intermediarios naturales de Facciola hepática en el Perú

pertenecen a 3 especies: Fossaria viatrix. Lymnaea diaphana y

Lymnaea columella, cuya distribución a nivel nacional no está

plenamente establecida.

3. Identificación de Facciola hepática en hospedador intermedio

La identificación de F. hepatica en el hospedador intermediario puede

realizarse a partir de diferentes técnicas. Por un lado están las

técnicas directas como el aplastamiento, la disección de los caracoles

o la observación de emisión de cercarias, que se basan en las

características morfológicas del parásito. El aplastamiento de los

caracoles es el método más utilizado para detectar infección en

caracoles provenientes del campo, a pesar de que sólo brinda

información sobre la prevalencia de infección. La disección de los

caracoles es el método más usado en infecciones experimentales ya

que permite calcular la prevalencia, la intensidad y la producción de

cercarias. La observación de emisión de cercarias puede utilizarse

para evaluar la eficiencia de esa especie como hospedador

intermediario y su contribución a la contaminación de las pasturas,

pero no es un buen indicador de la prevalencia ya que muchos

caracoles no emiten cercarias, a pesar de estar infectados con

cercarias maduras. Tampoco es un buen indicador de la intensidad

de la infección ya que sólo tiene en cuenta a las cercarias. Si se

utilizan estas técnicas, la identificación de F. hepatica debe realizarse

a partir de las características morfológicas de las cercarias maduras,

ya que presentan caracteres diagnósticos específicos. En cambio, las

redias de F. hepatica poseen caracteres morfológicos similares a

otras redias de la superfamilia Echinostomatoidea, que también

pueden infectar a los caracoles lymneidos. Por lo tanto, cuando se

trabaja con lymneidos infectados naturalmente y no existe

información sobre que otras especies de Echinostomatoideos están

presentes en la zona de estudio, la determinación específica debe

realizarse a partir de las características morfológicas de las cercarias

maduras y no de las redias. Por otro lado, existen técnicas

moleculares para identificar a Facciola hepatica en el hospedador

intermediario, como las de hibridización/transferencia de ARN y/o

ADN y las de PCR. Las primeras no se utilizan en el campo ya que

requieren el uso de moléculas radiactivas o quimioluminiscentes y de

equipos sofisticados y costosos. Las técnicas de PCR frecuentemente

son consideradas las mejores debido a su gran sensibilidad y

especificidad.

En comparación con estas técnicas moleculares, el aplastamiento y la

disección de los caracoles son métodos simples, de bajo costo, que

permiten detectar en forma directa infecciones naturales y

experimentales e identificar distintos estadios larvales del parásito.

Sin embargo, el cálculo de la prevalencia y la intensidad de infección

suele ser lenta, laboriosa y sólo puede realizarse en caracoles muy

infectados.

4. Morfología e identificación de Lymnaea

Lymnaea es un género de caracoles agua dulce (dulceacuícolas) de

la familia Lymnaeidae, caracterizados por ser caracoles de estanque.

Refiriéndonos a su taxonomía de este género Lymnaea, pertenecen

a:

Familia: Lymnaeidae

Sub-orden: Basommatophora

Orden: Pulmonada

Sub-clase: Eythyneura

Clase: Gasterópodo

Fillum: Mollusco

Los moluscos constituyen el segundo fillum más numeroso en

especies, luego de los artrópodos. Desde el mar, los bivalvos y los

gasterópodos colonizaron ambientes dulceacuícolas, solo los

caracoles lograron invadir el medio terrestre.

Lymnaea spp., es un pequeño molusco perteneciente a la familia de

caracoles dulceacuícolas, dextrógiro, anfibio, cuya cascara tiene a

general color a tierra y los mayores y más grandes ejemplares

alcanzan un centímetro.

Se trata de un animal pulmonado y necesita en consecuencia aire

para respirar.

Es un gasterópodo que prefiere los suelos húmedos y está muy

influenciado por la temperatura, a tal punto que debajo de 10°C se

detiene su ciclo.

