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i

PORTADA

ÁREA AGROPECUARIA Y DE RECURSOS NATURALES

RENOVABLES

INGENIERÍA EN PRODUCCIÓN, EXTENSIÓN Y EDUCACIÓN

AGROPECUARIA

Evaluación de tratamientos pre-germinativos y tipos de envases en la

producción de plántulas de café Catuaí Rojo Coffea arábica L.

comunidad de Mizhquillana, cantón Chaguarpamba.

AUTORES: María Gabriela Capa Morocho.

Cristian Javier Días Quichimbo.

DIRECTOR: Ing. Ermel Loaiza Carrión.

ASESORA: Ing. Paulina Fernández

Loja – Ecuador

2013

Tesis de Grado previa a la obtención del

Título de Ingenier@ en Producción,

Educación y Extensión Agropecuaria.

ii

APROBACIÓN “Evaluación de Tratamientos Pre-Germinativos y Tipos de Envases en la

Producción de Plántulas de Café Catuaí Rojo Coffea arábica L.

Comunidad de Mizhquillana, Cantón Chaguarpamba”

TESIS

Presentada al Tribunal como requisito parcial para obtener el Título de:

INGENIERO EN PRODUCCIÓN, EDUCACIÓN Y EXTENSIÓN

AGROPECUARIA

ÁREA AGROPECUARIA DE RECURSOS NATURALES RENOVABLES DE

LA UNIVERSIDAD DE LOJA

APROBADA :

………………………………….

Ing. Edmigio Valdivieso, Mg. Sc.

PRESIDENTE DEL TRIBUNAL

………………………………….

Ing. Zoila Zaruma, Mg. Sc.

VOCAL DEL TRIBUNAL

………………………………….

Dr. Julio Arévalo Camacho

VOCAL DEL TRIBUNAL

iii

CERTIFICACIÓN

Ing. Ermel Loaiza Carrión.

DIRECTOR DE TESIS

Ing. Paulina Fernández.

ASESORA

CERTIFICA:

Que el presente trabajo de investigación titulado “Evaluación de tratamientos

pre-germinativos y tipos de envases en la producción de plántulas de café

Catuaí Rojo Coffea arábica L. comunidad de Mizhquillana, cantón

Chaguarpamba”; ejecutado por los egresados MARÍA GABRIELA CAPA

MOROCHO, CRISTIAN JAVIER DIAS QUICHIMBO previo a la obtención del

Título de INGENIERO EN PRODUCCIÓN, EDUCACIÓN Y EXTENSIÓN

AGROPECUARIA, ha sido prolijamente revisado, y culminado dentro del

cronograma establecido, por lo que se autoriza su presentación para la

calificación y sustentación pública correspondiente.

…………………………………

Ing. Ermel Loaiza Carrión.

DIRECTOR DE TESIS

…………………………………

Ing. Paulina Fernández.

ASESORA

iv

AUTORÍA

María Gabriela Capa Morocho y Cristian Javier Dias Quichimbo, se declaran

autores del presente trabajo de tesis y eximen expresamente a la Universidad

Nacional de Loja y a sus representantes jurídicos, de posibles reclamos o

acciones legales por el contenido de la misma.

Adicionalmente aceptan y autorizan a la Universidad Nacional de Loja, la

publicación de la tesis en el Repositorio Institucional – Biblioteca Virtual

Autora: María Gabriela Capa Morocho

Firma: ……………………………………

Cedula: 1104600596

Fecha: 21/10/2013

Autor: Cristian Javier Dias Quichimbo

Firma: ……………………………………

Cedula: 1900402585

Fecha: 21/10/2013

v

CARTA DE AUTORIZACIÓN DE TESIS POR PARTE DE LOS AUTORES PARA LA

CONSULTA, REPRODUCCIÓN PARCIAL O TOTAL Y PUBLICACIÓN

ELECTRÓNICA DEL TEXTO COMPLETO.

Yo, María Gabriela Capa Morocho y Cristian Javier Dias Quichimbo, se declaran

autores de la tesis titulada “Evaluación de tratamientos pre-germinativos y tipos

de envases en la producción de plántulas de café Catuaí Rojo Coffea arábica L.

comunidad de Mizhquillana, cantón Chaguarpamba”, como requisito para optar al

grado de: Ingeniería/o en Producción, Educación y Extensión Agropecuaria, autorizo al

Sistema Bibliotecario de la Universidad Nacional de Loja para con fines académicos,

muestren al mundo la producción intelectual de la Universidad, a través de la

visibilidad de su contenido de la siguiente manera en el repositorio Digital Institucional:

Los usuarios pueden consultar el contenido de este trabajo en el RDI, en las redes de

información del país y del exterior, con las cuales tenga convenio la Universidad.

Para constancia de esta autorización, en la ciudad de Loja a los catorce días del mes

de noviembre del dos mil trece, firman los autores

Firma: …………………………… Autora: María Gabriela Capa Morocho Numero de cedula: 1104600596 Dirección: Chaguarpamba Calle 10 de agosto Teléfono: 2600134 Celular: 0980891483 Firma: …………………………… Autor: Cristian Javier Dias Quichimbo Numero de cedula: 1900402585 Dirección: Chaguarpamba Calle 10 de agosto Teléfono: 2600134 Celular: 0991945951 DATOS COMPLEMENTARIOS Director de tesis: Ing. Ermel Loaiza Carrión Asesora: Ing. Paulina Fernández Tribunal de grado: Ing. Edmigio Valdivieso, Mg. Sc.

Ing. Zoila Zaruma, Mg. Sc.

Dr. Julio Arévalo Camacho

vi

AGRADECIMIENTO

A la Universidad Nacional de Loja por darnos la oportunidad de estudiar y ser

profesionales.

A nuestro director de tesis, Ing. Ermel Loaiza y a nuestra asesora Ing. Paulina

Fernández por su esfuerzo y dedicación, quienes con sus conocimientos,

experiencias, paciencia y motivaciones han contribuido para terminar nuestros

estudios con éxito.

A los miembros que conformaron el tribunal precedido por el Ing. Edmigio

Valdivieso presidente, Ing. Zoila Zaruma y Dr. Julio Arévalo Camacho vocales,

que a pesar del sin fin de sus actividades, nos dieron buenas observaciones

que ayudaron a enriquecer mi trabajo.

También agradecemos a nuestros Maestros de la Carrera de Ingeniería en

Producción, Educación y Extensión Agropecuaria, por su aporte con un granito

de arena a nuestra formación; y, en especial a nuestro profesor Ing. Luis Viteri

por su visión crítica de muchos aspectos cotidianos de la vida, por la rectitud

como profesional y docente, por sus consejos, y más que todo por esa gran

amistad.

Son muchas las personas que han formado parte de nuestra vida profesional a

las que nos encantaría agradecerles su amistad, consejos, apoyo, ánimo y

compañía en los momentos más difíciles de nuestra vida. Algunas están aquí

con nosotros y otras en nuestros recuerdos y en nuestro corazón, sin importar

donde estén queremos darles las gracias por formar parte de nosotros, por

todo lo que nos han brindado y por todas sus bendiciones.

¡¡GRACIAS DE TODO CORAZÓN!!

vii

DEDICATORIA

Esta tesis la dedico a mi Padre Manuel, porque creyó en mí y porque me sacó

adelante, dándome ejemplos dignos de superación y entrega, porque en gran

parte gracias a él, hoy puedo ver cristalizado mi meta, ya que siempre estuvo

impulsándome en los momentos más difíciles de mi carrera, y porque el orgullo

que sienten por mí, fue lo que me hizo ir hasta el final.

A mi esposa Gabriela, que ha estado a mi lado dándome cariño, confianza y

apoyo incondicional para seguir adelante. A mis hijos Cristopher y Gabriel,

quienes cada día tienen sentido, los testigos silenciosos de mis luchas

cotidianas en busca de un mejor futuro, a ellos, mi esperanza, alegría y mi vida.

A mis hermanas, Diana y Carolina, va por ustedes, por lo que valen, porque

admiro su fortaleza y por lo que han hecho de mí, por haber fomentado en mí el

deseo de superación y el anhelo de triunfo en la vida. Mil palabras no bastarían

por su apoyo, su comprensión y sus consejos en los momentos difíciles. A

todos, espero no defraudarlos y contar siempre con su valioso apoyo, sincero e

incondicional.

CRISTIAN DIAS

viii

DEDICATORIA

Esta tesis la dedico a mis padres Galo y Carmita quién supo guiarme por el

buen camino, darme fuerzas para seguir adelante, enseñándome a encarar las

adversidades sin perder nunca la dignidad, ni desfallecer en el intento.

A mis hermanas, Ximena, Sonia, Gina y Juliana, tíos, primos, abuelitos y

amigos. Quienes con su apoyo, consejos, comprensión, amor, ayuda en los

momentos difíciles, por apoyarme con los recursos para estudiar, por hacerme

de mí una persona con valores para poder desenvolverme como esposa,

madre y profesional. Me han dado todo lo que soy como persona, valores,

principios, carácter, empeño, perseverancia, coraje para conseguir mis

objetivos.

A mi esposo Cristian, que ha estado a mi lado dándome cariño, confianza y

apoyo incondicional para seguir adelante para cumplir otra etapa en mi vida. A

mis Hijos, Cristopher y Gabriel quienes son el motivo y la razón que me han

llevado a seguir superándome, para alcanzar mis más preciados ideales, ellos

fueron quienes en los momentos más difíciles me dieron su amor y compresión

para poderlos superar, quiero también dejar a cada uno de ellos una

enseñanza, que cuando se quiere alcanzar algo en la vida, no hay tiempo ni

obstáculo que lo impida para poder lograrlo.

A mi familia, pues por ellos soy lo que soy

GABY CAPA

“La dicha de la vida consiste en tener siempre algo que hacer, alguien a quien amar y

alguna cosa que esperar”. Thomas Chalmers

ix

ÍNDICE GENERAL

Índice. Pág.

PORTADA ……………………………………………………………………………………….i

APROBACIÓN .............................................................................................................. ii

CERTIFICACIÓN .......................................................................................................... iii

AUTORÍA……….. ........................................................................................................ iv

AGRADECIMIENTO .................................................................................................... vi

DEDICATORIA ............................................................................................................ vii

DEDICATORIA ........................................................................................................... viii

ÍNDICE GENERAL ...................................................................................................... ix

ÍNDICE DE CUADROS ............................................................................................... xiii

ÍNDICE DE FIGURAS ................................................................................................ xvii

1. TÍTULO……. ............................................................................................................. 1

2. RESUMEN ................................................................................................................ 2

2.1. ABSTRACT............................................................................................................ 5

3. INTRODUCCIÓN ...................................................................................................... 8

4. REVISIÓN DE LITERATURA .................................................................................. 10

4.1 MÉTODOS DE SELECCIÓN DE SEMILLAS ........................................................ 10

4.1.1 Selección de plantas madres ............................................................................. 10

4.1.2 Cosecha de la cereza ........................................................................................ 10

4.1.3 Despulpado ........................................................................................................ 10

4.1.4 Fermentación ..................................................................................................... 11

4.1.6 Secado .............................................................................................................. 11

4.1.7 Selección de semillas......................................................................................... 11

4.1.8 Conservación de la Semilla. ............................................................................... 12

4.1.9 Vigor de las Semillas.......................................................................................... 12

4.2 ESTABLECIMIENTO DE GERMINADOR Y VIVEROS DE CAFÉ. ....................... 13

4.2.1 El Germinador. .................................................................................................. 13

4.2.2 Ubicación y Tamaño. ......................................................................................... 13

4.2.3 Preparación de la Platabanda. .......................................................................... 14

4.2.4 Sustrato para la Germinación............................................................................. 14

4.2.4.1 Suelo .............................................................................................................. 14

4.2.4.2 Arena y suelo .................................................................................................. 15

x

4.2.4.3 Arena .............................................................................................................. 15

4.2.5 Siembra de la Semilla. ....................................................................................... 15

4.2.6 Riegos. .............................................................................................................. 15

4.2.7 Control de Enfermedades. ................................................................................ 16

4.2.8 El Sustrato ......................................................................................................... 16

4.2.8.1 Sustrato de crecimiento. ................................................................................. 16

4.2.9 Llenado de Fundas ............................................................................................ 17

4.2.10 Alineamiento de Bolsas. ................................................................................... 17

4.2.11 Trasplante del Almácigo a la Bolsa. ............................................................... 18

4.2.12 Localización del Vivero. ................................................................................... 19

4.2.13 Cobertizo. ........................................................................................................ 20

4.3 FERTILIZACIÓN EN VIVERO. .............................................................................. 20

4.4 PLÁSTICOS PET (POLIETÍLENO TEREFTALATO) ............................................ 21

4.5 TRATAMIENTOS PREGERMINATIVOS .............................................................. 22

4.5.1 Mecánicos.......................................................................................................... 23

4.5.2 Agua Caliente o Temperada .............................................................................. 23

4.5.3 Escarificación con Ácido clorhídrico o Químico. ................................................. 23

5. MATERIALES Y MÉTODOS ................................................................................... 24

5.1 INFORMACIÓN GENERAL .................................................................................. 24

5.1.1 Ubicación Política .............................................................................................. 24

5.1.2 Ubicación Geográfica ......................................................................................... 24

5.1.3 Ubicación Ecológica ........................................................................................... 24

5.2 MATERIALES ....................................................................................................... 25

5.2.1 Material de colecta: ............................................................................................ 25

5.2.2 Materiales de campo .......................................................................................... 25

5.2.3 Insumos ............................................................................................................. 25

5.2.4 Materiales de oficina .......................................................................................... 25

5.3 METODOLOGIA .................................................................................................. 26

5.3.1 METODOLOGIA PARA EL PRIMER OBJETIVO ............................................... 26

5.3.1.1 Definición del proceso tecnológico .................................................................. 26

5.3.1.2 Selección de las semillas. ............................................................................... 27

5.3.1.3 Procesamiento de la semilla. ......................................................................... 27

5.3.1.4 Diseño experimental para el primer objetivo.................................................... 28

5.4 METODOLOGÍA DEL SEGUNDO OBJETIVO. .................................................... 30

xi

5.4.1 Llenado de Fundas ............................................................................................ 31

5.4.2 Llenado de los Envases PET ............................................................................ 31

5.4.3 Trasplante. ......................................................................................................... 32

5.4.4 Labores Culturales. ............................................................................................ 32

5.4.5 Diseño Experimental para el Segundo Objetivo. ............................................... 33

5.4.6 Delineamiento Experimental en el Campo ........................................................ 33

5.4.7 Tratamientos ...................................................................................................... 33

5.4.8 Unidades Experimentales .................................................................................. 33

5.5 METODOLOGÍA DEL TERCER OBJETIVO. ....................................................... 34

6. RESULTADOS ....................................................................................................... 35

6.1 RESULTADOS DEL PRIMER OBJETIVO............................................................. 35

6.2 RESULTADOS DEL SEGUNDO OBJETIVO ........................................................ 37

RESUMEN DE LAS VARIABLES EVALUADAS EN EL EXPERIMENTO .................... 72

6.3 RESULTADO DEL TERCER OBJETIVO .............................................................. 73

7. DISCUSIÓN ............................................................................................................ 74

8. CONCLUSIONES ................................................................................................... 77

9. RECOMENDACIONES ........................................................................................... 78

10. BIBLIOGRAFÍA ..................................................................................................... 79

11.ANEXOS ................................................................................................................ 81

Anexo 1. Mapa de la ubicación de la recolección de café en el

cantón Chaguarpamba de la provincia de Loja. ........................................ 82

Anexo 2. Mapa de ubicación del ensayo .................................................................. 83

Anexo 3. Diseño experimental en el campo con los diferentes tratamientos,

se aplicó tres repeticiones. ....................................................................... 84

Anexo 5. Análisis para la variable Germinación en el cultivo de plántulas de

café Mizhquillana. ..................................................................................... 85

Anexo 6. Análisis del variable diámetro del tallo por bloques. ................................... 86

Anexo 7. Análisis de la variable diámetro del tallo por bloques. ................................ 86

Anexo 8. Análisis de la variable diámetro del tallo por bloques ................................. 87






xii

Anexo 14. Análisis de la variable altura de la planta por bloques. ............................... 90




Anexo 18. Análisis de la variable altura de la planta por bloques. .............................. 92




Anexo 22. Análisis de la variable Longitud de la raíz por bloques. ............................. 94

Anexo 23. Análisis de la variable Longitud de la raíz por bloques .............................. 94

Anexo 24. Análisis de la variable Longitud de la raíz por bloques. ............................. 95

Anexo 25. Análisis de la variable Longitud de la raíz por bloques. .............................. 95





Anexo 30. Análisis de la variable número de hojas por bloques. ................................. 98




Anexo 34. Análisis de la variable número de hojas por bloques. ............................... 100




Anexo 38. Análisis para la variable área foliar por bloques. ...................................... 102

Anexo 39. Resultados de semillas germinadas por semanas ................................... 103

Anexo 40: Fotografías del desarrollo de la investigación. ......................................... 104

Anexo 41. Cartilla entregada a los asistentes del día de campo ............................... 118

xiii

ÍNDICE DE CUADROS

Indice Pág.

