David Saldarriaga
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Experiencias exitosas en el desarrollo de especies acuícolas:
Langostino
David E. Saldarriaga YacilaIngeniero Pesquero, Magíster en Acuicultura
Docente de la Universidad Nacional de Tumbes, Perú
EXPOACUÍCOLA 2009, PERÚ
I FERIA INTERNACIONAL ESPECIALIZADA EN ACUICULTURA
CALLAO, PERÚ2009
Ubicación de langostineras en Tumbes
Situación del cultivo de langostinos en Tumbes (Dirección de la Producción de Tumbes, 2008)
se desarrolla en Tumbes, desde fines de la década del 1970, cuenta actualmente con un área autorizada de 5 658,64 ha, de las cuales 4 993,00 ha están autorizadas para mayor escala y 665,64 ha para menor escala. Distribuidas en 54 empresas. La producción de langostino se sostuvo con poslarva de laboratorio, principalmente importada (Ecuador) abasteciéndose también de larva Nacional; sembrándose en el sistema semi-intensivo con densidades que ha variado entre 8 a 15 PL/m2 y en intensivo de 60 a 200 PL/m2. En los cultivos de langostino realizados bajo los sistemas “extensivo” y semi-intensivo, se han obtenido producciones entre 500 a 2 500 kg/ha. En los cultivos con sistema intensivo las producciones fluctúan entre 5 000 a 12 000 kg/ha.
La infraestructura para el sistema de cultivo intensivo, son en estanques de forma cuadrada o rectangular, cuyas áreas varían entre 0,22 a 1,20 Ha. cuyos fondos están revestidos con geomembrana cubiertos con plásticos tipo invernaderos con la finalidad de mantener la estabilidad de la temperatura del agua (28 ºC a 34ºC) para evitar la incidencia del virus de la “mancha blanca” así como aislar el langostino durante la fase de cultivo de una posible contaminación externa.
Cuentan con sistema de aireación, empleando principalmente aireadores de paletas, utilizándose entre 10 a 25 H.P./ha.
Algunas langostineras cuentan con estanques de sedimentación, a donde son vertidos periódicamente los efluentes generados en los estanques de cultivo.
El agua solo en la fase de cosecha es vertida hacia los canales de marea, llegando finalmente al ecosistema del manglar, al no contar las empresas con sistemas de tratamiento.
En el área continental, las empresas autorizadas, no han desarrollado actividad acuícola en el presente año.
El abastecimiento de poslarvas nacionales se realiza con dos laboratorios de producción comerciales: Larvas Marinas (20 a 40 millones/mes) y Marinaazul (60 millones/mes). El segundo, incluye un Centro de Investigación y Producción de post larvas en ciclo completo, la que cuenta con infraestructura de mejoramiento genético, biología molecular, maduración cultivo de algas y larvicultura. Ambas para su propia demanda. Las empresas langostineras importan post larva de laboratorio, principalmente de Ecuador. Las importaciones al mes de octubre (2008) fue 985 951 millares de poslarva, la que representa el 87,66% del total ingresado y 300 000 millares de nauplios, que significa el 79,77% del total registrado en el mismo período; las que han ingresado con certificación libre del virus de la “mancha blanca” WSSV, YHV, IHHNV y bacterias.
El volumen de exportación según evaluación preliminar al mes de septiembre, alcanzó a 3 586,86 TM, con un valor FOB de US $ 22218732.81.
La población económicamente activa en la actividad de acuicultura durante enero-septiembre del 2008 ocupando a 1 750 trabajadores permanentes y 1 100 trabajadores eventuales empleados en cosecha y descabezado.
Los sistemas semi-intensivos tienen una relación de empleo de 0,2 a 0,4 trabajadores/ha (personal técnico y administrativo), de los cuales, aproximadamente el 30% son permanentes.
En los sistemas intensivos, esta relación es de 1,5 a 2,0 trabajadores/ha.
Los laboratorios de producción de poslarvas, en su conjunto, se aproxima en 120 personas.
La cinco plantas procesadoras, emplean 1 500 personas en los distintos turnos (un alto porcentaje de mujeres).
Problemas identificados por la Dirección de la Producción de Tumbes.
Presencia de enfermedades en la actividad acuícola.
Informalidad en el desarrollo de la actividad.
Ingreso ilegal al país de poslarva de langostino de laboratorio.
Evacuación de efluentes provenientes del cultivo directamente al ecosistema.
Dependencia de países extranjeros para el abastecimiento de semilla de langostino.
Uso de sustancias químicas por acuicultores informales.
Falta de un catastro acuícola.
