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UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
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RESUMEN
La potabilización del agua consiste en la eliminación de compuestos volátiles
seguida de la precipitación de impurezas con floculantes, filtración y
desinfección con cloro.
Las aguas procedentes de los ríos, necesitan un tratamiento complejo y caro
antes de ser suministradas a los consumidores, debido a que las
precipitaciones traen cantidades apreciables de materia solida; por lo tanto el
objetivo de la potabilización es garantizar al consumidor que el tipo de agua
captada esta dentro de la calidad indicada en la norma INEN 1108
determinada.
Uchupucún es una planta de tipo convencional integrada por los procesos de
coagulación, sedimentación, filtración rápida y desinfección.
Las unidades de floculación están compuestas de dos cámaras de
floculación. dispone de cuatro sedimentadores de placas paralelas de flujo
ascendente con una tasa superficial de diseño de 130 m3/m2/día. El Sistema
de filtración está compuesto por seis unidades, intercomunicadas tanto a la
salida como a la entrada. Cada filtro tiene 32.m2 de área filtrante, con lechos
dobles de arena y antracita. El sistema de desinfección está compuesto de
un dosificador de cloro gas que tienen una capacidad máxima de 10 Kg/h.
Se sabe que hasta la actualidad EMAPAL ha realizado un estudio para
evaluar la planta de tratamiento Uchupucún.
Con la ejecución de esta tesis se aportó con los resultados de las pruebas
obtenidas, para conocidas sus características y problemas más evidentes
pueda tomar correctivos para un óptimo servicio a la comunidad.
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PALABRAS CLAVES:
Agua potable, Planta de tratamiento, Planta de Uchupucún, Optimización de
planta de tratamiento, floculación, sedimentación, filtración, desinfección.
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INDICE DE CAPITULOS PAGINA
13 CAPITULO 1 1.1 EL AGUA 14 1.1.1 GENERALIDADES 14 1.1.2 MICROBIOLOGIA 14 1.1.3 CARACTERISTICAS FISICAS 16
* TURBIEDAD 16 * SÓLIDOS Y RESIDUOS 17 * COLOR 19 * OLOR Y SABOR 19 * TEMPERATURA 21 * Ph 21
1.2 AGUA POTABLE 23 1.2.1 NORMA TÉCNICA ECUATORIANA AGUA POTABLE 1108: 2006 23
1.2.1.1 Requisitos de la Norma Técnica Ecuatoriana 23 Objeto 23 Alcance 23 Definiciones 23- 25 Disposiciones generales 25 Requisitos específicos 26 Requisitos microbiológicos 30 Inspección 30 Métodos de ensayo 30
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1.3 PLANTAS DE TRATAMIENTO DE AGUA POTABLE 31 1.3.1 TIPOS DE PLANTAS DE TRATAMIENTO DE AGUA 31 1.3.2 SISTEMAS DE AGUA POTABLE 32 1.3.3 FUENTES DE AGUA DE ORIGEN SUPERFICIAL 33 1.4 PROCESO DE POTABILIZACION DEL AGUA 33 1.4.1 ENTRADA O CAPTACION DEL AGUA CRUDA 33 1.4.2. SUSTANCIAS QUÍMICAS EMPLEADAS EN LA COAGULACIÓN 34
- Coagulantes 34 - Modificadores de Ph 34 - Ayudantes de coagulación 35
1.4.3 PROCESOS DE COAGULACION – MEZCLA RAPIDA 35 1.4.3.1 ETAPAS DE LA COAGULACIÓN 36 - 37 1.4.4 PROCESO DE FLOCULACIOON 38 1.4.4.1 FACTORES QUE INFLUYEN EN LA FLOCULACIÓN 38 1.4.5 PROCESO DE SEDIMENTACION 39 1.4.6 PROCESO DE FILTRACION 39 1.4.6.1 MECANISMOS DE LA FILTRACIÓN 40 1.4.7 PROCESO DE DESINFECCION 41 1.4.7.1 LA CLORACIÓN 42 1.4.7.2 CARACTERÍSTICAS DEL CLORO COMO DESINFECTANTE 43 1.4.8 PRUEBA DE JARRAS 43 1.4.9 ENSAYO CON TRAZADORES 44
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1.5 DESCRIPCIÓN DE LA PLANTA DE TRATAMIENTO DE AGUA POTABLE – UCHUPUCÚN 45
CAPITULO 2 50 2.- MATERIALES Y MÉTODOS EMPLEADOS 51 2.1 METODOLOGIA EMPLEADA 51 2.2 PRUEBA DE TRAZADORES 55
Sustancias trazadoras 55 Limitaciones de la prueba con trazadores 55 Materiales y Métodos 56 Proceso de Dosificación instantánea 56 Modelos de flujo 60
2.3 ENSAYO DE “PRUEBA DE JARRAS” 62
� Materiales y Equipos necesarios 63 � Preparación de Solución de Coagulantes y
Polielectrolitos para los Ensayos de Pruebas de Jarra. 63 � Sulfato de Aluminio Solución al 1% 63 � Solución de Polímero (PRAESTROL 650) al 0.1% 63 � Solución de Polímero (PRAESTROL 650) al
0.01% 64 � Procedimiento 64 � Interpretación 65
2.3.1 CURVA DE CALIBRACIÓN PARA DOSIFICADORES DE SOLUCIONES COAGULANTES 65
Factores necesarios para la creación de una curva de
calibración 66 2.3.1.1 DOSIFICACION DE SULFATO DE ALUMINIO 67
2.3.1.2 DOSIFICACION DE POLIMERO 68 69
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2.4.- PROCEDIMIENTOS NORMALIZADOS DE ANALISIS 2.4.1 BACTERIOLOGICO 70
Equipos 70 Reactivos 76
2.4.1.1 Preparación de Medios de Cultivo 77 2.4.1.2 Procedimiento de análisis de las muestras 77 2.4.1.3 Lectura de tubos positivos 78 2.4.2 FISICO QUIMICOS 80 2.4.2.1 Determinación del color 80
Generalidades 80 Fundamento 80 Materiales y equipos 80
Procedimiento 80 Resultados e interpretación 81
2.4.2.2 Determinación de la Turbiedad 82
Generalidades 82 Fundamento 82 Materiales y equipos 82 Procedimiento 82
2.4.2.3 Determinación del pH 84
Generalidades 84 Fundamento 84 Materiales y equipos 84 Procedimiento 84 Resultados e interpretación 85
2.4.2.4 Alcalinidad 85
Generalidades 85 Materiales y equipos 85 Procedimiento 86 Cálculos 86
2.4.2.5 Dureza Total 87 Generalidades 87 Fundamento 87
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Materiales y equipos 87 Reactivos 87 Cálculos de la constante del EDTA 88 Procedimiento 89 Cálculos 89
2.4.2.6 Dureza Cálcica 89
Método del EDTA 89 Fundamento 89 Reactivos 89 Procedimiento 90 Cálculos 90
2.4.2.7 Dureza Magnésica 91
Cálculo 91 2.4.2.8 Acidez 91
Generalidades 91 Materiales y Reactivos 91
Cálculo de la constante del NaOH 0.02N 92 Procedimiento 92 Cálculo 92
2.4.2.9 Conductividad 93
Generalidades 93 Materiales y equipos 93 Procedimiento 93
2.4.2.10 Sólidos Disueltos Totales 94
Generalidades 94 Materiales y equipos 94 Procedimiento 95
2.4.2.11 Cloruros 95
Método Argentométrico 96 Materiales y Reactivos 95
Procedimiento 96 Cálculos 96
2.4.2.12 Cloro Residual 97
Fundamento 97 Materiales y equipos 97 Procedimiento 98
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Resultados e interpretación 98 CAPITULO 3 99 3.- ANALISIS DE RESULTADOS 100 3.1 RESULTADOS 107 3.1.1 TANQUE DE FLOCULACION 1 107 3.1.2 TANQUE DE FLOCULACION 2 117 3.1.3 RESULTADOS EN EL ANALISIS BACTERIOLOGICO 126 GRÁFICO N°9 128 GRÁFICO N°10 130
GRÁFICO N°11 132 GRÁFICO N°12 134
GRÁFICO N°13 136 GRÁFICO N°14 138 GRÁFICO N°15 138
� Porcentaje de remoción de contaminación bacteriológica en las PRE-etapas de tratamiento 140
� Porcentaje de remoción de coliformes totales 145
� Porcentaje de remoción de coliformes termorresistentes 147 GRÁFICO N°16 145 GRÁFICO N°17 147 3.1.4 RESULTADOS EN EL ANALISIS FISICO-QUIMICO 149 GRÁFICO Nº 18 152 GRÁFICO Nº 19 152 GRÁFICO Nº 20 152 GRÁFICO Nº 21 155 GRÁFICO Nº 22 156
GRÁFICO Nº 23 157 GRÁFICO Nº 24 158 GRÁFICO Nº 25 159 GRÁFICO Nº 26 160
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GRÁFICO Nº 27 161 GRÁFICO Nº 28 162 GRÁFICO Nº 29 163 GRÁFICO Nº 30 165 GRÁFICO Nº 31 165 GRÁFICO Nº 32 166 GRÁFICO Nº 33 167 GRÁFICO Nº 34 168 GRÁFICO Nº 35 169 GRÁFICO Nº 36 170 GRÁFICO Nº 37 171 GRÁFICO Nº 38 172
� Porcentaje de remoción de turbiedad en las PRE-etapas de tratamiento 171 GRÁFICO Nº 39 173 GRÁFICO Nº 40 174 GRÁFICO Nº 41 175 GRÁFICO Nº 42 176 GRÁFICO Nº 43 177 CAPITULO 4 179 4.- CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES 180 4.1.- CONCLUSIONES 180 4.2.- RECOMENDACIONES 187 5.- BIBLIOGRAFÍA 188 ANEXOS 190 ANEXO 1 Prueba de jarras 191 ANEXO 2 Análisis Microbiológico 217
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FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMICAS
ESCUELA DE BIOQUÍMICA Y FARMACIA
OPTIMIZACIÓN DE LA PLANTA DE TRATAMIENTO DE UCHUPUCUN
TESIS PREVIA A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE: BIOQUÍMICO FARMACÉUTICO
AUTOR: CECIBEL IDROVO
DIRECTOR DE TESIS: Dr. Eduardo Sánchez S.
CUENCA - ECUADOR 2009 – 2010
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AUTOR: CECIBEL IDROVO
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AGRADECIMIENTO
Ante todo agradezco a Dios por ser mi mejor amigo y fortaleza, darme todo
lo que tengo y mantenerme siempre de pie.
A mi Director – Asesor, Dr. Eduardo Sánchez, quien durante el desarrollo de
la tesis me acompañó hasta culminar hoy el presente proyecto,
compartiendo su conocimiento conmigo.
A la Dra. Adelina Astudillo M., quienes tuvieron la amabilidad de aportar sus
conocimientos en la realización de este trabajo: mi sincero agradecimiento.
Agradezco al personal técnico y laboratorio de la planta de tratamiento -
Empresa Municipal de Agua Potable y Alcantarillado (EMAPAL), quienes
facilitaron las instalaciones, equipos y reactivos para los análisis
correspondientes durante el tiempo de estudio.
Y en general a todas las personas que en forma desinteresada
proporcionaron ayuda e información necesaria para conseguir los objetivos
propuestos al inicio del proyecto.
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AUTOR: CECIBEL IDROVO
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DEDICATORIA
A mis padres: por su incondicional apoyo moral, económico; que sea Dios
quien retribuya sus inconmensurables bendiciones, porque fueron el pilar
fundamental en la culminación de carrera.
A mi princesa, Madeline Cecibel, quien sobrellevó mis largas ausencias;
siendo mi inspiración en todo momento de mi lucha diaria.
Cecibel
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INTRODUCCIÓN
La Empresa Municipal de Agua Potable y Alcantarillado de Azogues,
EMAPAL, es una entidad con personería jurídica y autonomía administrativa
y patrimonial, subordinada a los actos decisorios del Ilustre Concejo
Municipal de Azogues, que opera sobre bases comerciales y cuyo objetivo
es la prestación de los servicios públicos de agua potable y alcantarillado y
servicios afines, así como la atención a las necesidades de los mismos.
Se sabe que hasta la actualidad EMAPAL ha realizado un estudio para
evaluar la planta de tratamiento Uchupucún.
Con la ejecución de este proyecto pretendo aportar con los resultados de las
pruebas obtenidas, para que conocidas sus características y problemas más
evidentes pueda tomar correctivos para un óptimo servicio a la comunidad.
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Capitulo 1
1.1 EL AGUA.
1.1.1 GENERALIDADES
El agua constituye un elemento natural indispensable para el desarrollo de la
vida y de las actividades humanas; resulta difícil imaginar cualquier tipo de
actividad en la que no se utilice, de una u otra forma. 1
Se considera que el agua es un solvente universal, debido a que es capaz
de disolver o dispersar la mayoría de sustancias con las que tiene contacto,
sean estas sólidas, líquidas o gaseosas, y de formar con ellas iones,
complejos solubles e insolubles, coloides o simplemente partículas dispersas
de diferente tamaño y peso.1
1.1.2 MICROBIOLOGIA
El agua, alimento esencial para los animales incluido el hombre,
frecuentemente actúa como vehículo de transmisión de microorganismos
1 .- MODULO DISEÑO SAP – Filtración Rápida- Aspectos fisicoquímicos de la calidad del agua Pág., 2
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entéricos. La materia fecal puede accidentalmente alcanzar una fuente de
abastecimiento.
La Organización Mundial de la Salud (OMS) en sus Guías para la calidad del
agua potable, y otras normas internacionales, establecen o recomiendan
requisitos de calidad para el agua de consumo humano. En general, la
normativa establece que el agua es apta bacteriológicamente para consumo
si se encuentra exenta de microorganismos patógenos de origen entérico y
parasitario intestinal.
Ellos transmiten enfermedades tales como salmonelosis (Salmonella),
shigelosis (Shigella), colera (Vibrio Cholerae), amebiasis (Entamoeba
histolytica), alteraciones gastrointestinales (Aeromonas mesófilas,
Helicobacter pylori, Campylobacter); giardiasis (Giardia lamblia),
cristosporidiosis (Crystosporidium), esquistosomiasis (Schistosoma),
desórdenes hepáticos (virus de hepatitis), etc.2
1.1.3 CARACTERISTICAS FISICAS 3
Las características físicas del agua, llamadas así porque pueden impresionar
a los sentidos (vista, olfato, etcétera), tienen directa incidencia sobre las
condiciones estéticas y de aceptabilidad del agua.
Se consideran importantes las siguientes:
2 MODULO DISEÑO SAP – Filtración Rápida- Aspectos biológicos de la calidad del agua Bióloga Margarita Aurazo de Zumaeta- pg, 9 3 MODULO DISEÑO SAP – Filtración Rápida- Aspectos fisicoquímicos de la calidad del agua - Quím. Ada Barrenechea Martel – páginas 4-16; 41
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TURBIEDAD
Las sustancias responsables de la turbiedad del agua son las partículas en
suspensión, tales como arcilla, minerales, sedimentos, materia orgánica e
inorgánica, bacterias y otros microorganismos. Para su remoción se requiere
usar coagulantes, acondicionadores de pH, ayudantes de coagulación,
etcétera.
La medición de la turbiedad se realiza mediante un turbidímetro o
nefelómetro. Las unidades utilizadas son, por lo general, unidades
nefelométricas de turbiedad (UNT).
La Norma Técnica Ecuatoriana INEN 1108: 2006 fija como máximo
permisible 5 NTU (Unidad Nefelométrica de Turbiedad) y como índice de
calidad 1NTU.4
SÓLIDOS Y RESIDUOS
Se denomina así a los residuos que se obtienen como materia remanente
luego de evaporar y secar una muestra de agua a una temperatura dada.
Según el tipo de asociación con el agua, los sólidos pueden encontrarse
suspendidos o disueltos.
Las partículas pueden estar:
— Disueltas (hasta un milimicrómetro), en cuyo caso físicamente no influirán
en la turbiedad, pero sí podrían definir su color u olor. 4 Norma Técnica Ecuatoriana INEN 1108: 2006
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— Formando sistemas coloidales (1 a 1.000 milimicrómetros), que son las
causantes de la turbiedad neta del agua.
— En forma de partículas suspendidas (por encima de 1.000
milimicrómetros), las cuales caen rápidamente cuando el agua se somete a
reposo.
— Es necesario aclarar que las pruebas analíticas para determinar las
formas de los residuos no determinan sustancias químicas específicas y solo
clasifican sustancias que tienen propiedades físicas similares y
comportamiento semejante frente a las diferentes condiciones ambientales.
Sólidos totales: Corresponden al residuo remanente después de secar una
muestra de agua. Equivalen a la suma del residuo disuelto y suspendido. El
residuo total del agua se determina a 103–105 ºC.
Equivalencias:
Sólidos totales = sólidos suspendidos + sólidos disueltos
Sólidos totales = sólidos fijos + sólidos volátiles
Sólidos disueltos o residuos disueltos: Mejor conocidos como sólidos
filtrables, son los que se obtienen después de la evaporación de una
muestra previamente filtrada.
Comprenden sólidos en solución verdadera y sólidos en estado coloidal, no
retenidos en la filtración, ambos con partículas inferiores a un micrómetro.
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Sólidos en suspensión. Corresponden a los sólidos presentes en un agua
residual, exceptuados los solubles y los sólidos en fino estado coloidal. Se
considera que los sólidos en suspensión son los que tienen partículas
superiores a un micrómetro y que son retenidos mediante una filtración en el
análisis de laboratorio.
Sólidos volátiles y fijos: Los sólidos volátiles son aquellos que se pierden
por calcinación a 550 ºC, mientras que el material remanente se define como
sólidos fijos.
La mayor parte de los sólidos volátiles corresponden a material orgánico.
Los sólidos fijos corresponden, más bien, a material inorgánico.
COLOR
Esta característica del agua puede estar ligada a la turbiedad o presentarse
independientemente de ella.
Esta característica del agua se atribuye comúnmente a la presencia de
taninos, lignina, ácidos húmicos, ácidos grasos, etcétera.
En la formación del color en el agua intervienen, entre otros factores, el pH,
la temperatura, el tiempo de contacto, la materia disponible y la solubilidad
de los compuestos coloreados.
Se denomina color aparente a aquel que presenta el agua cruda o natural y
color verdadero al que queda luego de que el agua ha sido filtrada.
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La Norma Técnica Ecuatoriana INEN 1108: 2006 fija como límite máximo
permisible 15 UC (Unidad de Color). 4
OLOR Y SABOR
El sabor y el olor están estrechamente relacionados; por eso es común decir
que “A lo que huele, sabe el agua”.
Estas características constituyen el motivo principal de rechazo por parte del
consumidor.
En términos prácticos, la falta de olor puede ser un indicio indirecto de la
ausencia de contaminantes, tales como los compuestos fenólicos. Por otra
parte, la presencia de olor a sulfuro de hidrógeno puede indicar una acción
séptica de compuestos orgánicos en el agua.
La tabla 1 presenta un resumen de algunos olores característicos del agua,
de acuerdo con su origen.
Naturaleza Origen Olor balsámico Flores Dulzor Coelosphaerium Olor químico Aguas residuales
industriales Olor a cloro Cloro libre Olor a hidrocarburo Refinería de petrolero Olor medicamentoso Fenol, yodoformo Olor a azufre Acido sulfúrico Olor a pescado Pescado, mariscos Olor séptico Alcantarillado Olor a tierra Arcillas húmedas
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Olor fecaloide Retrete, alcantarillado Olor a moho Cueva húmeda Olor a legumbres Hierba, hojas en
descomposición Tabla 1. – Olores característicos del agua y su origen
MODULO DISEÑO SAP – Filtración Rápida- Aspectos fisicoquímicos de la calidad del agua - Quím. Ada Barrenechea Martel
En el agua se pueden considerar cuatro sabores básicos: ácido, salado,
dulce y amargo.
La cloración en presencia de compuestos fenólicos puede imprimir un mal
sabor en el agua, por la formación de derivados clorados que producen un
sabor a derivados fenólicos.
TEMPERATURA
Es uno de los parámetros físicos más importantes en el agua, pues por lo
general influye en el retardo o aceleración de la actividad biológica, la
absorción de oxígeno, la precipitación de compuestos, la formación de
depósitos, la desinfección y los procesos de mezcla, floculación,
sedimentación y filtración.
Múltiples factores, principalmente ambientales, pueden hacer que la
temperatura del agua varíe continuamente.
pH
El pH influye en algunos fenómenos que ocurren en el agua. Aunque podría
decirse que no tiene efectos directos sobre la salud, sí puede influir en los
procesos de tratamiento del agua, como la coagulación y la desinfección.
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Cuando se tratan aguas ácidas, es común la adición de un álcali (por lo
general, cal) para optimizar los procesos de coagulación.
Se considera que el pH de las aguas tanto crudas como tratadas debería
estar entre 5,0 y 9,0. Por lo general, este rango permite controlar sus efectos
en el comportamiento de otros constituyentes de agua.
La Norma Técnica Ecuatoriana INEN 1108: 2006 ha establecido el rango de
pH 6,5 a 8,5 para el agua potable. 4
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1.2 AGUA POTABLE
1.2.1 NORMA TÉCNICA ECUATORIANA - AGUA POTABLE (INEN 1108:
2006) 4
1.2.1.1 Requisitos de la Norma Técnica Ecuatoriana
OBJETO.-
Esta norma establece los requisitos que debe cumplir el agua potable para
consumo humano.
ALCANCE.-
Esta norma se aplica al agua potable de los sistemas de abastecimiento
públicos y privados a través de redes de distribución y tanqueros.
DEFINICIONES.-
Agua Potable: Es el agua cuyas características físicas, químicas y
microbiológicas han sido tratadas a fin de garantizar su aptitud para
consumo humano.
Agua Cruda: Es el agua que se encuentra en la naturaleza y que no ha
recibido ningún tratamiento para modificar sus características físicas,
químicas y microbiológicas.
Límite máximo permisible: Representa un requisito de calidad del agua
potable que fija dentro del ámbito del conocimiento científico y tecnológico
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del momento un límite sobre el cual el agua deja de ser apta para consumo
humano.
UFC/ml: Concentración de microorganismos por mililitro expresada en
unidades formadoras de colonias.
NMP: Forma de expresión de parámetros microbiológicos, número más
probable cuando se aplica la técnica de los Tubos Múltiples.
µq/l: (microorganismos por litro). Unidades de concentración de parámetros
fisicoquímicos.
mg/l: (miligramos por litro). Unidades de concentración de parámetros
fisicoquímicos.
Microorganismo patógeno: Son los causantes potenciales de
enfermedades para el ser humano.
Pesticidas: Sustancia química o biológica que se utiliza sola, combinada o
mezclada para prevenir, combatir o destruir, repeler o mitigar insectos,
hongos, bacterias, nemátodos, ácaros, moluscos, roedores, malas hierbas o
cualquier forma de vida que cause perjuicios directos o indirectos a los
cultivos agrícolas, productos vegetales y plantas en general.
Desinfección: Proceso de tratamiento que elimina o reduce el riesgo de
enfermedad que pueden presentar los agentes microbianos patógenos,
constituye una medida preventiva esencial para la salud pública.
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Subproductos de desinfección: Productos que se generan al aplicar el
desinfectante al agua especialmente en presencia de sustancias húmicas.
Radio Nucleido: Nucleidos radiactivos; nucleidos: conjunto de átomos que
tienen núcleos con igual número atómico Z y másico A.
MBAS, ABS: Sustancias activas al azul de metileno; Alquil Benceno
Sulfonato.
Cloro residual: Cloro remanente en el agua luego de al menos 30 minutos
de contacto.