Cuadro 1. Análisis de varianza para la variable germinación .................................... 35

Cuadro 2. Prueba de Tukey para la variable germinación de los tratamientos .......... 36

Cuadro 3. Análisis de varianza para la variable diámetro del tallo (cm)

de plántulas de café en el primer mes (junio)............................................ 37

Cuadro 4. Análisis de varianza para la variable diámetro del tallo

de plántulas de café en el segundo mes (julio). ........................................ 38

Cuadro 5. Prueba de Tukey para el variable diámetro del tallo de las

plántulas de café en el segundo mes (julio). ............................................. 38


de plántulas de café en el tercer (agosto). ................................................ 39

Cuadro 7. Prueba de Tukey para la variable diámetro del tallo de

las plántulas de café en el tercer mes (agosto) ......................................... 39

Cuadro 8. Análisis de varianza para la variable diámetro del tallo de

plántulas de café en el cuarto (septiembre). ............................................. 40

Cuadro 9. Prueba de Tukey para la variable diámetro del tallo en el

cuarto mes (septiembre) en las plántulas de café. .................................... 40


plántulas de café en el quinto (octubre). .................................................. 41

Cuadro 11. Prueba de Tukey para la variable diámetro del tallo de

las plántulas de café del quinto mes (octubre). ........................................ 41


de plántulas de café en el sexto (noviembre). ........................................... 42

Cuadro 13. Prueba de Tukey para la variable diámetro del tallo en el

sexto mes (noviembre) ............................................................................. 42


de plántulas de café en el séptimo (diciembre). ........................................ 43


en el octavo mes del ciclo vegetativo (enero). ......................................... 43

Cuadro 16. Prueba de Tukey para la variable diámetro del tallo

en las plántulas de café en el octavo mes (enero) .................................... 44

Cuadro 17. Análisis de varianza para la variable Altura (cm) del primer mes (junio) ... 46

xiv

Cuadro 18. Prueba de Tukey para la variable altura del primer mes (junio). .............. 46

Cuadro 19. Análisis de varianza para la variable Altura en el segundo mes (julio) …47

Cuadro 20. Prueba de Tukey para la variable altura de la plántula en

el segundo mes del ciclo vegetativo (julio). ............................................... 47

Cuadro 21. Análisis de varianza para la variable Altura de las plántulas

de café del tercer mes (agosto) ciclo vegetativo ....................................... 48

Cuadro 22. Prueba de Tukey para la variable de altura de la plántula

del tercer mes del ciclo vegetativo (agosto). ............................................. 48


de café del cuarto mes (septiembre) ciclo vegetativo ................................ 49

Cuadro 24. Prueba de Tukey para la variable altura de la plántula de

café del cuarto mes (septiembre) ciclo vegetativo ................................... 49


de café del quinto mes (octubre) ciclo vegetativo ..................................... 50

Cuadro 26. Prueba de Tukey para la variable altura de la plántula de café ................. 50


de café del sexto mes (noviembre) ........................................................... 51

Cuadro 28. Prueba de Tukey para la variable altura de la plántula de café

del sexto mes (noviembre)........................................................................ 51


de café del séptimo mes (diciembre) ........................................................ 52

Cuadro 30. Prueba de Tukey para la variable altura de la plántula de café ................. 52

Cuadro 31. Análisis de varianza para la variable Altura de las plántulas de

café del octavo mes (enero) ..................................................................... 53

Cuadro 32. Prueba de Tukey para la variable altura de la plántula de

café del octavo mes (enero) ..................................................................... 53

Cuadro 33. Análisis de varianza para la variable Longitud de raíz de

las plántulas de café del primer mes (junio) ciclo vegetativo. .................... 55

Cuadro 34. Prueba de Tukey para la variable longitud de raíz de las

plántulas de café del primer mes (junio) ciclo vegetativo. ......................... 55


las plántulas de café del segundo mes (julio) ciclo vegetativo. ................. 56


las plántulas de café del tercer mes (agosto) ciclo vegetativo ................... 56

xv

Cuadro 37. Prueba de Tukey para la variable longitud de raíz

de las plántulas de café del tercer mes (agosto). ...................................... 57

Cuadro 38. Análisis de varianza para la variable Longitud de raíz

de las plántulas de café del cuarto mes (septiembre) . ............................. 57

Cuadro 39. Prueba de Tukey para la variable longitud de raíz .................................... 58


de las plántulas de café del quinto mes (octubre). .................................... 58


plántulas de café del quinto mes (octubre) .............................................. 59


de las plántulas de café del sexto mes (noviembre).................................. 59


de las plántulas de café del sexto mes (noviembre) ................................. 60


de las plántulas de café del séptimo mes (diciembre) .............................. 60


de plántulas de café del séptimo mes (diciembre). ................................... 61


de las plántulas de café del octavo mes (enero). ...................................... 61

Cuadro 47. Análisis de varianza para la variable número de hojas

de las plántulas de café en el primer mes (junio). ..................................... 63

Cuadro 48. Análisis de varianza para la variable número de hojas de

las plántulas de café en el segundo mes (julio) . ....................................... 63


de las plántulas de café en el tercer mes (agosto). ................................... 64


de las plántulas de café en el cuarto mes (septiembre). ........................... 65

Cuadro 51. Prueba de Tukey para la variable número de hojas

de las plántulas de café ............................................................................ 65


de las plántulas de café en el quinto mes (octubre). ................................. 66

Cuadro 53. Análisis de varianza para la variable número de hojas de

las plántulas de café en el sexto mes (noviembre) ................................... 66

xvi


de las plántulas de café en el séptimo mes (diciembre). ........................... 67


de las plántulas de café en el octavo mes (enero). ................................... 68

Cuadro 56. Prueba de Tukey para la variable número de hojas

de las plántulas de café en el octavo mes (enero). ................................... 68

Cuadro 57. Análisis de varianza para la variable área foliar

de las plántulas de café. ........................................................................... 70

Cuadro 58. Prueba de Tukey para la variable área foliar ............................................ 70

Cuadro 59. Variables generales del ensayo: diámetro altura, longitud

de la raíz, número de hojas) .................................................................... 72

Cuadro 60. Agenda del día de campo ......................................................................... 73

xvii

ÍNDICE DE FIGURAS

Indice Pág.

Figura 1. Diseño almácigo ......................................................................................... 13

Figura 2. Porcentaje de germinación de cuatro tratamientos germinativos. ............... 36

Figura 3. Crecimiento del diámetro del tallo (mm) en los diferentes meses

en el cultivo de plántulas. ............................................................................ 45

Figura 4. Gráfico del crecimiento de la variación de altura de las plántulas

de café. ....................................................................................................... 54

Figura 5. Representación gráfica de la longitud de raíz en los diferentes

meses en las plántulas de café. .................................................................. 62

Figura 6. Variación de números de hojas en las plántulas de café ............................. 69

Figura 7. Área foliar ................................................................................................... 71

Figura 8. Variables generalas al culminar la fase de campo. ..................................... 72

1

1. TÍTULO

Evaluación de tratamientos pre-germinativos y tipos de

envases en la producción de plántulas de café Catuaí Rojo

Coffea arábica L. comunidad de Mizhquillana, cantón

Chaguarpamba.

2

2. RESUMEN

El presente trabajo de producción de plántulas de café se lo realizó en la

comunidad de Mizhquillana, perteneciente al Cantón Chaguarpamba Provincia

de Loja, con la finalidad de evaluar los tratamientos pre-germinativos y tipos de

envases.

Como objetivo general se planteó: “Establecer alternativas tecnológicas para la

obtención de plántulas de cafeto arábigo de alta calidad que mejoren la

producción y productividad.” y como específicos: Determinar la influencia de

cuatro tratamientos físicos y químicos (con pergamino o testigo, sin

pergamino, agua caliente y ácido clorhídrico al 0.5% por 12 horas) en la

semilla y su incidencia en la germinación; evaluar el desarrollo de las plántulas

de cafeto, con la utilización de dos tipos de recipientes (fundas negras de

polietileno y botellas plásticas desechables PET) y difundir los resultados

finales del proceso investigativo, a través de la elaboración de folletos

didácticos y realizando un día de campo.

Se recolectó la semilla, en la finca del Sr, Galo Capa en el cantón Chaguarpamba con

un estricto proceso de selección, garantizando la calidad del material genético;

teniendo en cuenta las características: morfológicas, edad, producción, se realizó la

selección de las semillas tomando en cuenta: Tamaño: uniforme; forma: semillas

de buen tamaño, redondas, rechazando las semillas con defectos: (grano

caracol, grano triángulo, grano monstruo, grano pequeño y semilla brocada o

lastimada), realizando la prueba de índice de frutos vanos.

El procesamiento de la semilla se lo realizó mediante el despulpado,

fermentación por 24 horas, lavado, secado por 7 días bajo sombra,

almacenado se guardó en bolsas plásticas de polietileno color negro, luego

fueron sembradas y se evaluó la germinación de la semilla bajo cuatro

tratamientos (físico y químicos), con pergamino (testigo), sin pergamino, agua

3

caliente (90ºC por el tiempo de 3 min) y ácido clorhídrico al 0.5% por 12 horas,

el testigo con pergamino fue considerado en razón de que es la práctica común

de los productores de la zona.

El ensayo se lo realizó en la comunidad de Mizhquillana, ubicado en el Cantón

Chaguarpamba, Provincia de Loja, cuenta con una fisiografía de tipo

montañoso andino, de clima subtropical, con una temperatura promedio anual

de 18-20 º C, con una nubosidad media anual de 70-80%, en los meses

lluviosos y entre 10-20% en los meses secos.

La siembra se realizó en el mes de marzo, contando con el agua de riego. Se

utilizó 12 tratamientos, con 3 réplicas. La cantidad de semilla de café utilizada fue

de 6 Kg la variedad Catuaí Rojo con unidades experimentales, el área de un

bloque es de 4x4 (16 ); con el 50% de humus y 50 % de arena de rio. El

número bloques muestrales 8, plantas por unidad muestral fueron 200, por

tratamiento 400 y por todo el experimento 800 c/u, en totales 1 600 plantas y el

área total del ensayo de 50 . Se realizó la preparación sustrato, y llenado

respectivo y se ubicó el respectivo letrero de acuerdo a cada tratamiento, para

luego realizar el trasplante.

Durante el desarrollo del ensayo se realizaron mediciones de las variables;

también se realizaron labores culturales y controles fitosanitarios

En cuanto al ataque de plagas y enfermedades, los daños causados por estos

se encontraron dentro de los umbrales económicos.

Los resultados de la influencia de germinación con cuatro tratamiento y

evaluación de plántulas de cafeto con dos tipos de recipientes se empleó la

prueba de Tukey al 5 % para determinar diferencias estadísticas. Las variables

evaluadas en el cultivo de café fueron cada 15 días: Altura de la planta, número

de pares de hojas, área foliar, diámetro del tallo, longitud de las raíces,

4

presente en el cultivo de café los mismos que fueron tabulados, analizados

estadísticamente y presentados en figuras y cuadros.

El mejor % de germinación obtenido con el mejor tratamiento sin pergamino

85% de germinación más la utilización de fundas de polietileno, fundas que

deben ser de una medida de 13 x 18 cm, debido que son los más altos en el %

de germinación y en la variable de días a florecer a los 36 días son los más

precoces.

Finalmente, considerando que toda investigación sino se define pierde su

importancia, se elaboró trípticos, papelotes y diapositivas con cuadros de datos

y resultados de la investigación, los cuales fueron socializados y difundidos en

visitas realizadas por los productores de la zona al experimento y en el día de

campo planificado específicamente para dicho fin.

5

2.1. ABSTRACT

This work coffee seedling production was conducted in Mizhquillana

community, belonging to the Canton Chaguarpamba Loja Province , in order to

assess the pre - germination treatments and types of containers.

The main objective is stated: "To establish technological alternatives for

obtaining coffee seedlings of high quality Arabica production and improve

productivity. "And specific: To determine the influence of four physical and

chemical treatments (with parchment or witness, without parchment, hot water

and 0.5 % hydrochloric acid for 12 hours) in the seed and its effect on

germination; evaluate the development of seedlings of coffee, with the use of

two types of containers (polyethylene black sleeves and disposable PET plastic

bottles) and disseminate the final results of the research process through the

development of educational brochures and conducting a field day .

Seed was collected on the farm of Mr. Galo Capa, Chaguarpamba Layer in

Canton with a rigorous selection process, ensuring the quality of genetic

material, taking into account the characteristics: morphological, age ,

production, selection was made from the seeds taking into account: size:

uniform way: seeds of good size, round, rejecting defective seeds (spiral grain,

grain triangle monster grain, small grain and seed brocade or injured), making

the test of empty fruits index .

The seed processing was made by pulping, fermentation for 24 hours, washed,

dried under shade for 7 days, stored was stored in plastic bags polyethylene

black color, then were planted and evaluated for seed germination under four

treatments (physical and chemical) with parchment (control) without parchment,

hot water (90°C for the time of 3 min) and hydrochloric acid 0.5% by 12 hours,

6

the witness with parchment was considered because it is the practice common

area producers .

The trial was conducted in Mizhquillana community, located in Canton

Chaguarpamba, Loja Province, has a mountainous physiography Andean type,

subtropical climate, with an average temperature of 18-20°C, with an average

cloudiness 70-80 % annual in the rainy months and between 10-20% in the dry

months .

Sowing was done in March , with the irrigation water. We used 12 treatments

with 3 replicates. The amount of seed used coffee was 6 Kg Red Catuai variety

experimental units, the area of a block of 4*4 m2 (16m2), with 50% of humus

and 50 % sand river. Sample block number 8 plants per sample unit were 200,

400 and by treating the experiment 800 c/u, in total 1600 plants and the total

test area (50m2). Substrate preparation was performed, and respective filling

and placed the respective sign in accordance with each treatment, and then

perform the transplant.

During assay development were measured variables; also performed cultural

work and phytosanitary controls.

With regard to pests and diseases, the damage caused by these were found

within economic thresholds .

The results of the influence of four treatment germination and seedling

evaluation coffee with two types of containers are used the Tukey test at 5% to

determine statistical differences. The variables evaluated in the cultivation of

7

coffee were each 15 days: Plant height , number of pairs of leaves, leaf area,

stem diameter, root length, present in the coffee plantations which were

tabulated, statistically analyzed and presented in figures and tables.

% Germination best obtained with the best treatment without scroll 85%

germination using polyethylene bags, cases to be a measure of 13x18 cm,

because they are higher in % germination and the variable of days to flower at

36 days are the most precocious.

Finally, considering that all research defined but loses its importance, was

developed brochures, flipcharts and slide with tables of data and research

results, which were socialized and disseminated in visits by local producers to

experiment and the field day planned specifically for this purpose.

8

3. NTRODUCCIÓN

El café Coffea arábica L., originario del norte de África, es el cultivo

permanente más importante de la región sur del país; el café en el Ecuador

tiene gran significado en su economía, porque da sustento y genera divisas a

numerosas familias dedicadas a esta actividad, contribuyendo a generar

fuentes de trabajo e ingresos al desarrollo nacional.

El minifundio es la base de la caficultura ecuatoriana, pues se estima que el

80% de las fincas cafetaleras tienen superficies menores a tres hectáreas, por

otra parte, los cafetales tienen las características de un semibosque; por

consiguiente, constituye en protector del suelo y hábitat de muchas especies de

fauna y flora; por ello debemos dar mayor atención a investigar técnicas

apropiadas y aplicables para mejoramiento de la caficultura del Ecuador,

permitiendo a los pequeños caficultores mejorar su producción y rentabilidad.