FODA del cultivo de langostinos (Berger 2006)
Fortalezas y Oportunidades– Cultivo de ciclo corto– Existe tecnología y capacidad empresarial– Nuevas tecnologías permiten cultivos en nuevas áreas– Amplias posibilidades en cultivos “tierra adentro”– Existen facilidades logísticas (plantas de proceso)– Especie local apreciada a nivel mundial: L. vannamei– Se domina la producción de post larvas– Prestigio del producto peruano en mercados internacionales– Gremio
Debilidades y Amenazas– Epidemias– Área tradicional escasa y sobrecargada– Conflictos: debilidad institucional y ausencia de ordenamiento territorial– Fluctuación de precios– Ausencia de programas de selección genética
Producción de langostino en Tumbes, Perú (1990 a 2008)Fuente: Dirección Regional de la Producción, Tumbes (2009).
Fenómeno El Niño
1997-1998
Mancha Blanca 1999
Sistemas Semi-
intensivos e Intensivos
10Fuente: Prompex (2006), en Berger (2006)
Mercados en Mercados en 2005 del 2005 del
langostino langostino cultivado cultivado peruanoperuano
El 75% de la exportación nacional de langostinos se hace en forma de “colas” congeladas
Sistemas de cultivo de langostino (Jory 2001)
TEMPERATURA PROMEDIO MENSUAL DE LA MAÑANA DEL AGUA DE ESTANQUES DE CULTIVO 1999 -2004
DOMINGO RODAS S.A. Tumbes - PERU
22
23
24
25
26
27
28
29
30
ENE FEB MAR ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DIC
MES
Tº A
M (
º C)
1999
2000
2001
2002
2003
2004
(Altamirano 2006)
Situación problemática del cultivo de langostino (Saldarriaga 2005)
A causa del WSSV el área langostinera operativa de Tumbes se redujo de 2 800 ha en 1998 hasta 400 ha (14,3%) en el 2000.
La producción disminuyó de 6 000 TM en 1998 hasta 500 TM (8,3%) en el 2000.
Las empresas optaron por dos alternativas: Sistemas semi-intensivos o Sistemas intensivos.
Los cultivos intensivos se iniciaron aplicando la tecnología asiática.
Resultados erráticos (500-5 000 kg/ha) y no prosperó el sistema.
Incremento de medidas de bioseguridad (geomembrana, pozos tubulares, etc.).
Resultados iniciales alentadores (8-12 TM) propician rápido incremento de estas instalaciones (70 has).
Actualmente existen 75 ha con invernaderos, con posible desarrollo de 25 ha.
Área de producción de langostino en Perú (año 2008)
Sistema de cultivoEspejo de agua (ha)
En operación promedio (ha)
Semi-intensivo 3 179,81 2 686,86
Intensivo (Tumbes) 75,19 75,19
Intensivo (Piura) 120,00 120,00
Total 3 375,00 2 882,05
Fuente: Dirección Regional de la Producción, Tumbes (2009).
Parámetros de producción en sistema de cultivo semi-intensivo
Densidad de siembra (PL/m2) 20
Peso promedio (g) 18
Rendimiento (kg/ha) 2 000
Factor de conversión 1,7
Supervivencia (%) 55
Tasa de crecimiento (g/semana) 1,12
Clasificación (Entero/Cola) 50/60
Tiempo de cultivo (días) 130
Costo de producción (U.S. $/ha) 5 600
Precio del langostino (U.S. $/kg) 4,6
Fuente: Langostinera Domingo Rodas S.A. Campaña setiembre-diciembre 2008. Cortesía del Ing. Carlos Altamirano (2009).
Parámetros de producción en sistema de cultivo intensivo.
Densidad de siembra (PL/m2) 80
Peso promedio (g) 15
Rendimiento (kg/ha) 9 600
Factor de conversión 1,5
Supervivencia (%) 80
Tasa de crecimiento (g/semana) 1,4
Clasificación (Entero/Cola) 70/80
Tiempo de cultivo (días) 90
Costo de producción (U.S. $/ha) 24 000
Precio del langostino (U.S. $/kg) 3,60
Fuente: Langostinera Domingo Rodas S.A. Campaña setiembre-diciembre 2008. Cortesía del Ing. Carlos Altamirano (2009).
Filtros de 0,50 mm (500)
Estación de Bombeo
Canal de abastecimiento
Fuente de agua: Canal de Marea
Estanque Sedimentador 1
Estanque Sedimentador 2
Reservorio
Canal de distribución
Estanques de Cultivo
Filtros de 300
Compuerta
Filtros de 200
Compuerta
Tanque de descarga Filtros de 100
Canal de drenaje
Sedimentador o Tratamiento de
agua
Cerco de paño anchovetero (1/2” =
1270)
Filtros de 100
FLUJO DEL DISEÑO DE UN SISTEMA DE CULTIVO INTENSIVO SEMI-CERRADO
Fuente de agua: Canal de Marea
(Saldarriaga 2005)
DOMINGO RODAS S.A.