Dureza total: Es la cantidad de calcio y magnesio presente en el agua y
expresado como carbonato de calcio.
Sólidos totales disueltos: Fracción filtrable de los sólidos que corresponde
a los sólidos coloidales y disueltos.
DISPOSICIONES GENERALES.-
Cuando el agua potable se utilice como materia prima para la elaboración de
productos de consumo humano, la concentración de aerobios mesófilos, no
deberá ser superior a 100UFC/ml.
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REQUISITOS ESPECÍFICOS.-
El agua potable debe cumplir con los requisitos que se establecen a
continuación:
PARAMETRO UNIDAD LÍMITE MÁXIMO PERMISIBLE
Color UC 15
Turbiedad -- 5
Olor -- No objetable
Sabor -- No objetable
pH -- 6.5 – 8.5
Sólidos totales disueltos mg/l 1000
Aluminio mg/l 0.25
Amonio mg/l 1.0
Antimonio mg/l 0.005
Arsénico mg/l 0.01
Bario mg/l 0.7
Boro mg/l 0.3
Cadmio mg/l 0.003
Cianuros mg/l 0.0
Cloro libre residual mg/l 0.3 – 1.5
Cloruros mg/l 250
Cobalto mg/l 0.2
Cobre mg/l 1.0
Cromo mg/l 0.05
Dureza total CaCO3 mg/l 300
Estaño mg/l 0.1
Flúor mg/l 1.5
Fósforo mg/l 0.1
Hierro mg/l 0.3
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Litio mg/l 0.2
Manganeso mg/l 0.1
Mercurio mg/l 0.0
Níquel mg/l 0.02
Nitratos mg/l 10
Nitritos mg/l 0.0
Plata mg/l 0.5
Plomo mg/l 0.05
Potasio mg/l 20
Selenio mg/l 0.01
Sodio mg/l 200
Sulfatos mg/l 200
Vanadio mg/l 0.1
Zinc mg/l 3
Radiación total α Bq/l 0.1
Radiación total β Bq/l 1.0
Tensoactivos mg/l 0.0
Fenoles mg/l 0.0
Tabla 2.- Requisitos fisicoquímicos del agua potable. (Norma Técnica Ecuatoriana INEN 1108: 2006)
Sustancias Orgánicas
Límite máximo μg/l
Alcanos Clorinados tetracloruro de carbono 2 Diclorometano 20 - 1,2dicloroetano 30 - 1,1,1-tricloroetano 2000 Etanos Clorinados cloruro de vinilo 5 - 1,1dicloroeteno 30 - 1,2dicloroeteno 50
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Tricloroeteno 70 Tetracloroeteno 40 Hidrocarburos Aromáticos Benceno 10 Tolueno 170 Xileno 500 Etilbenceno 200 Estireno 20 Hidrocarburos totales de petróleo (HTP) 0,3 Hidrocarburos aromáticos policíclicos (HAPs) benzo [a]pireno 0,01 benzo [a]fluoranteno 0,03 benzo [k]fluoranteno 0,03 benzo [ghi]pirileno 0,03 - indeno [1,2,3-cd]pireno 0,03 Bencenos Clorinados Monoclorobenceno 300 1,2-diclorobenceno 1000 1,4-diclorobenceno 300 Triclorobencenos (total) 20 di(2-etilhexil) adipato 80 di(2-etilhexil) ftalato 8 Archilamida 0,5 Epiclorohidrin 0,4 Hexaclorobutadieno 0,6 Ácido etilendiaminatetracético EDTA 200 ácido nitrotriacético 200 oxido tributiltin 2
Tabla 3.- Requisitos fisicoquímicos del agua potable. – sustancias orgánicas (Norma Técnica Ecuatoriana INEN 1108: 2006)
Pesticidas
Límite máximo μg/l
Isoproturon 9 Lindano 2 Ácido 4-cloro-2-metilfenoxiacetico MCPA 2 Metoxycloro 10 Molinato 6 Pendimetalin 20
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Pentaclorofenol 9 Permetrin 20 Propanil 20 Piridato 100 Simazina 2 Trifluralin 20 Herbicidas Clorofenoxi, diferentes a 2,4-D y MCPA 2,4-DB 90 Dicloroprop 100 Fenoprop 9 Ácido 4-cloro-2-metilfenoxibutírico MCPB 2 Mecoprop 10 2,4,5-T 9 Tabla 4.- Requisitos fisicoquímicos del agua potable - Pesticidas
(Norma Técnica Ecuatoriana INEN 1108: 2006)
Residuos de desinfectantes Límite máximo μg/l Monocloramina, di- y tricloramina 3 Cloro 5
Tabla 5.- Requisitos fisicoquímicos del agua potable Residuos de Desinfectantes (Norma Técnica Ecuatoriana
INEN 1108: 2006)
Subproductos de desinfección Límite máximo μg/l Bromato 25 Clorito 200 Clorofenoles - 2,4,6-triclorofenol 200 Formaldehído 900 Trihalometanos Bromoformo 100 Diclorometano 100 Bromodiclorometano 60 Cloroformo 200
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AUTOR: CECIBEL IDROVO
29
Ácidos acéticos clorinados ácido dicloroacético 50 ácido tricloroacético 100 Hidrato clorado Tricloroacetaldeído 10 Acetonitrilos halogenados Dicloroacetonitrilo 90 Dibromoacetonitrilo 100 Tricloroacetonitrilo 1 Cianógeno clorado (como CN) 70
Tabla 6.- Requisitos fisicoquímicos del agua potable - Subproductos de desinfección (Norma Técnica Ecuatoriana INEN
1108: 2006)
REQUISITOS MICROBIOLÓGICOS.-
PRUEBA MÁXIMO PERMISIBLE
Coliformes totales (1) NMP/100ml < 2 *
Coliformes fecales NMP/100ml < 2 *
Criptosporidium, # de quistes/100l Ausencia
Giardia Lamblia, # de quistes/100l Ausencia
Tabla 7.- Requisitos microbiológicos del agua potable. (Norma
Técnica Ecuatoriana INEN 1108: 2005)
< 2: Significa que en una serie de 9 tubos ninguno es positivo. (1): En el caso de los grandes sistemas de abastecimiento, cuando se examinen suficientes muestras, deberá dar ausencia en el 95% de las muestras, tomadas durante cualquier período de 12 meses.
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30
INSPECCIÓN
Muestreo
El muestreo para el análisis bacteriológico, físico, químico debe realizarse de
acuerdo a los Métodos Normalizados para el agua potable y residual
(Standard Methods)
El manejo y conservación de las muestras para la realización de los análisis
debe realizarse de acuerdo con lo establecido en los Métodos Normalizados
para el agua potable y residual
(Standard Methods).
MÉTODOS DE ENSAYO
Los métodos de ensayo utilizados para los análisis que se especifican en
esta norma serán los Métodos Normalizados para el agua potable y residual
(Standard Methods) especificados en su última edición.
1.3 PLANTAS DE TRATAMIENTO DE AGUA POTABLE
Son estructuras destinadas al tratamiento del agua cruda con el fin de
hacerla apta para el consumo humano, preservando las condiciones de
salud de la población.11
5Emapal. 2009. Plan Estratégico. Documento preliminar 6MODULO DISEÑO SAP – Procesos unitarios y plantas de tratamiento - Ing. Lidia de Vargas- Pág. 7
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31
Una planta de tratamiento es una secuencia de operaciones o procesos
unitarios, convenientemente seleccionados con el fin de remover totalmente
los contaminantes microbiológicos presentes en el agua cruda y
parcialmente los físicos y químicos, hasta llevarlos a los límites aceptables
estipulados por las normas. 5
1.3.1 TIPOS DE PLANTAS DE TRATAMIENTO DE AGUA
Las plantas de tratamiento de agua se pueden clasificar, de acuerdo con el
tipo de procesos que las conforman, en plantas de filtración rápida y plantas
de filtración lenta.
También se pueden clasificar, de acuerdo con la tecnología usada en el
proyecto, en plantas convencionales antiguas, plantas convencionales de
tecnología apropiada y plantas de tecnología importada o de patente. 6
1.3.2 SISTEMAS DE AGUA POTABLE
El mayor efecto en la calidad de vida de la población es la dotación de un
sistema de abastecimiento de agua potable, éste no puede llamarse como
tal si no cuenta con los siguientes componentes:
• Micro cuenca
• Fuente de agua y Captación
• Conducción
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AUTOR: CECIBEL IDROVO
32
• Planta de purificación del agua de la fuente
• Reservas
• Red de Distribución
• Sistema Tarifario
• Operación y Mantenimiento
El agua vista dentro del ciclo hidrológico quizás sea gratuita, sin embargo,
cuesta mucho dinero ponerla a disposición de la población para los
diferentes usos; por lo tanto, es esencial obtener el compromiso de hacer
frente a dichos costos. 5
1.3.3 FUENTES DE AGUA DE ORIGEN SUPERFICIAL
Debido a que las principales fuentes de agua para el tratamiento con fines
de consumo humano son de origen superficial, se tratarán los temas
específicamente relacionados con este tipo de agua.
Por otro lado, la contaminación de los recursos hídricos superficiales es un
problema cada vez más grave, debido a que estos se usan como destino
final de residuos domésticos e industriales, sobre todo en las áreas urbanas.
Estas descargas son las principales responsables de la alteración de la
calidad de las aguas naturales, que en algunos casos llegan a estar tan
contaminadas que su potabilización resulta muy difícil y costosa.
Debido a la amplia gama de contaminantes, a los diferentes niveles de
contaminación, materia orgánica y microorganismos es preciso conocer las
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AUTOR: CECIBEL IDROVO
33
características físicas, químicas y biológicas del agua antes de seleccionarla
como fuente de agua cruda.7
1.4 PROCESO DE POTABILIZACION DEL AGUA
1.4.1 ENTRADA O CAPTACION DEL AGUA CRUDA
La captación de aguas superficiales se realiza por medio de tomas de agua
que se hacen en los ríos o diques.
El agua proveniente de ríos está expuesta a la incorporación de materiales y
microorganismos, requiriendo un proceso más complejo para su tratamiento.
La turbiedad, el contenido mineral y el grado de contaminación varían según
la época del año.812
1.4.2 AGREGADO Y DOSIFICACION DE PRODUCTOS QUIMICOS
El agregado de productos químicos (coagulantes) se realiza para la
desestabilización del coloide o turbiedad del agua.
1.4.2.1 SUSTANCIAS QUÍMICAS EMPLEADAS EN LA
COAGULACIÓN 8 - 9
7MODULO DISEÑO SAP – Filtración Rápida- Aspectos fisicoquímicos de la calidad del agua - Quím. Ada Barrenechea Martel – Pág., 51 8 MANUAL IV Evaluación del Tratamiento de Agua; Preparado por: Ing. José Pérez Carrión, Consultor OPS, Ing. Ligia Cánepa de Vargas. Oficial del programa de mejoramiento de la calidad del agua para el consumo de Humano, Junio 1992.
9MANUAL DTIPA # C- 5; CEPIS; PROGRAMA DE PROTECCION DE LA SALUD AMBIENTAL HPE; EVALUACION DE PLANTAS DE TRATAMIENTO DE AGUA; Tomo I; Diciembre1984. Pág. 25, 29
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AUTOR: CECIBEL IDROVO
34
A la variedad de productos químicos empleados en la coagulación se los
clasifica como coagulantes, modificadores de pH y ayudantes de
coagulación.
Coagulantes
Los productos químicos más usados como coagulantes en el tratamiento de
las aguas son el sulfato de aluminio, el cloruro férrico, el sulfato ferroso y
férrico y el cloro- sulfato férrico.
Modificadores de pH
Como se ha visto, para lograr mejores resultados en el tratamiento, en
algunos casos será necesario regular la alcalinidad del agua o modificar su
pH; para ello se emplean:
a. Hidróxido de calcio, Ca (OH)2
b. Carbonato de sodio, Na2CO3
c. Bicarbonato sódico, NaHCO3
Ayudantes de coagulación
Son polímeros aniónicos, catiónicos o neutros, los cuales pueden presentar
forma sólida (polvo) o líquida. Son sustancias de un alto peso molecular, de
origen natural o sintético. Requieren ensayos de coagulación y floculación
antes de su elección.
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35
Los polímeros sólidos son generalmente poliacrilamida o poliacrilamida
hidrolizada y son no iónicos. Los líquidos son generalmente soluciones
catiónicas, que contienen de 10 a 60% de polímero activo.
1.4.3 PROCESOS DE COAGULACION – MEZCLA RAPIDA
La remoción de las partículas coloidales está relacionada estrictamente con
una adecuada coagulación, pues de ella depende la eficiencia de las
siguientes etapas: floculación, sedimentación y filtración.
La coagulación se lleva a cabo generalmente con la adición de sales de
aluminio y hierro. Este proceso es resultado de dos fenómenos:
Fenómeno químico.
Fenómeno físico.
Este proceso es muy rápido, toma desde décimas de segundo hasta cerca
de 100 segundos, de acuerdo con las demás características del agua
Se lleva a cabo en una unidad de tratamiento denominada mezcla rápida. De
allí en adelante, se necesitará una agitación relativamente lenta, la cual se
realiza dentro del floculador. En esta unidad las partículas chocarán entre sí,
se aglomerarán y formarán otras mayores denominadas flóculos; estas
pueden ser removidas con mayor eficiencia por los procesos de
sedimentación, flotación o filtración rápida.
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36
La coagulación está esencialmente en función de las características del
agua y de las partículas presentes, las mismas que definen el valor de los
parámetros conocidos como pH, alcalinidad, color verdadero, turbiedad,
temperatura, sólidos totales disueltos, tamaño y distribución de tamaños de
las partículas en estado coloidal y en suspensión, etcétera.1016
10 MODULO DISEÑO SAP - Coagulación - Quím. Ada Barrenechea Martel – Pág.2 – 45
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37
1.4.3.1 ETAPAS DE LA COAGULACIÓN
– Hidrólisis de los coagulantes y desestabilización de las partículas en
suspensión.
– Formación de compuestos químicos poliméricos.
– Adsorcion de cadenas poliméricas por los coloides.
– Adsorcion mutua de coloides.
– Acción de barrido.
Algunas de estas etapas ocurren secuencialmente. Otras coinciden
parcialmente y otras incluso pueden ocurrir simultáneamente. Se puede
suponer que las diferentes etapas de la reacción pueden resultar
controlables en un cierto porcentaje, bajo diversas condiciones químicas
(figura 1).
Figura 1. Modelo esquemático del proceso de coagulación
(MODULO DISEÑO DE SAP -Guías de Calidad para Aguas de Consumo Humano de la OMS)
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38
1.4.4 PROCESO DE FLOCULACION 10
El objetivo principal de la floculación es reunir las partículas desestabilizadas
para formar aglomeraciones de mayor peso y tamaño que sedimenten con
mayor eficiencia.
Existen dos tipos de floculación para promover el crecimiento de los floculos,
se detallan a continuación:
1) Floculación Peri cinética, se basa en las colisiones debidas al
movimiento de las moléculas e inducidas por la energía térmica. A
este movimiento se denomina “Movimiento Browniano”.
2) Floculación Ortocinetica, se basa en las colisiones de las partículas
debidas al movimiento del agua. Este movimiento es inducido por una
energía exterior a la masa de agua y que puede ser de origen
mecánico o hidráulico.
1.4.4.1 FACTORES QUE INFLUYEN EN LA FLOCULACIÓN
Los principales factores que influyen en la eficiencia de este proceso son:
Naturaleza del agua
Variaciones de caudal
Intensidad de agitación
Tiempo de floculación
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39
1.4.5 PROCESO DE SEDIMENTACION
Es la remoción por efecto gravitacional de las partículas en suspensión en
un fluido, y que tengan peso específico mayor que el fluido.
La sedimentación se realiza en decantadores. En ellos se produce la
decantación del flóculo, que precipitan al fondo del decantador formando
lodos. Normalmente la retención de velocidad del agua que se produce en
esta zona es de 40 minutos a una hora.
Los decantadores o sedimentadores en su tramo final poseen vertederos en
los cuales se capta la capa superior del agua que contiene menor turbiedad,
por medio de estos vertederos el agua pasa a la zona de filtración. 11
11 MANUAL DTIPA # C- 5; CEPIS; PROGRAMA DE PROTECCION DE LA SALUD AMBIENTAL HPE; EVALUACION DE PLANTAS DE TRATAMIENTO DE AGUA; Tomo I; Diciembre1984. Pág. 121
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
40
1.4.6 PROCESO DE FILTRACION
Es la remoción de sólidos suspendidos y coloidales presentes en una
suspensión acuosa a través de un medio poroso. En general, la filtración es
la operación final, que se realiza en una planta de tratamiento de agua y por
consiguiente, es la responsable principal de la producción de agua de
calidad coincidente de los patrones de potabilidad.
Los filtros están compuestos por un manto sostén formado por grava, arena
y antracita.12
1.4.6.1 MECANISMOS DE LA FILTRACIÓN
La filtración usualmente es considerada como el resultado de dos
mecanismos distintos pero complementarios: transporte y adherencia.
Inicialmente, las partículas por remover son transportadas de la suspensión
a la superficie de los granos del medio filtrante.
Los mecanismos que pueden realizar transporte son los siguientes:
a) cernido
b) sedimentación
c) intercepción
d) difusión
12 MODULO DISEÑO SAP – Filtración - Ing. Víctor Maldonado Yactayo – Pág.2, 3
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AUTOR: CECIBEL IDROVO
41
e) impacto inercial
f) acción hidrodinámica
g) mecanismos de transporte combinados.
Los mecanismos de adherencia son los siguientes:
a) fuerzas de Van der Waals
b) fuerzas electroquímicas
c) puente químico
Se han planteado debates sobre cuál de estos mecanismos es el que
controla el proceso de filtración. Es indudable que no todos necesariamente
tienen que actuar al mismo tiempo y que, en algunos casos, la contribución
de uno o varios de ellos para retener el material suspendido es quizás
mínimo.
Pero hay que tener en cuenta que dada la complejidad del fenómeno, más
de un mecanismo deberá entrar en acción para transportar los diferentes
tamaños de partículas hasta la superficie de los granos del medio filtrante y
adherirlas.13
13 MODULO DISEÑO SAP – Desinfección - Quím. Ada Barrenechea Martel, Ing. Lidia de Vargas – Pág.2, 3 ;20,21
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AUTOR: CECIBEL IDROVO
42
1.4.7 PROCESO DE DESINFECCION
Es un proceso selectivo para la destrucción de microorganismos patógenos
presentes en el agua (bacterias, protozoarios, virus y parásitos). Este
proceso es necesario porque no es posible asegurar la remoción total de los
microorganismos por los procesos físico-químicos, usualmente utilizados en
el tratamiento del agua.
El agente de desinfección mas empleado es el cloro, debido a su fácil
disponibilidad en forma de gas, liquido o solidó, es capaz de destruir la
mayoría de microorganismos patógenos.
Por otro lado, las aguas suministradas por una planta de tratamiento de agua
para consumo humano pueden sufrir recontaminación en los tanques de
almacenamiento o en las redes de distribución antes de ser distribuidas a la
población. La desinfección debe protegerlas también de estas situaciones de
riesgo posteriores al tratamiento.13
1.4.7.1 LA CLORACIÓN
El cloro, oxidante poderoso, es, sin duda alguna, el desinfectante más
importante que existe, debido a que reúne todas las ventajas requeridas,
incluyendo su fácil dosificación y costo conveniente.
Sin embargo, presenta algunas desventajas:
a) Es muy corrosivo.
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43
b) Puede producir sabor desagradable en el agua, incluso en
concentraciones que no significan riesgo para el consumidor.
c) Su manejo y almacenamiento requiere ciertas normas de seguridad, para
evitar riesgos en la salud de los operadores.
El cloro, en condiciones normales de presión y temperatura, es un gas
verde, dos y media veces más pesado que el aire.
1.4.7.2 CARACTERÍSTICAS DEL CLORO COMO DESINFECTANTE
a) Destruye los organismos patógenos del agua en condiciones ambientales
y en un tiempo corto.
b) Es de fácil aplicación, manejo sencillo y bajo costo.
c) La determinación de su concentración en el agua es sencilla y de bajo
costo.
d) En las dosis utilizadas en la desinfección de las aguas, no constituye
riesgo para el hombre ni para los animales.
e) Deja un efecto residual que protege el agua de una posterior
contaminación en la red de distribución.
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AUTOR: CECIBEL IDROVO
44
1.4.8 PRUEBA DE JARRAS
Es un ensayo de laboratorio que se utiliza desde hace muchos años sirve
para realizar la parte práctica de los estudios de tratabilidad, de las aguas a
fin de obtener un control de los parámetros operativos básicos de ciertos
procesos en una planta de tratamiento de agua.
Esta prueba de jarras enfoca su aplicabilidad más importante hacia los
procesos de floculación y sedimentación, es decir al mecanismo de
separación de partículas. El éxito de esta tarea depende del grado de
similitud en las condiciones hidráulicas que puedan conseguirse entre el
equipo de laboratorio y las unidades de la planta de tratamiento.
El objeto de este ensayo es determinar la dosis optima de coagulante que
produce la mas rápida desestabilización de las partículas coloidales, que
permita la formación de un floculo pesado y compacto, que pueda ser
fácilmente retenido en los sedimentadotes y no se rompa al pasar por el
filtro.14
Tabla 8 – Resultados con seis jarras
(Teoría de purificación del agua) (MANUAL - EMAPAL) 14 MANUAL EMAPAL, Azogues – Ecuador
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45
1.4.9 ENSAYO CON TRAZADORES
En plantas de tratamiento su uso ha sido limitado, pero muy útil para
determinar la distribución del flujo en unidades paralelas y evaluar las
condiciones hidráulicas.
En la actualidad estos ensayos se utilizan principalmente para determinar los
tiempos reales de retención y sus principales características concomitantes:
tipos de flujo, espacios muertos y cortocircuitos hidráulicos en unidades de
tratamiento como mezcladores rápidos, floculadores, sedimentadores.15
1.5 Descripción de la Planta de Tratamiento de agua potable –
Uchupucún
Es la segunda planta con la que cuenta el sistema de agua potable de
Azogues, denominada planta de Uchupucún por su ubicación, consta de un
sistema convencional formado por un cajón de ingreso, canal de dosificación
de químicos, floculadores, sedimentadores filtros y desinfección.
Esta planta entró en un proceso de remodelación y equipamiento con el
nuevo proyecto de ampliación del sistema de agua potable en el periodo
2001 – 2004 en el cual se dota de mejor infraestructura, equipamiento,
15 MANUAL DTIPA # C- 5; CEPIS; PROGRAMA DE PROTECCION DE LA SALUD AMBIENTAL HPE; EVALUACION DE PLANTAS DE TRATAMIENTO DE AGUA; Tomo I; Diciembre1984 Pág.32
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46
impermeabilización y equipamiento de su laboratorio. Ubicada en una cota
2.639 m.s.n.m. 5
FIGURA 2. Planta de tratamiento de agua potable Uchupucún
(Foto tomada por Autora)
Con un caudal de ingreso aproximado de 94 l/s. Misma que es alimentada
por los caudales de las captaciones de Condoryacu, El Rosario y Rubíes.5
FIGURA 3. Captación Condoryacu
(Foto tomada por Autora)
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47
FIGURA 4. Captación el Rosario
(Foto tomada por Autora)
FIGURA 5.Captación Rubíes (Foto tomada por Autora)
Uchupucún es una planta del tipo convencional integrada por los procesos
de coagulación, sedimentación, filtración rápida y desinfección.