La producción y productividad del cultivo se encuentran afectadas entre otros

factores, por la presencia de plantaciones de avanzada edad, inadecuado

control de malezas, alta incidencia de plagas y enfermedades, manejo

tecnológico inadecuado de los cafetales.

El vivero es la fase inicial de las plantas de café donde empiezan su desarrollo,

forman sus primeros órganos y se suministra los mejores cuidados ya que

influyen en el crecimiento, desarrollo y productividad de la planta; por lo tanto,

esta fase es muy importante partiendo de una selección adecuada de semillas,

elaborando un buen sustrato de germinación que permita obtener plántulas de

café de buena calidad.

La presente investigación se llevó a cabo en la comunidad de Mizhquillana,

perteneciente al Cantón Chaguarpamba, provincia Loja, desde Junio de 2011

hasta Enero 2013.

9

Los resultados que se presentan corresponden a un año y medio de trabajo en

el campo, donde se compartieron experiencias agrícolas con las familias de

esta comunidad, con quienes se realizó el vivero de café y luego el

seguimiento permanente, se espera que este aporte se replique en todos los

habitantes de Mizhquillana.

Para realizar la presente investigación se plantearon los siguientes objetivos:

OBJETIVOS GENERAL

Establecer alternativas tecnológicas para la obtención de plántulas de cafeto

arábigo de alta calidad que mejoren la producción y productividad.

OBJETIVO ESPECIFICO

Determinar la influencia de cuatro tratamientos físicos y químicos (con

pergamino o testigo, sin pergamino, agua caliente y ácido clorhídrico

al 0.5% por 12 horas) en la semilla y su incidencia en la germinación.

Evaluar el desarrollo de las plántulas de cafeto, con la utilización de dos

tipos de recipientes (fundas negras de polietileno y botellas plásticas

desechables PET).

Difundir los resultados finales del proceso investigativo, a través de la

elaboración de folletos didácticos y realizando un día de campo.

10

4. REVISIÓN DE LITERATURA

4.1 MÉTODOS DE SELECCIÓN DE SEMILLAS

4.1.1 Selección de plantas madres

Para seleccionar las plantas madres de las cuales se va a recolectar las

semillas, se debe tomar en cuenta las siguientes características, esto en el

caso de que el caficultor no pueda obtener semillas mejoradas (Mena, 1 997).

Las plantas deben ser adultas entre cuatro a seis años mínimo, vigorosas,

sanas, resistentes a plagas y enfermedades, que durante los años de

producción hayan sido de buena calidad y cantidad.

4.1.2 Cosecha de la cereza

Se debe recolectar frutos que tengan las siguientes cualidades: que hayan

alcanzado su completa madurez fisiológica, se puede identificar esta cualidad

en las cerezas cuando adquieren el color rojo o amarillo según la variedad, que

presente un tamaño y peso promedio deseable en un rango de (4 a 5g), que

estén bien formados, que no estén afectados por el sol, la disposición que

tengan en la planta de la rama que se tome.

4.1.3 Despulpado

Después de seleccionar la cereza se procede al despulpado, el cual tiene como

objetivo quitarle al grano manual o mecánicamente las envolturas exterior

(epicarpio, mesocarpio), esta práctica debe realizarse preferiblemente a mano

durante el mismo día en que se realiza la cosecha. (INIAP, 1 993)

11

4.1.4 Fermentación

Es el proceso mediante el cual se desprende la parte mucilaginosa con agua, a

causa de la muerte de las células del tejido, se debe fermentar el grano

despulpado en recipientes adecuados (sacos de yute, baldes, tinas, etc.),

dependiendo del factor temperatura dura de 18 a 36 horas, a altas

temperaturas la fermentación es más rápida (14 horas) y a bajas temperaturas

(27 horas); es importante no sobre fermentar el grano, ya que puede afectar

al embrión (INIAP, 1 993)

4.1.5 Lavado

En este proceso se separa por completo el mucílago del grano y en estas

condiciones ponemos la semilla a secar, lavando inmediatamente después del

proceso de fermentación debe hacérselo por lo menos tres veces con agua

limpia.

4.1.6 Secado

Esta operación debe realizarse después del lavado tomando en cuenta que la

semilla puede ser expuesta al sol solamente 45 minutos para remover el agua

que trae del lavado, posteriormente se continua este proceso en lugares

sombreados y con buena ventilación hasta obtener una humedad de 14%,

cuando la semilla se seca artificialmente, la temperatura empleada debe ser

inferior a 45°C. (INIAP, 1 993)

4.1.7 Selección de semillas

Durante esta fase se debe eliminar manualmente los granos anormales

(caracoles, triángulos y monstruos), enfermos o defectuosos.

12

Selección de semillas en pergamino: Se selecciona semillas

completamente desarrolladas y bien formadas, con punta redonda u ranura

recta. La semilla de café está cubierta por una lámina dura que corresponde

al endocarpio del fruto, conocida con el nombre de pergamino.

(FAPECAFES, 2 010)

Selección de semillas sin pergamino: Es la parte interna del pergamino

donde se encuentra el endospermo o almendra del grano, cubierta por una

capa fina denominada “película plateada”. En el interior del endospermo se

encuentra un embrión pequeño. (INIAP, 1 993)

4.1.8 Conservación de la Semilla.

Según la opinión de expertos caficultores, los factores que afectan la vida de

las semillas almacenadas son: humedad, temperatura e intercambio gaseoso,

las semillas almacenadas bajo condiciones de altas temperaturas y humedad

pueden perder su poder germinativo en pocos meses; sin embargo, otras

guardadas bajo condiciones favorables, pueden permanecer viables hasta 2

años (FAPECAFES, 2 010).

4.1.9 Vigor de las Semillas.

El vigor de la semilla es la suma de aquellas propiedades que determinan el

nivel potencial de actividad y desarrollo de la semilla o lotes de semillas,

durante la germinación y la emergencia hasta alcanzar el estado de plántula.

Entre los aspectos para diferenciar las semillas de alto y bajo vigor tenemos:

Procesos bioquímicos y reacciones que tienen lugar durante la germinación.

Velocidad y uniformidad de germinación.

Emergencia bajo condiciones ambientales desfavorables en la fase de

germinación.

13

Luego el efecto del vigor puede hacerse palpable en el crecimiento y

uniformidad de la planta y finalmente en el rendimiento de la cosecha.

(Departamento de Producción Vegetal Fitotecnia, 1 993).

4.2 ESTABLECIMIENTO DE GERMINADOR Y VIVEROS DE CAFÉ.

4.2.1 El Germinador.

Es el sitio en el cual se colocan las semillas de café para que germinen y donde

se mantienen hasta que aparezca el primer par de hojas cotiledóneas, fase en

la cual estas plantitas reciben el nombre de “chapolitas” (Programa Nacional

del Café, 1 993).

Figura 1. Diseño almácigo

Fuente: Manual del Caficultor.1992

4.2.2 Ubicación y Tamaño.

El germinador se debe localizar en un lugar de fácil acceso, cercano a una

fuente de agua para riego, en un lugar sombreado protegido de los animales

domésticos; la capacidad del germinador se determina por la cantidad de

14

semillas, al sembrase un m² cabe un kg de semilla que produce 3 000

chapolas (Programa Nacional del Café, 1 993).

4.2.3 Preparación de la Platabanda.

Para el efecto, es necesario confeccionar un marco de caña guadua, tablón,

ladrillo u otro material que de una estructura firme; el tamaño recomendado es

de un metro de ancho, 0,2 metros de alto y de longitud variable, dependiendo

de la cantidad de semillas disponible, se estima que por cada kg de semilla en

pergamino se obtienen 2200 plantas efectivas; para desinfectar la platabanda

se puede utilizar, Terraclor o Brasicol, en el caso de terraclor se recomienda de

10 a 15 gr del producto disuelto en dos litros de agua para un m2, si se usa

Brasicol se recomienda disolver 1 kg en 100 litros de agua y de esta mezcla

utilizar de dos a cuatro litros por m² (Instituto Nacional de Investigaciones

Agropecuarias (INIAP, 1 993).

4.2.4 Sustrato para la Germinación

Según el (INIAP, 1 993), se puede emplear cualquiera de los tres tipos de

sustratos disponibles, ya sea tierra de montaña o el mejor suelo de la finca,

una mezcla de suelo y arena o solamente arena.

4.2.4.1 Suelo

Debe ser lo suficientemente suelto de textura franca y bien cernido. Este

sustrato se utiliza cuando las plantas van a permanecer por mayor tiempo en el

semillero, ya que no deben presentar problemas de clorosis o amarillamiento

en razón de que existe suficiente cantidad de nutrientes en el suelo.

15

4.2.4.2 Arena y suelo

Se adiciona al suelo una cantidad de arena con el propósito de lograr una

proporción textural deseable.

4.2.4.3 Arena

Con este tipo de sustrato, se obtiene un mayor sistema radicular en las plantas;

pero se debe aplicar riegos diarios, ya que al haber deficiencias de humedad, la

germinación podría reducirse o ser irregular.

4.2.5 Siembra de la Semilla.

La siembra se puede hacer de dos maneras: al voleo, esparciendo la semilla

sobre el terreno preparado: o en hileras, que consiste en abrir pequeños surcos

de medio centímetro de profundidad y de tres a cinco cm de distancia entre sí,

en los cuales se colocará ordenadamente la semilla con la cara plana hacia

abajo, luego se tapa con una capa de arena de dos centímetros de espesor,

recubrimos cada platabanda con hojas de plátano rasgadas o, cualquier otro

material vegetal que sirva de cobertura y evite el daño que ocasiona un riego

fuerte ( Programa Nacional del Café – PNC, 1 993).

4.2.6 Riegos.

Los germinadores deben regarse con agua limpia y cada vez que sea

necesario, usando una regadera, con el propósito de mantener el suelo

húmedo sin permitir secamiento ni encharcamiento, tres riegos por semana

pueden ser adecuados, el exceso de agua favorece la pudrición de las raíces y

el desarrollo de enfermedades fungosas (INIAP, 1 993).

16

4.2.7 Control de Enfermedades.

Se debe realizar controles preventivos del mal del talluelo, volcamiento o

Damping off con fungicidas cúpricos, si ésta enfermedad se hace presente es

conveniente arrancar y quemar las plantitas afectadas para evitar el contagio

de las demás (Programa Nacional del Café, 1 993).

4.2.8 El Sustrato

El sustrato es muy importante escogerlo, ya que las chapolas se alimentan de

los nutrientes existentes en él, si se decide hacerlo directamente en el suelo es

imprescindible escoger un suelo suelto para asegurar una buena aireación y

buen drenaje, se recomienda una mezcla de suelo cernido y pulpa de café

descompuesta, por cada dos paladas de suelo se pone una palada de pulpa

descompuesta (Consejo Cafetalero Nacional – COFENAC, 1 996)

4.2.8.1 Sustrato de crecimiento.

Sustrato de crecimiento es el conjunto de materiales que sirven de asiento a la

planta. Diversos materiales son utilizados como medios para asegurar una

buena germinación; el uso de cualquiera de ellos está en función de las clases

de semilla a propagar y su disponibilidad a nivel del agricultor. Entre los de

mayor uso en la provincia de Loja tenemos: Suelo franco, limo arenoso, musgo,

humus de hojas o simplemente hojas, corteza desmenuzada, aserrín

descompuesto, humus de lombriz en mezcla de suelo y arena de mina (INIAP,

1 993).

Para tener éxito en la propagación, estos materiales deben tener las siguientes

características:

17

El sustrato debe ser lo suficientemente firme y denso para mantener las

semillas en su sitio durante el proceso y tiempo que debe permanecer la

planta en el semillero. Su volumen no debe variar mucho, ya sea seco o

mojado, es indispensable que se encoja al secarse.

Debe ser lo suficientemente poroso, de modo que drene el exceso de agua y

permita una adecuada aireación.

Debe retener suficiente humedad para que no sea necesario regarlo con

frecuencia.

Debe estar libre de semillas de malezas, de nemátodos y otros organismos

nocivos para la semilla.

No debe tener un nivel excesivo de salinidad y su pH debe ser neutro o

ligeramente alcalino.

4.2.9 Llenado de Fundas

(Según el Plan Nacional del Café,1 993), recomienda utilizar fundas negras

perforadas para mantener el equilibrio hídrico en el interior de las mismas, el

tamaño debe ser de 7 x 10 pulgadas, tomando en cuenta que las plantas

deben permanecer en el vivero alrededor de seis meses, si se utiliza fundas de

menor tamaño ocasionaría mal formación de las raíces y el aislamiento del

tallo.

4.2.10 Alineamiento de Bolsas.

Una vez llena la bolsa se procede al alineamiento en hileras dobles, separadas

con calles de 40 y 50 cm, se siembra de dos cafetos por bolsa, conviene hacer

alineamiento en la misma dirección de las hileras de las bolsas.

18

4.2.11 Trasplante del Almácigo a la Bolsa.

Las plantas están listas para pasar al vivero cuando se abren el par de hojas

cotiledóneas encontrándose bien formadas y tienen la raíz completa y vigorosa

o estado denominado de chapolas, las plántulas deben ser sembradas en las

fundas al mismo nivel o profundidad que estaban en el semillero (Plan Nacional

del Café – PNC, 1 993).

Según Ordoñez, 2000, un día antes del trasplante es necesario realizar un

riego profundo con el propósito de facilitar la extracción de las plántulas. El

desarrollo adecuado para realizar la siembra es cuando la plántula está en

etapa de chapola, (cuando sus hojas cotiledones están abiertas). Para realizar

el trasplante es necesario tomar en consideración las siguientes precauciones:

Selección de plántulas sanas, vigorosas y con raíz bien formada.

Evitar la deshidratación.

Cuando se siembra la plántula se debe enterrar hasta el cuello de la raíz.

Para realizar las actividades de trasplante es necesario asignar un encargado

específico que tenga experiencia en la labor, así como habilidad para dirigir

personal y evitar errores que pueden causar daños posteriores.

En algunas fincas se sumerge las plántulas en agua para lavarles el suelo y

poder detectarles lesiones o manchas, así mismo para evitar su

deshidratación, esto puede ser negativo cuando hay presencia de brotes de

mal de talluelo en el semillero, ya que un recipiente con agua contaminada

puede diseminar los hongos a gran número de plantitas sanas.

Así mismo en algunos lugares se hace un tratamiento preventivo para mal

de talluelo, para lo cual se sumerge las chapolas en un fungicida por un

tiempo aproximado de cinco minutos para posteriormente realizar la siembra.

19

(Ordoñez, 2000). Otro aspecto muy importante que se tiene que considerar en

la siembra, es el cuidado de la posición de raíz, ya que ésta cuando tiene

defectos por la mala siembra puede afectar la planta con un mal anclaje,

produciendo un sistema radicular deficiente que afecta el desarrollo y

crecimiento normal de la planta.

Cuando la raíz es muy larga y tiene más de 15 cm. de longitud es necesario

hacer una poda de raíz (3-4 cm. de la punta), la cual facilitará la siembra de la

plántula y además habrá una estimulación que causará aumento de raíces

laterales.

Durante esta etapa se debe tener cuidado con la selección de raíces de las

plántulas que vamos a sembrar, se descartan aquellas que no tengan un

desarrollo normal y presenten alteraciones como raíces cortadas, bifurcadas,

dobladas o cualquier daño causado por hongos, insectos, es necesario contar

con personal que tenga experiencia para evitar errores que pueden causar

pérdida en las futuras plantaciones. (Ordoñez, 2 000)

4.2.12 Localización del Vivero.

Se debe, escoger un sitio plano, cerca de la casa y de una fuente de agua para

regar, la disponibilidad de agua es deseable, no solo por la aplicación de riego,

sino porque facilita la labor de atomización de los fertilizantes que se aplican al

follaje o de sustancias fitosanitarias (Carvajal, 1 972).

Si las condiciones lo permiten el vivero debe estar lo más cerca posible del

área de plantación, para facilitar y hacer más económico el transporte evitando

que las plántulas sufran algún daño (Mena, 1 978).