CUADRO DE COSTO TOTAL DE ESTANQUES INTENSIVOS
CON GEOMEMBRANA E INVERNADERO
COSTO TOTAL /HA COSTO TOTAL /ha (%)
MOVIMIENTO DE TIERRA $ 6,700.00 8.8%
GEOMEMBRANA $ 23,700.00 31.1%
INSTALACION ELECTRICA $ 8,000.00 10.5%
AIREADORES $ 7,600.00 10.0%
OBRAS CIVILES $ 4,000.00 5.3%
VARIOS $ 2,000.00 2.6%
INVERNADERO $ 24,100.00 31.7%
TOTAL/ha = $ 76,100.00 (incluido el IGV)
(Altamirano 2006)
INFRAESTRUCTURA DEL SISTEMA DE CULTIVO INTENSIVO (Saldarriaga 2005)
Diseño de estanques
Tubo (Φ=10”) en el ingreso de agua
Forma cuadrada
Espejo agua: 0,50 ha a 1,00 ha (1,00 ha), Nivel: 1,20 m a 2,00 m (1,40 m en promedio)B.L. de 0,80 m, Pendiente del fondo:
long: 0,3 a 1% (0,80%)
transv: 0,30 a 0,5 %
Arqueta de desagüe (Φ=20”), sifón (Φ=4”)
De tierra Franco arcillosa (40 % a 60 % de arcilla; arcillo-arenosa: 20 % de arcilla)
corona: 4 m
Base promedio de 10 m
Nivel de agua: 1,00 m en la entrada; 1,80 m en la salida, 1,40 m de promedio
Talud interior de 1,50 a 2,00 y talud exterior de 0,5 a 1,00
Revestimiento con geomembrana (HDPE)
Espesor:0,80 a 0,75 mm
Láminas impermeables, resistentes a los rayos ultravioleta del sol, no reacciona con el agua ni despide tóxicos, no son biodegradables
Canales de marea.
Captación de agua:
Bomba axial (Φ=16” a 20”) Motor
eléctricos y mecánicos.
Capacidad de 0,40 a 1,20 m3/s
Canal de distribución
Rectangular, trapezoidal
Abastecimiento: rectangular cemento, 2,00 m3/s
Estanque Sedimentador 1
Filtro plástico de 0,50 mm
Infraestructura hidráulica y filtración de agua
SedimentaciónEstanques: 1 a 2 ha (1ha)Rectangular, 1,20 m nivel agua.Retener partículas sólidas: M.O., tierra, bacterias y partículas viralesCompuerta: Filtro de Nytex de 300
Filtro Nytex 200
Tubos de P.V.C. de 10”
Canal de distribución
Distribución: Trapezoidal, geomembrana
Capacidad llenado: 6 a 18 h (12 h, 0,33 m3/s)Filtro Nytex 100 Hacia los Estanques de Cultivo.
Estanque reservorio
Cuadrada, 1 ha, geomembrana
Nivel de agua: 1,50 m (1,40 m)Constituye entre el 30 a 60 % del volumen de agua a utilizar (33 %)Capacidad de recambio: 5 % a 15 % (11,11 %)Tubo de P.V.C. o compuerta de concreto (Tubo =12“)
Arqueta de desagüe
De concreto, ducto (tubo de P.V.C. =20“)
Canal de drenaje
En tierra o revestido geomembrana
El agua efluente es vertida al canal de marea, evitando el reciclaje
Canal de marea del Estero Corrales (5 km aguas arriba de la estación de bombeo)
Capacidad de 3 m3/s)
Invernaderos
Aireador de Paletas
Las unidades autónomas son usualmente impulsados por un motor eléctrico de 1 H.P. o 2 H.P
Equipos de aireación
Inyector – Mezclador
Unidades autónomas: motor eléctrico de 2 H.P.