Las unidades de floculación están compuestas de dos cámaras de
floculación hidráulica horizontal. 5
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48
FIGURA 6. Unidades de Floculación - Planta de tratamiento de agua potable Uchupucún
(Foto tomada por Autora)
Se dispone de cuatro sedimentadores de placas paralelas de flujo
ascendente con una tasa superficial de diseño de 130 m3/m2/día. 5
FIGURA 7. Unidades de Sedimentación - Planta de tratamiento de agua potable Uchupucún
(Foto tomada por Autora) El Sistema de filtración esta compuesto por seis unidades, intercomunicadas
tanto a la salida como a la entrada. Cada filtro tiene 32.m2 de área filtrante,
con lechos dobles de arena y antracita.5
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49
FIGURA 8. Sistema de Filtración - Planta de tratamiento de agua potable Uchupucún
(Foto tomada por Autora)
El sistema de desinfección esta compuesto de un dosificador de cloro gas
que tienen una capacidad máxima de 10 Kg/h.
La cámara de contacto tiene un tiempo de retención de 20 minutos, recibe
agua que rebosa de cada vertedero de control de los filtros.5
FIGURA 9. Dosificador de Cloro gas (Foto tomada por Autora)
FIGURA 10. Cilindros contenedores de cloro gas (Foto tomada por
Autora)
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50
Capitulo 2
2.- MATERIALES Y MÉTODOS EMPLEADOS
2.1 METODOLOGIA EMPLEADA
Población y muestra:
La investigación propuesta se realizó en la Planta de tratamiento de agua
potable de Uchupucún de la ciudad de Azogues, dicha planta es alimentada
por los caudales de las captaciones de Condoryacu, El Rosario y Rubíes.
Con un número de usuarios de 40.000 habitantes.
La investigación efectuada desde el día viernes 6 de noviembre se centró en
analizar: Prueba de trazadores, prueba de jarras, las etapas de tratamiento:
floculación, sedimentación, filtración, y desinfección.
Aplicando la norma INEN 1108: 2006, y el MANUAL IV: Evaluación del
Tratamiento de Agua (Oficial del programa de mejoramiento de la calidad
del agua para el consumo de Humano), que determinó el número de
muestras para los análisis a seguir.
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51
Prueba Realizad
a
Etapa de tratamiento
Lugar de muestreo
Número de días
Número de
muestras realizadas
Hora de realizada
la prueba
Traz
ador
es
Floculación Fin de la
etapa 2 4 14H30
Prueba
de Jarras Agua Cruda
Captación
de agua de
la Planta
13 13 10H00
Aná
lisis
Fis
icoq
uím
ico
Agua cruda
Captación
de la Planta 15 15 09H00
Sedimentaci
ón
Sedimentad
or al azar 20 20 09H00
Filtración
Filtros al
azar
24 24 09H30
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52
Des
infe
cció
n
Tanque de
macenamiento
Uchupucún
15 15 09H30
Redes
publicas -
Domiciliarias
30 30 11H00
Aná
lisis
Bac
terio
lógi
co
Agua cruda
Captació
n de agua de
la Planta
10 10 08H00
Sedimentaci
ón
edimentador al
azar12 12 08H00
Filtración Filtros al
azar 18 18 08H00
Desinfección
Tanque
de
almacenami
ento
Uchupucún
10 10 08H30
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AUTOR: CECIBEL IDROVO
53
Redes
públicas –
domiciliarias
30 30 09H30
Tanque
Repartidor
principal
5 5 08H30
Redes de
tanques de
distribución
20 20 08H30
Tabla 9- Muestreo realizado en la planta de tratamiento de Uchupucún.
(Tabla elaborada por autora)
Las muestras empleadas en total fueron 226; de las cuales corresponden
104 muestras para el análisis fisicoquímico, 105 muestras para el análisis
Bacteriológico, 13 muestras para la prueba de jarras y 4 muestras para
prueba de trazadores. Debo aclarar que las muestras se tomaron al azar
durante 7 semanas consecutivas en días laborables.
Los envases empleados para la recolección de muestras para el análisis
microbiológico se realizó en envases de vidrio previamente adicionados
tiosulfato de sodio y esterilizados, de aproximadamente 500ml de capacidad.
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54
Para la recolección de muestras para el análisis físico químico se emplearon
envases de plástico de 1000ml de capacidad.
2.2 PRUEBA DE TRAZADORES
Sustancias trazadoras
Las sustancias trazadoras pueden ser:
a) Colorantes como fluoresceína o rodamina.
b) Iones como cloruros, especialmente de sodio o potasio, fluoruros o
nitratos, especialmente de sodio.
c) Elementos radiactivos como isótopos.
d) Ácidos: clorhídrico, benzoico.
e) Otras sustancias químicas: alizarim, sapirol, naptol.
Resulta muy común utilizar el ion cloruro (cloruro de sodio) como sustancia
trazadora en las evaluaciones de plantas de tratamiento de agua. El cloruro
de sodio o sal de mesa es de fácil obtención y bajo costo. Asimismo, la
determinación de la concentración a la salida del reactor es rápida y
fácilmente medida a través de la conductividad.
Limitaciones de la prueba con trazadores
Las pruebas de trazadores son muy útiles para conocer cómo se desplazan
las diferentes masas de agua dentro de las unidades de tratamiento como
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55
floculadores, pero los datos obtenidos se refieren solamente al momento en
que se hace la prueba, y no representan necesariamente el comportamiento
en todas las condiciones.
Los datos tampoco dicen nada sobre la eficiencia de los reactores, pues
estos procesos dependen no solo de las características hidráulicas de los
reactores sino también de factores de tipo químico.16
Materiales y Métodos 17
• Agua cruda
• Cloruro de Sodio (sal)
• Conductímetro
• Cronómetro
La aplicación de trazadores puede hacerse de dos maneras distintas:
• En forma instantánea.
• En forma continua.
16 MODULO DISEÑO SAP – Análisis de flujos y factores que determinan los periodos de retención – Pág.28 – 35 17 MATERIALES Y METODOS – Planta de tratamiento de agua potable Uchupucún.
El trazador se añadió a los tanques de retención mediante el medio de
Dosificación instantánea.
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56
Proceso de Dosificación instantánea17
Se aplica una concentración (Co) a la entrada de la unidad en evaluación en
un tiempo muy corto, inferior a 1/30 del tiempo teórico de retención (to) y en
un punto tal que se mezcle instantáneamente con la masa de agua afluente
de la unidad que se piensa analizar.
En la dosificación instantánea, la concentración (Co) que se escoja debe ser
tal que se pueda determinar con facilidad en el agua. Para el caso del uso
del ion cloruro como trazador, es común usar concentraciones de entre 30 y
50 mg/l.
La cantidad de trazador P (Kg.) que se necesita añadir al reactor en
evaluación está dada por la siguiente ecuación:
Donde:
P = peso del trazador por añadir al reactor, kg
V= volumen útil del reactor, m3.
K = constante de corrección.
Co = concentración, mg/l o g/m3
I = grado de pureza del trazador, fracción de la unidad
P = V x K x Co I x 103
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57
Obtenido el peso de cloruro de sodio como trazador realizamos una mezcla
en una concentración al 20%, con agua limpia. La solución es introducida en
la forma de pulso en la entrada de las unidades de floculación. Esta cantidad
de sal deberá disolverse en agua, la que deberá ser agitada en forma
permanente, inclusive durante la adición en el punto de mezcla previamente
escogido.
Primeramente se mide la conductividad del agua cruda “ca”, luego se
introduce en forma de pulso una cantidad de Cloruro de sodio, de tal manera
que se forme una solución, después se toman datos de conductividad para
diferentes tiempos y en los lugares hasta donde quiera realizarse la
floculación.
Una vez realizada la toma de datos, se construye una gráfica donde se
representen en las abscisas “tf/t”, y en las ordenadas “c-ca”, donde:
• t =Tiempo medio de retención.
• t f = Tiempo final transcurrido
• ca= conductividad del agua cruda.
Anotamos los datos obtenidos y realizamos las gráficas
La evaluación de las condiciones hidrodinámicas de la unidad se realiza a
partir de la determinación de la sumatoria de las fracciones remanentes del
trazador, utilizándose la ecuación (1).
(1)
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AUTOR: CECIBEL IDROVO
58
Donde:
1-F(t): Es la fracción remanente de trazador en el tiempo t.
Ci: Concentración del trazador en el tiempo t.
m: Número muestras durante el ensayo.
n ≤ m Orden de la muestra correspondiente al tiempo t.
Utilizándose la ecuación (1) se construye una Figura, en la cual, en
ordenadas, se tiene 1-F(t) y, en abscisas, la relación t/to. Con la
prolongación de la recta hasta obtener el valor de 1 - F(t), para el cual, t/to es
igual a cero, se determina tg α. Para 1-F(t) =1 de la recta trazada, resulta
p(1-m). Por medio de la ecuación 2 son estimadas las fracciones de los tipos
de flujo.
(2)
Donde.
p(1-m) : Fracción del flujo de tipo pistón;
(1-p) (1-m): Fracción del flujo del tipo mezcla completa;
m: Fracción correspondiente a zonas muertas.
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59
Modelos de flujo17
Existen varios métodos para realizar la evaluación de los floculadores en una
planta, pero en nuestro trabajo evaluamos la eficiencia de los floculadores en
la planta de tratamiento de agua en Uchupucún en función del porcentaje de
funcionamiento del flujo pistón; método que describiremos más adelante.
Si el funcionamiento del flujo pistón es menor del 70 % decimos que el
trabajo de los floculadores es malo, pero si el funcionamiento del flujo pistón
es mayor del 70% el funcionamiento de las cámaras de retención será
bueno.
En las unidades de tratamiento de una planta, desde el punto de vista
hidráulico, el flujo del líquido puede ser de dos tipos:
• Discontinuo o intermitente y
• Continuo.
Flujo intermitente
El flujo de tipo discontinuo o intermitente es el menos habitual y consiste en
llenar la unidad y dejar un tiempo al líquido en, ella mientras se produce el
proceso correspondiente, que puede realizarse con o sin mezcla, vaciar la
unidad y repetir el ciclo.
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60
Este tipo de flujo, no es práctico y generalmente los procesos en una planta
de tratamiento son de flujo continuo, salvo que el proceso de tratamiento en
sí exija la discontinuidad.
Flujo contínuo
Este tipo de flujo es el habitual en las plantas tratamiento de agua. Teniendo
en cuenta esta característica, los reactores pueden ser de flujo de pistón,
mezclado y no ideal.
a) Flujo de pistón: Se describe como aquel en el que todas las partículas
de fluido que entran a la unidad permanecen en ella el mismo tiempo. De
esta manera, los elementos de fluido pasan a través del sistema y son
descargados en la misma secuencia en que fueron introducidos y no hay
ningún tipo de mezcla entre el fluido que ingresa y el fluido que está en la
unidad.
En la práctica es muy difícil lograr un flujo con estas características. Se
presenta con bastante aproximación.
b) Flujo mezclado: Un reactor con flujo mezclado es aquel en el que todo
elemento que ingresa al reactor se dispersa inmediatamente dentro de él.
Además, se cumplirá que la concentración de una sustancia a la salida de la
unidad es igual a la existente en todo el reactor. En la práctica es muy difícil
lograr un flujo con estas características; solo se presentará bajo condiciones
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61
ideales. Se encuentra con bastante aproximación en retro mezcladores o
floculadores mecánicos con pocas cámaras en serie.
c) Flujo no ideal: Este tipo de flujo corresponde a cualquier grado
intermedio entre flujo a pistón y mezcla completa con otras posibles
alteraciones como la presencia de zonas muertas, cortocircuitos hidráulicos,
recirculación. Viene a ser el tipo de flujo con el que nos encontraríamos
usualmente en las unidades de tratamiento en las plantas.
2.3 ENSAYO DE “PRUEBA DE JARRAS”
Definición
Es un método de simulación de los procesos de coagulación y floculación,
realizado a nivel de laboratorio que permite obtener agua de buena calidad,
fácilmente separable por decantación; los flóculos formados con diferentes
dosis del coagulante dan como resultado valores de turbiedad diferentes.15
Objetivo
Determinar las variables físicas y químicas de los procesos de coagulación;
floculación y sedimentación; tales como: selección del coagulante; selección
del pH óptimo; gradientes y tiempos de mezcla rápida y floculación y
correlación de las velocidades de sedimentación y la eficiencia de
remoción.15
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62
Materiales y Equipos Necesarios17
• Agitador Múltiple o Floculador, equipo provisto de 6 agitadores planos;
tiene como elementos adicionales vasos de 2 litros de capacidad.
• Solución de sulfato de aluminio al 1%
• Solución de polímero al 0,1%
• Equipos para la determinación de color, turbiedad, pH y alcalinidad.
Preparación de Solución de Coagulantes y Polielectrolitos para los
Ensayos de Pruebas de Jarra.
• Sulfato de Aluminio Solución al 1%
Esta solución se obtendrá pesando 1g de Sulfato de Aluminio. Y disolviendo
con agua filtrada, se agita y se deja reposar unos 5 minutos antes de
utilizarla. Esta solución se prepara diariamente, la que es utilizada en las
pruebas de jarra; la solución residual se desecha.
• Solución de Polímero (PRAESTROL 650) al 0.1%
Se pesa en la Balanza Analítica 0.5 gr. De la muestra de Polímero y se
coloca en un vaso con agua y se va agitando hasta obtener una solución
uniforme; aforar a 500ml. con agua. De esta solución se toman los
volúmenes a utilizar en las pruebas de jarras; el tiempo de conservación es
no más de una semana.
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63
• Solución de Polímero (PRAESTROL 650) al 0.01%
De la solución anterior tomar 50ml y aforar a 500ml con agua.
El número de pruebas que se realizaron sobre las muestras de agua cruda
fueron dos, la primera prueba sirve para determinar la dosis de coagulante
necesario para producir una disminución en la turbiedad.
La segunda prueba sirve para determinar la dosis de polímero, que
conjuntamente con la dosis óptima de sulfato de aluminio se emplearan.
PROCEDIMIENTO: 17
Determinar el color, turbiedad, pH y alcalinidad del agua cruda.
Colocar 2 litros de la muestra en cada uno de las seis jarras y llevarlas al
aparato de agitación.
Dar al aparato la máxima velocidad (l00 r.p.m o más).
Adicionar las dosis de sulfato de aluminio (lo más rápido posible).
Luego de 1 minutos de agitación rápida, reducir la velocidad de rotación
del aparato a 60 r.p.m. y mantener la agitación por 20 min.
Observar y anotar aparición de los flóculos en cada uno de las jarras y la
apariencia, tamaño y cantidad de flóculos al final del período de
agitación.
Dejar decantar por 15minutos y determinar el color, turbiedad, pH y
alcalinidad del sobrenadante de agua decantada, utilizando una pipeta de
25 ml para retirar lentamente una muestra, sin agitar los flóculos.
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64
Interpretación:
La interpretación de los resultados permite determinar parámetros de
operación o de proyecto, tales como dosis óptimas de coagulante, influencia
del pH y alcalinidad en la coagulación, remoción de turbiedad versus
velocidad de sedimentación, etc.
Este ensayo es más real cuando se conoce y se aplican en el aparato los
mismos gradientes y tiempos de floculación de la planta de tratamiento,
pudiéndose por este medio determinar la eficiencia de las unidades de
mezcla rápida y floculación.
2.3.1 CURVA DE CALIBRACIÓN PARA DOSIFICADORES DE
SOLUCIONES COAGULANTES
Una curva de calibración es una línea cuya ecuación está determinada por la
información de respuesta de calibración de un instrumento, consiste en una
función matemática producida por la regresión de las respuestas registradas
durante la calibración de un instrumento.
La muestra que produce la mayor reducción de turbiedad y color
corresponde a la dosis óptima de los productos químicos utilizados.
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65
La función describe las respuestas a lo largo de un rango de
concentraciones y es utilizada para predecir la concentración de una
muestra desconocida, basándose en la respuesta de un detector.
Factores necesarios para la creación de una curva de calibración
Para realizar una curva de calibración o linealidad, el número de mediciones
mínimo que se debe tener es 3, mientras mayor sea el número de
determinaciones la ecuación obtenida representará mejor al modelo
estudiado.
La cantidad de mediciones que se deben realizar para obtener una buena
curva tiene que ser en lo posible mayor o igual a 5 y deberán encontrase
uniformemente distribuidas a lo largo del intervalo de concentraciones que
se deseen estudiar.
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66
2.3.1.1 DOSIFICACION DE SULFATO DE ALUMINIO
Para la elaboración de la curva de dosificación de (SO4)3Al2 mg/l, se ha
tomado los datos de cada una de las prueba de jarras.
Numero de
Muestra
TURBIDEZ (NTU)
(SO4)3Al2 mg/l
1 4,11 15 2 4,36 15 3 5,57 15 4 5,88 20 5 6,22 25 6 6,46 25 7 6,5 25 8 6,5 30 9 6,64 30
10 6,8 30 11 7,03 35 12 7,5 35 13 7,75 35
Tabla 9- Datos empleados para curva de calibración de sulfato. (Tabla elaborada por autora)
CURVA DE CALIBRACION DE SULFATO DE ALUMINIO
4,05
4,70
5,35
6,00
6,65
7,30
10 15 20 25 30 35 40
Dosis de Sulfato de Aluminio mg/l
Turb
idez
(NTU
)
GRAFICO 1. Curva de calibración de sulfato de aluminio
(Realizado por autora)
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67
2.3.1.2 DOSIFICACION DE POLIMERO
Para la elaboración de la curva de dosificación de Polímero mg/l, se ha
tomado los datos de cada una de las prueba de jarras.
Numero de
Muestra
TURBIDEZ (NTU) Polímero mg/l
1 4,11 0,07 2 4,64 0,07 3 5,98 0,08 4 6,12 0,08 5 6,22 0,08 6 6,46 0,08 7 6,5 0,08 8 6,5 0,08 9 6,64 0,08 10 6,8 0,08 11 7,03 0,09 12 7,5 0,09 13 7,75 0,09
Tabla 10. Datos empleados para curva de calibración de sulfato. (Tabla elaborada por autora)
CURVA DE CALIBRACION DE POLIMERO
4,024,424,825,225,626,026,426,827,227,62
0,06 0,07 0,08 0,09 0,1
Dosis de polimero mg/l
Turb
idez
(NTU
)
GRAFICO 2. Curva de calibración de polímero
(Realizado por autora)
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68
2.4.- PROCEDIMIENTOS NORMALIZADOS DE ANALISIS 18
La metodología de los análisis para cada parámetro son los dados por los
Métodos basados en la Norma Ecuatoriana INEN 1108 de control de Calidad
de Agua potable.
Los análisis de rutina que se realizan son:
Coliformes Totales – Coliformes Termorresistentes
Escherichia Coli
Color Aparente y Color Verdadero
Turbiedad
Ph
Conductividad
Dureza Total
Dureza Magnésica*
Magnesio*
Alcalinidad
Dureza Cálcica
Calcio*
Acidez
Sólidos Disueltos Totales
Tabla 11. Procedimientos normalizados de análisis (Programa de control de calidad de agua para consumo.)
*: Por cálculo 18 ETAPA - PROGRAMA DE CONTROL DE CALIDAD DE AGUA PARA CONSUMO; Dirección técnica de agua potable y alcantarillado unidad de control de calidad del agua, Enero del 2000. Basado en la Norma INEN 1108.
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69
2.4.1 BACTERIOLOGICO18
Siendo de gran significación los análisis bacteriológicos tanto para el control
de las diferentes unidades en las plantas de tratamiento como del agua
distribuida y la consumida por los usuarios, el laboratorio cuenta con los
equipos, materiales de vidrio, reactivos y personal calificado para la toma de
muestras, preparación de reactivos, análisis e interpretación de resultados.
Equipos: 17
Autoclave:
Utilizado para esterilizar desechos infecciosos y medios de cultivo con calor
húmedo, a temperatura y presión controladas, en su interior posee una
rejilla facilitando la mejor distribución del espacio, tiene en su parte externa
los indicadores de temperatura, tiempo, y presión, así como de encendido y
apagado. Es de acero inoxidable, de fácil manejo.
FIGURA 11. Autoclave - ALL AMERICAN # 75X (Foto tomada por Autor)
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70
Estufa.-
Elemento primordial e ineludible en todo laboratorio que efectúa cultivos.
Mantiene la temperatura constante para el normal desarrollo de las bacterias
en sus respectivos medios, (temperatura utilizada generalmente 37 °C).
Tiene incorporado un termómetro indicador para control de temperatura.
Es de material inoxidable, de fácil manejo. El laboratorio de microbiología de
la planta de Uchupucún cuenta con dos estufas, las cuales son empleadas
todos los días.
FIGURA 13Estufa - MEMMERT (Foto tomada por Autoar)
FIGURA 12. Estufa – LINDBERG/BLUE (Foto tomada por Autora)
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71
Baño María.-
Programado para mantener la temperatura constante según requerimientos
de pruebas realizadas, constando de 37 – 38 OC.
Es un equipo sencillo, estable de buena calidad y útil en cualquier
laboratorio; con gran capacidad, pues en su interior lleva una gradilla para
incubar hasta 80 tubos al mismo tiempo, y tiene una perilla reguladora de
temperatura así como un sensor de luz indicativo de encendido; todo el
equipo es de material inoxidable.
FIGURA 14. Baño María - MEMMERT (Foto tomada por Autora)
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72
Esterilizador.-
Equipo utilizado para esterilizar material con calor seco, a altas
temperaturas, en su interior posee dos bandejas facilitando la mejor
distribución del espacio, exhibe en su parte externa superior el indicador de
temperatura, de tiempo, y la cantidad de aire fresco que ingresa; así como la
perilla de poder ( encender).
Es de acero inoxidable, y su manejo es simple.
FIGURA 15. Esterilizador - MEMMERT (Foto tomada por Autora)
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73
Balanza Analítica.-
De marcada importancia para el área de Bacteriología, pues el rango que
tiene de 0,01g a 300g, permite que los pesos sean exactos al preparar
medios de cultivo.
De fácil encendido, incluye en sus teclas el peso de tara y el cero
FIGURA 16. Balanza Analítica – METTLER AJ150
(Foto tomada por Autora) Agitador magnético.-
Posee un rango de velocidad de 60-1110 RPM, un rango de temperatura de
30-450 °C. Soporta un volumen máximo de agitación de 15litros.
Empleado para mezclar los medios de cultivo para el análisis microbiológico
que son preparados en el laboratorio.
FIGURA 17. Agitador magnético c/ calefacción MSH 420 BOECO (Foto tomada por Autora)
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74
Refrigerador.- .
Almacena todos los reactivos que necesitan refrigeración; y congelamiento.
Su uso se ha generalizado en todo nivel, por lo que no se hace necesario
dar detalles de este.
FIGURA 18. Refrigerador marca INDURAMA
(Foto tomada por Autora)
Pipetas de vidrio.- Se utiliza para transferir volúmenes de líquidos,
existen dos tipos:
o Pipetas aforadas: diseñadas para medir un solo volumen, las
encontramos de un aforo, que consiste en un tubo largo y
estrecho con un ensanchamiento en la parte central y que en
su parte superior comprende la línea de aforo que indica el
volumen máximo que debe alcanzar el líquido. Y la de doble
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75
aforo, que la única diferencia de la anterior es que esta pipeta
tiene una segunda línea de aforo.
o Pipetas graduadas: tienen una graduación grabada en sus
paredes y pueden medir cualquier volumen que no rebase su
capacidad máxima.
Tubos de vidrio con tapa rosca.- Son tubos cilíndricos cerrados por un
extremo, y tapa rosca al otro extremo. Está hecho de un vidrio especial
que resiste las temperaturas muy altas, sin embargo los cambios de
temperatura muy radicales pueden provocar el rompimiento de tubo.