20

4.2.13 Cobertizo.

Para su construcción es conveniente y económico usar materiales

preferentemente de la finca tales corno caña guadua, madera, hojas de palma,

hojas de plátano, etc. los pilares deben tener 2,70m. de longitud, se entierra

0,5m del mismo, obteniendo una altura neta de 2,20m. se recomienda emplear

una distancia de 4m x 4m, los travesaños deben ser de una longitud igual a la

distancia usada entre Pilares, para la armazón del techo del cobertizo, se

puede emplear tiras de caña o palos delgados; la cubierta puede ser de hoja de

palma, mallas u otros materiales, procurando dar un 60 a 70 % de sombra,

debe tener protección lateral en el lado este y oeste, para evitar acceso de

insolación de las plántulas; sus dimensiones dependen del número de plantas

a propagarse (INIAP, 1 993)

4.3 FERTILIZACIÓN EN VIVERO.

Para llenar las fundas en el vivero, es conveniente utilizar la mejor tierra

disponible; en cuanto a fertilidad y condiciones físicas no debe ser ni muy

suelta (arenosa) ni muy pesada (arcillosa), pues en el primer caso el “pan” se

desintegra al trasplantar, y en el segundo caso se compacta dificultando el

sistema radicular de las plántulas, la calidad de sustrato se puede mejorar

notablemente mezclando la tierra con pulpa de café descompuesta en la

relación 2:1 1:1 en volumen (INIAP, 1 993).

La pulpa de café además de aportar buena cantidad de nutrientes, le

proporciona al suelo una buena capacidad de retención de humedad,

aumentando la flora bacteriana del mismo, impide su compactación y le permite

una mejor aireación.

Las investigaciones realizadas han demostrado que la adición de pulpa en la

preparación de la tierra para almácigos, del café contribuye a que las plántulas

crezcan sanas y vigorosas (CENICAFE, 1 988)

21

La aplicación de fertilizante alcanza plena justificación si la tierra o sustrato que

se utiliza para el llenado de fundas es de baja fertilidad para lo cual, se

recomienda hacer la primera fertilización después que han desarrollado el

primer par de hojas cotiledóneas, luego se continua con una frecuencia

mensual hasta un mes antes de la fecha fijada para el trasplante, se

recomienda el uso de abonos completos como 10-30-10; 12-24-12; 15-15-15;

etc; si el abono se coloca cerca del tallo puede ocurrir citotoxicidad que se

manifiesta como una quemazón del borde de las hojas jóvenes principalmente.

Cuando se trata de producir grandes cantidades de plántulas, se sugiere

mezclar un kg. de abono completo con 0,25 toneladas de tierra húmeda, el

material abonado se emplea como sustrato en el llenado de fundas, aunque

siempre hay que estar pendiente de la necesidad de las fertilizaciones

adicionales.

La fertilización al suelo puede complementarse con la aplicación de fertilizantes

cada 15 días o de acuerdo a los síntomas de deficiencia que presenten las

plantas.

De manera general se recomienda el uso de 0,5 a 2,0 kg. o (una a dos libras) o

0,5 a 1 litro (sí es formulación líquida) del fertilizante foliar disuelto en 200 litros

de agua, lo que equivale a una concentración que varía de 0,25 a 0,50 % las

soluciones fertilizantes altamente concentradas causan citotoxicidad (INIAP,

1993).

4.4 PLÁSTICOS PET (POLIETÍLENO TEREFTALATO)

Los plásticos PET se usa en la producción de botellas para refrescos, tarros

de mantequilla de maní, entre otros. Su numeración corresponde a 1. Los

plásticos PET puede reciclarse para obtener rellena de fibra para bolsas de

dormir, fibra para alfombra, cuerdas y otros usos que se le quiere dar al mismo

(HCPL, 2 007).

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Ventajas envases plásticos PET

Alta resistencia química, por lo que no se degrada con facilidad.

Baja densidad que le da facilidad de visibilidad.

Materia prima de bajo costo y disponible.

Facilidad de reciclaje, requiere menos energía en la transformación y es

más eficiente.

4.5 TRATAMIENTOS PREGERMINATIVOS

Las semillas de algunas especies presentan problemas en cuanto a la

velocidad, uniformidad y porcentaje de germinación, esto se debe

generalmente a que poseen una cubierta que impide el paso del agua y, por lo

tanto, inhibe en parte el proceso de germinación. En las semillas de la mayoría

de las plantas existen métodos de control de la germinación. Se cree que estos

mecanismos de control se han originado como una respuesta a la

supervivencia (Hartmann, Lester y Davies Jr, 1 990).

El fenómeno de que las semillas no germinen puede deberse a un factor o a

una combinación de factores, entre las causas principales se pueden

mencionar las siguientes: presencia de embriones rudimentarios, embriones

inmaduros, cubiertas mecánicamente resistentes, cubiertas impermeables y

presencia de sustancias inhibidoras. Para superar estos mecanismos de control

de la germinación de semillas existen varios métodos que se aplican

dependiendo del tipo de mecanismo de que se trate; los métodos más

comúnmente empleados son: escarificación mecánica, remojo en agua,

escarificación con ácido, estratificación y la combinación de dos o más

tratamientos. (Hartmann, Kestrel y Davies Jr, 1990) describen estos métodos

de la siguiente manera:

23

4.5.1 Mecánicos

La escarificación mecánica consiste en romper, rayar o alterar mecánicamente

las cubiertas de las semillas para hacerlas permeables al agua o a los gases;

para escarificar un lote pequeño de semillas puede utilizarse papel lija, limas,

martillo o un tornillo de banco. Se puede raspar con lija, limar, quebrar la

cubierta o retirar el pergamino; son métodos simples y útiles para cantidades

pequeñas de semillas.

4.5.2 Agua Caliente o Temperada

El remojo en agua consiste en colocar las semillas en agua a temperaturas de

entre 77ºC a 100ºC, retirar del fuego y dejar enfriar gradualmente durante un

periodo de 12 a 24 horas. Con este tratamiento se logran modificar las

cubiertas duras, remover las sustancias inhibidoras, ablandar las semillas y

reducir el tiempo de germinación. Se utiliza para ablandar cubiertas de

semillas nativas.

4.5.3 Escarificación con Ácido clorhídrico o Químico.

La escarificación con ácido clorhídrico consiste en colocar las semillas secas

en un recipiente de vidrio o de barro y cubrirlas con ácido concentrado en

proporción de una parte de semilla por dos partes de ácido, el tratamiento

puede durar desde 10 minutos hasta seis o más horas y depende del tipo de

semilla. Finalmente se escurre el ácido y las semillas se lavan con agua

abundante. Consiste en trabajar con semillas completamente secas, las

mismas que se coloca en un recipiente de vidrio con ácido en proporciones

que varían dependiendo del tipo de semilla, se debe remover

constantemente para lograr uniformidad en el proceso, cuando se

observe que el grosor de las cubiertas es la de un papel, las semillas se

escurren y lavan bien (Easton, 1 967).

24

5. MATERIALES Y MÉTODOS

5.1 INFORMACIÓN GENERAL

5.1.1 Ubicación Política

La presente investigación se realizó en el barrio Mizhquillana del cantón

Chaguarpamba provincia de Loja, el mismo que se encuentra ubicado a 10 km

de la cabecera cantonal. (ver Anexo 1)

5.1.2 Ubicación Geográfica

Según la carta topográfica se encuentra entre sus coordenadas planas WGS

84, UTM 17S (ver anexo 2)

Latitud Norte: 647198 Latitud Sur: 647220

Latitud Este: 9572370 Latitud Oeste: 9572390

Altitud: 1 240 msnm.

5.1.3 Ubicación Ecológica

De acuerdo a la clasificación de la zona de vida de Holdridge, el lugar presenta

una formación ecológica de Bs-T de clima TROPICAL, con una precipitación

media anual de 2000 mm, y una temperatura media anual de 18 a 20 0 C.

25

5.2 MATERIALES

5.2.1 Material de colecta:

Semilla de café catuaí

5.2.2 Materiales de campo

Lampas; barreta; machetes; polisombra; serrucho; clavos; Alambre; tablas;

bomba de mochila; martillo; manguera de ½ pulgada; envases de plásticos PET

de 1,95 litros; fundas de polietileno; balde; olla; cal; cinta métrica; piola; palas;

trasplantadores; tierra de montaña; arena; cascarilla de café; gallinaza; guadua

5.2.3 Insumos

Agua; insecticidas.

5.2.4 Materiales de oficina

Calculadora; hojas de papel bond; hojas cuadriculadas; papel periódico;

marcadores; borrador; computadora; cámara fotográfica; material bibliográfico;

lápiz; esferos; libreta de apuntes.

26

5.3 METODOLOGÌA

5.3.1 METODOLOGÌA PARA EL PRIMER OBJETIVO

“Determinar la influencia de cuatro tratamientos físicos y químicos (con

pergamino o testigo, sin pergamino, agua caliente y ácido clorhídrico al

0.5% por 12 horas) en la semilla y su incidencia en la germinación.”

5.3.1.1 Definición del proceso tecnológico

Se recolectó la semilla y se hizo la germinación con dos tratamientos físicos. La

cantidad de semilla de café utilizada fue de 6 Kg la variedad Catuaí Rojo,

teniendo en cuenta el tratamiento que obtuvo mejores porcentajes de

germinación (sin pergamino) se siguió la segunda etapa del proceso

investigativo.

Se recolectó la semilla, en la finca del Sr, Galo Capa, en el mes de julio con un

estricto proceso de selección, garantizando la calidad del material genético;

teniendo en cuenta las características:

Morfológicas: Plantas con mejor tallo recto, buen tamaño y excelente

estado fitosanitario.

Edad: Plantas de 3 a 6 años de edad.

Producción: De alta producción, sobresaliente entre el cafetal.

27

5.3.1.2 Selección de las semillas.

Se tomó en cuenta: Tamaño: uniforme; Forma: semillas de buen tamaño,

redondas, rechazando las semillas con defectos: (grano caracol, grano

triángulo, grano monstruo, grano pequeño y semilla brocada o lastimada).

5.3.1.3 Procesamiento de la semilla.

Secado: Bajo sombra por el tiempo de 7 días, procurando llegar a la

humedad óptima del 30 %. (Ver Anexo 40. Foto 3)

Almacenado: La semilla se guardó, en bolsas plásticas de polietileno color

negro, hasta el momento de su siembra.

Seguidamente se evaluó la germinación de la semilla bajo cuatro tratamientos

(físico y químicos) realizando un estricto proceso de selección para todos los

tratamientos:

Sin pergamino(SP): Se eligió 1,5 kg de semilla de cafeto, la eliminación del

pergamino se la realizo manualmente (manos) sacando una a una el

pergamino y al final se realizó una selección estrictamente, eliminando las

semillas con defectos y se tomó en cuenta que el grano de café arabico es

normalmente de forma plano-convexa. (Ver Anexo 40, foto 4)

Con pergamino (testigo) (CP) fue considerado en razón de que es la

práctica común de los productores de la zona. (Ver Anexo 40, foto 5)

Agua temperada(AT): 1.5 Kg de semilla de cafeto se la introdujo en 4 litros

de por el tiempo de 3 min de 90ºC y luego se llevó al lugar de la siembra.

28

Ácido clorhídrico (AC): Se pesó 1.5 kg de cafeto el día anterior a la siembra

para colócalos en un recipiente al 0.5% de A.C por 12 horas, y llevarlo al

lugar de la siembra en el transcurso de ese tiempo la semilla obtuvo una

coloración rojiza.

5.3.1.4 Diseño experimental para el primer objetivo.

El diseño estadístico que se utilizó en este objetivo es, el diseño Bloques al

azar con tres repeticiones.(Ver anexo 3)

El modelo matemático utilizado fue:

Yij = Observación de la unidad experimental sujeta al i-ésimo tratamiento,

en la jésima réplica

µ = Media general

i = Efecto del i-ésimo tratamiento.

Bj = Efecto del j-ésimo bloque

i = Tratamientos (Con pergamino, sin pergamino, agua temperada,

ácido clorhídrico)

j = 1, 2, 3 (Repeticiones)

29

Sustrato: Utilizamos el sustrato elaborado en la zona, rico en nutrientes

altamente recomendados (café, gallinaza + tierra de montaña + arena +

cascarilla de café, en las proporciones 1:1:1:1) para el trasplante del

almácigo al vivero, que permiten el desarrollo vigoroso de las plántulas. La

gallinaza y cascarilla de café estuvieron sometidas a un proceso previo de

descomposición. (ver anexo 40. Foto 6), en los tipos de envases (fundas de

polietileno y envases plásticos PET), luego se fue evaluando en forma

permanente el comportamiento de la plántulas en todas las variables

establecidas para el ensayo:, diámetro de tallo, altura de las plantas, número

de hojas, longitud de la raíz, área foliar.

Riegos: Los germinadores se regaron con agua limpia con tres riegos por

semana y cada vez que era necesario, usando una regadera, con el

propósito de mantener el suelo húmedo sin permitir secamiento ni

encharcamiento, el exceso de agua favorece la pudrición de las raíces y el

desarrollo de enfermedades fungosas.

Fertilización: Para la fertilización se utilizó el biol, aplicando 5 litros en una

bomba de 20 litros, se aplicó en frecuencias de ocho días.

Control de malezas: Para el control de malezas se realizó con la mano,

cortando aras la maleza, se realizaron dos deshierbas durante todo el

periodo a las 3 y 7 semana, después de la siembra.

30

5.4 METODOLOGÍA DEL SEGUNDO OBJETIVO.

“Evaluar el desarrollo de las plántulas de cafeto, con la utilización de dos tipos

de recipientes (fundas negras de polietileno y botellas plásticas

desechables PET”

Se utilizaron 1600 plántulas adquiridas del almácigo que en el tratamiento

obtuvieron mejores porcentajes de germinación (plántulas sin pergamino),

se utilizaron 800 fundas de polietileno, negras.

Se recolectó 800 botellas plásticas de 1,95 litros. Las plántulas

permanecieron 4 meses en el vivero tiempo en el que aparte mostraron las

condiciones óptimas para ser trasplantadas al terreno definitivo.

Utilizamos el sustrato elaborado en la zona, rico en nutrientes (gallinaza +

tierra de montaña + arena + cascarilla de café, en las proporciones 1:1:1:1)

altamente recomendados para el trasplante del almácigo al vivero, que

permiten el desarrollo vigoroso de las plántulas de café, La gallinaza y

cascarilla de café estuvieron sometidas a un proceso previo de

descomposición (Ver anexo 40. Foto 7 ), en los tipos de envases (fundas

de polietileno y envases plásticos PET), luego se evaluando en forma

permanente el comportamiento de la plántulas en todas las variables

establecidas para el ensayo:, diámetro de tallo, altura de las plantas,

número de hojas, longitud de la raíz, área foliar.

Tomando en cuenta la experiencia de los productores de café de la

comunidad de Mizhquillana, seleccionando bolsas de polietileno negro

perforadas, de 6” x 8” y el tiempo que debían permanecer las plántulas en

el vivero.

31

Se realizó campaña de reciclaje de envases PET (Polietileno) de 1.95 litros,

ubicando ánforas en sectores estratégicos (tiendas, bares de colegios) del

cantón Chaguarpamba, recolectando 800 unidades, lo que permitió

incentivar el cuidado del medio ambiente(Ver anexo 40. Foto 8),

Antes de utilizar los envases PET, se les hizo un corte y desinfección

(cloro 0,5%) con la finalidad de utilizar la parte superior de las botellas,

este corte se lo realizó a 23 cm. de altura, medidos desde la tapa.

Posteriormente se realizó el perforado (se utilizó la parte que se señala en

el grafico siguiente) (Ver anexo 40. Foto 9),

5.4.1 Llenado de Fundas

Se hizo con el sustrato preparado con gallinaza + tierra de montaña + arena +

cascarilla de café, en las proporciones 1:1:1:1, usando cucharones de madera.