Ubicación de los aireadores
20 m muros y 30 m entre ellos
El flujo de aire y agua sentido circunferencial: circulación y sedimentación M.O. centro
TIEMPO DE FUNCIONAMENTO DE LOS AIERADORES
mg/L O2
12
10
8
6
4
2
0
12:00 18:00 00:00 06:00
3 mg/L
Superávit Déficit
?(Vinatea 2006)
Wu et al. (2002). Tolerance to, and avoidance of, hypoxia by the penaeid shrimp
(Metapenaeus ensis), Environmental Pollution, 118: 351–355
50% da saturación
Mortalidad del Camarón
(Vinatea 2006)
Perfil del OD en una piscina con aireación completa
0
2
4
6
8
10
12
12:3
015
:30
18:3
021
:30
00:3
003
:30
06:3
009
:30
12:3
0
Hora
Oxí
gen
o d
isu
elto
(m
g/L
)
50%
100%
Perfil del OD en una piscina con poca aireación
0
2
4
6
8
10
12:3
015
:30
18:3
021
:30
00:3
003
:30
06:3
009
:30
12:3
0
Hora
Oxí
gen
o d
isu
elto
(m
g/L
)
50%
100%
01:30 08:30
(Vinatea 2006)
Preparación de estanques
Retiro total de equipos
Lavado y desinfectado
Instalación de equipos
Sellado y llenado
Nivel de llenado de 1.50 m.
Fertilización inorgánica Urea y Fosfato.
Fertilización orgánica con melaza.
Maduración de 15 días.
Prueba- aplicación de probióticos.
CULTIVO INTENSIVO
(Sócola 2006)
Siembra.
Post-larva de origen ecuatoriano , maduración , PCR , WSSV, IHHNV y NHP, prueba de estrés.
Baculovirus penaei
Siembra.
Aclimatación.
Densidad de siembra : 70 a 100 PL /m2.
Siembra directa.
Alimentación.
Frecuencia: tres a cuatro veces al día.
Distribución al “boleo”.
Horario: 6 a.m., 11 a.m., 2 p.m. y 5 p.m.
Control del consumo por muestreadores (10 a 15 unidades/ha) 3% de la dosis.
LANGOSTINERA DOMINGO RODAS S.A.
TIPO DE ALIMENTO SEGÚN EL PESO DE LANGOSTINO
DIAS PESO TIPO DE TAMAÑO % PROTEINA
APROX. (g) ALIMENTO PELLETS(mm)
0 - 16 PL - 0.5 g PC 0.3 - 0.8 40%
17 - 27 0.5 - 2.0 g KR1 0.4 - 1.8 40%
28 - 42 2.0 - 6.0 g KR2 2.0 40%
43 - 87 6.0 - 15.0g NB35 NORMAL 2.5 35%
LANGOSTINERA DOMINGO RODAS S.A.
REGISTRO DE PARAMETROS
PARAMETRO VECES
Temperatura agua y ambiente interno 3 veces/dia
Oxígeno 3 veces/dia
pH 2 veces/dia
Salinidad 1 veces/dia
Transparencia 1 veces/dia
Nivel de agua 1 veces/dia
Color agua 1 veces/dia
Nutrientes (NH3, NO2, NO3, N, P) 2 veces/semana
Alcalinidad 2 veces/semana
Microbiología agua 2 veces/semana
Productividad (fito y zooplancton) 2 veces/semana
Patología y microbiología langostino 1 veces/semana
Control de calidad de agua.
Recambio de agua.
Se realizan a partir del día 60 cuando la calidad del agua se comienza a deteriorar con la subida del nitrito, el incremento de las algas y la disminución de la transparencia, para seguir manteniendo la calidad de agua se hace un recambio del 20% semanal hasta la cosecha.
Sifoneos
Los sifoneos comienzan cuando se detecta acumulación de materia orgánica en el centro ya sea algas muertas, resto de alimento, mudas o que ocurra una mortalidad
Aireación
Comienza con 20 H.P./ha., incrementándose hasta 35 H.P./ha Aireadores: Inyector-mezclador (20%) y paleta (80%) por estanque
Monitoreo de parámetros de calidad de agua
Parámetros 6 am 12 m 6pm 12 pm
Oxigeno disuelto
3 – 4mg/L
- 4 - 6mg/L
4 – 3mg/L
pH 7,3 –8,0 - 7,6 – 8,5 -
Temperatura 30-32ºC
- 30 – 33,5ºC
-
Salinidad - - 35 – 20mg/L
-
Transparencia - 50 – 30cm
- -
(Sócola 2006)
Parámetros Rangos
NH4 0,001 - 3,5mg/L
NH3 0,00 - 1mg/L
NO2 0,02 - 15mg/L
NO3 0,02 - 20mg/L
PO4 0,10 - 0,8mg/L
H2S 0,00 - 0,02mg/L
Monitoreo de parámetros de calidad de agua
(Sócola 2006)
Biológicos
Semanalmente se realiza los análisis patológico del camarón y microbiología del agua y camarón.
Análisis patológicos del camarón.
Branquias
Intestino
Hepatopáncreas
Análisis microbiológico del agua
Bacterias.