(Pyrex)
Vasos de precipitación.- Son recipientes de forma cilíndrico ancho, de
paredes rectas y con un pico para facilitar el vertido de los líquidos, se
observan unas señales indicativas las cuales sirven de guía para el
volumen de la disolución.
Reactivos:
• Caldo Lauryl Sulfato – usado para determinar Coliformes Totales
• Caldo EC – usado para determinar Coliformes Termorresistentes
• Púrpura de bromocresol- se usa como indicador de acidez que se
visualiza en los tubos positivos por el cambio de color de púrpura a
amarillo debido a la fermentación de lactosa.
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2.4.1.1 Preparación de Medios de Cultivo18
Caldo Lauryl Simple: Pesar 35.5 gr. y disolver con agitación en 1 litro de
agua destilada añadir 0,01 gr. de púrpura de bromocresol. Introducir 10
ml en cada tubo de ensayo y esterilizar en autoclave a 121 OC. por 15
minutos. Dejar enfriar y guardar en refrigeración.
Caldo Lauryl Doble: Pesar 71 gr. y disolver con agitación en 1 litro de
agua destilada añadir 0,01 gr. de púrpura de bromocresol. Introducir 10
ml en cada tubo de ensayo y esterilizar en autoclave a 121 OC. por 15
minutos. Dejar enfriar y guardar en refrigeración.
Caldo EC: Disolver 35 gr. en 1 litro de agua destilada Introducir 10 ml en
cada tubo de ensayo y esterilizar en autoclave a 121 OC. por 15 minutos.
Dejar enfriar y guardar en refrigeración.
2.4.1.2 Procedimiento de análisis de las muestras18
Como control y para eliminar los falsos positivos, los medios de cultivo se
mantienen a 35OC por 24 horas antes de su utilización, cualquier tubo que
presente crecimiento es descartado.
• Muestras de agua sin Cloro: Agua cruda, sedimentada, filtrada.
Se siembran 15 tubos, en los 5 primeros colocar 10 ml de muestra en caldo
Lauryl sulfato doble, los 5 siguientes 1 ml de muestra en caldo Lauryl sulfato
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77
simple y en los 5 últimos 0,1 ml de muestra en caldo Lauryl sulfato simple
por 24/48 horas a 35OC. Los tubos positivos se pasan a caldo EC por 24
horas a 44,5 OC.
• Muestras de agua con Cloro: Agua tratada de las plantas y de la red de la
ciudad.
Se siembran 10 ml de muestra en 10 tubos de caldo lauril sulfato doble por
24/48 horas a 35OC. Los tubos positivos se pasan a caldo EC por 24 horas a
44,5 OC.
2.4.1.3 Lectura de tubos positivos18
• Coliformes Totales
Después de la incubación por 24 – 48 horas a 35 - 37 OC se observan los
tubos que han formado gas y/o han cambiado de pH y se toman como
positivos.
• Coliformes Termorresistentes
Los tubos positivos de Coli total se siembran en Caldo EC e incuban 24
horas a 44 - 45 OC en Baño Maria, se observa luego el crecimiento en los
tubos y/o presencia de gas, que serán reportados como positivos.
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78
Aguas con cloro sembradas 10 ml en cada uno de los 10 tubos
INDICE DE NMP/ 100 ml
10 TUBOS
x 10ml c/u
5 TUBOS
Código NMP Código NMP
0 < 1.1 0 <2.2
1 1.1 1 2.2
2 2.2 2 5.1
3 3.6 3 9.2
4 5.1 4 16
5 6.9 5 >16
6 9.2
7 12
8 16.1
9 23
10 > 23
Tabla 12. Índice NMP para combinaciones de 5 y 10 tubos por dilución (Programa de control de calidad de agua para consumo.)
Una combinación de tubos que no se encuentran en la tabla se calcula con
la siguiente formula:
2.4.2 FISICO QUIMICOS
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2.4.2 FISICO QUIMICOS18
2.4.2.1 Determinación del color18
Generalidades:
El color en el agua puede ser de origen vegetal o mineral, causada por
sustancias metálicas como hierro y magnesio, materias humitas, taninos,
algas o por residuos orgánicos o inorgánicos de industrias.
Fundamento:
El método de determinación se basa en la comparación con patrones platino
- cobalto y los resultados se expresan como unidades de Color UC.
Materiales y equipos
o Equipo HACH 2100AN.
o Filtro para lectura de Color de 455nm.
o Patrones para color de 0 UC y 100 UC.
Procedimiento:
1. Calibrar el equipo.
2. Insertar el filtro para color de 455nm.
3. Presionar en botón [Units/Exit] hasta que se observe en la pantalla
“CU”
4. Insertar el patrón de 0 UC en el porta celda.
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80
5. Presionar el botón [Calc/Zero]
6. Presionar [Enter] y esperar que aparezca en la pantalla “100 CU”
7. Colocar el patrón para color de 100 UC en el porta celda.
8. Presionar [Enter] y esperar que aparezca en la pantalla “100 CU”
9. Llenar la celda con la muestra de agua y taparla.
10. Introducir la celda en el equipo y cerrar la tapa del mismo.
11. Presionar [Enter] y realizar la lectura del color de la muestra.
Resultados e interpretación
Obtenidos los valores por el equipo se realizará la interpretación de los datos
de acuerdo a los límites de calidad establecidos por la Norma Técnica
Ecuatoriana 1108: 2006.
FIGURA 19. Colorímetro HACH 2100AN (Foto tomada por Autora)
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81
2.4.2.2 Determinación de la Turbiedad18
Generalidades
Es atribuida principalmente a partículas sólidas en suspensión que reducen
la transmisión de la luz.
Fundamento
Se basa en la comparación de la intensidad de la luz dispersa por una
suspensión patrón de referencia bajo condiciones definidas, con la
intensidad de luz dispersa por la muestra. La relación entre la intensidad de
la luz dispersada y la turbiedad es directa. Se emplea el método
nefelométrico.
Unidad de medida: (NTU) Unidad nefelométrica de turbidez.
Materiales y equipos
• Equipo Turbidímetro HACH 2100AN.
• Filtro para lectura de turbiedad
• Celda para lectura de la muestra
Procedimiento
Preparación del equipo:
• Encender el equipo
• Colocar el filtro para turbiedad en el porta filtros del equipo.
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82
• Presionar en botón [Units] hasta observar “NTU” en la pantalla
• Colocar la muestra de agua en la celda
• Introducir la celda en el porta celdas
• Cerrar la tapa
• Pulsar [Enter]
• Registrar como valor de turbiedad el primer valor que aparece en la
pantalla luego de haber pulsado el botón [Enter]
FIGURA 20. Turbidímetro HACH 2100AN (Foto tomada por Autora)
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83
2.4.2.3 Determinación del pH18
Generalidades
El pH de una solución es el logaritmo negativo de la concentración de iones
de hidrogeno.
Fundamento
Se determina electrónicamente con un electrodo en un sistema acuoso es la
medida del equilibrio ácido - base alcanzada por diversas sustancias
disueltas y en las aguas naturales está controlado por el equilibrio anhídrido
carbónico - bicarbonato. El pH, de la mayoría de aguas naturales está entre
6,5 y 8,5 puede alterarse durante el tratamiento de agua así la cloración,
floculación, tiende a disminuir el pH.
Materiales y equipos
Para la determinación del pH vamos a utilizar un pH-metro/modelo 301
Procedimiento
• Colocar el agua en un vaso recolector de muestra
• Introducir el electrodo del pH-metro en el vaso con la muestra
• Agitar suavemente y leer el valor donde se detenga la aguja indicadora
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Resultados e interpretación
Luego de obtener los valores en el pH-metro se analizarán conforme a lo
establecido por la Norma Técnica Ecuatoriana 1108: 2006.
FIGURA 21. pH-metro/modelo 301 (foto tomada por autora)
2.4.2.4 Alcalinidad18
Generalidades
Es la capacidad que tiene el agua para neutralizar un acido a determinado
pH, en función a los carbonatos, bicarbonatos e hidróxidos.
Materiales y Reactivos
• Bureta de 50 cc
• Erlenmeyer de 250 cc
• Pipetas volumétricas de 10 cc
• Indicador naranja de metilo
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• Indicador fenoftaleína
Procedimiento
Alcalinidad Total
• Medir 100 cc de agua y colocar en el erlenmeyer
• Adicionar 3 gotas de indicador naranja de metilo
• Titular frente a HCL 0,02N
Cálculos
Alcalinidad Total en mg/l como CaCo3 = cc de acido * N * K * Eq CaCo3*1000 Volumen de muestra
Alcalinidad Total mg/l = 10,4cc de acido * 0,02N * 0,5 * 100 Eq*1000
100 ml
Alcalinidad Total = 104 mg/l
FIGURA 22. Izquierda, muestra antes titulación (Foto tomada por autora)
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86
2.4.2.5 Dureza Total18
Generalidades
Es una medida de los iones metálicos polivalentes, los principales iones son
el calcio y magnesio, entre otros. Se mide con un agente quelante como el
EDTA y se expresa como una cantidad equivalente de CaCO3.
Método del EDTA
Fundamento
El EDTA forma un quelato complejo soluble con ciertos metales como el
Calcio y magnesio, se añade indicador (negro de ericromo) toma un color
rojo, al añadir EDTA los iones calcio y magnesio forman un complejo
estable, y cuando todo el metal esta dentro del complejo, la solución cambia
a azul.
Materiales
• Bureta de 50 cc
• Erlenmeyer de 250 cc
• Pipetas volumétricas de 10 cc
Reactivos
• Solución buffer: Disolver 16,9gr de cloruro de amonio concentrado +
0,644 gr. de cloruro de magnesio.6H2O en 50 cc de agua.
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Mantener el buffer tapado herméticamente para evitar perdidas de
NH3 o captura de CO2.
• Indicador negro de ericromo: Mezclar 0,25 del indicador y 50 gr. de
cloruro de sodio, reducir la mezcla hasta polvo fino y uniforme en un
mortero.
• Solución estándar de EDTA 0,02 N: Pesar 3,723 gr. de EDTA – sal
disódica disolver y aforar a 1000 cc con agua destilada.
• Solución estándar de Calcio: Pesar 1000mg de CaCO3 anhídrido,
añadir gota a gota HCL, hasta que se disuelva completamente, añadir
200cc de agua y hervir durante unos minutos para eliminar el CO2,
enfriar y añadir unas gotas de naranja de metilo y ajustar al color de
viraje con hidróxido de amonio o HCL diluidos según se requiera.
Aforar a 1000 cc = 1000 mg de CaCO3.
Cálculos de la constante del EDTA con 0,02 N
Medir 10 cc de solución de CaCO3. Añadir 2 cc de buffer, unas gotas de
indicador, y virar desde la bureta con EDTA 0,02N
K= cc de solución de CaCO3 / cc de solución de EDTA = 10/cc de
solución de EDTA
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88
Procedimiento
• Tomar un volumen de 100 ml de muestra y colocarla en un
erlenmeyer.
• Añadir 1 cc de buffer.
• Añadir una cantidad adecuada de indicador.
• Mediante agitación añadir desde una bureta EDTA hasta obtener una
coloración azul.
Cálculo
Dureza Total en mg/l como CaCO3 = (cc de EDTA * N * K * Eq CaCO3*1000)
cc de muestra
Dureza Total = 8,8cc de EDTA * 0,02* 0,5 * 100Eq *1000)
100 ml
Dureza Total = 88 mg/l
2.4.2.6 Dureza Cálcica18
Método del EDTA
Fundamento
El calcio es determinado directamente con EDTA, cuando el pH es elevado,
el magnesio precipita como hidróxido y el indicador usado – murexida, se
combina solo con el calcio.
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Reactivos
• Solución de hidróxido de sodio 1 N: Disolver 4 gr. de NaOH y aforar a
100 cc con agua destilada
• Indicador MUREXIDA: Pesar 0,1gr de murexida y 50 gr. de NaCl
reducir la mezcla a polvo fino y homogéneo en un mortero. Proteger
de la luz. Cambia de color rosado a púrpura.
• Solución estándar de EDTA 0,02N: La misma solución preparada para
dureza total.
Procedimiento
• Colocar 100 cc de muestra de agua en un erlenmeyer
• Añadir 1 cc de NaOH 1N, y una cantidad adecuada de indicador
• Mediante agitación añadir desde una bureta EDTA gota a gota hasta
obtener un cambio de color de rosado a púrpura.
Cálculo
Dureza Cálcica en mg/l como CaCO3 = (cc de EDTA *N*K*Eq CaCO3*1000)
cc de muestra
Dureza Cálcica = 7,4cc de EDTA * 0,02* 0,5 * 100Eq *1000) = 74 mg/l 100 ml
Para expresar la Dureza Cálcica como mg/l de Calcio: multiplicar los mg/l de
dureza Cálcica por 0,40.
Calcio = 29,6 mg/l
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90
2.4.2.7 Dureza Magnésica18 Cálculo
Dureza magnésica en mg/l como CaCO3 = mg/l CaCO3 Dureza Total – mg/l
CaCO3 Dureza Cálcica
Para expresar la Dureza Magnésica como mg/l de MAGNESIO: multiplicar
los mg/l de dureza Magnésica por 0,243
Dureza Magnésica = 88 mg/l – 74 mg/l = 14 mg/l Mg = 3,402 mg/l 2.4.2.8 Acidez Total18
Generalidades
Es la capacidad que tiene el agua para neutralizar las bases. Su
determinación depende del punto final de pH o del indicador usado
Materiales y Reactivos
• Bureta de 50 cc
• Probeta
• Erlenmeyer de 250 cc
• Solución de hidróxido de sodio 0.02N
• Indicador de fenolftaleína
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– Solución de hidróxido de sodio 0.02N: Pesar 0.8gr de NaOH y diluir a
un litro de agua destilada.
Cálculo de la constante del NaOH 0.02N
Tomar por duplicado 10 cc de acido sulfúrico 0.02 N añadir tres gotas de
fenolftaleína y virar desde la bureta con NaOH 0.02 N, hasta que persista el
color rosado por 30 segundos.
V*K*N = V1* K1*N1
Acido NaOH
Procedimiento
• Medir 50 cc de muestra
• Agregar 3 gotas de fenolftaleína
• Agregar la sosa desde la bureta hasta obtener una coloración rosada
• Añadir hasta que persista el color rosado por 30 segundos.
Cálculo
Acidez en mg/l como CaCO3 = (cc de NaOH*N*K* Eq CaCO3 *1000) cc de muestra
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Acidez en mg/l como CaCO3 = 0,3 cc de NaOH*0,02N *0,5 *100Eq *1000) 50 cc
Acidez = 6 mg/l como CaCO3
2.4.2.9 Conductividad18
Generalidades
Es la capacidad que tiene el agua debido a las sales disueltas de conducir la
corriente eléctrica. La misma que depende de la concentración total de todas
las sustancias disueltas ionizadas en el agua y de la temperatura de medida.
La medida no es valida cuando el pH es superior a 9.0 o inferior a 6.0
Aplicaciones de su medida
Da buen criterio del grado de mineralización expresada como sólidos
disueltos totales
Pureza del agua destilada, desmineralizada
Estima el tamaño de muestra para análisis químicos
Materiales y Equipos
• Conductímetro HACH - CONDUCTIVITY/ TDS METER
• Vaso recolector de muestra de agua.
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93
Procedimiento
• Colocar 200ml de agua en un vaso recolector de muestra
• Introducir el electrodo del conductímetro dentro del vaso
• Agitar el electrodo suavemente.
• Anotar la lectura de la conductividad de la muestra, una vez que la
muestra se haya estabilizado.
Reportar el valor de la conductividad en �s/cm
FIGURA 23. HACH - CONDUCTIVITY/ TDS METER (Foto tomada por autora)
2.4.2.10 Sólidos Disueltos Totales18
Generalidades
Los SDT en el agua comprenden sales inorgánicas y materia orgánica,
principalmente iones de carbonatos, bicarbonatos, cloruros, entre otros.
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94
Materiales – Equipos
• Igual al empleado y realizado en el análisis de Conductividad, es decir
el equipo: Conductímetro HACH - CONDUCTIVITY/ TDS METER
• Vaso recolector de muestra de agua.
Procedimiento
• Colocar 200ml de agua en un vaso recolector de muestra
• Introducir el electrodo del conductímetro dentro del vaso
• Agitar el electrodo suavemente.
• Anotar la lectura de la conductividad de la muestra, una vez que la
muestra se haya estabilizado.
Reportar el valor de Sólidos Disueltos en mg/l.
2.4.2.11 Cloruros
Fundamento
El ion cloruro es uno de los aniones inorgánicos principales en el agua
natural, debido a su elevado contenido puede dañar las conducciones y
estructuras metálicas. Habitualmente el agua de uso domestico tiene mas
contenido de cloruros que el agua potable.
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95
Método Argentométrico
En solución neutra o alcalina, el cromato potásico indica el punto final de la
filtración de cloruros con nitrato de plata.
Materiales y reactivos
• Bureta de 50 cc
• Probeta
• Erlenmeyer de 250 cc
• Solución indicadora de cromato de potasio
• Solución titulante de nitrato de plata 0.0141N
Procedimiento
• Solución estándar de nitrato de plata 0.014N.- Medir por duplicado 10
cc de solución de cloruro de sodio en un erlenmeyer, añadir
aproximadamente 40 cc de agua destilada, 0,1 cc de NaOH 1N, 1cc
de indicador de cromato de potasio, y añadir desde la bureta el nitrato
de plata hasta viraje en un punto final amarillo rojizo.
Constante de K del nitrato de plata 0.0141N =. 10 cc . Volumen de nitrato de plata utilizado
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96
• Titulación de las muestras: Medir 100 cc de muestra en un
erlenmeyer, añadir 1 cc de indicador de cromato de potasio y titular
con la solución de nitrato de plata hasta viraje a amarillo rojizo.
Cálculos:
mg/l de cloruros = (cc Ag NO3 consumidos– 0.5 del blanco)*N*K*Eq Cl * 1000 100 ml
mg/l de cloruros = (2,1cc Ag NO3 – 0.5)*0,014N*1*35,45Eq Cl * 1000 100 ml
Cloruros = 7,94 mg/l
2.4.2.12 Cloro Residual18
Fundamento
El cloro es utilizado para destruir o desactivar microorganismos que
ocasionarían enfermedades, reacciona con amoniaco, hierro, manganeso,
sulfuros, y sustancias orgánicas.
Materiales y equipos
• Comparador de Cloro.
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97
• Ortotolidina al 0,1% como reactivo
• Tubo de ensayo
Procedimiento
• El control no precisa de una determinación química exacta, así
que un comparador de cloro con Ortotolidina es suficiente.
• Se realiza en el lugar y momento del muestreo, por la falta de
estabilidad del cloro residual no es estable ya que disminuye
rápidamente su concentración por la exposición a la luz o por
agitación.
• Colocar la muestra de agua en un tubo de vidrio que contiene de 1
a 2 gotas de Ortotolidina 0,1%.
• Colocar en el comparador de cloro y leer por comparación de color
Resultados e interpretación
• Mediante valoración visual colorimétrica se determina el valor de
cloro residual presente en la muestra de agua expresado en mg/l.
.
FIGURA 24.- EQUIPO HACH - Comparador de Cloro (Foto tomada por autora)
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98
Capitulo 3
3.- ANALISIS DE RESULTADOS
Los resultados se presentan en tablas de datos obtenidos durante el análisis
de las etapas de potabilización, dichas tablas contienen resultados de
análisis microbiológicos como son: análisis de coliformes totales y
termorresistentes mediante la técnica de los Tubos Múltiples y Número Más
Probable (NMP); Así mismo se realizaron tablas con datos de análisis
fisicoquímico, dentro de las pruebas efectuadas están: turbiedad, color, pH,
conductividad, sólidos disueltos. Dichas tablas están indicadas como Anexo.