Llenadas las fundas se ubicaron en las camas; en bloques de 100 plantas

por tratamiento. (Ver anexo 40. Foto 10),

5.4.2 Llenado de los Envases PET

Preparados los envases se procedió al llenado utilizando el mismo sustrato

(gallinaza + tierra de montaña + arena + cascarilla de café, en las proporciones

1:1:1:1); para la ubicación de estos recipientes, se construyó un mesón (8 m. x

1.30 m. de ancho) de malla donde se aprovechó sus orificios para colocar las

botellas. (Ver anexo 40. Foto 11,12)

Se construyó el vivero con un área de 50 m2 (10 m. de largo x 5m. ancho),

con materiales de la zona (guadua, madera y la cubierta con sarán) con la

capacidad para 4000 plántulas (Ver anexo 40. Foto 13 ),

32

5.4.3 Trasplante.

Esta actividad se empezó regando el germinador, así como las fundas y

envases PET, se realizó hoyos de 10 cm. de profundidad utilizando una estaca

en el centro de las bolsas y los envases, seguidamente se sacó las plántulas

del germinador evitando destruir su sistema radicular. con un tamaño de 4

cm. de altura desde el cuello de la raíz hasta yema terminal con un par de

hojas, a la 4 semana de germinación (Ver anexo 40. Foto 14)

Trasplantadas las plántulas a los envases pet y fundas de polietileno desde

el primer día se empezó tomando datos cada 15 días empezando en el mes

de junio y culminando en enero, tomando al azar 5 plántulas. Las variables

a evaluarse: diámetro del tallo, altura de la plántula, longitud de la raíz,

número de hojas y área foliar. (Ver anexo 40. Foto 15,16,17,18,19)

5.4.4 Labores Culturales.

Una vez trasplantadas las plántulas a los envases pet y fundas de polietileno

se trasladaron al vivero, se regó cada tres días continuamente dependiendo de

las necesidades hídricas, así mismo se realizó los controles sanitarios

necesarios de Mancha Cercospórica (Pellicularia koleroga), Roya

(Hemileiavastatrix), a base de Mancozeb + metalaxil (avalancha 720) dosis de

9 gr/bomba de 20 litros; para corregir las deficiencias de nutrientes y

microelementos se utilizó abonos foliares con el máximo de macro y

microelementos tales como Evergreen y neoverdol en dosis de 80

cm/bomba de 20 litros) , y se realizó 16 deshierbas siendo manuales con el

objetivo de mantener libre de malezas a las plantas. (Ver anexo 40. Foto

20,21,22)

33

5.4.5 Diseño Experimental para el Segundo Objetivo.

Se utilizó un diseño Bloques al azar con 4 repeticiones.

Especificaciones del diseño.

Factor Nivel

S1: Sustrato S1: Gallinaza 25% + tierra de montaña 25%+

Arena25%+ cascarilla de café 25%.

E: Envases B1: Botellas PET de 1.95 Litros.

F2: Fundas de polietileno.

5.4.6 Delineamiento Experimental en el Campo

En el siguiente diseño se especifica cada tratamiento con sus tres

repeticiones, realizado al azar (Ver anexo 4).

5.4.7 Tratamientos

Tratamiento S1F1: Sustrato 1 – fundas de polietileno

Tratamiento S1B2: Sustrato 1 – envases pet (Ver Anexo 40, foto 23,24)

5.4.8 Unidades Experimentales

Cada unidad experimental estuvo conformada por bloques de 100 plántulas

de café dispuestos en hileras.

34

El área útil conformada por 50 plántulas ubicadas en la parte central de las

unidades experimentales.

Número de bloques muestrales: 8

Número de plantas por unidad muestral: 100

Número de plantas por tratamiento: 400

Número de plantas en el experimento: 800

5.5 METODOLOGÍA DEL TERCER OBJETIVO.

“Difundir los resultados finales del proceso investigativo, a través de la

elaboración de folletos didácticos y día de campo.”

Para cumplir con este objetivo, se organizó un día de campo realizado el

sábado 26 de enero del 2013, en él participaron 30 agricultores de la

Comunidad de Mizhquillana, Director de Tesis y tesistas; en esta reunión se

trató sobre la implementación y manejo del vivero, información preliminar sobre

los resultados logrados hasta el momento y al término del evento se entregó

una cartilla sobre la producción de plántulas de café Catuaí Rojo Coffea arábica

L.. (Ver anexo 41. Foto 25,26,27,28)

35

6. RESULTADOS

6.1 RESULTADOS DEL PRIMER OBJETIVO

Determinar la influencia de cuatro tratamientos físicos y químicos (con

pergamino o testigo, sin pergamino, agua caliente y ácido clorhídrico al

0.5% por 12 horas) en la semilla y su incidencia en la germinación.

Cuadro 1. Análisis de varianza para la variable germinación de los tratamientos

pre-germinativos en el cultivo de plántulas de café.

FV GL SC CM FC FC 0.5%

TRATAMIENTO 3 11587.58 3862.53 56.36** 4.76

REPLICA 2 302.17 151.08 2.20 5.14

ERROR 6 411.17 68.53

TOTAL 11 12300.92

Media general del experimento= 48

Coeficiente de variación = 17.40

INTERPRETACIÓN:

El tratamiento sin pergamino (SP) obtuvo un porcentaje de germinación del

85%, el tratamiento con Pergamino (CP) con el 68 %, el Tratamiento con Agua

temperada (AT) con un 34 % y el tratamiento con Ácido Clorhídrico con un

promedio del 4%. Según el cuadro 2, el mejor tratamiento es el sin pergamino

con un valor de 85 % de germinación y refleja diferencia estadística altamente

significativa entre tratamientos, por lo tanto existe diferencias distintas entre

tratamientos que será necesario aplicar la prueba de Tukey. (Ver anexo 5)

36

Cuadro 2. Prueba de Tukey para la variable germinación de los tratamientos

pre-germinativos en plántulas de café.

Tratamiento %Promedio Significación

Ácido Clorhídrico 4 D

Agua Temperada 34 C

Con pergamino 68 B

Sin pergamino 85 A

Fuente: Investigación de campo

Elaboración: Los Autores, 2013

Figura 2. Porcentaje de germinación de cuatro tratamientos germinativos.

Fuente: Los Autores, 2013.

68

85

34

4

PORCENTAJE DE GERMINACIÓN CON CUATRO TRATAMIENTOS FÍSICOS Y QUIMICOS

CON PERGAMINO SIN PERGAMINO

AGUA TEMPERADA ACIDO CLORHIDRICO

37

6.2 RESULTADOS DEL SEGUNDO OBJETIVO

“Evaluar el desarrollo de las plántulas de cafeto, con la utilización de dos

tipos de recipientes (fundas negras de polietileno y botellas plásticas

desechables PET)”.

DIÁMETRO DEL TALLO DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL PRIMER MES

(JUNIO) CICLO VEGETATIVO

Cuadro 3. Análisis de varianza para la variable diámetro del tallo (cm) de

plántulas de café en el primer mes del ciclo vegetativo (junio),2013.

Media general del experimento = 8,97

Coeficiente de variación = 2,64

INTERPRETACIÓN:

El ADEVA para el diámetro del tallo no es significativa en las plántulas a los 30

días, por lo tanto en esta variable no hay diferencia estadística. Las plántulas

de café, con el mejor tratamiento obtuvieron un promedio de 9,80mm; mientras,

el tratamiento con botellas (S1B1), dio un promedio de 9,38mm de diámetro del

tallo por cada planta. (Ver anexo 6)


BLOQUES 3 0.27 0.09 1.67ns 10.13

TRATAMIENTO 1 0.10 0.10 1.85ns 9.28

ERROR 3 0.16 0.05

TOTAL 7 0.54

38

DIÁMETRO DEL TALLO DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SEGUNDO MES

(JULIO) CICLO VEGETATIVO

Cuadro 4. Análisis de varianza para la variable diámetro del tallo de plántulas

de café en el segundo mes del ciclo vegetativo (julio).


BLOQUES 3 0.11 0.04 3.37 10.13

TRATAMIENTO 1 0.36 0.36 32.11** 9.28

ERROR 3 0.03 0.01

TOTÁL 7 0.51


Coeficiente de variación = 1,11%

INTERPRETACIÓN

El ADEVA para el diámetro del tallo si es significativa por lo que existe

diferencia estadística. Las plántulas de café, con el mejor tratamiento

obtuvieron un promedio de 9,8mm por planta; mientras, el tratamiento con

botellas (S1B1), dio un promedio de 9,38mm de diámetro del tallo por cada

planta. En el cuadro 5 indica que el diámetro del tallo en las fundas se refleja

diferencia estadística altamente significativa entre tratamientos, por lo que será

necesario aplicar la prueba de Tukey. (Ver anexo 7)

Cuadro 5. Prueba de Tukey para el variable diámetro del tallo de las plántulas

de café en el segundo mes (julio).

Tratamiento Promedio Significación

Botellas 9.38 A

Fundas 9.8 B



39

DIÁMETRO DEL TALLO DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL TERCER MES

(AGOSTO) CICLO VEGETATIVO


de café en el tercer mes del ciclo vegetativo (agosto).


Coeficiente de variación = 1.71

INTERPRETACIÓN

El ADEVA para el diámetro del tallo si es significativa por lo que existe

diferencia estadística. Las plántulas de café, con el mejor tratamiento

obtuvieron un promedio de 10,88 mm por planta; mientras, el tratamiento con

botellas (S1B1), dio un promedio de 9,93 mm de diámetro del tallo por cada

planta (ver cuadro.8)

Cuadro 7. Prueba de Tukey para la variable diámetro del tallo de las

plántulas de café en el tercer mes del ciclo vegetativo (agosto)


Botellas 9.93 AB

Fundas 10.88 A




BLOQUES 3 0.12 0.04 1.26 9.28

TRATAMIENTO 1 1.81 1.81 57.00 ** 10.13

ERROR 3 0.09 0.03

TOTAL 7 2.02

40

DIÁMETRO DEL TALLO DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL CUARTO MES

(SEPTIEMBRE) CICLO VEGETATIVO


de café en el cuarto mes del ciclo vegetativo (septiembre).


Coeficiente de variación = 1,45

INTERPRETACIÓN

El diámetro del tallo de las plántulas de café en el cuarto mes del ciclo

vegetativo (septiembre) refleja diferencia estadística altamente significativa

entre tratamientos, por lo que será necesario aplicar la prueba de Tukey (ver

cuadro 9).

Las plántulas de café, con el mejor tratamiento obtuvieron un promedio de

11,85 mm por planta; mientras, el tratamiento con botellas (S1B1), dio un

promedio de 11,28 mm de diámetro del tallo por cada planta. (Ver anexo 9)

Cuadro 9. Prueba de Tukey para la variable diámetro del tallo en el cuarto mes

del ciclo vegetativo (septiembre) en las plántulas de café.


Botellas 11.28 B

Fundas 11.85 A




BLOQUES 3 0.43 0.14 5.18 9.28

TRATAMIENTO 1 0.66 0.66 23.69** 10.13

ERROR 3 0.08 0.03

TOTAL 7 1.18

41

DIÁMETRO DEL TALLO DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL QUINTO MES

(OCTUBRE) CICLO VEGETATIVO


plántulas de café en el quinto mes del ciclo vegetativo (octubre).

Media general del experimento = 12,35 Coeficiente de variación = 0,93%

INTERPRETACIÓN

El diámetro del tallo de las plántulas de café en el quinto mes del ciclo

vegetativo (octubre) refleja diferencia estadística altamente significativa entre

tratamientos, por lo que será necesario aplicar la prueba de Tukey Ver cuadro

11. Las plántulas de café, con el mejor tratamiento obtuvieron un promedio de

12,75 mm por planta; mientras, el tratamiento con botellas (S1B1) dio un

promedio de 11,95 mm de diámetro del tallo por cada planta. ((Ver anexo 10))

Cuadro 11. Prueba de Tukey para la variable diámetro del tallo de las plántulas

de café del quinto mes (octubre).


Botellas 11.95 B

Fundas 12.75 A




BLOQUES 3 0.10 0.03 2.50 9.28

TRATAMIENTO 1 1.28 1.28 96.00** 10.13

ERROR 3 0.04 0.01

TOTAL 7 1.42

42

DIÁMETRO DEL TALLO DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SEXTO MES

(NOVIEMBRE) CICLO VEGETATIVO


plántulas de café en el sexto mes del ciclo vegetativo (noviembre).

Media general del experimento = 13,28 Coeficiente de variación = 0,75

INTERPRETACIÓN

Por lo tanto el diámetro del tallo de las plántulas de café en el sexto mes del

ciclo vegetativo (noviembre), refleja diferencia estadística altamente

significativa entre tratamientos, por lo que será necesario aplicar la prueba de

Tukey (ver cuadro 13). Las plántulas de café, con el mejor tratamiento

obtuvieron un promedio de 13,48 mm por planta; mientras, el tratamiento con

botellas (S1B1) dio un promedio de 13,08 mm de diámetro del tallo por cada

planta. (Ver anexo 11)

Cuadro 13. Prueba de Tukey para la variable diámetro del tallo en el sexto mes

del ciclo vegetativo (noviembre) en el cultivo de plántulas de café.

Tratamientos Promedio Significación

Botellas 13.08 B

fundas 13.48 A




BLOQUES 3 0.23 0.08 7.50 9.28

TRATAMIENTO 1 0.32 0.32 32.00** 10.13

ERROR 3 0.03 0.01

TOTAL 7 0.58

43

DIÁMETRO DEL TALLO DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SÉPTIMO MES

(DICIEMBRE) CICLO VEGETATIVO


plántulas de café en el séptimo mes del ciclo vegetativo

(diciembre).


BLOQUES 3 1.77 0.59 14.12ns 9.28

TRATAMIENTO 1 0.85 0.85 20.28ns 10.13

ERROR 3 0.13 0.04

TOTAL 7 2.74


INTERPRETACIÓN

El ADEVA para el diámetro del tallo en el séptimo mes del ciclo vegetativo

(diciembre) no es significativa en las plántulas no refleja diferencia estadística.

Las plántulas de café, con el mejor tratamiento obtuvieron un promedio de

14,80 mm por planta; mientras, el tratamiento con botellas (S1B1) dio un

promedio de 14,15 mm de diámetro del tallo por cada planta. (Ver anexo 12)

DIÁMETRO DEL TALLO DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL OCTAVO MES

(ENERO) CICLO VEGETATIVO


plántulas de café en el octavo mes del ciclo vegetativo (enero).



BLOQUES 3 1.57 0.52 16.79** 9.28

TRATAMIENTO 1 0.45 0.45 14.44** 10.13

ERROR 3 0.09 0.03

TOTAL 7 2.12

44

INTERPRETACIÓN

El tratamiento S1B1 con un promedio de 16.50mm; seguido del tratamiento

S1F2 consta con un promedio de 16.03mm (Ver cuadro 16). El diámetro del

tallo en las plántulas de café en el octavo mes del ciclo vegetativo es

significativa (enero) refleja diferencias estadísticas altamente entre

tratamientos. (Ver anexo 13)

Cuadro 16. Prueba de Tukey para la variable diámetro del tallo en las plántulas

de café en el octavo mes del ciclo vegetativo (enero)


Fundas 16.03 B

Botellas 16.50 A



45

Figura 3. Crecimiento del diámetro del tallo (mm) en los diferentes meses en el cultivo de plántulas.


INTERPRETACIÓN:

La figura 3 se representa el crecimiento del diámetro del tallo alcanzado desde el inicio del trasplante hasta la culminación de la

fase de vivero (8 meses) donde serán trasplantados al terreno definitivo. Las evaluaciones a los 60 días del diámetro del tallo

en relación con la fundas y botellas tienden a uniformarse, y a los 90, 120, 150 y 180 días los diámetros del tallo de fundas y

botellas se desuniformaron, para situarse al final en 16,03 en fundas y botellas en 16,50 mm. Los incrementos absolutos fueron

similares entre si y variaron entre 8,97 mm. a 10,41 mm. entre junio – agosto; 11,57 mm. a 13,28mm. en septiembre noviembre

y 14,48 mm. a 16,27mm. en diciembre y enero.

0,00

5,00

10,00

15,00

20,00

Jun Jul Ago Sep Oct Nov Dic Ene

8,98 9,80 10,88

11,85 12,75 13,48 14,80

16,03

8,95 9,38 9,93 11,28 11,95

13,08 14,15

16,50

CRECIMIENTO DEL DIAMETRO DEL TALLO DE CAFÉ CATUAÍ ROJO (mm)

x fundas x bote

46

ALTURA DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL PRIMER MES (JUNIO) CICLO

VEGETATIVO

Cuadro 17. Análisis de varianza para la variable Altura (cm) de las plántulas de

café del primer mes (junio) ciclo vegetativo.


BLOQUES 3 0.04 0.01 1.00 9.28

TRATAMIENTO 1 0.50 0.50 37.50** 10.13

ERROR 3 0.04 0.01

TOTAL 7 0.58


INTERPRETACIÓN

El ADEVA si es significativa por lo que existe diferencia estadística entre

tratamiento (ver cuadro 18). Las plántulas de café, con el mejor tratamiento

obtuvieron un promedio de 4,5 cm por planta; mientras, el tratamiento con fundas

(S1F2) dio un promedio de 4 cm de altura por planta. (Ver anexo 14)

Cuadro 18. Prueba de Tukey para la variable altura de la plántula en el primer

mes del ciclo vegetativo (junio).


