DIAGNOSTICO DE CLONES HPN POR CITOMETRIA …...de la deficiencia de al menos 2 proteínas ancladas a...
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72º CONGRESO ARGENTINO DE BIOQUIMICA Afrontando el constante desafío de la bioquímica
DIAGNÓSTICO DE CLONES HPN POR CITOMETRÍA DE FLUJO
Bioq. Viviana Novoa. Laboratorio de Inmunología.
Unidad de Inmunología e Histocompatibilidad. Hospital General de Agudos Dr. Carlos G.
Durand. C.A.B.A. Argentina
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La hemoglobinuria paroxística nocturna (HPN) es una anemia hemolítica crónica, producida por un trastorno clonal severo, raro, no maligno y adquirido de la célula precursora hematopoyética.
Es una entidad poco frecuente con gran variabilidad clínica. Su incidencia es de aproximadamente 1/100.000 casos por cada cien mil habitantes por año.
Afecta a los dos sexos a cualquier edad, aunque es más frecuente en adultos jóvenes del sexo femenino .
DEFINICION
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ETIOPATOGENIA Mutación somática en el gen fosfatidil inositol glucano clase A (PIG-A) que se encuentra en el cromosoma X al final del brazo corto (Xp22.1).
Este gen codifica una proteína involucrada en la síntesis del glicosilfosfatidilinositol (GPI), el cual le sirve como anclaje a muchas proteínas de la membrana celular.
En la HPN se observa disminución o ausencia de las proteínas que se anclan a la membrana de las células a través del GPI.
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DISTRIBUCIÓN DE PROTEÍNAS ANCLADAS A GPI
EN CÉLULAS HEMATOPOYETICAS
Eritrocitos
CD55 CD58 CD59
CD108
Neutrófilo
CD16 CD24 CD52 CD55 CD58 CD66b,c,e CD87 CD109 CD157
Monocitos
CD14 CD48 CD52 CD55 CD58 CD59 CD87 CD109 CD157
Linfocito B
CD24 CD48 CD52 CD55 CD59 CD73
CD108
Linfocito T
CD48 CD52 CD55 CD58 CD59 CD73 CD87 CD90
CD108 CD109
Cél. NK
CD48 CD52 CD55 CD58 CD59 CD87 CD108 CD16
Plaquetas
CD55 CD58 CD59 CD109
Cél. Progenitora
CD48 CD55 CD58 CD59 CD90 CD109
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CITOMETRÍA DE FLUJO
MONITOREO DEL TAMAÑO DEL
CLON HPN
PERMITE LA CLASIFICACIÓN DEL
CLON HPN
DETECTA Y CUANTIFICA LAS CÉLULAS CON
DEFICIENCIA EN GPI (CLON HPN)
ES LA TÉCNICA DIAGNÓSTICA DE
ELECCIÓN
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VENTAJAS DE LA CITOMETRÍA DE FLUJO
Técnica rápida.
Alta sensibilidad y especificidad. Análisis cuantitativo y cualitativo del clon HPN. Análisis de diferentes líneas celulares.
Buena reproducibilidad.
Standarización
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CUÁNDO REALIZAR ESTUDIO DE CLONES HPN POR CF?
Hemoglobinuria. Anemia Hemolítica no inmune Coombs directa negativa. Hemólisis intravascular no explicada en asociación con deficiencia de Fe, dolor abdominal, trombosis y/o citopenias. Trombosis no explicadas venosa o arteriales en pacientes jóvenes o con trombosis en sitios inusuales: ej: síndrome de Budd-Chiari. Citopenias idiopáticas o mantenidas de significado incierto. Pacientes con diagnóstico de Anemia Aplásica, al diagnóstico y anualmente. Pacientes con diagnóstico de Sindrome Mielodisplásico hipoplásico de bajo grado
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ESTUDIO DE CLONES HPN POR CITOMETRÍA DE FLUJO
MUESTRA DE ELECCIÓN: Sangre periférica
ANTICUERPOS UTILIZADOS PARA EVALUAR DEFICIENCIA DE GPI
ANTICUERPO CLON POBLACIÓN
CD59 MEM-43 ERITROCITOS
CD16 3G8 NEUTRÓFILOS
CD24 ALB9/SN3 NEUTRÓFILOS
CD66b G10F5 NEUTRÓFILOS
CD157 SY11B5 NEUTRÓFILOS Y MONOCITOS
CD14 MOP9/61D3/ RMO52/ TUK4
MONOCITOS
FLAER NEUTRÓFILOS Y MONOCITOS
ANTICUERPOS PARA IDENTIFICAR LAS POBLACIONES A EVALUAR
POBLACIÓN ANTICUERPO
ERITROCITOS CD235a
NEUTRÓFILOS CD15, CD10, CD33, CD45
MONOCITOS CD64, CD33, CD45
LINFOCITOS NO SE EVALÚAN
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PANELES RECOMENDADOS
ERITROCITOS
CD235a FITC/ CD59 PE/ CD45 PerCP CD235a FITC/ CD59 PE/ CD61 PerCPCy5/ CD45 PECy7
LEUCOCITOS
FLAER / CD24 PE/ CD45 PerCP/ CD15 APC FLAER/ CD14 PE/ CD45 PerCP/ CD64 APC FLAER/CD157 PE/ CD45 PerCPCy5.5/ CD15 APC/ CD64 PECy7 CD15 FITC/ CD157 PE/ CD45 PerCPCy5.5/ CD64 PECy7/ CD24 APC/ CD14 APCH7 FLAER/ CD157 PE/ CD64 PerCPCy5/ CD45 PECy7/ CD35 APC/ CD10 APC-C750 FLAER/ CD24 PE/ CD15 PerCPCy5.5/ CD14 APC/ CD64 V450/ CD45V500
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PROCESAMIENTO DE LA MUESTRA
SP diluida (1:100) + Acs Mo
Incubar
Lavar con PBS (sin Alb) 2 veces.