Una temperatura ambiental media igual o superior a 10°C es

necesario tanto para la reproducción de los caracoles como para el

desarrollo de la Fasciola Hepática dentro del caracol; ambos

procesos que se paralizan a 5°C.

El pH del medio óptimo para su desarrollo es ligeramente ácido, pero

no excesivamente ácidos ya que estos son perjudiciales.

Puede vivir varios meses inactivos en el barro seco, así como

sobrevivir a las bajas temperaturas.

El potencial biótico de los moluscos es destacado ya que un solo

individuo puede producir miles de caracoles nuevos, con una óptima

temperatura, en tres meses.

Son animales hermafroditas de reproducción cruzada, por lo que para

que se reproduzcan hará falta tener al menos dos individuos, que

realizan varias puestas, generalmente a fines de la estación de

verano. Los lugares más escogidos para la puesta son plantas

naturales, troncos o los mismos cristales del acuario.

Tras la cópula depositan bolsas de huevos gelatinosos. Los huevos

contienen un solo embrión, eclosionan en otoño (después de un

periodo entre 14 18 días) y tardan tres meses en alcanzar la

madurez sexual. El desarrollo embrionario está influenciado por la

concentración de oxígeno en el agua lo que a su vez es función de la

temperatura.

Sus conchas tienen forma cónica piramidal, son de tamaño pequeño,

alargadas, lisas pero con estrías longitudinales muy apretadas,

compuestas por cinco anfractos muy convexos, separados por una

sutura profunda. Acaba en forma de punta pronunciada. Su giro es

dextrógiro (al contrario de las Physas, que lo tienen con giro levógiro,

por lo que se les diferencia fácilmente). Son de color marrón oscuro,

raras veces gris oliva, con una manto de colores grisáceos oscuros.

Con respecto a sus antenas, estas son triangulares y aplanadas, lo

que le diferencia de otros caracoles que las tienen tentaculiformes.

Con respecto al aparato reproductor; su pare masculina se aprecia

que la vaina peniana es cilíndrica y delgada, en su extremo proximal

presenta la cámara apical con algunas protuberancias. El pene muy

delgado, de forma acicular y con un orificio terminal, tiene

aproximadamente la misma longitud que la vaina peniana. El prepucio

es cilíndrico, más grande y grueso que vaina peniana. El complejo

peniano se encuentra sostenido por músculos.

Su parte femenina; presenta ovotestis con lóbulos aplanados, la

glándula nidamental desarrollada y con aspecto acinoso,

espermateca sacular y ovoide

Con respecto a la rádula, presenta 90 hileras transversales, el diente

central es monocúspide pero acompañado de una pequeña cúspide,

los laterales son triangulares cónicos y generalmente bicúspides, los

intermedios son tricúspides notándose una fuerte depresión que

permite formar la cúspide derecha, los dientes marginales son

multicúspides.

La identificación presenta marcada variabilidad en su concha y su

uniformidad anatómica de la especie Lymnae como vector, es de

suma importancia para determinar zonas de riesgo por presentar un

serio peligro de infección al haberse demostrado que los ejemplares

con más talla son potencialmente transmisores de enfermedades.

Habita en cursos de agua lenta o estancada, entre ellos encontramos

pantanos acequias de estanques, charcas temporales, riachuelos y

embalses. Frecuenta aguas duras y algo alcalinas donde pueden

formar su concha en buenas condiciones.

Gusta de disponer de abundante vegetación donde encuentra

alimento y refugio.

Puede vérselas fuera del agua sobre la vegetación de ribera aunque

la mayor parte del tiempo se encuentra sumergidas.

El género Lymnae presenta una gran variedad de especies

dependiendo de los países, zonas y medios geográficos en las que se

encuentra, pero solo ciertas especies son hospedadores intermedios

para la Fasciola Hepática.