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99
ANALISIS FISICO DEL AGUA DE ENTRADA DE LA PLANTA DE UCHUPUCUN - AZOGUES
FECHA PH TºC CND- �s/cm
STD- mg/l
Alc- mg/l
DT- mg/l
Dca- mg/l
Dmag- mg/l
Ca- mg/l
Mg- mg/l
Cl-mg/l NTU
Color -UC Acidez
09/11/2009 7,5 13,1 188 94 83 77 55 22 22 5,346 4,46 5,47 36 2
10/11/2009 7,8 14,2 236 120 104 96 70 26 28 6,318 7,94 4,92 35 4
12/11/2009 7,8 13,9 249 124,7 114 97 61 36 24,4 8,748 7,94
3,750 23 4
13/11/2009 7,8 13,6 223 112 112 93 61 32 24,4 7,776 4,96
3,970 26 4
16/11/2009 7,7 12,8 238 119 116 96 75 21 30 5,103 6,49
6,580 4 4
17/11/2009 7,7 13,8 240 120 111 96 76 20 30,4 4,860 6,49 6,79 44 4
18/11/2009 7,7 13,6 208 104 105 86 63 23 25,2 5,589 5,45 13,2 86 4
19/11/2009 7,6 13,1 208 104 112 90 67 23 26,8 5,589 7,44 7,61 50 4
20/11/2009 7,6 13,2 234 117 112 94 78 16 31,2 3,888 7,44 5,98 39 4
23/11/2009 7,5 14,1 252 126 110 100 76 24 30,4 5,832 6,49 6,8 43 4
24/11/2009 7,6 13,6 256 128 109 99 79 20 31,6 4,860 4,96 6,72 44 4
25/11/200 7,5 12,4 258 129 114 100 78 22 31,2 5,346 8,47 7,96 52 4
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100
9 26/11/200
9 7,6 13,9 246 122,6 108 96 68 28 27,2 6,804 8,47 6,74 46 2 30/11/200
9 7,7 14,3 233 116 100 85 70 15 28 3,645 4,96 6,38 41 4 01/12/200
9 7,7 13,8 247 123 112 98 72 26 28,8 6,318 5,45 7,75 41 4 TABLA 13. Datos obtenidos en el análisis físico-químico
(Tabla elaborada por autora)
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101
TABLA 14. DATOS OBTENIDOS EN EL ANÁLISIS FÍSICO-QUÍMICO DEL AGUA EN SEDIMENTADORES Y FILTROS
Sedimentador 1
FECHA TºC CND- �s/cm STD- mg/l NTU
Color –UC
09/11/2009 12 234 117 1,51 1 10/11/2009 13,1 248 124 1,60 1 13/11/2009 13,8 239 120 2,87 2 19/11/2009 12,2 258 130 1,94 1 25/11/2009 13,7 254 126 2,01 0 Sedimentador 2
FECHA TºC CND- �s/cm STD- mg/l NTU
Color –UC
09/11/2009 12 236 118 1,62 0 10/11/2009 13,4 246 123 2,48 2 17/11/2009 12,8 232 120 1,89 1 19/11/2009 12,2 256 128 2,04 2 26/11/2009 13,8 252 125 1,96 0 Sedimentador 3
FECHA TºC CND- �s/cm STD- mg/l NTU
Color –UC
09/11/2009 11,5 236 118 1,300 1 12/11/2009 14,4 252 126,5 3,080 2 18/11/2009 13,4 224 112 1,72 1 24/11/2009 13,1 260 129 1,98 1 26/11/2009 13,8 254 127 1,11 0 Sedimentador 4
FECHA TºC CND- �s/cm STD- mg/l NTU
Color –UC
09/11/2009 11,3 238 118,8 1,360 1 12/11/2009 14,4 255 127 2,890 2 18/11/2009 13,3 223 114 1,46 1 24/11/2009 13,1 256 128 1,76 2 30/11/2009 13,8 236 118 1,98 1
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102
Filtro 1
FECHA TºC CND- �s/cm STD- mg/l NTU Color –UC
09/11/2009 11,3 234 117 0,416 0 10/11/2009 13,4 246 123 0,387 0 16/11/2009 12,8 254 127 0,403 0 24/11/2009 13,1 257 129 0,364 0 Filtro 2
FECHA TºC CND- �s/cm STD- mg/l NTU Color –UC
09/11/2009 10,8 234 117 0,429 0 10/11/2009 13,4 244 121 0,370 0 17/11/2009 12,7 240 122 0,367 0 24/11/2009 13,1 255 126 0,371 0 Filtro 3
FECHA TºC CND- �s/cm STD- mg/l NTU Color -UC
09/11/2009 11,1 234 117 0,424 0 12/11/2009 13,6 252 125 0,562 0 18/11/2009 12,4 228 113 0,298 0 30/11/2009 12,6 236 116 0,291 0 Filtro 4
FECHA TºC CND- �s/cm STD- mg/l NTU Color -UC
09/11/2009 10,8 248 123 0,409 0 12/11/2009 13,5 255 127 0,545 0 18/11/2009 12,4 227 113 0,294 0 24/11/2009 13,1 234 117 0,346 0 Filtro 5
FECHA TºC CND- �s/cm STD- mg/l NTU Color -UC
09/11/2009 10,8 236 117 0,425 0 13/11/2009 12,6 244 121 0,516 0 19/11/2009 11,9 250 124 0,328 0 20/11/2009 12,9 238 120 0,278 0 Filtro 6
FECHA TºC CND- �s/cm STD- mg/l NTU Color –UC
09/11/2009 10,9 250 125,1 0,414 0 16/11/2009 12,4 256 127,1 0,386 0 19/11/2009 11,8 234 116,6 0,392 0 24/11/2009 13,1 236 118 0,346 0
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ANALISIS FISICO DEL AGUA TRATADA – TANQUE DE ALMACENAMIENTO UCHUPUCÚN
FECHA PH TºC CND- Us/cm
STD- mg/l
Alc- mg/l
DT- mg/l
Dca- mg/l
Dmag- mg/l
Ca- mg/l
Mg- mg/l
Cl-mg/l NTU
Color -UC Acidez
09/11/2009 7,3 12 196 98 80 75 53 22 21,2 5,346 4,96 0,407 0 4 10/11/2009 7,5 12,8 240 116,3 100 94 72 22 28,8 5,346 8,43 0,365 0 6 12/11/2009 7,4 13,6 255 127,4 100 92 61 31 24,4 7,533 8,43 0,545 0 6 13/11/2009 7,5 12,6 235 116 104 88 67 21 26,8 5,103 5,95 0,736 0 6 16/11/2009 7,5 12,2 254 128 118 93 73 20 29,2 4,860 4,96 0,381 0 6 17/11/2009 7,4 12,8 258 126 104 93 74 19 29,6 4,617 7,44 0,456 0 6 18/11/2009 7,4 12,9 228 113 100 84 61 23 24,4 5,589 8,43 0,382 0 6 19/11/2009 7,4 12,3 234 117 105 86 66 20 26,4 4,860 9,42 0,384 0 6 20/11/2009 7,3 13,1 236 118 105 92 77 15 30,8 3,645 7,99 0,252 0 6 23/11/2009 7,3 12,8 256 126,8 104 98 72 26 28,8 6,318 8,43 0,319 0 6 24/11/2009 7,3 13,1 258 128,4 100 98 76 22 30,4 5,346 8,43 0,341 0 6 25/11/2009 7,3 12,1 264 133 105 98 76 22 30,4 5,346 8,43 0,34 0 4 26/11/2009 7,4 13,2 252 125,9 102 94 66 28 26,4 6,804 5,95 0,318 0 6 30/11/2009 7,5 13,9 238 118 92 84 70 14 28 3,402 6,49 0,284 0 6 01/12/2009 7,4 13,6 250 125 105 96 71 25 28,4 6,075 6,49 0,346 0 6
TABLA 15. Datos obtenidos en el análisis físico-químico del agua tratada - tanque de almacenamiento Uchupucún (Tabla elaborada por autora)
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104
ANALISIS FISICO- QUIMICO DE LAS REDES DOMICILIARIAS
FECHA Muestra PH TºC CND- Us/cm
STD- mg/l
Alc- mg/l
DT- mg/l
Dca- mg/l
Dmag- mg/l
Ca- mg/l
Mg- mg/l
Cl-mg/l FTU
Color -UC Acidez
18/11/2009 1 7,4 16,3 197,6 98,9 85 68 48 20 19,2 4,860 6,99 0,707 0 6 18/11/2009 2 7,6 16,5 210 104,9 88 75 55 20 22 4,860 7,49 0,794 0 6 18/11/2009 3 7,4 16,8 200 102,5 88 72 52 20 20,8 4,860 8,43 0,684 0 4 18/11/2009 4 7,4 17,1 198,3 99,1 90 70 52 18 20,8 4,374 5,95 0,733 0 6 18/11/2009 5 7,5 17,4 200 103,3 90 73 52 21 20,8 5,103 7,44 0,728 0 4 18/11/2009 6 7,5 17,5 199,5 99,8 90 66 49 17 19,6 4,131 7,99 0,641 0 4 18/11/2009 7 7,5 17,5 194 97 84 66 54 12 21,6 2,916 6,49 0,611 0 6 18/11/2009 8 7,6 17,4 193 96,6 84 68 47 21 18,8 5,103 7,99 0,512 0 4 18/11/2009 9 7,6 17,4 195,5 97,8 82 68 47 21 18,8 5,103 7,44 0,565 0 4 18/11/2009 10 7,6 17,5 196,8 98,4 85 68 47 21 18,8 5,103 6,49 0,501 0 4 18/11/2009 11 7,5 17,4 191,2 95,8 81 69 46 23 18,4 5,589 8,43 0,790 0 4 18/11/2009 12 7,4 17 190,5 95,3 82 67 47 20 18,8 4,860 7,99 0,531 0 4 23/11/2009 13 7,4 17,7 194,1 97 80 80 56 24 22,4 5,832 3,97 0,941 0 6 23/11/2009 14 7,3 17,6 194,1 97 81 79 55 24 22 5,832 3,97 0,731 0 6 23/11/2009 15 7,3 17,1 185,7 92,9 79 79 54 25 21,6 6,075 3,97 0,824 0 6 23/11/2009 16 7,3 17,6 205 102 83 80 55 25 22 6,075 3,47 0,763 0 6 23/11/2009 17 7,4 18,1 201 10 82 80 52 28 20,8 6,804 4,96 0,719 0 4 23/11/2009 18 7,4 18 204 102 83 79 50 29 20 7,047 4,96 0,819 0 6 23/11/2009 19 7,3 17,6 206 103 82 81 54 27 21,6 6,561 3,97 0,781 0 4 23/11/2009 20 7,1 17,5 159 79 65 76 46 30 18,4 7,290 3,47 0,847 0 4 23/11/2009 21 7,3 17,9 190 94 82 79 53 26 21,2 6,318 4,96 0,606 0 6 23/11/2009 22 7,3 16,8 191 95 80 80 54 26 21,6 6,318 4,96 0,742 0 4 26/11/2009 23 7,1 19 199,3 99,7 78 75 54 21 21,6 5,103 8,93 0,930 0 6 26/11/2009 24 7,1 18,9 210 105 80 78 59 19 23,6 4,617 8,93 0,839 0 6 26/11/2009 25 7,2 18,6 209 104 82 78 59 19 23,6 4,617 8,93 0,930 0 4
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
105
26/11/2009 26 7,1 17,8 210 105 84 80 56 24 22,4 5,832 9,42 0,830 0 4 26/11/2009 27 7,2 17,9 208 104 82 79 56 23 22,4 5,589 9,42 0,730 0 4 26/11/2009 28 7,1 18,2 207 103 84 78 55 23 22 5,589 8,93 0,650 0 4 26/11/2009 29 7,2 17,8 208 104 84 82 54 28 21,6 6,804 9,42 0,416 0 4 26/11/2009 30 7,1 17,6 215 105 85 80 56 24 22,4 5,832 8,43 0,518 0 6
TABLA 16. Datos obtenidos en el análisis físico-químico del agua tratada – redes domiciliarias
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
106
REDES DOMICILIARIAS
Numero Muestra Numero Muestra
1 Borrero Charasol - flia N.N 16 Calle Macas - Sr. Raúl Abad
2 Borrero Charasol - flia Ruiz Saquisili 17
Calle Macas - Sr. Cristóbal León
3 Banco de la Vivienda - Dr. Pesantez 18
Calle Luis González - Dr. Mazzilli
4 Banco de la vivienda - flia N.N. 19
Gimnasio Iván Castanier
5 Av. Che Guevara - Terminal Terrestre 20
Chacapamba – Flia N.N.
6 Funeraria San Marcos 21 Panamericana Norte - Flia. N.N.
7 Emilio Abad - Comedor Municipal 22 Sr. Absalon Avila
8 Luis Cordero - Asadero Texas 23
Calle Fco. Carrasco - flia Carangui
9 Luis Cordero - Farmacia San Martín 2 24
Calle Fco. Carrasco - flia Peñafiel
10 Bolivar y Azuay - Los Picantes 25 Cdla. Flores – Flia N.N.
11 Calle Vintimilla - flia. Calvo Campoverde 26
Av. 24 de Mayo - Carpas Idrovo
12 Colegio Luis Cordero 27 Banco de la Vivienda - Flia Espinoza
13 Calle Bolivar y Azuay - Pollo Broster 28
Borrero Charasol – flia N.N.
14 Calle Luis Cordero - Centro de Rayos X 29
Av. Che Guevara - Terminal Terrestre
15 Calle 4 de noviembre - Recinto Ferial 30
Av. Ignacio Neira – Free Karaoque
TABLA 17. Nombres de los lugares de muestreos en la ciudad (Tabla elaborada por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
107
3.1 RESULTADOS
3.1.1 TANQUE DE FLOCULACION 1
Cálculos:
P = peso del trazador por añadir al reactor, kg
V= volumen útil del reactor, m3.
K = constante de corrección.
Co = concentración, mg/l o g/m3
I = grado de pureza del trazador, fracción de la unidad.
V= 72,31 m3.
K=1,65.
Co= 40mg/l.
I= 90%.
103 = para obtener las unidades en kilogramos.
P= 5,30 kg
Hacer una dilución del trazador para que represente el 20%, para esto
diluimos hasta 26,5 litros de agua.
P = V x K x Co I x 103
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
108
to = Tiempo teórico de retención
V = 72,31 m3
Q = 67 l/s
to = 72,31 m3 = 1079.25 segundos 0.067 m3/s
to = Tiempo teórico de retención = 1079.25 segundos = 17.99 minutos
t = Tiempo medio de retención = 1200 segundos = 20 minutos
t f = Tiempo final transcurrido = 2520 segundos = 42 minutos
ca = conductividad del agua cruda = 241 �s/cm
c = Conductividad obtenida durante la prueba = 1190 �s/cm
Q = Caudal del agua de entrada (l/s) = 67 l/s
c-ca = conductividad obtenida durante la prueba – conductividad de agua
cruda
tf/t = tiempo final transcurrido - tiempo medio de retención
to = V Q
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
109
tiempo (minutos)
tiempo (segundos)
Conductividad - �s/cm c-ca tf/t
0 0 242 0,3 30 242 1 0,025 1 60 242 1 0,050
1,3 90 242 1 0,075 2 120 243 2 0,100
2,3 150 243 2 0,125 3 180 243 2 0,150
3,3 210 243 2 0,175 4 240 244 3 0,200
4,3 270 244 3 0,225 5 300 244 3 0,250
5,3 330 244 3 0,275 6 360 245 4 0,300
6,3 390 245 4 0,325 7 420 245 4 0,350
7,3 450 245 4 0,375 8 480 245 4 0,400
8,3 510 246 5 0,425 9 540 246 5 0,450
7,3 570 246 5 0,475 10 600 247 6 0,500
10,3 630 247 6 0,525 11 660 248 7 0,550
11,3 690 248 7 0,575 12 720 249 8 0,600
12,3 750 250 9 0,625 13 780 251 10 0,650
13,3 810 251 10 0,675 14 840 252 11 0,700
14,3 870 252 11 0,725 15 900 253 12 0,750
15,3 930 253 12 0,775 16 960 254 13 0,800
16,3 990 255 14 0,825 17 1020 256 15 0,850
17,3 1050 301 60 0,875 18 1080 389 148 0,900
18,3 1110 617 376 0,925 19 1140 878 637 0,950
19,3 1170 1100 859 0,975 20 1200 1190 949 1,000
20,3 1230 1071 830 1,025 21 1260 892 651 1,050
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
110
21,3 1290 556 315 1,075 22 1320 464 223 1,100
22,3 1350 350 109 1,125 23 1380 305 64 1,150
23,3 1410 277 36 1,175 24 1440 268 27 1,200
24,3 1470 263 22 1,225 25 1500 261 20 1,250
25,3 1530 259 18 1,275 26 1560 258 17 1,300
26,3 1590 258 17 1,325 27 1620 257 16 1,350
27,3 1650 257 16 1,375 28 1680 257 16 1,400
28,3 1710 256 15 1,425 29 1740 256 15 1,450
29,3 1770 256 15 1,475 30 1800 255 14 1,500
30,3 1830 255 14 1,525 31 1860 255 14 1,550
31,3 1890 255 14 1,575 32 1920 254 13 1,600
32,3 1950 254 13 1,625 33 1980 253 12 1,650
33,3 2010 253 12 1,675 34 2040 252 11 1,700
34,3 2070 251 10 1,725 35 2100 250 9 1,750
35,3 2130 248 7 1,775 36 2160 247 6 1,800
36,3 2190 246 5 1,825 37 2220 247 6 1,850
37,3 2250 246 5 1,875 38 2280 245 4 1,900
38,3 2310 245 4 1,925 39 2340 245 4 1,950
39,3 2370 245 4 1,975 40 2400 245 4 2,000
40,3 2430 245 4 2,025 41 2460 245 4 2,050
41,3 2490 245 4 2,075 42 2520 245 4 2,100
TABLA 18. Datos obtenidos en la Prueba con Trazadores (Tabla elaborada por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
111
0
100
200
300
400
500
600
700
800
900
1000
0,024390244 0,268292683
tf/t
c-ca c-ca
GRAFICO 3. En la Figura, se indica la variación de la conductividad en la
salida de la primera etapa de unidad de floculación (c – ca) en función de la
relación tf/t, siendo ca la conductividad en el agua cruda, t es el tiempo
transcurrido después de la introducción de trazador y t el tiempo medio de
detención.
(Realizado por autora)
A partir de ésta figura, se construye otra donde se representan en las
abscisas “tf/t” y en las ordenadas “1-f(t)”, lo que hallamos a partir del
siguiente gráfico es la fracción remanente (concentraciones, o
indirectamente conductividad), del trazador en el tiempo en el que se realiza
el ensayo, entonces estaríamos evaluando las condiciones hidrodinámicas
de la unidad. Se realiza a partir de la determinación de la sumatoria de las
fracciones remanentes del trazador, utilizándose la ecuación (1).
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
112
La construcción de la gráfica siguiente se la realiza mediante la relación de
Áreas en la gráfica anterior, los datos se presentan a continuación:
tiempo (minuto
s)
tiempo (segundo
s) Conductividad – �s/cm tf/t c-ca
Área parcial
Área acumula
da 1-f(t) 0,3 30 242 0,025 1 0,025 0,025 0,99981 60 242 0,05 1 0,025 0,05 0,9997
1,3 90 242 0,075 1 0,025 0,075 0,99952 120 242 0,1 1 0,0375 0,1125 0,9992
2,3 150 243 0,125 2 0,05 0,1625 0,99893 180 243 0,15 2 0,05 0,2125 0,9986
3,3 210 243 0,175 2 0,05 0,2625 0,99824 240 243 0,2 2 0,0625 0,325 0,9978
4,3 270 244 0,225 3 0,075 0,4 0,99735 300 244 0,25 3 0,075 0,475 0,9968
5,3 330 244 0,275 3 0,075 0,55 0,99636 360 244 0,3 3 0,0875 0,6375 0,9957
6,3 390 245 0,325 4 0,1 0,7375 0,9957 420 245 0,35 4 0,1 0,8375 0,9943
7,3 450 245 0,375 4 0,1 0,9375 0,99368 480 245 0,4 4 0,1 1,0375 0,9929
8,3 510 245 0,425 4 0,1125 1,15 0,99229 540 246 0,45 5 0,125 1,275 0,9913
7,3 570 246 0,475 5 0,125 1,4 0,990510 600 246 0,5 5 0,1375 1,5375 0,9895
10,3 630 247 0,525 6 0,15 1,6875 0,988511 660 247 0,55 6 0,1625 1,85 0,9874
11,3 690 248 0,575 7 0,175 2,025 0,986212 720 248 0,6 7 0,1875 2,2125 0,9849
12,3 750 249 0,625 8 0,2125 2,425 0,983513 780 250 0,65 9 0,2375 2,6625 0,9819
13,3 810 251 0,675 10 0,25 2,9125 0,980214 840 251 0,7 10 0,2625 3,175 0,9784
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
113
14,3 870 252 0,725 11 0,275 3,45 0,976515 900 252 0,75 11 0,2875 3,7375 0,9746
15,3 930 253 0,775 12 0,3 4,0375 0,972516 960 253 0,8 12 0,3125 4,35 0,9704
16,3 990 254 0,825 13 0,3375 4,6875 0,968117 1020 255 0,85 14 0,3625 5,05 0,9656
17,3 1050 256 0,875 15 0,9375 5,9875 0,959218 1080 301 0,9 60 2,6 8,5875 0,9415
18,3 1110 389 0,925 148 6,55 15,1375 0,8969
19 1140 617
0,95 37612,662
5 27,8 0,810719,3 1170 878 0,975 637 18,7 46,5 0,683420 1200 1100 1 859 22,6 69,1 0,5296
20,3 1230 1190
1,025 94922,237
5 91,3375 0,3782
21 1260 1071
1,05 83018,512
5 109,85 0,252121,3 1290 892 1,075 651 12,075 121,925 0,169922 1320 556 1,1 315 6,725 128,65 0,1242
22,3 1350 464 1,125 223 4,15 132,8 0,095923 1380 350 1,15 109 2,1625 134,9625 0,0812
23,3 1410 305 1,175 64 1,25 136,2125 0,072724 1440 277 1,2 36 0,7875 137 0,0673
24,3 1470 268 1,225 27 0,6125 137,6125 0,063125 1500 263 1,25 22 0,525 138,1375 0,0596
25,3 1530 261 1,275 20 0,475 138,6125 0,056326 1560 259 1,3 18 0,4375 139,05 0,0534
26,3 1590 258 1,325 17 0,425 139,475 0,050527 1620 258 1,35 17 0,4125 139,8875 0,0477
27,3 1650 257 1,375 16 0,4 140,2875 0,044928 1680 257 1,4 16 0,4 140,6875 0,0422
28,3 1710 257 1,425 16 0,3875 141,075 0,039629 1740 256 1,45 15 0,375 141,45 0,037
29,3 1770 256 1,475 15 0,375 141,825 0,034530 1800 256 1,5 15 0,3625 142,1875 0,032
30,3 1830 255 1,525 14 0,35 142,5375 0,029631 1860 255 1,55 14 0,35 142,8875 0,0272
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
114
31,3 1890 255 1,575 14 0,35 143,2375 0,024832 1920 255 1,6 14 0,3375 143,575 0,0226
32,3 1950 254 1,625 13 0,325 143,9 0,020333 1980 254 1,65 13 0,3125 144,2125 0,0182
33,3 2010 253 1,675 12 0,3 144,5125 0,016234 2040 253 1,7 12 0,2875 144,8 0,0142
34,3 2070 252 1,725 11 0,2625 145,0625 0,012435 2100 251 1,75 10 0,2375 145,3 0,0108
35,3 2130 250 1,775 9 0,2 145,5 0,009436 2160 248 1,8 7 0,1625 145,6625 0,0083
36,3 2190 247 1,825 6 0,1375 145,8 0,007437 2220 246 1,85 5 0,1375 145,9375 0,0065
37,3 2250 247 1,875 6 0,1375 146,075 0,005538 2280 246 1,9 5 0,1125 146,1875 0,0048
38,3 2310 245 1,925 4 0,1 146,2875 0,004139 2340 245 1,95 4 0,1 146,3875 0,0034
39,3 2370 245 1,975 4 0,1 146,4875 0,002740 2400 245 2 4 0,1 146,5875 0,002
40,3 2430 245 2,025 4 0,1 146,6875 0,001441 2460 245 2,05 4 0,1 146,7875 0,0007
41,3 2490 245 2,075 4 0,1 146,8875 042 2520 245 2,1 4
TABLA 19. Datos obtenidos para conseguir las fracciones de flujo (Tabla elaborada por autora)
Obtenido el gráfico procedemos a prolongar la recta hasta obtener el valor
de 1 - F(t), para el cual, tf/t es igual a cero, y se determina tg α.
Luego se obtiene la recta más aproximada y las intersecciones “tf/t=0” y “1-
f(t)=1”, y resulta:
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
115
TANQUE DE FLOCULACION 1
0,01
0,1
1
10
0,80 0,85 0,90 0,95 1,00 1,05 1,10 1,15 1,20
tf/t
1-f(
t)
GRAFICO 4. Prueba de Trazadores en Tanque de floculación 1
(Realizado por autora)
Para 1 - F(t)=1 de la recta trazada, resulta p(1-m). Por medio de la ecuación
2 son estimadas las fracciones de los tipos de flujo.
(2)
Donde,
p(1-m) : Fracción del flujo de tipo pistón;
(1-p) (1-m): Fracción del flujo del tipo mezcla completa;
m: Fracción correspondiente a zonas muertas.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
116
Y a partir de la gráfica se tiene:
tg �= 1.000.000
p(1-m)= 0.93
Y utilizando la ecuación (2), se hallan el resto de parámetros:
Por lo que se obtienen las fracciones de flujo:
• Fracción de flujo pistón= 93%
• Fracción de flujo de tipo mezclado = 0%
• Fracción correspondiente a zonas muertas = 7%
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
117
3.1.2 TANQUE DE FLOCULACION 2
Cálculos:
V=68,58 m3.
K=1,65
Co= 40mg/l
I= 90%
103 = para obtener las unidades en kilogramos.