Análisis microbiológico del camarón en hemolinfa y hepatopáncreas
Bacterias.
Análisis del fitoplancton (semanal)
Fitoplancton más frecuente
Diatomeas Cianofitas Clorofitas Dinoflagelados
Amphiprora Croccocus Oocystis Peridinium
Navicula Cyanobacterias Platymonas Oxitoxon
Nitzschia Schyxotris Gymnodinium
Lauderia Anacystis
Comparacion de crecimiento verano invierno (2006)
0
5
10
15
20
25
30
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20Semanas
Pes
o en
gra
mos
verano invierno(Sócola 2006)
Comparaciòn de crecimiento en verano
0
5
10
15
20
25
30
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20
Semanas
Pes
o e
n g
ram
os
Transplante Directo(Sócola 2006)
IMPACTO DE LOS EFLUENTES DE CULTIVOS ACUÁTICOS (Saldarriaga 2007)
La eutrofización de las aguas, sedimentación de los canales de marea o áreas continentales que sirven de sumideros a los efluentes acuícolas.
Presencia de microorganismos patógenos causantes de epidemias y la incorporación de nuevos microorganismos es el impacto negativo más relevante.
Boyd (1982), señala que el efecto de los efluentes sobre el medio ambiente depende de su carga de contaminantes y de la capacidad de los cuerpos de agua para diluir y/o asimilar los desechos, condiciona que sí el volumen de agua que recibe es grande y la descarga es pequeña podrían no observarse efectos adversos, pero, sí hay una alta concentración de desechos, elevado volumen de descarga y el cuerpo receptor es pequeño, podrían ocurrir efectos adversos, todo depende en último caso de la tasa de cambio de agua que posea el cuerpo receptor
Boyd y Tucker (1998), indican que el mayor problema es cuando el cuerpo de agua sirve como fuente y a la vez como receptor de efluentes, en tal caso los estanques abastecidos con esta agua presentarán problemas durante el cultivo y un alto riesgo de auto-contaminación con agentes que promuevan enfermedades.
La Asociación Langostinera Peruana (2005), refiere que es necesario indicar que los problemas de contaminación también son causados por actividades de agricultura, a través del uso intensivo de pesticidas y fertilizantes, y por aquellas propias del desenvolvimiento urbano. Esta contaminación puede ser mucho más grave que la originada por las langostineras, siendo ellas y el ecosistema los más afectados
Concentración máxima de nitrito en el efluente del agua de cultivo y en los esteros.
NITRITO
1,00
6,20
0,25 0,03 0,01 0,13
0,83 mg/L
0,00
1,00
2,00
3,00
4,00
5,00
6,00
7,00
Semi-intensivo
(1)
Intensivo(2)
EsterosZarumilla
(4)
EsterosTumbes
(4)
Agua demar (2)
Agua deestuario
(2)
Nit
rito
(m
g/L
)
1. Ecuador: Saldias (2003)2. Ecuador: Massaut el al. (2005)4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)
NITRATO
60,00
18,00
1,24 0,934,43
0,41 0,30 0,50
16,93 mg/L
0,00
10,00
20,00
30,00
40,00
50,00
60,00
70,00
Semi-intensivo
(1)
Intensivo(2)
Dren Lang.Zarumilla
(3)
Dren Lang.Tumbes
(3)
EsterosZarumilla
(4)
EsterosTumbes
(4)
Agua demar (2)
Agua deestuario
(2)
Nitr
ato
(mg/
L)
Concentración máxima de nitrato en el efluente del agua de cultivo y en los esteros.
1. Ecuador: Saldias (2003)2. Ecuador: Massaut el al. (2005)3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)
FOSFATO
8,59
1,71 2,19
3,68
0,40 0,01 0,150,00
2,00
4,00
6,00
8,00
10,00
Intensivo(2)
DrenLang.
Zarumilla(3)
DrenLang.
Tumbes(3)
EsterosZarumilla
(4)
EsterosTumbes
(4)
Agua demar (2)
Agua deestuario
(2)
Fo
sfat
o (
mg
/L)
Concentración máxima de fosfato en el efluente del agua de cultivo y en los esteros.
2. Ecuador: Massaut el al. (2005)3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)
DEMANDA BIOQUÍMICA DE OXÍGENO: DBO5
25,1050,00
6,50 10,60 15,00 25,00
300,00
30 mg/L
0
50
100
150
200
250
300
Semi-intensivo (1)
Intensivo (2) Dren Lang.Zarumilla (3)
Dren Lang.Tumbes (3)
Agua de mar(2)
Agua deestuario (2)
Efluentesdomésticos
(2)
DB
O5
(mg/
L)
Concentración máxima de D.B.O.5 en el efluente del agua de cultivo y en los esteros.