Re-suspender y Adquirir
Alta sensibilidad: 1.000.000 de GR
SP + Acs Mo
Incubar
Lisis de GR
Lavar con PBS/Alb
Re-suspender y Adquirir
Alta sensibilidad: 100.000 neutrófilos 15.000 monocitos.
ERITROCITOS LEUCOCITOS
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TIPOS DE CLONES HPN SEGÚN LA EXPRESIÓN DE
MOLÉCULAS ANCLADAS A GPI
CLON HPN TIPO I: Expresión normal
CLON HPN TIPO II: Expresión parcial
CLON HPN TIPO III: Ausencia de expresión
Cytometry Part B (Clinical Cytometry) 78B:211–230 (2010)
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ANALISIS DE ERITROCITOS
100 101 102 103 104
CD59 PE
HPN167428.001
TIPO IIITIPO II
TIPO I
100 101 102 103 104
CD59 PE
HPN169802.001
100 101 102 103 104
CD59 PE
HPN166622.001
M1M2M3
NORMAL HPN (+) HPN (+)
Clon Tipo II: 1.7% Clon Tipo III: 25.9% Clon HPN total: 27.6%
Clon Tipo II: 39% Clon Tipo III: 10% Clon HPN total: 49%
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ANALISIS DE LEUCOCITOS
NEUTRÓFILOS
Clon HPN: 2.3%
MONOCITOS
Clon HPN: 1.81%
Normal HPN(+)
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CRITERIOS DIAGNÓSTICOS
Para el diagnóstico de HPN se requiere la demostración de la deficiencia de al menos 2 proteínas ancladas a GPI en al menos 2 poblaciones celulares diferentes, con el fin de excluir los casos que presentan deficiencias congénitas de un solo antígeno y obviar algunos problemas técnicos.
Para la identificación de clones HPN pequeños en pacientes con desórdenes de falla medular (Aplasia y MDS) es necesario realizar ensayos de alta sensibilidad.
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INFORME
ERITROCITOS
Clon HPN Tipo II (deficiencia parcial) %
Clon HPN Tipo III (deficiencia total) %
Tamaño Total del Clon HPN (Tipo II + Tipo III)
%
NEUTROFILOS
Clon HPN Tipo II (deficiencia parcial) %
Clon HPN Tipo III (deficiencia total) %
Tamaño Total del Clon HPN (Tipo II + Tipo III)
%
MONOCITOS
Clon HPN Tipo II (deficiencia parcial) %
Clon HPN Tipo III (deficiencia total) %
Tamaño Total del Clon HPN (Tipo II + Tipo III)
%
Presencia/Ausencia de clon HPN en eritrocitos (%), neutrófilos (%) y monocitos (%). Hallazgos compatibles (o no) con Hemoglobinuria Paroxística Nocturna.
Informar los anticuerpos monoclonales utilizados tanto para la identificación de las poblaciones celulares como para el estudio de las proteínas ancladas a GPI
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MONITOREO DEL CLON HPN
Realizar monitoreos del tamaño del clon HPN en forma regular para evaluar la estabilidad del clon (cada 6 a 12 meses).
Los cambios en el tamaño del clon HPN (aumento o disminución) pueden reflejar cambios en la clínica del paciente.
En pacientes con HPN subclínica es importante el control porque pueden progresar a la forma clásica y esto es precedido por el aumento en el tamaño del clon.
En pacientes en tratamiento con Eculizumab realizar el estudio al inicio del tratamiento, a los 6 meses y luego un monitoreo anual.
Control luego del TMO para monitoreo del engrafment y control de recaída.
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NUESTRA EXPERIENCIA
152 pacientes 69 hombres y 83 mujeres
Ẋ = 44 años Rango de edad: 4- 87 años
Análisis de leucocitos Clones HPN(+): 20.3%
9,8%
3,9%
6,6%
79,7%
< 10%
10- 50%
≥ 50%
HPN(-)
Análisis de eritrocitos Clones HPN(+): 17.1%
2,6% 5,9%
8,6%
82,9%
Clon Tipo II
Con Tipo III
ClonesTipo II y III
Clon HPN(-)
PANELES REALIZADOS GR: CD235a/CD59/CD45 GB: FLAER/CD24/CD45/CD14 CD66b/CD24/CD45/CD33 CD16/CD64/CD45/CD14
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Dra. Carmen Lessa. Jefa de Unidad de Inmunología e Histocompatibilidad.
Dr. Orlando Gabriel Carballo. Jefe de Laboratorio de Inmunología.
Área Citometría de Flujo.
Dra. Viviana Novoa
Dra. Romina Guevara
Dra. Cecilia Gasco
Tec. Ayelén Suarez
Hospital General de Agudos Dr. Carlos G. Durand. C.A.B.A.