Botellas 4 B

Fundas 4.50 A



47

ALTURA DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SEGUNDO MES (JULIO)

CICLO VEGETATIVO

Cuadro 19. Análisis de varianza para la variable Altura de las plántulas de café

del segundo mes (julio) ciclo vegetativo


BLOQUES 3 0.21 0.07 1.02 9.28

TRATAMIENTO 1 1.13 1.13 16.46** 10.13

ERROR 3 0.21 0.07

TOTAL 7 1.54


INTERPRETACIÓN



obtuvieron un promedio de 5,18 cm por planta; mientras, el tratamiento con

fundas (S1F2), dio un promedio de 4,43 cm de altura por planta. (Ver anexo 15)

Cuadro 20. Prueba de Tukey para la variable altura de la plántula de café en el

segundo mes del ciclo vegetativo (julio).


Fundas 4.43 B

Botellas 5.18 A



48

ALTURA DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL TERCER MES (AGOSTO)

CICLO VEGETATIVO


del tercer mes (agosto) ciclo vegetativo


BLOQUES 3 0.83 0.28 5.03 9.28

TRATAMIENTO 1 5.45 5.45 99.00** 10.13

ERROR 3 0.17 0.06

TOTAL 7 6.44


INTERPRETACIÓN



obtuvieron un promedio de 7,08 cm por planta; mientras, el tratamiento con

fundas (S1B1) dio un promedio de 5,43 cm de altura por planta. (Ver anexo16)

Cuadro 22. Prueba de Tukey para la variable de altura de la plántula del tercer

mes del ciclo vegetativo (agosto).


Botellas 5.43 B

Fundas 7.08 A



49

ALTURA DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL CUARTO MES



del cuarto mes (septiembre) ciclo vegetativo


BLOQUES 3 0.88 0.29 0.32 9.28

TRATAMIENTO 1 45.36 45.36 49.16** 10.13

ERROR 3 2.77 0.92

TOTAL 7 49.01


INTERPRETACIÓN:



obtuvieron en un promedio de 4,5 cm. por planta; mientras, el tratamiento con

fundas (S1F2) dio un promedio de 4 cm de altura por planta. (Ver anexo 17)

Cuadro 24. Prueba de Tukey para la variable altura de la plántula de café del

cuarto mes (septiembre) ciclo vegetativo


Botellas 5.91 B

Fundas 10.68 A



50

ALTURA DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL QUINTO MES (OCTUBRE)

CICLO VEGETATIVO


del quinto mes (octubre) ciclo vegetativo


BLOQUES 3 0.05 0.02 2.26ns 9.28

TRATAMIENTO 1 87.78 87.78 10.1ns 10.13

ERROR 3 0.02 0.01

TOTAL 7 87.86


INTERPRETACIÓN

El ADEVA para la altura de plantas en el quinto mes del ciclo vegetativo (octubre)

no es significativa en las plántulas no refleja diferencia estadística. Las plántulas

de café, con el mejor tratamiento obtuvieron un promedio de 13,78 cm. por planta;

mientras, el tratamiento con botellas (S1B1) dio un promedio de 7,15 cm. de altura

por planta. (Ver anexo 18)


quinto mes (octubre) ciclo vegetativo


Botellas 7.15 B

Fundas 13.78 A



51

ALTURA DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SEXTO MES (NOVIEMBRE)

CICLO VEGETATIVO


del sexto mes (noviembre) ciclo vegetativo


BLOQUES 3 0.57 0.19 0.85 9.28

TRATAMIENTO 1 98.70 98.70 439.49** 10.13

ERROR 3 0.67 0.22

TOTAL 7 99.95


INTERPRETACIÓN



obtuvieron un promedio de 15,03 cm. por planta; mientras, el tratamiento con

botellas (S1B1) dio un promedio de 8 cm. de altura por planta. (Ver anexo 19)


sexto mes (noviembre) ciclo vegetativo


Botellas 8.00 B

Fundas 15.03 A



52

ALTURA DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SÉPTIMO MES (DICIEMBRE)

CICLO VEGETATIVO


del séptimo mes (diciembre) ciclo vegetativo


BLOQUES 3 0.41 0.14 0.20 9.28

TRATAMIENTO 1 128.00 128.00 187.32** 10.13

ERROR 3 2.05 0.68

TOTAL 7 130.46


INTERPRETACIÓN




botellas (S1B1) dio un promedio de 9,23 cm. de altura por planta. (Ver anexo 20)


séptimo mes (diciembre) ciclo vegetativo.


Botellas 9.23 B

Fundas 17.23 A



53

ALTURA DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL OCTAVO MES (ENERO)

CICLO VEGETATIVO


del octavo mes (enero) ciclo vegetativo


BLOQUES 3 1.22 0.41 0.84 9.28

TRATAMIENTO 1 110.26 110.26 227.54** 10.13

ERROR 3 1.45 0.48

TOTAL 7 112.94


INTERPRETACIÓN:




botellas (S1B1) dio un promedio de 10,75 cm. de altura por planta. (Ver anexo 21)


octavo mes (enero) ciclo vegetativo


Botellas 10.75 B

Fundas 18.18 A



54

VARIACIÓN DE LA ALTURA DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ POR MESES

En la presente figura 4, se puede diferenciar la altura de las plántulas de café

según los meses en los diferentes tratamientos empleados en la investigación.

Figura 4. Gráfico del crecimiento de la variación de altura de las plántulas de café.



4,00 4,70

7,00

10,68

13,78 15,03

17,23 18,18

4,50 5,18 5,43 5,91

7,15 8,00

9,23 10,75

CRECIMIENTO DE LA PLANTULA DE CRECIMIENTO (cm)

x fundas x bote

55

LONGITUD DE LA RAÍZ DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL PRIMER MES


Cuadro 33. Análisis de varianza para la variable Longitud de raíz de las plántulas

de café del primer mes (junio) ciclo vegetativo.


BLOQUES 3 0.55 0.18 4.23 9.28

TRATAMIENTO 1 0.50 0.50 11.54** 10.13

ERROR 3 0.13 0.04

TOTAL 7 1.18


INTERPRETACIÓN:




botellas (S1B1) dio un promedio de 3,6 cm. de longitud de raíz por planta. (Ver

anexo 22)

Cuadro 34. Prueba de Tukey para la variable longitud de raíz de las plántulas de

café del primer mes (junio) ciclo vegetativo.


Botellas 3.60 B

Fundas 4.10 A



56

LONGITUD DE LA RAÍZ DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SEGUNDO

MES (JULIO) CICLO VEGETATIVO

Cuadro 35. Análisis de varianza para la variable Longitud de raíz de las

plántulas de café del segundo mes (julio) ciclo vegetativo.


BLOQUES 3 0.53 0.18 0.91ns 9.28

TRATAMIENTO 1 0.13 0.13 0.64ns 10.13

ERROR 3 0.59 0.20

TOTAL 7 1.24

Media general del experimento = 4,90 Coeficiente de variación= 9,01%

INTERPRETACIÓN:

El ADEVA de la longitud de la raíz de las plántulas de café no es significativa en

las plántulas a los 60 días por lo tanto en esta variable no hay diferencia

estadística. Las plántulas de café, con el mejor tratamiento obtuvieron un

promedio de 5,03 cm. por planta; mientras, el tratamiento con fundas (S1F2) dio

un promedio de 4,78 cm. de longitud de raíz por planta. (Ver anexo 23)

LONGITUD DE LA RAÍZ DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL TERCER MES



plántulas de café del tercer mes (agosto) ciclo vegetativo


BLOQUES 3 3.23 1.08 0.30 9.28

TRATAMIENTO 1 43.71 43.71 12.09** 10.13

ERROR 3 10.84 3.6|1

TOTAL 7 57.79


57

INTERPRETACIÓN:





anexo 24)

Cuadro 37. Prueba de Tukey para la variable longitud de raíz de las plántulas

de café del tercer mes (agosto) ciclo vegetativo.


Botellas 6.35 B

Fundas 11.03 A



LONGITUD DE LA RAÍZ DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL CUARTO MES



plántulas de café del cuarto mes (septiembre) ciclo vegetativo.


BLOQUES 3 1.81 0.60 0.37 9.28

TRATAMIENTO 1 50.00 50.00 30.93 ** 10.13

ERROR 3 4.85 1.62

TOTAL 7 56.66


58

INTERPRETACIÓN:





anexo 25)

Cuadro 39. Prueba de Tukey para la variable longitud de raíz de las plántulas

de café del cuarto mes (septiembre) ciclo vegetativo.


Botellas 7.58 B

Fundas 12.58 A



LONGITUD DE LA RAÍZ DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL QUINTO MES



plántulas de café del quinto mes (octubre) ciclo vegetativo.


BLOQUES 3 4.36 1.45 3.92 9.28

TRATAMIENTO 1 62.16 62.16 167.44** 10.13

ERROR 3 1.11 0.37

TOTAL 7 67.64


59

INTERPRETACIÓN:





anexo 26)


plántulas de café del quinto mes (octubre) ciclo vegetativo


Botellas 7.38 B

Fundas 12.95 A



LONGITUD DE LA RAÍZ DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SEXTO MES



de café del sexto mes (noviembre) ciclo vegetativo.


BLOQUES 3 1.82 0.60 1.05 9.28

TRATAMIENTO 1 31.21 31.21 53.96** 10.13

ERROR 3 1.74 0.58

TOTAL 7 34.76

Media general del experimento = 11,58 Coeficiente de variación = 6,57 %

60

INTERPRETACIÓN:

Las plántulas de café, con el mejor tratamiento obtuvieron un promedio de 13,55

cm. por planta; mientras, el tratamiento con botellas (S1B1) dio un promedio de

9,6 cm. de longitud de raíz por planta. (Ver anexo 27)

Cuadro 43. Prueba de Tukey para la variable longitud de raíz de las plántulas de

café del sexto mes (noviembre) ciclo vegetativo


Botellas 9.60 B

Fundas 13.55 A



LONGITUD DE LA RAÍZ DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SÉPTIMO MES



plántulas de café del séptimo mes (diciembre) ciclo vegetativo


BLOQUES 3 1.00 0.33 0.38 9.28

TRATAMIENTO 1 20.16 20.16 23.14** 10.13

ERROR 3 2.61 0.87

TOTAL 7 23.78

Media general del experimento = 12,24 Coeficiente de variación = 7.63

61

INTERPRETACIÓN:




Cuadro 45. Prueba de Tukey para la variable longitud de raíz de plántulas de

café del séptimo mes (diciembre) ciclo vegetativo.


Botellas 10.65 B

Fundas 13.83 A



LONGITUD DE LA RAÍZ DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL OCTAVO MES



de café del octavo mes (enero) ciclo vegetativo.


BLOQUES 3 2.52 0.84 0.36 9.28

TRATAMIENTO 1 14.85 14.85 6.43 10.13

ERROR 3 6.92 2.31

TOTAL 7 24.30


62

INTERPRETACIÓN




CRECIMIENTO RADICAL DE LA RAÍZ DE LAS PLANTÚLAS DE CAFÉ

El crecimiento de las raíces se recopilo los datos cada quince días donde la

longitud de las raíces presentó mayor tamaño las fundas (S1F2) a diferencia de

los envases PET (S1B1) un tamaño menor, siendo 3,85 a 4,90 cm. en la

recopilación de los datos en los meses de agosto a enero presentaron un tamaño

de 8,69 a 13,17cm. El S1F2 según la prueba de Tukey supera al tratamiento

S1B1.

Figura 5. Representación gráfica de la longitud de raíz en los diferentes meses en las

plántulas de café.



3,60 4,78

11,03 12,58 12,95 13,55 13,83

14,53

4,10 5,03

6,35 7,58 7,38

9,60 10,65

11,80

Longitud de la raíz

x fundas x bote

63

NÚMERO DE HOJAS DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL PRIMER MES


Cuadro 47. Análisis de varianza para la variable número de hojas de las

plántulas de café en el primer mes (junio) ciclo vegetativo.


BLOQUES 3 0.12 0.04 0.23ns 9.28

TRATAMIENTO 1 0.32 0.32 1.85ns 10.13

ERROR 3 0.52 0.17

TOTAL 7 0.96


INTERPRETACIÓN

El ADEVA para el número de hojas no es significativa en las plántulas de cafeto a

los 30 días, por lo tanto en esta variable no hay diferencia estadística. Las

plántulas de café, con el mejor tratamiento obtuvieron un promedio de 2,9 hojas;

mientras, el tratamiento con botellas (S1B1), dio un promedio de 2,5 por cada


NÚMERO DE HOJAS DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SEGUNDO MES



plántulas de café en el segundo mes (julio) ciclo vegetativo.


BLOQUES 3 0.18 0.06 0.90ns 9.28

TRATAMIENTO 1 0.32 0.32 4.80ns 10.13

ERROR 3 0.20 0.07

TOTAL 7 0.70

Media general del experimento = 4,75 Coeficiente de variación= 5,44

64

INTERPRETACIÓN

El ADEVA para el número de hojas no es significativa en las plántulas de cafeto a

los 60 días, por lo tanto en esta variable no hay diferencia estadística. Las

plántulas de café, con el mejor tratamiento obtuvieron un promedio de 4,95 hojas;

mientras, el tratamiento con botellas (S1B1), dio un promedio de 4,55 por cada


NÚMERO DE HOJAS DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL TERCER MES



plántulas de café en el tercer mes (agosto) ciclo vegetativo.


BLOQUES 3 0.14 0.04 1.00ns 9.28

TRATAMIENTO 1 0.25 0.25 5.44ns 10.13

ERROR 3 0.14 0.04

TOTAL 7 0.51


INTERPRETACIÓN

El ADEVA para el número de hojas no es significativa en las plántulas de cafeto,

por lo tanto en esta variable no hay diferencia estadística. Las plántulas de café,

con el mejor tratamiento obtuvieron un promedio de 7 hojas; mientras, el

tratamiento con botellas (S1B1), dio un promedio de 6,65 por cada planta. (Ver

anexo 32)

65

NÚMERO DE HOJAS DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL CUARTO MES



plántulas de café en el cuarto mes (septiembre) ciclo vegetativo.


BLOQUES 3 0.34 0.11 1.00 9.28

TRATAMIENTO 1 4.50 4.50 39.71** 10.13

ERROR 3 0.34 0.11

TOTAL 7 5.18


INTERPRETACIÓN

Las plántulas de café, con el mejor tratamiento obtuvieron un promedio de 9

hojas; mientras, el tratamiento con botellas (S1B1), dio un promedio de 7,5 por

cada planta. (Ver anexo 33)

Cuadro 51. La prueba de Tukey para la variable número de hojas de las plántulas

de café


Botellas 7.50 B

Fundas 9.00 A



66

NÚMERO DE HOJAS DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL QUINTO MES



plántulas de café en el quinto mes (octubre) ciclo vegetativo.


BLOQUES 3 0.10 0.03 1.00ns 9.28

TRATAMIENTO 1 0.18 0.18 5.40ns 10.13

ERROR 3 0.10 0.03

TOTAL 7 0.38


INTERPRETACIÓN





anexo 34)

NÚMERO DE HOJAS DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SEXTO MES



plántulas de café en el sexto mes (noviembre) ciclo vegetativo.


BLOQUES 3 0.14 0.05 1.00ns 9.28

TRATAMIENTO 1 0.13 0.13 2.78ns 10.13

ERROR 3 0.14 0.05

TOTAL 7 0.40


67

INTERPRETACIÓN





anexo 35)

NÚMERO DE HOJAS DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SÉPTIMO MES



plántulas de café en el séptimo mes (diciembre) ciclo vegetativo.


BLOQUES 3 0.68 0.23 1.00ns 9.28

TRATAMIENTO 1 1.28 1.28 5.65ns 10.13

ERROR 3 0.68 0.23

TOTAL 7 2.64


INTERPRETACIÓN

El ADEVA para el número de hojas no es significativa en las plántulas de, por lo

tanto en esta variable no hay diferencia estadística. Las plántulas de café, con el

mejor tratamiento obtuvieron un promedio de 10 hojas; mientras, el tratamiento

con botellas (S1B1), dio un promedio de 9,2 por cada planta. (Ver anexo 36)

68

NÚMERO DE HOJAS DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL OCTAVO MES


Cuadro 55. Análisis de varianza para la variable número de hojas de las plántulas

de café en el octavo mes (enero) ciclo vegetativo.