1. Ecuador: Saldias (2003)2. Ecuador: Massaut el al. (2005)3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)
TOTAL DE SÓLIDOS SUSPENDIDOS: TSS
150,90
1147,00
162,70 153,8090,00 120,00
500,00
100 mg/L
0
150
300
450
600
750
900
1050
1200
Semi-intensivo (1)
Intensivo (2) Dren Lang.Zarumilla (3)
Dren Lang.Tumbes (3)
Agua de mar(2)
Agua deestuario (2)
Efluentesdomésticos
(2)
TSS
(mg/
L)
Concentración máxima de T.S.S. en el efluente del agua de cultivo y en los esteros.
1. Ecuador: Saldias (2003)2. Ecuador: Massaut el al. (2005)3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)
OXÍGENO DISUELTO: O.D.
8,00 8,007,28
5,937,01 6,95
12,00 12,00
> 4 mg/L
0
2
4
6
8
10
12
Semi-intensivo
(1)
Intensivo(2)
Dren Lang.Zarumilla
(3)
Dren Lang.Tumbes (3)
EsterosZarumilla
(4)
EsterosTumbes (4)
Agua demar (2)
Agua deestuario (2)
O.D
. (m
g/L
)
Concentración máxima de O.D. en el efluente del agua de cultivo y en los esteros.
1. Ecuador: Saldias (2003)2. Ecuador: Massaut el al. (2005)3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)
pH
9,00 9,007,90 7,96 8,01
7,36
6,50
8,50
0
2
4
6
8
10
12
14
Semi-intensivo(1)
Intensivo (2) Dren Lang.Zarumilla (3)
Dren Lang.Tumbes (3)
EsterosZarumilla (4)
EsterosTumbes (4)
pH
pH máximo en el efluente del agua de cultivo y en los esteros.
1. Ecuador: Saldias (2003)2. Ecuador: Massaut el al. (2005)3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)
PLOMO
0,02 0,02
< 0,01 < 0,01
0,03 mg/L
0,00
0,01
0,02
0,03
0,04
Dren Lang.Zarumilla (3)
Dren Lang.Tumbes (3)
EsterosZarumilla (4)
EsterosTumbes (4)
Plo
mo
(m
g/L
)
Concentración máxima de plomo en los esteros.
3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)
Concentración máxima de mercurio en los esteros.
3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)
MERCURIO
< 0,0010 < 0,0010
< 0,0001< 0,0002
0,0002 mg/L
0,00
0,00
0,00
0,00
Dren Lang.Zarumilla (3)
Dren Lang.Tumbes (3)
EsterosZarumilla (4)
EsterosTumbes (4)
Mer
curi
o (
mg
/L)
Concentración máxima de cadmio en los esteros.
4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)
CADMIO
< 0,010 < 0,010
0,004 mg/L
0,000
0,005
0,010
0,015
Esteros Zarumilla (4) Esteros Tumbes (4)
Cad
mio
(m
g/L
)
Concentración máxima de arsénico en los esteros.
4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)
ARSÉNICO
0,00270 0,0024
0,05 mg/L
0,000
0,010
0,020
0,030
0,040
0,050
0,060
Esteros Zarumilla (4) Esteros Tumbes (4)
Ars
énic
o (
mg
/L)
MATERIA ORGÁNICA: M.O.
3,293
1,892
0,00
0,50
1,00
1,50
2,00
2,50
3,00
3,50
4,00
4,50
5,00
Dren Lang. Zarumilla (3) Dren Lang. Tumbes (3)
M.O
. (%
)
Concentración máxima de M.O. en el dren de las langostineras.
3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)
Concentración máxima de N.T. en el dren de las langostineras.
3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)
NITRÓGENO TOTAL: N.T.
< 0,1 < 0,1
0,00
0,05
0,10
0,15
0,20
Dren Lang. Zarumilla (3) Dren Lang. Tumbes (3)
N.T
. (%
)
Concentración máxima de fósforo en el dren de las langostineras.
3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)
FÓSFORO: P
5,512
22,396
0,00
5,00
10,00
15,00
20,00
25,00
Dren Lang. Zarumilla (3) Dren Lang. Tumbes (3)
P (
mg
/kg
)
Concentración máxima de plomo en los esteros.
3. Perú: Carril et al. (Junio 2006) 4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)
PLOMO
143,07
67,29
35,93
69,19
0,00
50,00
100,00
150,00
Dren Lang.Zarumilla (3)
Dren Lang.Tumbes (3)
EsterosZarumilla (4)
EsterosTumbes (4)
Plo
mo
(m
g/k
g)
Concentración máxima de mercurio en los esteros.