P= 5,03 kg
Hacer una dilución del trazador para que represente el 20%, para esto
diluimos hasta 25,15 litros de agua.
to = Tiempo teórico de retención 1023.58 segundos = 17.06 minutos
t = Tiempo medio de retención = 1200 segundos = 20 minutos
t f = Tiempo final transcurrido = 2520 segundos = 42 minutos
ca = conductividad del agua cruda = 241 �s/cm
c = Conductividad obtenida durante la prueba = 1187 �s/cm
Q = Caudal del agua de entrada (l/s) = 67 l/s
P = V x K x Co I x 103
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
118
Tiempo (minutos)
tiempo (segundos)
Conductividad-�s/cm c-ca tf/t
0 0 242 0,3 30 242 1 0,025 1 60 242 1 0,05
1,3 90 242 1 0,075 2 120 255 14 0,1
2,3 150 256 15 0,125 3 180 258 17 0,15
3,3 210 260 19 0,175 4 240 260 19 0,2
4,3 270 260 19 0,225 5 300 263 22 0,25
5,3 330 263 22 0,275 6 360 263 22 0,3
6,3 390 273 32 0,325 7 420 273 32 0,35
7,3 450 283 42 0,375 8 480 283 42 0,4
8,3 510 283 42 0,425 9 540 283 42 0,45
7,3 570 283 42 0,475 10 600 283 42 0,5
10,3 630 283 42 0,525 11 660 284 43 0,55
11,3 690 290 49 0,575 12 720 290 49 0,6
12,3 750 290 49 0,625 13 780 290 49 0,65
13,3 810 291 50 0,675 14 840 291 50 0,7
14,3 870 294 53 0,725 15 900 294 53 0,75
15,3 930 297 56 0,775 16 960 297 56 0,8
16,3 990 299 58 0,825 17 1020 302 61 0,85
17,3 1050 323 82 0,875 18 1080 464 223 0,9
18,3 1110 663 422 0,925 19 1140 974 733 0,95
19,3 1170 1133 892 0,975 20 1200 1187 946 1
20,3 1230 998 757 1,025 21 1260 754 513 1,05
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
119
21,3 1290 521 280 1,075 22 1320 434 193 1,1
22,3 1350 316 75 1,125 23 1380 307 66 1,15
23,3 1410 286 45 1,175 24 1440 280 39 1,2
24,3 1470 278 37 1,225 25 1500 277 36 1,25
25,3 1530 275 34 1,275 26 1560 275 34 1,3
26,3 1590 273 32 1,325 27 1620 272 31 1,35
27,3 1650 271 30 1,375 28 1680 271 30 1,4
28,3 1710 271 30 1,425 29 1740 270 29 1,45
29,3 1770 270 29 1,475 30 1800 269 28 1,5
30,3 1830 269 28 1,525 31 1860 268 27 1,55
31,3 1890 267 26 1,575 32 1920 265 24 1,6
32,3 1950 264 23 1,625 33 1980 264 23 1,65
33,3 2010 263 22 1,675 34 2040 262 21 1,7
34,3 2070 260 19 1,725 35 2100 260 19 1,75
35,3 2130 258 17 1,775 36 2160 256 15 1,8
36,3 2190 254 13 1,825 37 2220 254 13 1,85
37,3 2250 254 13 1,875 38 2280 254 13 1,9
38,3 2310 251 10 1,925 39 2340 248 7 1,95
39,3 2370 248 7 1,975 40 2400 247 6 2
40,3 2430 247 6 2,025 41 2460 247 6 2,05
41,3 2490 247 6 2,075 42 2520 247 6 2,1
TABLA 20. Datos obtenidos en la Prueba con Trazadores (Tabla elaborada por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
120
0
100
200
300
400
500
600
700
800
900
1000
0,6000 0,7000 0,8000 0,9000 1,0000 1,1000 1,2000 1,3000
tf/t
c-ca c-ca
GRAFICO 6. En la Figura, se indica la variación de la conductividad en la
salida de la primera etapa de unidad de floculación (C – Ca) en función de la
relación tf/t, siendo Ca la conductividad en el agua cruda, t es el tiempo
transcurrido después de la introducción de trazador y t el tiempo medio de
detención.
(Realizado por autora)
A partir de ésta figura, se construye otra donde se representen en las
abscisas “tf/t” y en las ordenadas “1-f(t)”, lo que hallaremos a partir del
siguiente gráfico es la fracción remanente (concentraciones, o
indirectamente conductividad), del trazador en el tiempo en el que se realiza
el ensayo, entonces estaríamos evaluando las condiciones hidrodinámicas
de la unidad se realiza a partir de la determinación de la sumatoria de las
fracciones remanentes del trazador, utilizándose la ecuación (1).
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
121
La construcción de la gráfica siguiente se la realiza mediante la relación de
áreas en la gráfica anterior, los datos se presentan a continuación:
tiempo (minuto
s)
tiempo (segundo
s) Conductivid
ad Us/cm tf/t c-ca
Área parcia
l
Área acumula
da 1-f(t)
0 0 242 0,000
0 1 0,0250 0,0250 0,999
9
0,3 30 242 0,025
0 1 0,0250 0,0500 0,999
7
1 60 242 0,050
0 1 0,0250 0,0750 0,999
6
1,3 90 242 0,075
0 1 0,1875 0,2625 0,998
5
2 120 255 0,100
0 14 0,3625 0,6250 0,996
5
2,3 150 256 0,125
0 15 0,4000 1,0250 0,994
3
3 180 258 0,150
0 17 0,4500 1,4750 0,991
8
3,3 210 260 0,175
0 19 0,4750 1,9500 0,989
2
4 240 260 0,200
0 19 0,4750 2,4250 0,986
6
4,3 270 260 0,225
0 19 0,5125 2,9375 0,983
7
5 300 263 0,250
0 22 0,5500 3,4875 0,980
7
5,3 330 263 0,275
0 22 0,5500 4,0375 0,977
6
6 360 263 0,300
0 22 0,6750 4,7125 0,973
9
6,3 390 273 0,325
0 32 0,8000 5,5125 0,969
5
7 420 273 0,350
0 32 0,9250 6,4375 0,964
3
7,3 450 283 0,375
0 42 1,0500 7,4875 0,958
5
8 480 283 0,400
0 42 1,0500 8,5375 0,952
7 8,3 510 283 0,425 42 1,0500 9,5875 0,946
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
122
0 9
9 540 283 0,450
0 42 1,0500 10,6375 0,941
1
7,3 570 283 0,475
0 42 1,0500 11,6875 0,935
2
10 600 283 0,500
0 42 1,0500 12,7375 0,929
4
10,3 630 283 0,525
0 42 1,0625 13,8000 0,923
5
11 660 284 0,550
0 43 1,1500 14,9500 0,917
2
11,3 690 290 0,575
0 49 1,2250 16,1750 0,910
4
12 720 290 0,600
0 49 1,2250 17,4000 0,903
6
12,3 750 290 0,625
0 49 1,2250 18,6250 0,896
8
13 780 290 0,650
0 49 1,2375 19,8625 0,890
0
13,3 810 291 0,675
0 50 1,2500 21,1125 0,883
0
14 840 291 0,700
0 50 1,2875 22,4000 0,875
9
14,3 870 294 0,725
0 53 1,3250 23,7250 0,868
6
15 900 294 0,750
0 53 1,3625 25,0875 0,861
0
15,3 930 297 0,775
0 56 1,4000 26,4875 0,853
2
16 960 297 0,800
0 56 1,4250 27,9125 0,845
3
16,3 990 299 0,825
0 58 1,4875 29,4000 0,837
1
17 1020 302 0,850
0 61 1,7875 31,1875 0,827
2
17,3 1050 323 0,875
0 82 3,8125 35,0000 0,806
1
18 1080 464 0,900
0 223 8,0625 43,0625 0,761
4
18,3 1110 663 0,925
0 42214,437
5 57,5000 0,681
4
19 1140 974 0,950
0 73320,312
5 77,8125 0,568
9
19,3 1170 1133 0,975
0 89222,975
0 100,7875 0,441
6 20 1200 1187 1,000 946 21,287 122,0750 0,323
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
123
0 5 6
20,3 1230 998 1,025
0 75715,875
0 137,9500 0,235
7
21 1260 754 1,050
0 513 9,9125 147,8625 0,180
8
21,3 1290 521 1,075
0 280 5,9125 153,7750 0,148
0
22 1320 434 1,100
0 193 3,3500 157,1250 0,129
4
22,3 1350 316 1,125
0 75 1,7625 158,8875 0,119
7
23 1380 307 1,150
0 66 1,3875 160,2750 0,112
0
23,3 1410 286 1,175
0 45 1,0500 161,3250 0,106
2
24 1440 280 1,200
0 39 0,9500 162,2750 0,100
9
24,3 1470 278 1,225
0 37 0,9125 163,1875 0,095
9
25 1500 277 1,250
0 36 0,8750 164,0625 0,091
0
25,3 1530 275 1,275
0 34 0,8500 164,9125 0,086
3
26 1560 275 1,300
0 34 0,8250 165,7375 0,081
7
26,3 1590 273 1,325
0 32 0,7875 166,5250 0,077
4
27 1620 272 1,350
0 31 0,7625 167,2875 0,073
1
27,3 1650 271 1,375
0 30 0,7500 168,0375 0,069
0
28 1680 271 1,400
0 30 0,7500 168,7875 0,064
8
28,3 1710 271 1,425
0 30 0,7375 169,5250 0,060
7
29 1740 270 1,450
0 29 0,7250 170,2500 0,056
7
29,3 1770 270 1,475
0 29 0,7125 170,9625 0,052
8
30 1800 269 1,500
0 28 0,7000 171,6625 0,048
9
30,3 1830 269 1,525
0 28 0,6875 172,3500 0,045
1
31 1860 268 1,550
0 27 0,6625 173,0125 0,041
4 31,3 1890 267 1,575 26 0,6250 173,6375 0,038
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
124
0 0
32 1920 265 1,600
0 24 0,5875 174,2250 0,034
7
32,3 1950 264 1,625
0 23 0,5750 174,8000 0,031
5
33 1980 264 1,650
0 23 0,5625 175,3625 0,028
4
33,3 2010 263 1,675
0 22 0,5375 175,9000 0,025
4
34 2040 262 1,700
0 21 0,5000 176,4000 0,022
6
34,3 2070 260 1,725
0 19 0,4750 176,8750 0,020
0
35 2100 260 1,750
0 19 0,4500 177,3250 0,017
5
35,3 2130 258 1,775
0 17 0,4000 177,7250 0,015
3
36 2160 256 1,800
0 15 0,3500 178,0750 0,013
4
36,3 2190 254 1,825
0 13 0,3250 178,4000 0,011
6
37 2220 254 1,850
0 13 0,3250 178,7250 0,009
8
37,3 2250 254 1,875
0 13 0,3250 179,0500 0,008
0
38 2280 254 1,900
0 13 0,2875 179,3375 0,006
4
38,3 2310 251 1,925
0 10 0,2125 179,5500 0,005
2
39 2340 248 1,950
0 7 0,1750 179,7250 0,004
2
39,3 2370 248 1,975
0 7 0,1625 179,8875 0,003
3
40 2400 247 2,000
0 6 0,1500 180,0375 0,002
5
40,3 2430 247 2,025
0 6 0,1500 180,1875 0,001
7
41 2460 247 2,050
0 6 0,1500 180,3375 0,000
8
41,3 2490 247 2,075
0 6 0,1500 180,4875 0,000
0
42 2520 247 2,100
0 6 TABLA 21. Datos obtenidos para conseguir las fracciones de flujo
(Tabla elaborada por autor)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
125
Obtenido el gráfico procedemos a prolongar la recta hasta obtener el valor
de 1 - F(t), para el cual, tf/t es igual a cero, y se determina tg α.
Luego se obtiene la recta más aproximada y las intersecciones “tf/t=0” y “1-
f(t)=1”, y resulta:
TANQUE DE FLOCULACION 2
0,01
0,1
1
10
0,70 0,80 0,90 1,00 1,10 1,20 1,30
tf/t
1-f(t
)
GRAFICO 7. Prueba de Trazadores en Tanque de Floculación 2 (Realizado por autora)
Para 1 - F(t)=1 de la recta trazada, resulta p(1-m). Por medio de la ecuación
2 son estimadas las fracciones de los tipos de flujo.
(2)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
126
Donde,
p(1-m) : Fracción del flujo de tipo pistón;
(1-p) (1-m): Fracción del flujo del tipo mezcla completa;
m: Fracción correspondiente a zonas muertas.
Y a partir de la gráfica se tiene:
tg �= 10.000
p(1-m)= 0.90
Y utilizando la ecuación (2), se hallan el resto de parámetros:
Por lo que se obtienen las fracciones de flujo:
• Fracción de flujo pistón = 90%
• Fracción de flujo de tipo mezcla completa = 0%
• Fracción correspondiente a zonas muertas = 10%
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
127
3.1.3 RESULTADOS EN EL ANALISIS BACTERIOLOGICO
Grafico 9 Bacteriología de Agua Cruda
Grafico 10 Bacteriología de Agua Tratada
Grafico 11 Bacteriología de Agua de Sedimentadores
Grafico 12 - 13 Bacteriología de Agua de Filtros
Grafico 14 Bacteriología de Agua de Red
Grafico 15 Bacteriología de Agua de Redes Domiciliarias
Grafico 16 - 17. Porcentaje de remoción de contaminación Bacteriología en
las PRE-etapas de tratamiento
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
128
09/1
1/20
09
11/1
1/20
09
13/1
1/20
09
15/1
1/20
09
17/1
1/20
09
19/1
1/20
09
21/1
1/20
09
23/1
1/20
09
25/1
1/20
09
500
900
1300
1700
NMP
FECHA
BACTERIOLOGIA DE AGUA CRUDA
coli total
coli fecal
GRÁFICO 9.- Análisis bacteriológico en Agua Cruda
(Realizado por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
129
Gráfico #9
De acuerdo a la bacteriología analizada en el Agua Cruda, en el primer
muestreo se presenta una contaminación de 500 NMP/100ml tanto para los
coliformes totales como para los coliformes termorresistentes, al siguiente
día la contaminación ascendió a 1600 NMP/100ml, en un siguiente muestreo
el recuento descendió a 900 NMP/100ml, desde ahí se produce un
incremento en el recuento de microorganismos manteniéndose un valor
constante de 1600 NMP/100ml hasta el ultimo muestreo realizado. Se
obtiene un valor promedio de 1000 NMP/100ml.
Estos valores elevados de contaminación bacteriológica se obtuvieron por
causa de la alargada sequía que afecto las fuentes de captaciones, ya que al
disminuir dichas fuentes, arrastraban consigo todo tipo de material
contaminante que estaba a su paso, consiguiéndose recuentos semejantes a
los realizados diariamente como control de calidad por las profesionales que
laboran en la Planta de Tratamiento de Agua Potable de Uchupucún.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
130
09/1
1/20
09
11/1
1/20
09
13/1
1/20
09
15/1
1/20
09
17/1
1/20
09
19/1
1/20
09
21/1
1/20
09
23/1
1/20
09
25/1
1/20
09
0,5
0,8
1,1
NMP
FECHA
BACTERIOLOGIA DEL AGUA TRATADA
COLI FECAL< 1,1
COLI TOTAL<1,1
GRÁFICO 10.- Análisis Bacteriológico en Agua Tratada (Realizado por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
131
GRÁFICO #10
En el análisis bacteriológico del Agua Tratada se obtuvieron valores
constantes de <1,1 NMP/100ml tanto para coliformes totales como para
coliformes termorresistentes, es así que el agua tratada en la planta de
tratamiento de Uchupucún cumple con los requerimientos establecidos en la
Norma Técnica Ecuatoriana INEN 1108: 2006.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
132
BACTERIOLOGIA EN SEDIMENTADORES
60
80
100
120
140
160
180
200
09/11/2009 16/11/2009 23/11/2009 30/11/2009 07/12/2009 14/12/2009FECHA
NMP
SEDIM 1SEDIM 2SEDIM 3SEDIM 4
GRAFICO 11. Análisis Bacteriológico en Sedimentadores
(Realizado por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
133
GRAFICO #11
En el análisis bacteriológico del agua en los Sedimentadores, se observa un
igual crecimiento en el número de coliformes totales y coliformes
termorresistentes, luego de haber realizado 3 muestreos en cada
sedimentador de manera aleatoria. Se logran los siguientes resultados:
El Sedimentador 1 presenta al inicio del muestreo un recuento de 90
NMP/100ml, el cual ascendió a 170 NMP/100ml, luego de esto se
mantuvo en un valor constante.
En cuanto al Sedimentador 2 presenta una variación evidente ya que
en el primer análisis se observa un crecimiento microbiológico de 80
NMP/100ml, incrementándose hasta 500 NMP/100ml, terminando el
muestreo con un crecimiento de 170 NMP/100ml.
El Sedimentador 3 presenta un crecimiento microbiológico de 170
NMP/100ml, manteniéndose así durante las semanas de muestreo
realizado.
El Sedimentador 4 presenta al inicio del muestreo un recuento de 80
NMP/100ml, manifestando luego un incremento de 170 NMP/100ml,
que se conserva constante.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
134
ANALISIS DE COLIFORMES TOTALES EN FILTROS
0
30
60
90
120
150
09/11/2009 14/11/2009 19/11/2009 24/11/2009 29/11/2009
FECHA
NMP
Filtro 1Filtro 2Filtro 3Filtro 4Filtro 5Filtro 6
GRAFICO 12. Análisis de Coliformes Totales en Filtro (Realizado por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
135
GRAFICO #12
En cuanto al análisis de Coliformes totales en los Filtros se observan los
siguientes resultados, luego de haber realizado 3 muestreos en cada filtro.
• El Filtro 1, presenta un crecimiento reducido de Coliformes totales,
alcanzando un máximo de 80 NMP/100ml y un mínimo de 17
NMP/100ml.
• El Filtro 2, en el primer muestreo tuvo un resultado de 30 NMP/100ml,
mientras que el ultimo muestra una contaminación de 17 NMP/100ml.
• El Filtro 3, presenta una contaminación de 80 NMP/100ml, y un mínimo
de 4 NMP/100ml.
• En el Filtro 4, se observa un descenso de contaminación de Coliformes
totales, ya que el máximo es de 50 NMP/100ml y el mínimo de 4
NMP/100ml.
• El Filtro 5, presenta un elevado crecimiento de 140 NMP/100ml, en
comparación con los demás y un mínimo de 8 NMP/100ml.
• El Filtro 6, muestra un crecimiento microbiológico semejante al filtro 1,
con un numero mayor de 80 NMP/100ml, y un mínimo de 8 NMP/100ml.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
136
ANALISIS DE COLIFORMES TERMORRESISTENTES EN FILTROS
02468
10121416182022242628303234363840
09/11/2009 14/11/2009 19/11/2009 24/11/2009 29/11/2009
FECHA
NMP
Filtro 1
Filtro 2
Filtro 3
Filtro 4
Filtro 5Filtro 6
GRAFICO 13. Análisis de Coliformes Termorresistentes en Filtros (Realizado por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
137
GRAFICO 13.
En el análisis de Coliformes termorresistentes en los Filtros, al igual que en
el análisis de Coliformes totales se realizaron 3 muestreos en cada filtro, se
observan los siguientes resultados:
• Se observa un pequeño crecimiento con un máximo de 140 NMP/100ml
en el Filtro 5, en los otros filtros se presenta un crecimiento de 80
NMP/100ml, y un mínimo de 4 NMP/100ml.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
138
09/1
1/20
09
13/1
1/20
09
17/1
1/20
09
21/1
1/20
09
25/1
1/20
09
29/1
1/20
09
03/1
2/20
09
0,9
1
1,1
1,2
NMP
FECHA
BACTERIOLOGIA EN AGUAS DE RED
Repartidor
Tanque de 400 m3
Tanque de 500 m3
Tanque de 600 m3
Tanque de 450 m3
GRAFICO 14. Análisis Bacteriológico en Aguas de Red
(Realizado por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
139
GRAFICO 14
En el análisis bacteriológico del Agua de red al igual que el agua tratada de
la planta de tratamiento de Uchupucún, se obtuvieron valores constantes de
<1,1 NMP/100ml tanto para coliformes totales como para coliformes
termorresistentes, es así que el agua tratada de redes cumple con los
requerimientos establecidos en la Norma Técnica Ecuatoriana INEN 1108:
2006.
GRAFICO 15
En el análisis bacteriológico del Agua de redes domiciliarias al igual que el
agua tratada de la planta de tratamiento de Uchupucún, y el agua de redes
de distribución se mantiene <1,1 NMP/100ml tanto para coliformes totales
como para coliformes termorresistentes, es así que el agua que llega a las
tuberías domiciliarias cumple con los requerimientos establecidos en la
Norma Técnica Ecuatoriana INEN 1108: 2006.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
140
1,8
1,9
2
2,1
2,2
NMP
1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29
# de Muestra
BACTERIOLOGIA EN REDES DOMICILIARIAScoli total < 2,2coli fecal < 2,2
GRAFICO 15. Análisis Bacteriológico en Aguas de Redes Domiciliarias (Realizado por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
141
PORCENTAJE DE REMOCION DE CONTAMINACION
BACTERIOLOGICA EN LAS PRE-ETAPAS DE TRATAMIENTO
Cálculos:
% Remoción = (NMP/100ml o - NMP/100ml f) 100 NMP/100ml o
NMP/100ml o = Numero mas probable/100ml- inicial
NMP/100ml f= Numero mas probable/100ml- final
PORCENTAJE DE REMOCION DE COLIFORMES TOTALES
Filtro # 1
Coli Total en Agua Cruda Canal- Filtro-
% Remoción de Coli Total
% Remoción de Coli Total
coli total
coli total
En Sedimentadores y Floculadores En Filtros
500 90 80 82 11,11 1600 170 17 89,375 90,00
1600 170 17 89,375 90,00 TABLA 22. Datos obtenidos del número de coliformes totales en el filtro 1
(Tabla elaborada por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
142
Filtro # 2
Coli Total en Agua Cruda
Canal 2
Filtro 2
% Remoción de Coli Total
% Remoción de Coli Total
coli total
coli total
En Sedimentadores y Floculadores En Filtros
500 220 30 56,000 86,36 1600 170 17 89,375 90
TABLA 23. Datos obtenidos del número de coliformes totales en el filtro 2 (Tabla elaborada por autora)
Filtro # 3
Coli Total en Agua Cruda Canal Filtro
% Remoción de Coli Total
% Remoción de Coli Total
coli total
coli total
en Sedimentadores y Floculadores En Filtros
500 170 80 66,000 52,94 1600 500 4 68,750 99,2 1600 170 17 89,375 90
TABLA 24. Datos obtenidos del número de coliformes totales en el filtro 3 (Tabla elaborada por autora)
Filtro # 4
Coli Total en Agua Cruda Canal Filtro
% Remoción de Coli Total
% Remoción de Coli Total
coli total
coli total
en Sedimentadores y Floculadores en Filtros
500 170 50 66,000 70,59 1600 500 4 68,750 99,20 1600 130 17 91,875 86,92
TABLA 25. Datos obtenidos del número de coliformes totales en el filtro 4 (Tabla elaborada por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
143
Filtro # 5
Coli Total en Agua Cruda Canal Filtro
% Remoción de Coli Total
% Remoción de Coli Total
coli total
coli total
en Sedimentadores y Floculadotes en Filtros
500 220 140 56,000 36,36 1600 170 17 89,375 90
TABLA 26. Datos obtenidos del número de coliformes totales en el filtro 5 (Tabla elaborada por autora)
Filtro # 6
Coli Total en Agua Cruda Canal Filtro
% Remoción de Coli Total
% Remoción de Coli Total
coli total
coli total
en Sedimentadores y Floculadotes en Filtros
500 110 80 78,000 27,27 1600 500 8 68,750 98,4 1600 170 17 89,375 90
TABLA 27. Datos obtenidos del número de coliformes totales en el filtro 6 (Tabla elaborada por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
144
PORCENTAJE PROMEDIO DE REMOCION DE CONTAMINACION
BACTERIOLOGICA DE LA PLANTA DE TRATAMIENTO DE AGUA
POTABLE DE UCHUPUCUN
Canales % Remoción en Canales Filtro % Remoción Filtros 1 86,917 1 63,70 2 72,688 2 88,18 3 74,708 3 80,71 4 75,542 4 85,57 5 72,688 5 63,18 6 78,708 6 71,89
TABLA 28. Datos obtenidos del % de remoción de coliformes totales en filtros
(Tabla elaborada por autora)
1 2 3 4 5 6
60,063,667,270,874,478,081,685,288,8
% Remoción Promedio
Canales y Filtros
% Remoción Promedio de Coli Total en Canales y Filtros
% Remoción enCanales% Remoción Filtros
GRAFICO 16. % Remoción Promedio de Coliformes Totales en Canales y
Filtros (Realizado por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
145
Filtro # 1
% Remoción promedio = 63,70
Filtro #2
% Remoción promedio = 88,18
Filtro # 3
% Remoción promedio = 80,71
Filtro # 4
% Remoción promedio = 85,57
Filtro # 5
% Remoción promedio = 63,18
Filtro # 6
% Remoción promedio = 71,89
De acuerdo a los resultados obtenidos se demuestra que el filtro 2 es el que
mejor porcentaje de remoción de Coliformes Totales presenta siendo de
88,18%.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
146
PORCENTAJE DE REMOCION DE COLIFORMES TERMORRESISTENTE
Filtro # 1
Coli Total en Agua Cruda Canal Filtro
% Remoción de Coli Fecal
% Remoción de Coli
termorresistente
En Sedimentadores y
Floculadores en Filtros 500 90 80 82 11,1111600 170 4 89,375 97,6471600 170 4 89,375 97,647
TABLA 29. Datos obtenidos del número de coliformes termorresistentes en filtro 1
(Tabla elaborada por autora)
Filtro # 2
Coli Total en Agua Cruda Canal Filtro
% Remoción de Coli Fecal
% Remoción de Coli Fecal
en Sedimentadores y
Floculadores en Filtros 500 90 30 82 66,6671600 170 4 89,375 97,647
TABLA 30. Datos obtenidos del número de coliformes termorresistentes en filtro 2
(Tabla elaborada por autora)
Filtro # 3
Coli Total en Agua Cruda Canal Filtro
% Remoción de Coli Fecal
% Remoción de Coli Fecal
En Sedimentadores y
Floculadores en Filtros 500 80 80 84 0,0001600 500 2 68,75 99,6001600 170 4 89,375 97,647
TABLA 31. Datos obtenidos del número de coliformes termorresistentes en filtro 3
(Tabla elaborada por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
147
Filtro # 4
Coli Total en Agua Cruda Canal Filtro
% Remoción de Coli Fecal
% Remoción de Coli Fecal
En Sedimentadores y
Floculadores en Filtros 500 170 50 66 70,5881600 500 2 68,75 99,6001600 170 4 89,375 97,647
TABLA 32. Datos obtenidos del número de coliformes termorresistentes en filtro 4
(Tabla elaborada por autora)
Filtro # 5
Coli Total en Agua Cruda Canal Filtro
% Remoción de Coli Fecal
% Remoción de Coli Fecal
En Sedimentadores y
Floculadores en Filtros 500 170 140 66 17,6471600 170 4 89,375 97,647
TABLA 33. Datos obtenidos del número de coliformes termorresistentes en filtro 5
(Tabla elaborada por autora)
Filtro # 6
Coli Total en Agua Cruda Canal Filtro
% Remoción de Coli Fecal
% Remoción de Coli Fecal
En Sedimentadores y
Floculadores en Filtros 500 110 80 78 27,2731600 500 8 68,75 98,4001600 170 4 89,375 97,647
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
148
TABLA 34. Datos obtenidos del número de coliformes termorresistentes en filtro 6
(Tabla elaborada por autora)
PORCENTAJE PROMEDIO DE REMOCION DE CONTAMINACION
BACTERIOLOGICA DE LA PLANTA DE TRATAMIENTO DE AGUA
POTABLE DE UCHUPUCUN
Canales % Remoción en Canales Filtro % Remoción Filtros 1 86,917 1 68,8022 85,688 2 82,1573 80,708 3 65,7494 74,708 4 89,2785 77,688 5 57,6476 78,708 6 74,440
TABLA 35. Datos obtenidos del % de remoción de coliformes termorresistentes en filtros
(Tabla elaborada por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
149
1 2 3 4 5 6
55,060,666,271,877,483,088,6
% Remoción Promedio
Canales y Filtros
% Remoción Promedio de Coliformes Termorresistentes en Canales y Filtros
% Remoción enCanales% RemociónFiltros
GRAFICO 17. % Remoción Promedio de Coliformes Totales en Canales y Filtros
(Realizado por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
150
Filtro # 1
% Remoción promedio = 68,802
Filtro #2
% Remoción promedio = 82,157
Filtro # 3
% Remoción promedio = 65,749
Filtro # 4
% Remoción promedio = 89,278
Filtro # 5
% Remoción promedio = 57,647
Filtro # 6
% Remoción promedio = 74,440
De acuerdo a los resultados obtenidos se demuestra que el filtro 4 es el que
mejor porcentaje de remoción de Coliformes Termorresistentes presenta
mostrando un valor de 89,278%.