En Colombia se han encontrado: Lymnaea ubaquensis, Lymnaea

bogotensis, Lymnaea columella, pero especialmente el principal

hospedador es Lymnaea cousini.

En Perú, se han descrito 3 especies del género Lymnae,

naturalmente infectadas con formas larvarias de Fasciola Hepática:

Lymnaea viator (Fossaria viatrix) en Cajamarca y valle del Mantaro.

(Grados e Ibáñez, 1971 ; Bendezú 1970)

Lymnaea diaphana en Arequipa (Córdoba y cols, 1961)

Lymnaea columella (Pseudosuccinea columella) en Tingo María

(Tantaleán y cols, 1976)

Sin embargo, el Perú cuenta con varias zonas endémicas de

distomatosis hepática en los que no se conoce la especie de

Lymnaea involucrada.

La Fossaria viatrix parece tener amplia dispersión en nuestro país,

abarcando desde zonas cálidas y templadas a nivel del mar hasta las

muy frías que sobrepasan los 4000msnm por tal motivo que es

posible encontrar diferencias morfo-anatómicas entre especímenes

de poblaciones de cada una de estas zonas.

II. Antecedentes

Atias y Pesse (1965) comentaron que Fasciola hepatica tiene como

hospedadores definitivos preferenciales a los rumiantes, sin embargo es capaz

de infectar a una gran variedad de mamíferos, incluidos los seres humanos, lo

que le confiere, además de importancia económica, gran relevancia en salud

pública por su carácter zoonótico. Ante la existencia de lugares propicios para

el desarrollo de poblaciones de moluscos miembros de la

familia Lymnaeidae hay que estar alertas. Ante la sospecha de fascioliasis

debe de realizarse una anamnesis correcta, se verá si existen zonas húmedas,

con corrientes de agua lenta se hará una búsqueda de éstos caracoles tratando

de detectar su presencia. Generalmente el propietario de los animales conoce

alguna historia previa de la enfermedad.

 

Malek y Cheng (1974) describen los moluscos miembros de la

familia Lymnaeidae como habitantes de agua dulce, con concha sin opérculo, y

tiene giros enrollados en espiral, siempre en forma dextrógira, o sea la abertura

se encuentra a la derecha al colocar el caracol con el ápice hacia arriba. Son

hermafroditas, con hábitos anfibios, viven en las márgenes húmedas de la

vegetación, o sobre el lodo del fondo acuático alimentándose de detritos

vegetales y materia orgánica. Los hábitat permanentes de Lymnaea son lagos,

lagunas, ríos tranquilos, áreas pantanosas y terrenos sedimentares cubiertos

con  gramíneas con agua todo el año.

Meléndez y col. (1983) señalaron que en Venezuela, la fascioliasis tiene

especial importancia, por las características de su clima cálido y húmedo, que

con sus dos épocas climáticas, de sequía y lluvia, proporcionan las condiciones

ecológicas favorables para la ocurrencia del ciclo del agente etiológico. 

Según la FAO (1994), la distomatosis acarrea graves pérdidas económicas al

incidir sobre animales productivos como vacunos, ovinos, cabras y búfalos. Se

ha estimado que en el mundo hay más de 300 millones de bovinos y 250

millones de ovinos que están expuestos a éstas parasitosis. La presencia de

éste parásito en el hombre no debe ser subestimada. La distribución de la

enfermedad depende de la presencia de un caracol acuático del

género Lymnaea cuyas especies son propias de cada área. La construcción de

embalses para riegos ha contribuido para su difusión debido a que las

superficies de agua han favorecido la diseminación de los caracoles huéspedes

intermediarios.

Olaechea (2004) describe el ciclo de Fasciola hepatica involucrando a los

diferentes mamíferos como huéspedes, considerando así su importancia como

parásito zoonótico.