3. Perú: Carril et al. (Junio 2006)
MERCURIO
0,202
0,457
0,00
0,10
0,20
0,30
0,40
0,50
Dren Lang. Zarumilla (3) Dren Lang. Tumbes (3)
Mer
curi
o (
mg
/kg
)
Concentración máxima de cadmio en los esteros.
CADMIO
0,5 0,5
0,40
0,50
0,60
Esteros Zarumilla (4) Esteros Tumbes (4)
Plo
mo
(m
g/k
g)
4. Perú: Dirección General de Salud Ambiental (Nov. 2006)
PLANTEAMIENTO DE SOLUCIONES
Investigación científica.
Disminuir la cantidad de nitrógeno en el alimento;Suplementar la dieta con adición de carbohidratos;
Policultivo;
Manejo de la calidad de suelo;Manejo de la calidad de agua (Sistemas de cero recambio de agua, uso de probióticos y substratos artificiales)Uso de una laguna de sedimentación.
Manejo del suelo
1,50 m
0,0
10 cm
20 cm
30 cm
Profund.
Superficie de agua
Columna de agua aeróbica
Superficie de sedimento
Capa aeróbica de sedimento
MO + O2 CO2
Descomposición aeróbica
MO + O2 CO2
Descomposición aeróbica
MO CO2 + MO reducida FermentaciónMO + NO3
-1 CO2 + N2
Desnitrificación
Capa anaeróbica de sedimento
MO + Fe(OH) 3 Fe+2 + CO2
Reducción del hierroMO + MnO2 Mn+2 + CO2
Reducción del manganeso
MO + SO4-2 H2S + CO2
Reducción del sulfatoMO + CO2 CH4
Producción de Metano-300 0,0 +300 +600
Potencial REDOX (mV)Estratificación de procesos microbianos en elAgua y sedimento del estanque (adaptado de Boyd, 2005)
Manejo del suelo
Manejo del suelo
Secado Secado
Arado Encalado
Aplicación de abonos: estiércol de vacuno o humus de lombriz
Mejoran ladigestión dealimentos
APLICACIÓN DE PROBIÓTICOS
Mejoran lacalidad del
agua
Sirven decomplemento
alimenticio
Inhiben losmicrobios
patogénicos
Probióticos: Bacilos, Lactobacilos, etc.
ESTANQUES DE SEDIMENTACIÓN (Saldarriaga 2007)
Generalmente, ese tratamiento no ayuda en la reducción de la biomasa de fitoplancton, sin embargo, reduce de manera drástica la carga inorgánica en el agua y permite la sedimentación de la materia orgánica insoluble que después de llegar a su capacidad máxima de retención (2 años) debe ser tratada por métodos biológicos y removida para darle otro uso que no afecte al medio ambiente.
Massaut et al., (2005), refiere que varios estudios demostraron que la permanencia durante 8 horas a 10 horas de efluentes acuícolas en las lagunas de sedimentación, permite una remoción del 75 % de los sólidos totales suspendidos.
MODELO IDEAL: DISEÑO DE UN SISTEMA DE CULTIVO INTENSIVO SEMI-CERRADO (Saldarriaga 2005)
UTILIZACIÓN DE SUBSTRATOS VERTICALES (Saldarriaga y Alvarado 2008)
Los substratos artificiales constituyen una superficie adicional para la fijación de perifiton o biofilm e incrementan la producción natural del agua de los estanques.
INTRODUCCIÓN
Ramesh et al. (1999) definen al perifiton o biofilme fijado en superficies sumergidas como “comunidad compleja compuesta por organismos heterotróficos y autotróficos tales como bacterias, protozoarios, hongos y algas marinas envuelta en una matriz extracelular de polisacáridos secretada por bacterias”
Instalación de substratos verticales
La instalación: tres semanas antes de la siembra para que el perifiton o biofilm se fije y desarrolle en cada substrato y los juveniles de P. vannamei dispongan de alimento natural desde el inicio del cultivo.
Se incluyó un control (sin substratos artificiales)
20% (3,00 m2)
30% (4,50 m2) 40% (6,00 m2)
0,75 m
0,10 m
1,00 m
Análisis de perifiton:
Extraídos con una lámina porta objeto, recogidos en placas Petri y refrigerados a 5 ºC.
Observación a 100X.
Identificación de géneros más importantes. Clave de Botes (2001) y Santander (1981).
Esta actividad se realizó cada 15 días de cultivo.
67,33% b76,53% b
63,20% b55,00% a
0
20
40
60
80
100
SinSubstratos
20% 30% 40%
Área ocupada por substratos artificiales verticales
Superv. (%)
Supervivencia promedio de P. vannamei cultivado con perifiton fijado a substratos artificiales verticales.