En comparación con el porcentaje de remoción obtenido para Coliformes
Totales, se observa un mayor porcentaje en cuanto a Coliformes
Termorresistentes, es decir que el PRE-tratamiento de la planta desempeña
bien su función.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
151
3.1.4 RESULTADOS EN EL ANALISIS FISICO-QUIMICO
Grafico 18. Análisis de Cloro en Agua Tratada
Grafico 19. Análisis de Cloro en Agua de Tanques Repartidores
Grafico 20. Análisis de Cloro en Agua de Redes Domiciliarias
Grafico 21. Análisis de Turbiedad en Agua Cruda
Grafico 22. Análisis Turbiedad en Agua Tratada
Grafico 23. Análisis Turbiedad en Agua de Sedimentadores
Grafico 24. Análisis Turbiedad en Agua de Filtros
Grafico 25. Análisis Turbiedad en Agua de Redes Domiciliarias
Grafico 26. Análisis de Color en Agua Cruda
Grafico 27.. Análisis de Color en Agua Tratada, Filtros, Redes Domiciliarias
Grafico 28. Análisis de Color en Agua Sedimentadores
Grafico 29. Análisis de Conductividad en Agua Cruda
Grafico 30. Análisis de Conductividad en Agua Tratada
Grafico 31. Análisis de Conductividad en Agua de Sedimentadores
Grafico 32. Análisis de Conductividad en Agua de Filtros
Grafico 33. Análisis de Conductividad en Agua de Redes Domiciliarias
Grafico 34. Análisis de pH en Agua Cruda
Grafico 35. Análisis de pH en Agua Tratada
Grafico 36. Análisis de pH en Agua de Redes
Grafico 37 - 42. Porcentaje de remoción de turbiedad en las PRE-etapas de
tratamiento
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
152
Grafico 43. Porcentaje promedio de remoción de los filtros de la planta de
tratamiento de agua potable de Uchupucún.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
153
CLORO RESIDUAL EN AGUA TRATADA
0,9
1
1,1
1,2
1,3
09/11/2009 13/11/2009 17/11/2009 21/11/2009 25/11/2009 29/11/2009 03/12/2009
FECHA
CL2
GRAFICO 18. Análisis de Cloro residual en Agua Tratada
(Realizado por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
154
GRAFICO # 18.
Los valores obtenidos desde el primer muestreo no indican cambios
extremos, ya que se mantienen en valores de 1,1 hasta 1,2 mg/l siendo
estos valores similares a los que se obtienen diariamente en la planta de
tratamiento de Uchupucún. Hasta el muestreo final se que se mantuvieron
valores constantes de 1,2 mg/l. con un promedio de 1,141 mg/l.
GRAFICO # 19
En cuanto a los tanques de red se obtienen valores entre 1 y 1,2 mg/l, se
observa también que no existe mayor diferencia entre un tanque y otro.
Tanque repartidor principal: Valores de cloro residual entre 1 y 1,1 mg/l
Los Tanques de Almacenamiento de 400m3 - 450m3 - 500m3 - 600m3 :
Presentan valores de cloro residual desde 1- 1,1 y 1,2 mg/l, con un valor
promedio de 1,08 mg/l
GRAFICO # 20
Las redes domiciliarias presentan valores que comienzan en 0,5 mg/l, el
valor que más veces se repite es 0,8 mg/l, siendo también el valor más alto
de cloro residual que se ha obtenido a nivel de muestreo en la ciudad, sin
embargo el valor promedio es de 0,7 mg/l
Es así que se demuestra y garantiza la obtención de concentraciones de
cloro residual adecuadas hasta el punto más lejano en la red de distribución,
tanto en lugares cercanos como alejados de la planta de tratamiento.
Cumpliendo con la Norma Técnica Ecuatoriana 1108: 2006.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
155
CLORO RESIDUAL EN TANQUES REPARTIDORES
0,9
1
1,1
1,2
1,3
09/11/2009 14/11/2009 19/11/2009 24/11/2009 29/11/2009 04/12/2009FECHA
CL2
T. repartidorprincipalT. de 400 m3
T. de 500 m3
T. de 600 m3
T de 450 m3
GRAFICO 19. Cloro residual en Tanques Repartidores
(Realizado por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
156
CLORO RESIDUAL EN REDES DOMICILIARIAS
0,40,45
0,50,55
0,60,65
0,70,75
0,80,85
0,90,95
1
0 5 10 15 20 25 30 35Numero de Muestras Realizadas
Cl2
Redes Domiciliarias
GRAFICO 20. Cloro Residual en Redes Domiciliarias (Realizado por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
157
TURBIEDAD DE AGUA CRUDA
3,5
5,5
7,5
9,5
11,5
13,5
09/11/2009 13/11/2009 17/11/2009 21/11/2009 25/11/2009 29/11/2009
FECHA
NTU
GRAFICO 21. Análisis de Turbiedad en Agua Cruda
(Realizado por autora)
GRAFICO 21
Los valores de Turbiedad se mantuvieron constantes, esto debido a la
prolongada sequía que sufrió la región, comenzando con una lectura de 5,47
NTU, manteniéndose con valores relativamente semejantes, hasta el
séptimo muestreo que presenta 13,2 NTU como valor máximo. Puesto que
presenta una lectura promedio de de 6,6 NTU.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
158
TURBIEDAD EN AGUA TRATADA
0,2250,2750,3250,3750,4250,4750,5250,575
08/11/09 12/11/09 16/11/09 20/11/09 24/11/09 28/11/09 02/12/09
FECHA
NTU
GRAFICO 22. Turbiedad en agua tratada
(Realizado por autora)
GRAFICO #22
En cuanto a los valores de turbiedad del agua tratada disminuyeron
notablemente ya que se obtuvieron lecturas que van desde 0,252 hasta
0,545 NTU, donde se pudo demostrar que mientras mas alta se presenta la
turbiedad de agua cruda mejo floculo se forma y es así que se obtiene mejor
una lectura; de esta forma el agua tratada en la planta de tratamiento cumple
con la Norma Técnica Ecuatoriana 1108: 2006, al presenta una lectura
promedio de 0,36 NTU.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
159
TURBIEDAD EN AGUA DE REDES DOMICILIARIAS
0,640,660,68
0,70,720,740,760,78
0,8
18/11/2009 20/11/2009 22/11/2009 24/11/2009 26/11/2009
FECHA
NTU
GRAFICO 23. Análisis de Turbiedad en Redes Domiciliarias (Realizado por autora)
GRAFICO 23
Al igual que el agua tratada del tanque de almacenamiento de la planta de
tratamiento, la turbiedad del agua que es distribuida a través de redes
domiciliarias presentan turbiedades bajas de valores entre 0,406 y 0,930
NTU.
Se observa que son un tanto más elevados que los obtenidos en el agua
tratada, debido al recorrido en la tubería que estos suelen confrontar, sin
embargo presenta un pico elevado, y a pesar de esta condición cumple con
la Norma Técnica Ecuatoriana 1108: 2006.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
160
TURBIEDAD EN SEDIMENTADORES
1
1,34
1,68
2,02
2,36
2,7
3,04
3,38
09/11/2009 14/11/2009 19/11/2009 24/11/2009 29/11/2009
FECHA
NTU
Sed 1
Sed 2
Sed 3
Sed 4
GRAFICO 24. Análisis de Turbiedad en Sedimentadores (Realizado por autora)
GRAFICO #24
En los sedimentadores al igual que en agua tratada se observa un descenso
considerable de turbiedad, esto quiere decir que las etapas de PRE-
tratamiento funcionan de la forma esperada para la obtención de una
aceptada agua de consumo humano. Con un promedio de 1,92 NTU
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
161
TURBIEDAD DEL AGUA EN FILTROS
0,250,280,310,340,370,400,430,460,490,520,550,58
09/11/2009 12/11/2009 15/11/2009 18/11/2009 21/11/2009 24/11/2009
FECHA
NTU
Filtro 1Filtro 2Filtro 3Filtro 4Filtro 5Filtro 6
GRAFICO 25. Análisis de la Turbiedad del Agua en Filtros
(Realizado por autora)
GRAFICO 25
Los filtros de la misma manera presentan un favorable descenso de
turbiedad, dando como resultado un valor promedio de 0,39 NTU, que esta
dentro de los valores permisibles para el agua de consumo humano
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
162
COLOR EN AGUA CRUDA
06
1218243036424854606672788490
09/11/2009 12/11/2009 15/11/2009 18/11/2009 21/11/2009 24/11/2009 27/11/2009 30/11/2009
FECHA
CO
LOR
- U
C
GRAFICO 26. Análisis de Color en Agua Cruda
(Realizado por autora)
GRAFICO #26
Debido a los efectos climáticos los valores del color en el agua cruda se
mostraron variables. Así el primer muestreo se obtuvo una lectura de 36 UC,
la misma que se mantuvo con valores constates hasta en un quinto
muestreo manifiesta un ascenso hasta 86 UC, de ahí disminuye a 43 UC
donde se estabiliza hasta el final del muestreo, presentando un valor
promedio de 40,66 UC.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
163
COLOR EN AGUA TRATADA, FILTROS, REDES DOMICILIARIAS
-0,2
-0,1
0
0,1
0,2
0,3
09/11/2009 13/11/2009 17/11/2009 21/11/2009 25/11/2009
FECHA
CO
LOR-
UC
GRAFICO 27. Análisis de Color en Agua Tratada, Filtros, Redes Domiciliarias
(Realizado por autora)
GRAFICO 27
Los resultados tanto en el agua tratada del tanque de almacenamiento de
Uchupucún, filtros y redes de distribución domiciliaria, presentan una
favorable eliminación de color, obteniéndose en los tres casos valores de 0
UC. Esto se observa desde el inicio de las pruebas, tal como se ha venido
registrando en los muestreos habituales de la planta de tratamiento. Con lo
que se consigue obtener lecturas que están dentro de los límites permisibles
fijados por la Norma Técnica Ecuatoriana 1108: 2006.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
164
COLOR EN EL AGUA DE SEDIMENTADORES
-0,5
0
0,5
1
1,5
2
2,5
09/11/2009 14/11/2009 19/11/2009 24/11/2009 29/11/2009FECHA
UC
Sed 1Sed 2Sed 3Sed 4
GRAFICO 28. Análisis de Color en Sedimentadores
(Realizado por autora)
GRAFICO 28
Los valores obtenidos en las lecturas de color en sedimentadores al igual
que en la turbiedad muestran un descenso considerable ya que se
encuentran entre 0 y 2 UC, esto demuestra una vez mas el buen
funcionamiento de las PRE-etapas de tratamiento de la planta de
tratamiento. Dichos valores están dentro de los límites permisibles fijados
por la Norma Técnica Ecuatoriana 1108: 2006.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
165
CONDUCTIVIDAD EN AGUA CRUDA
195200205210215220225230235240245250255260
08/11/2009 13/11/2009 18/11/2009 23/11/2009 28/11/2009
FECHA
CN
D- U
s/cm
GRAFICO 29. Análisis de Conductividad en Agua Cruda
(Realizado por autora)
GRAFICO 29
La conductividad evalúa la presencia de sales en disolución que presenta el
agua, mientras mayor sea el número de sales en disolución mayor será la
conductividad de la misma.
Los valores obtenidos de conductividad del agua cruda durante el muestreo
estuvieron entre 188 y 256 Us/cm. Con un promedio de 234 Us/cm.
Dichos valores se representan en la grafica con picos de incrementos y
disminuciones manteniéndose en rangos aceptables para el agua cruda.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
166
CONDUCTIVIDAD EN AGUA TRATADA
195203211219227235243251259
09/11/2009 13/11/2009 17/11/2009 21/11/2009 25/11/2009 29/11/2009
FECHA
CN
D- U
s/cm
GRAFICO 30. Análisis de Conductividad en Agua Tratada de la Planta de
Uchupucún (Realizado por autora)
CONDUCIVIDAD DEL AGUA EN REDES DOMICILIARIAS
192
196
200
204
208
212
18/11/2009 20/11/2009 22/11/2009 24/11/2009 26/11/2009
FECHA
CN
D - U
s/cm
GRAFICO 31. Análisis de Conductividad en Redes Domiciliarias
(Realizado por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
167
GRAFICO 30
El agua tratada presenta al igual que el agua cruda picos de incremento y
disminución en la conductividad.
Se observa claramente el aumento de conductividad en comparación a
conductividad en el agua cruda, ésta se debe a la formación de iones en las
etapas de coagulación y floculación. Los valores de las lecturas parten
desde 196 �s/cm como mínimo a 264 �s/cm como máximo. Con un
promedio de 243,6 �s/cm.
Estos valores están contemplados dentro de los rangos permisibles de este
indicador fisicoquímico.
GRAFICO 31
El agua tratada de redes domiciliarias al contrario del agua de
almacenamiento de la planta de tratamiento no presenta picos de incremento
y disminución en la grafica, sino más bien presenta una curva ascendente
desde el segundo muestreo, presentando valores de conductividad que
comprenden desde 157 �s/cm hasta 215 �s/cm. Presentando un promedio
de 198,7 �s/cm.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
168
CONDUCTIVIDAD EN EL AGUA DE SEDIMENTADORES
220225230235240245250255260265
09/11/2009 14/11/2009 19/11/2009 24/11/2009 29/11/2009
FECHA
CN
D-U
s/cm
Sed 1Sed 2Sed 3Sed 4
GRAFICO 32. Análisis de Conductividad en el Agua de Sedimentadores
(Realizado por autora)
GRAFICO 32
En los sedimentadores la conductividad presenta lecturas elevadas en
comparación de la conductividad del agua cruda, y al igual que el agua
tratada, el aumento de conductividad se debe a las partículas formadas por
el sulfato en las etapas de coagulación y floculación.
Los valores de las lecturas obtenidas van desde 117 �s/cm como mínimo a
259 �s/cm como máximo. Estos valores están dentro de los rangos
permisibles de este indicador fisicoquímico.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
169
CONDUCTIVIDAD DEL AGUA EN FILTROS
220
225
230
235
240
245
250
255
260
09/11/2009 14/11/2009 19/11/2009 24/11/2009 29/11/2009 04/12/2009
FECHA
Us/cm
Filtro 1
Filtro 2
Filtro 3
Filtro 4
Filtro 5
Filtro 6
GRAFICO 33. Análisis de Conductividad en el Agua de Filtros (Realizado por autora)
GRAFICO 33
Las lecturas obtenidas de la conductividad en el agua de filtros se asemeja a
la obtenida en los sedimentadores, con valores que parten desde 234 �s/cm
hasta 256 �s/cm, por la misma razón de contener partículas formadas por el
sulfato en las etapas de coagulación y floculación.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
170
pH EN AGUA CRUDA
7,457,5
7,557,6
7,657,7
7,757,8
7,85
03/11/2009 08/11/2009 13/11/2009 18/11/2009 23/11/2009 28/11/2009 03/12/2009
FECHA
pH
GRAFICO 34. Análisis de pH en Agua Cruda
(Realizado por autora)
GRAFICO 34
En el análisis del pH en agua cruda obtuvo valores con escasa diferencia en
todos los muestreos comenzando con un valor de 7,5; continuando hasta un
pH de 7,8. El valor promedio de pH es 7,65.