Como refieren Biagi y colaboradores (1996), la primera referencia escrita en

que se describe el agente etiológico de la fasciolosis es la que hizo Jean de

Brie en 1379, cuando se refirió a Fasciola hepatica como el agente causal de la

putrefacción del hígado. En 1686 Redi hizo el primer dibujo del parásito. Las

cercarias y redias, que son estadios larvarios del parásito, fueron descritos por

Swammerdam en 1737 y Linneo en 1758 le dio el nombre que tiene

actualmente: Fasciola hepatica. Pallas lo identifica como parásito del hombre y

lo menciona por primera vez en 1818. Thomas, en 1880, identifica a los

caracoles pulmonados de agua dulce de la especieLynmaea trucantula como

huéspedes intermediarios de Fasciola hepatica.

Carrada-Bravo (2002) describe el ciclo de Fasciola hepatica (Figura 4), y cita

que los huevos de Fasciola hepatica son eliminados junto con las heces de los

individuos infectados, al caer en agua dulce, embrionan y en pocos días

permiten la salida de una larva ciliada llamada miracidio, la cual debe encontrar

un huésped intermediario para continuar su ciclo; estos huéspedes

intermediarios son caracoles de la familiaLymnaeidae; luego que el miracidio

penetra al caracol, se trasforma en esporocisto, que luego de tres semanas

originan varias docenas de redias, que maduran y abandonan al caracol para

inmediatamente originar cercarias, éstas secretan un material mucilaginoso que

les permite enquistarse en las hojas de la vegetación acuática, y formar las

cercarias enquistadas o metacercarias, que al ser ingeridas por los animales o

el hombre, continúan su desarrollo en el tubo digestivo y al cabo de 15 días

aproximadamente alcanzan el hígado y se localizan en los canalículos biliares.

 

La OPS (2005) define la fascioliasis como una enfermedad del hígado causada

por un gran trematodo llamado Fasciola hepatica, que es un parásito natural de

ovinos, bovinos y animales afines, el cuál utiliza a moluscos del

género Lymnaea como huéspedes intermediarios; se han diagnosticado casos

en humanos en 61 países, principalmente en zonas de cría de éstos animales,

sin embargo, por lo regular los humanos se consideran huéspedes

accidentales.

Antecedentes estadísticos en Perú:

Se realizaron investigaciones entre los años 1997 y 2006, examinándose

especímenes procedentes de diez localidades del país, reconocidas como

zonas de fascioliasis. Se ha estudiado la especie Lymnaea viatrix.

En el mismo estudio anterior, se observó que en lo que respecta a especie más receptiva a la Facciola hepática, donde se demuestra a nivel de laboratorio que la especie con más casos infectados es la Limnae viatrix.

En el mismo estudio anterior, se demuestra que en condiciones de laboratorio, el tamaño ideal del caracol en el caso de Limnae es de 2-4mm y que posee mayor capacidad de infección que le Limnae columella y el periodo de aparición de cercadias ( ultima forma biológica de Facciola hepática en caracoles) es menor en la Limnae viatrix

También se hicieron pruebas en la provincia de Huancavelica para observar el número de escolares y de ganado vacuno infectado por Fasciola hepática.

III. JustificaciónEn Perú la Fasciola hepática prevalece en zonas altas y lluviosas, dicho parásito requiere de la presencia de ciertas condiciones ambientales para su desarrollo,  las cuales son optimas en nuestro país, favoreciendo la propagación del microorganismo al interior de la población bobina  de la región.

En el Perú, la fasciolosis se registra principalmente en la población rural alto- andina que practica la crianza de ganado. Las zonas endémicas identificados en nuestro país, se ubican en el trapecio andino, teniendo como ejemplo a poblaciones dentro de los departamentos de Junín (Huertas- Julcán : 21,1 % prevalencia de Fasciola hepatica ) , Cajamarca (29, 1%) y Puno ( Asillo: 25,4% ) de acuerdo al diagnóstico por medio de pruebas serológicas en población general.