BLOQUES 3 0.26 0.09 1.00 9.28

TRATAMIENTO 1 4.50 4.50 51.92 ** 10.13

ERROR 3 0.26 0.09

TOTAL 7 5.02


INTERPRETACIÓN

Las plántulas de café, con el mejor tratamiento obtuvieron en total 52 hojas, con

un promedio de 13 hojas; mientras, el tratamiento con botellas (S1B1), dio un total

de 46 hojas y un promedio de 11,5 por cada planta. (Ver anexo 37)

Cuadro 56. Prueba de Tukey para la variable número de hojas de las plántulas de

café en el octavo mes (enero) del ciclo vegetativo.


Botellas 11.50 B

Fundas 13.00 A



69

VARIACIÓN NÚMERO DE HOJAS DE PLÁNTULAS DE CAFÉ POR MESES

En la figura 6 podemos identificar la variable del número de hojas en los

diferentes meses que se realizó la investigación en plántulas de café.

Figura 6. Variación de números de hojas en las plántulas de café en los

diferentes meses.



2,90

4,95

7,00

9,00

3,00

5,00

10,00

13,00

2,50

4,55

6,65 7,50

2,70

4,75

9,20

11,50

Número de hojas

x fundas x bote

70

ÁREA FOLIAR DE PLÁNTULAS DE CAFÉ AL FINAL DEL EXPERIMENTO

Cuadro 57. Análisis de varianza para la variable área foliar de las plántulas de

café.


BLOQUES 3 27,66 9,22 1,35 9.28

TRATAMIENTO 1 206,05 206,05 30,22** 10.13

ERROR 3 20,46 6,82

TOTAL 7 254,16

Media general del experimento = 461.12 Coeficiente de variación = 0,57

INTERPRETACIÓN

Las plántulas de café, con el mejor tratamiento obtuvieron en total 9324 de área

foliar, con un promedio de 1864,8 por bloques; mientras, el tratamiento con

botellas (S1B1) dio un total de 9121 de área foliar y un promedio de 1824,2 por

cada planta. (Ver anexo 38)

Cuadro 58. Prueba de Tukey para la variable área foliar en las plántulas de café.


Botellas 456,05 B

Fundas 466,20 A



71

IDENTIFICACIÓN DEL ÁREA FOLIAR DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ

En esta figura podemos identificar la variable área foliar que se realizó al finalizar

el ensayo de plántulas de café.

Figura 7. Área foliar en cm² al final del ensayo en el cultivo de plántulas de café.

Fuente: Los Autores, 2013

466,2

456,05

AREA FOLIAR cm²

FUNDAS BOTELLAS

72

RESUMEN DE LAS VARIABLES EVALUADAS EN EL EXPERIMENTO

Cuadro 59. Variables generales del ensayo: diámetro altura, longitud de la raíz,

número de hojas)

TRATAMIENTOS

VARIABLES

Diámetro

total del

tallo (mm)

en

promedio

Altura (cm)

total en

promedio

Longitud

(cm)total en

promedio

Número

total de

hojas en

promedio

Área foliar

(cm2)total

en

promedio

FUNDAS

12,32

11,30

11,11

6,86

6,86

BOTELLAS

11,90

7,02

7,81

6,17

6,17

Figura 8. Variables generalas al culminar la fase de campo.

Fuente: Los Autores, 2013

0,00

2,00

4,00

6,00

8,00

10,00

12,00

14,00

FUNDAS BOTELLAS

12,32 11,90 11,30

7,02

11,11

7,81 6,86

6,17 6,86

6,17

Diametro tallo (mm) Altura (cm) Longitud (cm)

número de hojas Área foliar (cm2)

73

6.3 RESULTADO DEL TERCER OBJETIVO

Realización de un día de campo el 26 de enero del 2013, en la Comunidad de

Mizhquillana en el Cantón Chaguarpamba, en el que se socializó y difundió los

resultados preliminares de la investigación a 30 caficultores de la zona, utilizando

papelotes, trípticos y visitando el experimento en el sitio.

Cuadro 60. Agenda del día de campo

TALLER DE SOCIALIZACIÓN DE LOS RESULTADOS PRELIMINARES DE LA

TESIS

Responsable Cristian Dias y Gabriela Capa

Participantes 30

Lugar Mizhquillana

Fecha 26/01/2013

Tema Evaluación de tratamientos pre-germinativos y tipos de envases en la producción de plántulas de café Catuaí Rojo (Coffea arábica L)

AGENDA DEL DÍA DE CAMPO

FASE TIEMPO ACTIVIDADES RESPONSABLES

I 14:00 Bienvenida a participantes

Cristian Dias

Gabriela Capa

Ing. Hermel Loaiza

14:15 Introducción Cristian Dias

II 14:25 a 15:50

Temática Gabriela Capa

Selección de cafetales para semilla

Selección de semillas Cristian Dias

Construcción del germinador y siembra Gabriela Capa

Elaboración de sustratos Cristian Dias

Selección y trasplante de chapolas a fundas y envases Pet.

Gabriela Capa

Manejo del vivero Cristian Dias

III 15:55 a 16:05

Despedida Cristian Dias

IV 16:05 a 16:15

Refrigerio Gabriela Capa

Cristian Dias

V 16:15 a 17:00

Visita del vivero Gabriela Capa

Cristian Dias

Fuente: Los autores

74

7. DISCUSIÓN

Los análisis de germinación obtenidos nos demuestran alta significancia en los

tratamientos, destacándose el tratamiento sin pergamino alcanzando el 85% de

germinación.

Se considera que el agua y oxigeno ingresan fácilmente al endosperma

proporcionándole energía necesaria para iniciar la germinación y de esta forma

permitiéndola que la semilla se inhibí en menor tiempo hasta el extremo de

romper la envoltura externa.

El tratamiento con pergamino o testigo alcanzo 64 % debido a que el pergamino le

resta energía para romper el mismo y la semilla tarda en sentir la presencia de la

humedad, temperatura y oxígeno por tal motivo la germinación es más tardía en

promedio de 20 días.

El tratamiento con pergamino y agua temperada alcanzo 34% de germinación uno

de los factores que influyo en el bajo porcentaje de germinación es el tiempo de

permanencia de las semillas dentro del agua temperada (90°c por el tiempo de 3

min.), lo cual hizo que el endosperma sufra cambios extremos como en color y

textura debido a la alta temperatura.

El tratamiento con pergamino y ácido clorhídrico al 0.5% por 12 horas alcanzo

4% de germinación, este compuesto químico influyó directamente en la semilla

causando quemaduras al pergamino.

Según Franco y Alvarenga, 1987. “La madurez fisiológica de la semilla de café se

alcanza entre los 200 y los 220 días después de la antesis aunque la semilla

carece de un período de latencia, debido a que las semillas húmedas (40-45%

humedad) o secas (11- 13% de humedad) alcanzan un porcentaje de germinación

alrededor del 90%, posee características morfológicas especiales que afectan la

germinación como son: la presencia del endocarpio (pergamino) y la ubicación

casi superficial del embrión dentro de la semilla. Una semilla con el endocarpio

75

(pergamino) presente, germina entre los 50 y 70 días y la remoción del mismo

acelera la germinación en 20 días, aproximadamente”

En el análisis envases las variables analizadas diámetro del tallo, longitud de la

raíz, número de hojas, área foliar, altura de la planta dio significativo lo cual

permite confirmar algunos posibles problemas con la utilización de envases

puesto se utilizó el mismo sustrato en fundas de polietileno y envases Pet.

En fundas de polietileno se lograron los mejores resultados en altura de la planta

11.30, diámetro del tallo12.32, longitud de la raíz 11.11cm, número de hojas 6.86,

área foliar 6.86.

Según Calvo. L, 2010. “En la altura, diámetro del tallo y número de hojas de la

plántula en botellas es similar a las fundas negras de polietileno”.

Los envases Pet no dieron buen resultado por su transparencia y presencia de

malezas, musgos, coloración verde en el borde de la botella.

En el quinto mes del ciclo vegetativo (octubre) se perdió el 85% de hojas de las

plántulas de café lo que se consideró por los daños causados por el ojo de gallo

Omphaliaflavica, roya Hemileja vastatrix, cercospora sp en la fase de vivero(Ver

anexo 40 foto 20,21), que afectan a las plántulas defoliadas, reduciendo el

crecimiento. En algunos casos, se estima que el aparecimiento inicial de la

cercospora ha sido por falta de nutrientes y exceso de radiación solar, aunque

también influye la alta humedad relativa, exceso de polvo en la temporada de

verano o la falta de ventilación. Para evitar o contrarrestar este problema se

trabajó con productos preventivos y curativos para controlar las diferentes

enfermedades como: Mancha Cercospórica (Pellicularia koleroga), Roya (Hemileia

vastatrix), a base de Mancozeb + metalaxil (avalancha 720) dosis de 9 gr/bomba

de 20 litros; para corregir las deficiencias de nutrientes y microelementos se

utilizó abonos foliares con el máximo de macro y microelementos tales como

Evergreen y neoverdol en dosis de 80 cm/ bomba de 20 litros teniendo en cuenta

la baja toxicidad y la poca contaminación ambiental que ellos originan.

76

La difusión de los resultados preliminares con la participación del director de tesis

se dio a conocer a los productores de la zona, presidente de asociación de

Industrialización de productos de los barrios Miraflores, Amarillos, San Ramón,

Guaduas, Esperanza y Mizhquillana (MASGEM), Concejal del cantón, Rector del

Colegio Técnico Agropecuario Chaguarpamba, estudiantes; durante la

conferencia los asistentes mostraron satisfacción por la investigación realizada y

la debida recomendación y extender la propuesta.

77

8. CONCLUSIONES

La mejor forma para obtener plántulas de calidad para la siembra de un cafetal

es empezando por la selección de las semillas, mismas que deben provenir de

plantas en producción exuberante libres de plagas, enfermedades y

fisiológicamente maduras.

El mayor porcentaje de germinación de semillas se obtuvo con el tratamiento

de granos sin pergamino con un total de 85%; en tanto que, el tratamiento que

menor porcentaje dio fue con Ácido Clorhídrico en un 4%, utilizando fundas

plásticas negras de 13 x18 cm.

Con la utilización de envases o Botellas PET, se obtuvo plántulas de calidad

pero la diferencia está en el elevado costo de producción que éstas demandan

más un elevado crecimiento de malezas debido al color trasparente que éstos

envases.

El diámetro de las plántulas de café utilizando botellas PET fue de 16.50 mm;

en tanto que, utilizando fundas plásticas fue de 16.03 mm.

Los pares de hojas de las plántulas de café utilizando botellas PET fue de 6

pares de hojas; en tanto que, utilizando las fundas de polietileno fue de 7 pares

de hojas.

La Longitud de la raíz de las plántulas de café utilizando botellas PET fue de

7.81 cm; en tanto que, utilizando fundas plásticas fue de 11 cm.

La altura de las plántulas de café utilizando botellas PET fue de 7.02 cm; en

tanto que, utilizando fundas plásticas fue de 11.30 cm.

El Área foliar de las plántulas de café utilizando botellas PET fue de 6.17 cm2;

en tanto que, utilizando fundas plásticas fue de 6.86 cm2.

78

9. RECOMENDACIONES

Seleccionar las semillas de plantas de calidad, las cuales deben ser

vigorosas, libres de plagas y enfermedades, con granos bien configurados,

que garanticen un gran porcentaje de germinación y buen desarrollo de las

chapolas en el germinador, considerando la procedencia de plantas madres.

Utilizar un sustrato que esté compuesto por Gallinaza + tierra de montaña +

arena + Cascarilla de café. La cascarilla de café debe estar debidamente

descompuesta (por lo menos 5 meses) para utilizarla, de esta manera se

podrá evitar posibles quemas en las plántulas.

Para controlar enfermedades que atacan al cultivo en la fase de vivero se

utilizar productos preventivos y curativos como Mancha Cercospórica

(Pellicularia koleroga), Roya (Hemileia vastatrix), a base de Mancozeb +

metalaxil (avalancha 720) dosis de 9 gr/bomba de 20 litros.

Para corregir las deficiencias de nutrientes y microelementos utilizar abonos

foliares con el máximo de macro y microelementos tales como Evergreen y

neoverdol en dosis de 80 cm/ bomba de 20 litros de baja toxicidad.

Para la fase de vivero utilizar una polisombra que brinde entrada a los rayos

solares en un 50 %, que favorezca para que las plántulas obtengan un mejor

desarrollo.

Antes de llenar las fundas y botellas se debe desinfectar bien el sustrato,

utilizando agua hirviendo o productos específicos como captan.

79

10. BIBLIOGRAFÍA

PNG (Programa Nacional del Café, EC). 1991. Crianza de plantas de café:

Obtención de semillas. ed. Ecuador. p. 3 -12.

COFENAC (Consejo Cafetalero Nacional, EC). 2003. Caracterización Física

y Organoléptica de Cafés Arábigos en los Principales Agro ecosistemas del

Ecuador: Zona cafetalera del Ecuador. Ed. Manta Ecuador. Gráficos Colón.

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producción se café arábigo orgánico: Influencia de las abonadoras orgánicas

sobre el crecimiento vegetativo de las plántulas de café en el vivero. Ed.

Ecuador. IMPREGCOL Ltda. p. 59 - 62.

Valarezo S, M. 2009. Chaguarpamba y sus parroquias: Principales cultivos

asociados. Ed. Ecuador. Gráficas J.R.L. p. 85 - 86.

Cueva V, D; Cabrera A, J. 2011. Plan de desarrollo empresarial para la

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provincia de Loja – PROCAFEQ. Trabajo de investigación previo a la

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agroecológico: vivero de café. Ed. Loja, Ec. PRODEL. p. 5- 17.

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Coste, Rene, 1968. El Café: Técnicas Agrícolas y Producciones Tropicales,

Ed. Barcelona- España. Editorial Blume. p. 29, 30, 43,48.

80

Castillo, Peralta, 2008. Estado de conservación, propagación asexual y

sexual en invernadero y laboratorio de dos especies Podocarpáceas

procedentes de la reserva comunal Angashcola. Tesis. Ing. Ambiental. Loja,

EC, Universidad Nacional de Loja, Área Agropecuaria. 47-50 p.

INIAP (Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias), 1993. Manual

de Cultivo de café: Semilleros y viveros. Ed. Quevedo – Ecuador. 223 p.

ANEXOS

81

11.ANEXOS

82

Anexo 1. Mapa de la ubicación de la recolección de café en el cantón Chaguarpamba de la provincia de Loja.

Signos

convencional

Chaguarpamba

CHAGUARPAMBA

83

Anexo 2. Mapa de ubicación del ensayo

CHAGUARPAMBA

84

Anexo 3. Diseño experimental en el campo con los diferentes tratamientos, se

aplicó tres repeticiones.

7m

5m

1m

Agua

Temperada

(T4)

Con

Pergamino

(T1)

Sin

Pergamino

(T2)

Ácido

Clorhídrico

(T3)

Agua

Temperada

(T4)

1

m

Ácido

Clorhídrico

(T3)

Sin

Pergamino

(T2)

Sin

Pergamino

(T2)

Ácido

Clorhídrico

(T3)

Agua

Temperada

(T4)

Con

Pergamino

(T1)

2m

Con

Pergamino

(T1)

Nota: En cada bloque se sembró 1 libra de semilla de café

catuaí rojo

85

Anexo 4. Croquis del ensayo con diseños de bloques al azar, con plántulas

de café catuaí rojo.

Anexo 5. Análisis para la variable Germinación en el cultivo de plántulas de

café Mizhquillana.

GERMINACION TOTAL

TRATAMIENTOS BLOQUES TOTAL MEDIA

I II III

CON PERGAMINO 70 62 71 203 68

SIN PERGAMINO 89 88 77 254 89

AGUA TEMPERADA 52 31 19 102 34

ACIDO CLORHIDRICO 7 1 4 12 4

TOTAL 218 182 171

MEDIA 54.5 45.5 42.75

Fuente: Investigación de campo, 2012


86

Anexo 6. Análisis del variable diámetro del tallo por bloques.

1. Resultado de experimento.

DIÁMETRO DEL TALLO DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL PRIMER MES



I II III IV

FUNDAS 9.00 9.00 8.90 8.90 35.80 8.95

BOTELLAS 9.00 9.00 8.20 8.70 34.90 8.725

SUMATORIA 18 18.00 17.1 17.6

PROMEDIO 9.000 9.000 8.550 8.8



Anexo 7. Análisis de la variable diámetro del tallo por bloques.