Crecimiento promedio de P. vannamei cultivado con perifiton fijado a substratos artificiales verticales.
15,44 g a 15,80 g a
13,38 g b 13,91 g b
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
20
Sin Substratos 20% 30% 40%
Área ocupada por substratos artificiales verticales
Crecim. (g)
Biomasa promedio de P. vannamei cultivado con perifiton fijado a substratos artificiales verticales.
F.C.R. promedio de P. vannamei cultivado con perifiton fijado a substratos artificiales verticales.
Los géneros del perifiton encontrados fueron:
85
55%
75%66% 71%
40%
14%
12%15%
22%
12%
0%
20%
40%
60%
80%
100%
PresenteInvestigación
(promedio)
Díaz yMaldonado (2008)
(30%)
Martínez et al.(2004)
Domingos (2003)(15%)
Cortéz (2001) (60 -40 Ind./m2)
Sin Subst. Artif. Increm. Con Subst. Artif.
La supervivencia de juveniles P. vannamei mejoró significativamente en 14% con la presencia de los substratos artificiales con respecto al control.
86
15,44 g
10,75 g
12,5 g
10,93 g
15,80 g
12,28 g
16,00 g
10,21 g
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
PresenteInvestigación (20%)
Díaz y Maldonado(2008) (30%)
Martínez et al. (2004) Domingos (2003)(15%)
Crecimiento (g)
Sin Subst. Artif. Con Subst. Artif.
Díaz y Maldonado (2008)Domingos (2003)
16%
25%
58%
23%
0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
PresenteInvestigación
(promedio)
Díaz yMaldonado (2008)
(30%)
Martínez et al.(2004)
Domingos (2003)(15%)
Ganancia en Biomasa (kg)
Acciones necesarias para la competitividad de la
industria (Berger 2006)Apoyo decidido a la acuicultura:
Normatividad, ordenamiento, priorización de actividades, investigación, asistencia técnica, integración de la cadena productiva, BPM, sanidad.
Preservaciòn del ambiente y de los recursos: Planificación y ordenamiento territorial, prevención/aminoramiento impactos
Investigación y desarrollo:
Eficiencia productiva en los sistemas tradicionales e intensivos:
Investigación Producción de semilla mejorada (genética, sanidad) Conocimiento / manejo del medio de cultivo (monitoreo, bio-
remediadores) Alimentos / Alimentación Convivencia / prevención de enfermedades (inmuno estimulantes,
probióticos, bioseguridad).
Mercados y comercialización:
Mejorar el acceso a los mercados externosCumplimiento de exigencias de los importadores: sanidad y salubridad para el consumidorValor agregado, nuevos nichos, sellos de calidadNuevos productos
Otras acciones:Imagen de la industriaFortalecimiento institucionalFinanciamiento
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS.
Altamirano, C. 2004. Cultivo intensivo con invernaderos. Langostinera Domingo Rodas S.A. Tumbes, Perú.
Berger, C. 2006. Acuicultura peruana y el comercio mundial. Presentación. Tumbes, Perú.
Jory, D. 2001. Manejo integral del alimento de camarón, de estanques de producción camaroneros y principios de bioseguridad. Curso lance en acuicultura. Monterrey, México.
Saldarriaga, D. 2005. Diseño de un sistema de cultivo intensivo semi-cerrado para langostino. Langostinera Domingo Rodas S.A. Trabajo de Habilitación Docente. Universidad Nacional de Tumbes. Perú.
Saldarriaga, D. 2007. Impacto de los efluentes del cultivo de langostino Penaeus vannamei en el ecosistema de manglares. Universidad Nacional de Tumbes. Presentación. Tumbes, Perú.
Saldarriaga, D. y Alvarado, A. 2008. Efecto del perifiton adherido a substratos artificiales sobre el cultivo semi-intensivo de Penaeus vannamei. Investigación Docente. Universidad Nacional de Tumbes. Perú.
Sócola, M. 2006. Cultivo intensivo en invernaderos de Litopenaeus vannamei. Corporación Refrigerados INYSA. Presentación. Tumbes, Perú.
Vinatea, A. 2006. Eficiencia económica del cultivo intensivo. IX Congreso Nacional de Ingeniería Pesquera, II Congreso Internacional de Pesquería. Presentación. Tumbes, Perú.
David E. Saldarriaga YacilaIngeniero Pesquero, Magíster en AcuiculturaCandidato a Magíster en Ingeniería Ambiental
Docente de la Universidad Nacional de Tumbes, Perú[email protected]