Se han identificado múltiples factores climáticos, biológicos, topográficos y humanos que favorecen la perpetuación del ciclo vital del parásito. Dentro de las que se relacionan al estudio cabe destacar las bajas temperaturas, los climas húmedos, presencia de ganado y pastizales silvestres cercanos a fuentes de agua renovables así como falta de drenajes. Dentro de los factores humanos se han señalado algunos como el consumo de vegetales crudos de tallo corto y agua no pasteurizada de manantiales, canales o acequias

La fasciolosis es una enfermedad causada por el tremátode Fasciola hepatica, que afecta a animales herbívoros, omnívoros y ocasionalmente al ser humano, cuando se aloja a nivel de los canalículos biliares ocasionando una clínica de tipo obstructivo y compresivo hepato-biliar. 

Nuestra hipótesis es que el número de casos de fasciolosis en el Perú ha aumentado en los últimos años y emerge dentro de las más importante parasitosis en este país. Una evaluación cronológica de los casos reportados en los principales Centros de Salud del país en las décadas pasadas, podría responder esta hipótesis. Por ello, el objetivo del presente estudio es estudiar, analizar y reportar el número de casos humanos con infección por F. hepática en el Perú desde 1963 al 2013 diagnosticados por métodos serológicos y/o coproparasitológicos.

IV PROBLEMAExpresión de Fasciola hepática en Limnaea (Fossaria) viatrix

V. HIPOTESISSi la fasciola hepática presenta un huésped intermediario, entonces esta se expresara con distintas etapas evolutivas en la Limnaea

VI. OBJETIVOS

. Identificar la fasciola hepática en la Limnaea

. Identificar como se manifiesta la fasciola hepática en la Limnaea

. Identificar las consecuencias que puede traer la fasciola hepática en la Limnaea

.Identificar las fases evolutivas de la fasciola presentes en Limnaea

III. Material y Métodos

1. Tipo de investigación

2. Muestra:

a). Localidad de colección:

Huinco está situada a orillas del río Santa Eulalia, distrito de Santa

Eulalia, provincia de Huarochirí, departamento de Lima.

76°30´37´´ de Longitud y 11°54’6’’ de Latitud y a 1.850 msnm.

Cuenta con una población de 250 personas, entre pobladores de

la zona y trabajadores de la central hidroeléctrica.

La localidad de Huinco es una zona agrícola y frutera por

excelencia. No existe ganadería en forma permanente, solo

temporalmente ciertos carneros y cabras.

b). Recolección de muestras:

Se recolectaron caracoles provenientes de las zonas aledañas del

río Santa Eulalia, en la localidad de Huinco, en seis visitas en la

localidad de estudo.

Se recolectaron 398 caracoles en el río Santa Eulalia, afluente del

Río Rímac y en una pequeña acequia que corre paralela al río.

De todos los caracoles obtenidos, 54 eran los tipos de caracoles

que pueden ser huéspedes intermediarios de Facciola Hepática

(Lymnaea y Physa).

El estudio de la infección de los caracoles por estadíos larvarios,

se llevó a cabo en el laboratorio de la sección de Parasitología del

Instituto de Medicina Tropical “Daniel Alcides Carrión”.

Antes de llevar a cabo este examen, los caracoles estuvieron en

observación por dos semanas, con el fin de detectar si alguno de

ellos presentaban cercarías próximas a salir o redas maduras.

c) Criterio de inclusión

- Morfología de caracol que cumpla con las descripción del género

Lymnaea

- Giro de la concha del caracol de forma dextrógira (Lymnaea)

d) Criterios de exclusión

- Tamaño, forma de antenas y color diferentes a la descripción del

género Lymnaea.

- Giro de la concha del caracol de forma levógira (Physas)

3) Método

a) Obtención de muestras:

b). Identificación

VII. ÉTICA

El consentimiento informado fue obtenido de los docente de parasitología a quienes se les informó sobre la naturaleza del trabajo, y se les pidió el uso de los materiales del laboratorio para la experimentación. Los doctores del curso fueron informados de los objetivos del estudio a través de un avance del proyecto.