2. Resultado de experimento

DIÁMETRO DEL TALLO DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SEGUNDO MES



I II III IV

FUNDAS 9.90 9.80 9.60 9.90 39.20 9.80

BOTELLAS 9.60 9.20 9.30 9.40 37.50 9.38

SUMATORIA 19.5 19 18.9 19.3

PROMEDIO 9.750 9.500 9.450 9.650



87

Anexo 8. Análisis de la variable diámetro del tallo por bloques


DIÁMETRO DEL TALLO DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL TERCER MES

DEL CICLO VEGETATIVO (AGOSTO)


I II III IV

FUNDAS 11.10 10.80 10.70 10.90 43.5 10.875

BOTELLAS 9.90 10.20 9.70 9.90 39.7 9.925

SUMATORIA 21 21 20.4 20.8

PROMEDIO 10.5 10.5 10.2 10.4





DIÁMETRO DEL TALLO DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL CUARTO MES

DEL CICLO VEGETATIVO (SEPTIEMBRE)


I II III IV

FUNDAS 12.20 11.80 11.70 11.70 47.40 11.85

BOTELLAS 11.60 11.40 11.30 10.80 45.10 11.28

SUMATORIA 23.80 23.20 23.00 22.50

PROMEDIO 11.90 11.60 11.50 11.25



88



DIÁMETRO DEL TALLO DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL QUINTO MES

DEL CICLO VEGETATIVO (OCTUBRE)


I II III IV

FUNDAS 12.80 12.90 12.60 12.70 51.00 12.75

BOTELLAS 12.20 11.90 11.80 11.90 47.80 11.95

SUMATORIA 25.00 24.80 24.40 24.60

PROMEDIO 12.50 12.40 12.20 12.30





DIÁMETRO DEL TALLO DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SEXTO MES DEL

CICLO VEGETATIVO (NOVIEMBRE)


I II III IV

FUNDAS 13.30 13.30 13.50 13.80 53.90 13.48

BOTELLAS 12.90 13.10 13.00 13.30 52.30 13.08

SUMATORIA 26.20 26.40 26.50 27.10

PROMEDIO 13.10 13.20 13.25 13.55



89



DIÁMETRO DEL TALLO DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SÉPTIMO MES

DEL CICLO VEGETATIVO (DICIEMBRE)


I II III IV

FUNDAS 15.20 14.00 14.60 15.40 59.20 14.80

BOTELLAS 14.20 13.70 13.90 14.80 56.60 14.15

SUMATORIA 29.40 27.70 28.50 30.20

PROMEDIO 14.70 13.85 14.25 15.10





DIÁMETRO DEL TALLO DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL OCTAVO MES

DEL CICLO VEGETATIVO (ENERO)


I II III IV

FUNDAS 16.00 15.40 16.10 16.60 64.10 16.03

BOTELLAS 16.10 16.00 16.70 17.20 66.00 16.50

SUMATORIA 32.10 31.40 32.80 33.80

PROMEDIO 16.05 15.70 16.40 16.90



90

Anexo 14. Análisis de la variable altura de la planta por bloques.


ALTURA PLANTULA (cm) DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL PRIMER MES

DEL CICLO VEGETATIVO (JUNIO)


I II III IV

FUNDAS 4.00 4.00 4.00 4.00 16.00 4.00

BOTELLAS 4.70 4.50 4.50 4.30 18.00 4.50

SUMATORIA 8.70 8.50 8.50 8.30

PROMEDIO 4.35 4.25 4.25 4.15





ALTURA PLANTULA (cm) DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SEGUNDO MES

DEL CICLO VEGETATIVO (JULIO)


I II III IV

FUNDAS 4.30 4.40 4.30 4.70 17.70 4.43

BOTELLAS 5.40 4.70 5.30 5.30 20.70 5.18

SUMATORIA 9.70 9.10 9.60 10.00

PROMEDIO 4.85 4.55 4.80 5.00



91



ALTURA PLANTULA (cm) DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL TERCER MES

DEL CICLO VEGETATIVO (AGOSTO)


I II III IV

FUNDAS 7.40 6.90 7.00 7.00 28.30 7.08

BOTELLAS 6.10 4.80 5.40 5.40 21.70 5.43

SUMATORIA 13.50 11.70 12.40 12.40

PROMEDIO 6.75 5.85 6.20 6.20





ALTURA PLANTULA (cm) DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL CUARTO MES

DEL CICLO VEGETATIVO(SEPTIEMBRE)


I II III IV

FUNDAS 11.00 11.40 9.40 10.90 42.70 10.68

BOTELLAS 6.60 5.20 6.35 5.50 23.65 5.91

SUMATORIA 17.60 16.60 15.75 16.40

PROMEDIO 8.80 8.30 7.88 8.20



92



ALTURA PLANTULA (cm) DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL QUINTO MES

DEL CICLO VEGETATIVO (OCTUBRE)


I II III IV

FUNDAS 13.70 13.70 14.00 13.70 55.10 13.78

BOTELLAS 7.10 7.10 7.20 7.20 28.60 7.15

SUMATORIA 20.80 20.80 21.20 20.90

PROMEDIO 10.40 10.40 10.60 10.45





ALTURA PLANTULA (cm) DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SEXTO MES

DEL CICLO VEGETATIVO (NOVIEMBRE)


I II III IV

FUNDAS 14.50 15.90 15.00 14.70 60.10 15.03

BOTELLAS 7.80 7.90 8.10 8.20 32.00 8.00

SUMATORIA 22.30 23.80 23.10 22.90

PROMEDIO 11.15 11.90 11.55 11.45



93



ALTURA PLANTULA (cm) DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SÉPTIMO MES

DEL CICLO VEGETATIVO (DICIEMBRE)


I II III IV

FUNDAS 16.70 17.40 17.40 17.40 68.90 17.23

BOTELLAS 10.40 9.20 8.50 8.80 36.90 9.23

SUMATORIA 27.10 26.60 25.90 26.20

PROMEDIO 13.55 13.30 12.95 13.10





ALTURA PLANTULA (cm) DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL OCTAVO MES



I II III IV

FUNDAS 18.20 18.10 18.30 18.10 72.70 18.18

BOTELLAS 11.90 10.80 9.60 10.70 43.00 10.75

SUMATORIA 30.10 28.90 27.90 28.80

PROMEDIO 15.05 14.45 13.95 14.40



94

Anexo 22. Análisis de la variable Longitud de la raíz por bloques.


LONGITUD RAÍZ (cm) DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL PRIMER MES DEL CICLO

VEGETATIVO (JUNIO)


I II III IV

FUNDAS 3.00 3.80 3.70 3.90 14.40 3.60

BOTELLAS 3.80 4.10 4.40 4.10 16.40 4.10

SUMATORIA 6.80 7.90 8.10 8.00

PROMEDIO 3.40 3.95 4.05 4.00



Anexo 23. Análisis de la variable Longitud de la raíz por bloques


LONGITUD RAÍZ (cm) DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SEGUNDO MES DEL

CICLO VEGETATIVO (JULIO)


I II III IV

FUNDAS 4.30 5.40 4.40 5.00 19.10 4.78

BOTELLAS 4.70 4.80 5.30 5.30 20.10 5.03

SUMATORIA 9.00 10.20 9.70 10.30

PROMEDIO 4.50 5.10 4.85 5.15



95



LONGITUD RAÍZ (cm) DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL TERCERO MES DEL

CICLO VEGETATIVO (AGOSTO)


I II III IV

FUNDAS 11.50 12.30 8.00 12.30 44.10 11.03

BOTELLAS 6.00 5.70 7.30 6.40 25.40 6.35

SUMATORIA 17.50 18.00 15.30 18.70

PROMEDIO 8.75 9.00 7.65 9.35





LONGITUD RAÍZ (cm) DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL CUARTO MES DEL CICLO

VEGETATIVO (SEPTIEMBRE)


I II III IV

FUNDAS 12.40 13.10 12.30 12.50 50.30 12.58

BOTELLAS 8.70 5.50 8.40 7.70 30.30 7.58

SUMATORIA 21.10 18.60 20.70 20.20

PROMEDIO 10.55 9.30 10.35 10.10



96



LONGITUD RAÍZ (cm) DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL QUINTO MES DEL CICLO

VEGETATIVO (OCTUBRE)


I II III IV

FUNDAS 12.20 13.40 13.30 12.90 51.80 12.95

BOTELLAS 5.70 7.30 8.60 7.90 29.50 7.38

SUMATORIA 17.90 20.70 21.90 20.80

PROMEDIO 8.95 10.35 10.95 10.40





LONGITUD RAÍZ (cm) DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SEXTO MES DEL CICLO

VEGETATIVO (NOVIEMBRE)


I II III IV

FUNDAS 12.60 14.20 14.00 13.40 54.20 13.55

BOTELLAS 9.00 9.20 9.40 10.80 38.40 9.60

SUMATORIA 21.60 23.40 23.40 24.20

PROMEDIO 10.80 11.70 11.70 12.10



97



LONGITUD RAÍZ (cm) DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SÉPTIMO MES DEL

CICLO VEGETATIVO (DICIEMBRE)


I II III IV

FUNDAS 12.70 14.90 13.70 14.00 55.30 13.83

BOTELLAS 10.60 9.80 11.00 11.20 42.60 10.65

SUMATORIA 23.30 24.70 24.70 25.20

PROMEDIO 11.65 12.35 12.35 12.60





LONGITUD RAÍZ (cm) DE PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL OCTAVO MES DEL CICLO

VEGETATIVO (ENERO)


I II III IV

FUNDAS 14.40 15.30 13.80 14.60 58.10 14.53

BOTELLAS 11.50 9.60 12.70 13.40 47.20 11.80

SUMATORIA 25.90 24.90 26.50 28.00

PROMEDIO 12.95 12.45 13.25 14.00



98

Anexo 30. Análisis de la variable número de hojas por bloques.


NÚMERO DE HOJAS DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL PRIMER MES DEL

CICLO VEGETATIVO (JUNIO)


I II III IV

FUNDAS 3.00 2.60 3.00 3.00 11.60 2.90

BOTELLAS 2.40 3.00 2.60 2.00 10.00 2.50

SUMATORIA 5.40 5.60 5.60 5.00

PROMEDIO 2.70 2.80 2.80 2.50





NÚMERO DE HOJAS DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SEGUNDO MES DEL

CICLO VEGETATIVO (JULIO)


I II III IV

FUNDAS 5.00 4.80 5.00 5.00 19.80 4.95

BOTELLAS 4.20 4.60 4.40 5.00 18.20 4.55

SUMATORIA 9.20 9.40 9.40 10.00

PROMEDIO 4.60 4.70 4.70 5.00



99



NÚMERO DE HOJAS DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL TERCER MES DEL

CICLO VEGETATIVO (AGOSTO)


I II III IV

FUNDAS 7.00 7.00 7.00 7.00 28.00 7.00

BOTELLAS 6.40 7.00 6.40 6.80 26.60 6.65

SUMATORIA 13.40 14.00 13.40 13.80

PROMEDIO 6.70 7.00 6.70 6.90





NÚMERO DE HOJAS DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL CUARTO MES DEL

CICLO VEGETATIVO (SEPTIEMBRE)


I II III IV

FUNDAS 9.00 9.00 9.00 9.00 36.00 9.00

BOTELLAS 7.80 8.00 7.00 7.20 30.00 7.50

SUMATORIA 16.80 17.00 16.00 16.20

PROMEDIO 8.40 8.50 8.00 8.10



100



NÚMERO DE HOJAS DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL QUINTO MES DEL

CICLO VEGETATIVO (OCTUBRE)


I II III IV

FUNDAS 3.00 3.00 3.00 3.00 12.00 3.00

BOTELLAS 2.60 2.40 2.80 3.00 10.80 2.70

SUMATORIA 5.60 5.40 5.80 6.00

PROMEDIO 2.80 2.70 2.90 3.00





NÚMERO DE HOJAS DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SEXTO MES DEL

CICLO VEGETATIVO (NOVIEMBRE)


I II III IV

FUNDAS 5.00 5.00 5.00 5.00 20.00 5.00

BOTELLAS 4.40 4.60 5.00 5.00 19.00 4.75

SUMATORIA 9.40 9.60 10.00 10.00

PROMEDIO 4.70 4.80 5.00 5.00



101



NÚMERO DE HOJAS DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL SÉPTIMO MES DEL

CICLO VEGETATIVO (DICIEMBRE)


I II III IV

FUNDAS 10.00 10.00 10.00 10.00 40.00 10.00

BOTELLAS 9.00 10.00 9.40 8.40 36.80 9.20

SUMATORIA 19.00 20.00 19.40 18.40

PROMEDIO 9.50 10.00 9.70 9.20





NÚMERO DE HOJAS DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL OCTAVO MES



I II III IV

FUNDAS 13.00 13.00 13.00 13.00 52.00 13.00

BOTELLAS 11.40 12.00 11.60 11.00 46.00 11.50

SUMATORIA 24.40 25.00 24.60 24.00

PROMEDIO 12.20 12.50 12.30 12.00



102

Anexo 38. Análisis para la variable área foliar por bloques.


AREA FOLEAR (cm2)DE LAS PLÁNTULAS DE CAFÉ EN EL OCTAVO MES



I II III IV

FUNDAS 465,00 469,60 462,40 467,80 1864,8 466,2

BOTELLAS 459,20 456,80 454,00 454,20 1824,2 456,05

SUMATORIA 924,2 926,4 916,4 922

PROMEDIO 462,1 463,2 458,2 461



103

Anexo 39. Resultados de semillas germinadas por semanas

Bloque 1

4 semana 5 semana 6 semana 7 semana 8 semana ∑ %

CON PERGAMINO 0 100 180 210 390 880 70

SIN PERGAMINO 95 50 210 320 440 1115 89

AGUA TEMPERADA 0 60 80 195 310 645 52

ÁCIDO CLORHÍDRICO 0 10 20 25 30 85 7

Bloque 2


CON PERGAMINO 0 98 145 219 315 777 62

SIN PERGAMINO 75 120 195 289 426 1105 88

AGUA TEMPERADA 0 24 56 110 196 386 31


Bloque 3


CON PERGAMINO 0 85 145 260 396 886 71

SIN PERGAMINO 85 93 103 283 398 962 77

AGUA TEMPERADA 0 25 50 79 80 234 19


104

Anexo 40: Fotografías del desarrollo de la investigación.

Foto 1. Organización del material vegetativo en el sitio de experimento

.

Foto 2. Tipos de raíces que se presentan en un semillero.(experiencia personal)

105

Foto 3. Semilla de café catuaí con pergamino bajo sombra

Foto 4. Semilla de café catuaí rojo sin pergamino

106

Foto 5. Semilla de café catuaí rojo con pergamino, tomada del trabajo de

investigación

Foto 6. Elaboración del sustrato para la siembra de los diferentes tratamientos

107

Foto 7. Elaboración del sustrato para llenar fundas y envases plásticos pet.

Foto 8. Recolección de envases PET

108

Foto 9. Corte y desinfección de envases PET

Foto 10. Llenado de las fundas de polietileno

109

Foto 11. Mesón en donde se ubicó los envases PET

Foto 12. Llenado y colocación de envases PET

110

Foto 13. Revisión y seguimiento al inicio de la investigación (Construcción de

vivero)

Foto 14. Plántulas de café trasplantadas a envases PET y fundas

111

Foto 15. Diámetro del tallo en la plántula de café

Foto 16. Altura de la plántula

112

Foto 17. Longitud de la raíz

Foto 18. Numero de hojas

113

Foto 19. Área foliar en cm2 al final del ensayo

Foto 20. Mancha Cercospórica (Pellicularia koleroga) en las plantas de café

114

Foto 21. Plantas de café con Roya (Hemileiavastatrix)

Foto 22. Deshierbe de las plantas de café.

.

115

Foto 23. Tratamiento S1F1: Sustrato 1 - Fundas de polietileno.

Foto 24. Tratamiento S1B2: Sustrato 1 - envases PET

116

Foto 25, 26. Finalización de la fase de campo y exposición de los resultados.

117

Foto 27. Entrega de plantas de café como incentivando a la participación al taller.

Foto 28. Finalización de la fase de campo y exposición de los resultados.

118

Anexo 41. Cartilla entregada a los asistentes del día de campo

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