Los valores de pH obtenidos se mantuvieron dentro de los límites
permisibles durante la totalidad del período de estudio.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
171
pH EN AGUA TRATADA
7,25
7,3
7,35
7,4
7,45
7,5
7,55
08/11/2009 13/11/2009 18/11/2009 23/11/2009 28/11/2009 03/12/2009
FECHA
pH
GRAFICO 35. Análisis de pH en Agua Tratada (Realizado por autora)
GRAFICO 35
Los valores de pH en el agua tratada disminuyeron y se mantuvieron en
valores semejantes desde 7,3 hasta 7,5 como máximo y un valor promedio
de 7,3, cumpliendo con el valor establecido por la Norma Técnica
Ecuatoriana 1108: 2006, correspondiente al agua tratada.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
172
pH EN AGUA DE REDES DOMICILIARIAS
7,17,157,2
7,257,3
7,357,4
7,457,5
7,55
18/11/09 20/11/09 22/11/09 24/11/09 26/11/09
FECHA
pH
GRAFICO 36. Análisis de pH en el Agua de Redes Domiciliarias (Realizado por autora)
GRAFICO 36
En el agua de las redes domiciliarias se obtuvieron valores de pH que van
desde 7,1 hasta 7,5; De esta manera los valores registrados se mantuvieron
dentro de los límites permitidos por la Norma Técnica Ecuatoriana 1108:
2006.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
173
PORCENTAJE DE REMOCION DE TURBIEDAD EN LAS PRE-ETAPAS
DE TRATAMIENTO
FILTRO # 1
Cálculos:
% Remoción = (To - Tf) 100 To To = Turbiedad inicial Tf = Turbiedad final
Turbiedad agua cruda % Remoción floculador y
Sedimentador % Remoción de
filtros 5,47 83,12 93,67 4,92 87,45 85,81 6,58 82,34 88,10 6,72 84,28 91,14
Promedio de % de Remoción de Filtro 1 89,68 TABLA 36. Datos obtenidos de turbiedad en filtro 1
(Tabla elaborada por autora)
Turbiedad del Agua Cruda vs.% Remocion
82
84,1
86,2
88,3
90,4
92,5
4 4,5 5 5,5 6 6,5 7
Turbiedad del Agua Cruda- NTU
% R
emoc
ion
% Remocion floc y Sed% Remoc de filtros
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
174
GRAFICO 37. En la Figura, se indica el porcentaje de remoción de floculadores, sedimentadotes, y el porcentaje de remoción del filtro 1
(Realizado por autora)
FILTRO # 2 Cálculos: % Remoción = (To - Tf) 100 To To = Turbiedad inicial
Tf = Turbiedad final
Turbiedad agua cruda % Remoción floculador y
Sedimentador % Remoción de filtros5,47 80,38 89,52 4,92 84,94 91,68 6,79 82,16 93,58 6,72 91,88 90,37
Promedio de % de Remoción de Filtro 2 91,29 TABLA 37. Datos obtenidos de turbiedad en filtro 2
(Tabla elaborada por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
175
Turbiedad del Agua Cruda vs.% Remocion
80,0082,1084,2086,3088,4090,5092,60
4 4,5 5 5,5 6 6,5 7
Turbiedad de Agua Cruda NTU
% d
e Re
moc
ion
% Remocion floc y Sed% Remoc de filtros
GRAFICO 38. En la Figura, se indica el porcentaje de remoción de floculadores, sedimentadotes, y el porcentaje de remoción del filtro 2
(Realizado por autora)
FILTRO # 3 Cálculos: % Remoción = (To - Tf) 100 To To = Turbiedad inicial
Tf = Turbiedad final
Turbiedad agua cruda % Remoción floculador y
Sedimentador % Remoción de
filtros 5,47 80,38 87,83 3,75 66,40 88,04 13,20 86,97 92,87 6,38 78,97 95,30
Promedio de % de Remoción de Filtro 3 91,01 TABLA 38. Datos obtenidos de turbiedad en filtro 3
(Tabla elaborada por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
176
Turbiedad del Agua Cruda vs.% Remocion
78,0080,1082,2084,3086,4088,5090,6092,70
3 5 7 9 11 13
Turbiedad del Agua Cruda- NTU
% d
e R
emoc
ion
% Remocion floc y Sed% Remoc de filtros
GRAFICO 39. En la Figura, se indica el porcentaje de remoción de floculadores, sedimentadotes, y el porcentaje de remoción del filtro 3
(Realizado por autora)
FILTRO # 4 Cálculos: % Remoción = (To - Tf) 100 To To = Turbiedad inicial
Tf = Turbiedad final
Turbiedad agua cruda % Remocion floc y Sed % Remoc de filtros
5,47 86,23 82,54 3,75 79,73 91,89 13,20 86,97 92,91 6,72 80,54 92,53
Promedio de % de Remoción de Filtro 4 89,97 TABLA 39. Datos obtenidos de turbiedad en filtro 4
(Tabla elaborada por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
177
Turbiedad del Agua Cruda vs.% Remocion
78,0080,1082,2084,3086,4088,5090,6092,70
3 5 7 9 11 13
Turbiedad del Agua Cruda- NTU
% d
e Re
moc
ion
% Remocion floc y Sed% Remoc de filtros
GRAFICO 40. En la Figura, se indica el porcentaje de remoción de floculadores, sedimentadotes, y el porcentaje de remoción del filtro 4
(Realizado por autora)
FILTRO # 5 Cálculos: % Remoción = (To - Tf) 100 To To = Turbiedad inicial
Tf = Turbiedad final
Turbiedad agua cruda % Remocion floc y Sed % Remoc de filtros 5,47 75,1371 88,75 3,970 74,8363 86,4384 7,61 80,8147 87,5342 5,98 86,2207 96,2376
Promedio de % de Remoción de Filtro 5 89,74 TABLA 40. Datos obtenidos de turbiedad en filtro 5
(Tabla elaborada por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
178
Turbiedad del Agua Cruda vs.% Remocion
74
78,1
82,2
86,3
90,4
94,5
3,5 4 4,5 5 5,5 6 6,5 7 7,5 8
Turbiedad del Agua Cruda- NTU
% d
e Re
moc
ion % Remocion floc y
Sed% Remoc de filtros
GRAFICO 41. En la Figura, se indica el porcentaje de remoción de floculadores, sedimentadores, y el porcentaje de remoción del filtro 5
(Realizado por autora)
FILTRO # 6
Cálculos: % Remoción = (To - Tf) 100 To To = Turbiedad inicial
Tf = Turbiedad final
Turbiedad agua cruda % Remocion floc y Sed % Remoc de filtros 5,47 75,14 89,56 3,97 76,60 91,79 7,61 80,81 83,15 5,98 86,89 92,53
Promedio de % de Remoción de Filtro 6 89,26
TABLA 41. Datos obtenidos de turbiedad en filtro 6 (Tabla elaborada por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
179
Turbiedad del Agua Cruda vs.% Remocion
74,00
78,10
82,20
86,30
90,40
3 4 5 6 7 8
Turbiedad del Agua Cruda- NTU
% d
e R
emoc
ion
% Remocion floc y Sed% Remoc de filtros
GRAFICO 42. En la Figura, se indica el porcentaje de remoción de floculadores, sedimentadores, y el porcentaje de remoción del filtro 6
(Realizado por autora)
PORCENTAJE PROMEDIO DE REMOCION DE LOS FILTROS DE LA
PLANTA DE TRATAMIENTO DE AGUA POTABLE DE UCHUPUCUN
Filtro % Remoción Promedio 1 89,68 2 91,29 3 91,01 4 89,97 5 89,74 6 89,26
TABLA 42. Datos obtenidos del % de remoción de turbiedad en filtros (Tabla elaborada por autora)
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
180
1 2 3 4 5 6
8586,187,288,389,490,591,6
% Remoción Promedio
Filtros
% Remoción Promedio de Turbiedad en filtros
GRAFICO 43. En la Figura se observan los valores de porcentajes promedio
de los filtros evaluados en la planta de tratamiento de Uchupucún. (Realizado por autora)
GRAFICO 43
Filtro # 1
% Remoción promedio = 89,68
Filtro #2
% Remoción promedio = 91,29
Filtro # 3
% Remoción promedio = 91,01
Filtro # 4
% Remoción promedio = 89,97
Filtro # 5
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
181
% Remoción promedio = 89,74
Filtro # 6
% Remoción promedio = 89,26
De acuerdo a lo evaluado se indica que el filtro que mejor trabaja es
el numero 2, quedando el filtro 6 como el que menor porcentaje de
remoción presenta.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
182
Capitulo 4
4.- CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
4.1.- CONCLUSIONES
El trabajo practico realizado para recolectar información, en la planta de
tratamiento de agua potable - Uchupucún de la ciudad de Azogues
demuestra un normal comportamiento de acuerdo a los estándares
establecidos con la Norma Técnica Ecuatoriana INEN. 1108: 2006.
Es necesario tomar decisiones sobre determinados hechos alrededor de
las captaciones (por ejemplo: contaminaciones antropogénicas y
zoogénicas localizadas muy cerca de dicha captación). Se debe realizar
estudios y análisis de control de calidad para tener datos sobre un
seguimiento periódico de las fuentes y así llegar a obtener agua de mejor
calidad.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
183
Conclusiones del Análisis Bacteriológico:
Dentro del análisis microbiológico se obtuvo un excelente porcentaje de
remoción tanto para coliformes totales como para coliformes
termorresistentes; presentando un máximo de 1600 NMP/100ml de
coliformes en el agua cruda y valores de <1,1 NMP/100ml en el Agua
Tratada de la Planta de Uchupucún, en el agua de Tanques de
almacenamiento, y redes domiciliarias. Llegando a cumplir con los
requerimientos establecidos en la Norma Técnica Ecuatoriana INEN
1108: 2006.
En los Filtros el porcentaje de remoción presenta valores que
comenzaron con un máximo de 140 NMP/100ml, disminuyendo hasta 4
NMP/100ml. Alcanzándose un mejor porcentaje de remoción de
Coliformes Totales en el filtro 2, siendo de 88,18%.
De igual manera presenta un mejor porcentaje de remoción de
Coliformes Termorresistentes en el filtro 4, mostrando un valor de
89,278%.
El estudio bacteriológico del agua en los Sedimentadores, demuestra una
disminución de Coliformes Totales y Termorresistentes en comparación
con el Agua Cruda, en cuyos sedimentadores se observa un máximo de
500 NMP/100ml y un mínimo 80 NMP/100ml.
Estos valores elevados de contaminación microbiológica se obtuvieron
por causa de la alargada sequía que afecto las fuentes de captaciones,
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
184
ya que al disminuir dichas fuentes, arrastraban consigo todo tipo de
material contaminante que estaba a su paso, consiguiéndose recuentos
semejantes a los realizados diariamente como control de calidad por las
profesionales que laboran en la Planta de Tratamiento de Agua Potable
de Uchupucún.
Conclusiones del Análisis Físico-Químico:
En lo que respecta al análisis Físico-Químico los parámetros estudiados
fueron los siguientes:
Cloro: Las pruebas realizadas dentro de la planta de tratamiento
presenta valores de cloro residual que van desde 1,1 hasta 1,2 mg/l.
estos valores disminuyen con el transcurso del agua mediante las
tuberías, al realizar el muestreo en redes domiciliarias se obtuvieron
valores de 0,5 mg/l, el valor que más veces se repite es 0,8 mg/l,
Cumpliendo con la Norma Técnica Ecuatoriana 1108: 2006.
Turbiedad: Los valores con los que se inició el muestreo son pequeños,
se comenzó con una turbiedad de 5,47 NTU, presentando como máximo
un valor de 13,2 NTU. Estos valores disminuyeron notablemente luego
del tratamiento realizado en la planta, es así que se consiguió una
turbiedad máxima de 0,545 NTU en la planta de tratamiento. De la misma
manera las redes domiciliarias presentan una turbiedad máxima de 0,930
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
185
NTU, por lo tanto las turbiedades obtenidas en los dos casos están
dentro de lo Normado en la INEN 1108: 2006. La cual señala como
máximo tolerable 5 NTU.
En cuanto a la Turbiedad obtenida en sedimentadores también manifiesta
una notable disminución mostrando un máximo de 3,080 NTU, esto
aconteció los días en que el agua cruda exhibe un mínimo de Turbiedad,
demostrando que mientras menos turbiedad presenta el agua cruda mas
dificultoso es obtener valores disminuidos de turbiedad en el agua
tratada.
Color: En cuanto a este parámetro es el que mejor resultado presenta,
ya que disminuyó totalmente de un máximo de 43 UC hasta llegar a 0
UC, Tanto en el agua tratada del tanque de almacenamiento de
Uchupucún, filtros y redes de distribución domiciliaria.
Lo que indica un excelente funcionamiento de las etapas de PRE-
tratamiento, y la dosificación de los químicos coagulantes. Por lo citado,
se cumple con los límites establecidos por la Norma INEN 1108: 2006.
Al igual que la turbiedad el color en los sedimentadores disminuyó de
una manera intensa, dando valores entre 0 y 2 UC.
Conductividad: Los valores obtenidos en el Agua Cruda estuvieron
entre 188 y 256 �s/cm, mostrando alzas y bajas durante la época de
muestreo, dichos valores equivalen a valores aproximados entre 94 y 128
mg/l de Sólidos Totales disueltos.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
186
En el Agua Tratada se obtiene valor promedio de 198,7 �s/cm, que
equivale aproximadamente a 99,3 mg/l, que esta por debajo de lo exigido
en la Norma Técnica Ecuatoriana que es un máximo de 1000mg/l.
pH: Lo que respecta al Agua Cruda se obtuvieron valores constates con
escasa diferencia en todos los muestreos manteniéndose en un valor
promedio de 7,6.
En el Agua tratada, tanto del tanque de almacenamiento de Uchupucún y
redes de distribución domiciliaria los valores de pH disminuyeron y se
mantuvieron en valores semejantes con un promedio de 7,3, dicho valor
disminuye debido al sulfato empleado como coagulante en la etapa de
tratamiento al tener la propiedad de disminuir el pH.
Cumpliendo con el valor establecido por la Norma Técnica Ecuatoriana
1108: 2008, correspondiente al agua tratada.
Conclusión de la prueba de Trazadores
Al realizar la prueba de trazadores en el tanque de Floculación 1 se
obtuvieron los siguientes resultados:
– Tiempo medio de retención (t)=.1200 segundos que equivale a 20
minutos, que es el mismo tiempo con el que se ha venido trabajando
a nivel de laboratorio con la prueba de jarras, en la planta de
tratamiento Uchupucún
– Conductividad del agua cruda (ca) = 241 �s/cm
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
187
– Conductividad obtenida durante la prueba (c) = 1190 �s/cm
– Tiempo teórico de retención (to) = 1079,25 segundos que equivale a
17,98 minutos
– Se obtienen las siguientes fracciones de flujo:
o Fracción de flujo pistón = 93%
o Fracción de flujo de tipo mezcla completa = 0%
o Fracción correspondiente a zonas muertas = 7%
o Predominio de flujo pistón (93%) sobre fracción de zonas
muertas (7%). Un floculador debe tener por lo menos 70% de
flujo pistón. Si el funcionamiento del flujo pistón es menor del
70 % decimos que el trabajo de los floculadores es malo, caso
contrario el funcionamiento de las cámaras de retención será
bueno.
En el tanque de Floculación 2 se obtuvieron los siguientes resultados:
– Tiempo medio de retención (t)=.1200 segundos que equivale a 20
minutos, que al igual que el tanque de floculación 1 es el mismo
tiempo con el que se ha venido trabajando a nivel de laboratorio con
la prueba de jarras, en la planta de tratamiento Uchupucún
– Conductividad del agua cruda (ca) = 241 �s/cm
– Conductividad obtenida durante la prueba (c) = 1187 �s/cm
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
188
– Tiempo teórico de retención (to) = 1023,58 segundos que equivale a
17,05 minutos.
– Se obtienen las fracciones de flujo:
o Fracción de flujo pistón = 90%
o Fracción de flujo de tipo mezcla completa = 0%
o Fracción correspondiente a zonas muertas = 10%
– Predominio de flujo pistón (90%) sobre fracción de zonas muertas
(10%).
– Conclusión de porcentaje de remoción de turbiedad en las PRE-
etapas de tratamiento
Con los datos que se obtuvieron se concluye que los filtros de la planta
de tratamiento de Uchupucún realizan su trabajo de manera correcta de
acuerdo a lo esperado para la obtención de un agua potable de calidad,
ya que superan el 90%.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
189
4.2.- RECOMENDACIONES
Luego de concluido el estudio se sugiere:
Entubar el agua cruda desde la captación para evitar posibles
contaminaciones durante el trayecto, y así agilitar el proceso de
potabilización.
Realizar un mantenimiento permanente de las tuberías que conducen el
agua tratada desde la planta de tratamiento hasta las redes domiciliarias,
para asegurar y garantizar su calidad.
Efectuar de manera continua curvas de calibración para la dosificación de
químicos empleados en las etapas de tratamiento, certificando así su
dosis utilizada.
En cuanto a la norma INEN 1108, que sirve de guía para el trabajo diario,
se recomienda al personal de laboratorio utilizar la reformada en este año
(norma INEN 1108: 2010).
Trabajar con un tanque dosificador de menor tamaño y cantidad tanto
para el sulfato de aluminio como para el polímero, para que una vez
realizada la curva de calibración pueda ser aplicada con facilidad.
Se recomienda así mismo realizar la mezcla de dicho polímero en el
tanque mezclador que se encuentra en la planta alta del laboratorio.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
190
5.- BIBLIOGRAFÍA POR ORDEN DE APARICIÓN
1. MODULO DISEÑO SAP – Filtración Rápida- Aspectos fisicoquímicos
de la calidad del agua Pág., 2
2. MODULO DISEÑO SAP – Filtración Rápida- Aspectos biológicos de
la calidad del agua Bióloga Margarita Aurazo de Zumaeta- pg, 9
3. MODULO DISEÑO SAP – Filtración Rápida- Aspectos fisicoquímicos
de la calidad del agua - Quím. Ada Barrenechea Martel – páginas 4-
16; 41
4. Norma Técnica Ecuatoriana INEN 1108: 2005
5. Emapal. 2009. Plan Estratégico. Documento preliminar
6. MODULO DISEÑO SAP – Procesos unitarios y plantas de
tratamiento - Ing. Lidia de Vargas- Pág. 7
7. MODULO DISEÑO SAP – Filtración Rápida- Aspectos fisicoquímicos
de la calidad del agua - Quím. Ada Barrenechea Martel – Pág., 51
8. MANUAL IV Evaluación del Tratamiento de Agua; Preparado por: Ing.
José Pérez Carrión, Consultor OPS, Ing. Ligia Cánepa de Vargas.
Oficial del programa de mejoramiento de la calidad del agua para el
consumo de Humano, Junio1992
9. MANUAL DTIPA # C- 5; CEPIS; PROGRAMA DE PROTECCION DE
LA SALUD AMBIENTAL HPE; EVALUACION DE PLANTAS DE
TRATAMIENTO DE AGUA; Tomo I; Diciembre1984. Pág. 25, 29
10. MODULO DISEÑO SAP - Coagulación - Quím. Ada Barrenechea
Martel – Pág.2 – 45
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
191
11. MANUAL DTIPA # C- 5; CEPIS; PROGRAMA DE PROTECCION DE
LA SALUD AMBIENTAL HPE; EVALUACION DE PLANTAS DE
TRATAMIENTO DE AGUA; Tomo I; Diciembre1984. Pág. 121
12. MODULO DISEÑO SAP – Filtración - Ing. Víctor Maldonado Yactayo
– Pág.2, 3
13. MODULO DISEÑO SAP – Desinfección - Quím. Ada Barrenechea
Martel, Ing. Lidia de Vargas – Pág.2, 3 ;20,21
14. MANUAL EMAPAL, Azogues – Ecuador
15. MANUAL DTIPA # C- 5; CEPIS; PROGRAMA DE PROTECCION DE
LA SALUD AMBIENTAL HPE; EVALUACION DE PLANTAS DE
TRATAMIENTO DE AGUA; Tomo I; Diciembre1984 Pág.32
16. MODULO DISEÑO SAP – Análisis de flujos y factores que
determinan los periodos de retención – Pág.28 – 35
17. MATERIALES Y METODOS – Planta de tratamiento de agua potable
Uchupucún
18. ETAPA - PROGRAMA DE CONTROL DE CALIDAD DE AGUA PARA
CONSUMO; Dirección técnica de agua potable y alcantarillado unidad
de control de calidad del agua, Enero del 2000. Basado en la Norma
INEN 1108.
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
192
ANEXOS
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual Color pH Alcalinidad
pH:7,6 1 10 20 minutos 4 4,01 25 7,4 106 Color: 41 2 15 20minutos 4 2,10 13 7,3 106
Turbiedad: 6,80 3 20 20minutos 4 2,12 13 7,3 105 Alc Total: 108 4 25 20 minutos 4 2,16 13 7,2 105 Temp: 11,6 ºC 5 30 20 minutos 4 3,29 20 7,2 104
Fecha:9/11/2009 6 40 20 minutos 4 2,35 14 7,2 104
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual Color pH Alcalinidad
pH:7,6 1 15 0,04 20 minutos 6 4,21 25 7,3 102 Color: 41 2 15 0,05 20minutos 6 4,42 27 7,3 101
Turbiedad: 6,80 3 15 0,06 20minutos 6 3,89 23 7,3 101 Alc Total: 108 4 15 0,07 20 minutos 6 4,46 27 7,3 99 Temp: 11,6 ºC 5 15 0,08 20 minutos 6 3,57 21 7,3 98
Fecha:9/11/2009 6 15 0,09 20 minutos 6 2,06 12 7,3 97
Anexo 1 TABLAS DE MUESTREO PARA EL CONTROL DE CALIDAD DEL AGUA
PRUEBA DE JARRAS
Prueba # 1
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
194
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual – NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH:7,6 1 10 0,09 20 minutos 6 3,16 19 7,5 103 Color: 41 UC 2 15 0,09 20minutos 6 1,43 9 7,4 101
Turbiedad: 6,80 NTU 3 20 0,09 20minutos 6 1,9 11 7,4 98
Alcalinidad Total: 108 mg/l 4 25 0,09 20 minutos 6 2,89 17 7,4 98 Temperatura:
11,6 ºC 5 30 0,09 20 minutos 6 2,27 14 7,3 97 Fecha:9/11/2009 6 40 0,09 20 minutos 6 1,58 9 7,3 96
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
195
Prueba # 2
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual - NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH:7,6 1 10 20 minutos 4 2,84 17 7,6 118 Color : 26 UC 2 15 20minutos 6 1,93 12 7,6 116
Turbiedad: 4,11 NTU 3 20 20minutos 4 2,92 18 7,6 116
Alc Total: 113mg/l 4 25 20 minutos 4 2,00 12 7,6 115 Temp: 13,6ºC 5 30 20 minutos 4 2,94 18 7,5 114
Fecha:10/11/2009 6 40 20 minutos 4 2,54 15 7,5 114
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floc
Escala Willcomb
Turbiedad Residual - NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH:7,6 1 15 0,04 20 minutos 6 2,81 17 7,6 118 Color : 26 UC 2 15 0,05 20minutos 6 1,94 12 7,6 118
Turbiedad: 4,11 NTU 3 15 0,06 20minutos 6 1,74 10 7,6 118
Alc Total: 113mg/l 4 15 0,07 20 minutos 6 1,53 9 7,6 118 Temp: 13,6ºC 5 15 0,08 20 minutos 6 1,49 13 7,6 118
Fecha:10/11/2009 6 15 0,09 20 minutos 6 2,13 9 7,6 118
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
196
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculación
Escala Willcomb
Turbiedad Residual - NTU
Color – UC pH
Alcalinidad mg/l
pH:7,6 1 10 0,08 20 minutos 6 1,97 12 7,7 113 Color : 26 UC 2 15 0,08 20minutos 6 1,05 7 7,7 113
Turbiedad: 4,11 NTU 3 20 0,08 20minutos 6 1,23 6 7,6 112
Alc Total: 113mg/l 4 25 0,08 20 minutos 6 1,33 8 7,6 111 Temp: 13,6ºC 5 30 0,08 20 minutos 6 1,24 7 7,5 111
Fecha:10/11/2009 6 40 0,08 20 minutos 6 1,41 8 7,5 109
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
197
Prueba # 3
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación
Floculo Escala
WillcombTurbiedad
Residual – NTUColor -
UC pH Alcalinidad
mg/l pH:7,7 1 10 20 minutos 4 4,24 25 7,6 103
Color : 28 2 15 20minutos 4 2,88 17 7,6 101 Turbiedad: 4,64 3 20 20minutos 4 1,86 11 7,6 99 Alc Total: 104 4 25 20 minutos 4 2,08 13 7,5 99 Temp: 13,6ºC 5 30 20 minutos 4 1,96 12 7,5 97
Fecha:11/11/2009 6 40 20 minutos 4 1,91 12 7,4 97
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación
Floculo Escala
WillcombTurbiedad
Residual – NTUColor -
UC pH Alcalinidad
mg/l pH:7,7 1 20 0,04 20 minutos 4 2,27 14 7,6 102
Color : 28 2 20 0,05 20minutos 4 2,44 15 7,6 101 Turbiedad: 4,64 3 20 0,06 20minutos 4 2,31 14 7,6 99 Alc Total: 104 4 20 0,07 20 minutos 4 2,48 16 7,5 98 Temp: 13,6ºC 5 20 0,08 20 minutos 4 1,95 11 7,5 97
Fecha:11/11/2009 6 20 0,09 20 minutos 4 1,07 6 7,5 96
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
198
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación
Floculo Escala
WillcombTurbiedad
Residual – NTUColor -
UC pH Alcalinidad
mg/l pH:7,7 1 10 0,09 20 minutos 4 4,44 27 7,6 104
Color : 28 2 15 0,09 20minutos 6 2,03 12 7,6 101 Turbiedad: 4,64 3 20 0,09 20minutos 6 0,88 5 7,5 100 Alc Total: 104 4 25 0,09 20 minutos 6 0,92 7 7,5 99 Temp: 13,6ºC 5 30 0,09 20 minutos 6 1,12 8 7,4 99
Fecha:11/11/2009 6 40 0,09 20 minutos 6 1,77 11 7,4 98
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
199
Prueba # 4
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual – NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7,8 1 10 20 minutos 2 4,11 32 7,7 112 Color: 40 2 15 20minutos 6 1,86 1 7,7 110
Turbiedad: 6,22 3 20 20minutos 6 1,07 1 7,6 107 Alc Total: 113 4 25 20 minutos 6 1,31 1 7,6 106 Temp: 14,1 ºc 5 30 20 minutos 6 1,76 1 7,4 106
Fecha:13/11/2009 6 40 20 minutos 6 2,51 10 7,4 104
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual – NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7,8 1 15 0,04 20 minutos 6 2,13 6 7,6 106 Color: 40 2 15 0,05 20minutos 6 1,86 1 7,6 106
Turbiedad: 6,22 3 15 0,06 20minutos 6 1,32 1 7,6 105 Alc Total: 113 4 15 0,07 20 minutos 6 0,861 1 7,6 105 Temp: 14,1 ºc 5 15 0,08 20 minutos 6 1,2 1 7,6 108
Fecha:13/11/2009 6 15 0,09 20 minutos 6 0,533 1 7,6 105
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
200
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual – NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7,8 1 10 0,09 20 minutos 4 4,92 26 7,6 108 Color: 40 2 15 0,09 20minutos 6 2,77 10 7,6 108
Turbiedad: 6,22 3 20 0,09 20minutos 6 2,38 8 7,6 107 Alc Total: 113 4 25 0,09 20 minutos 6 1,98 1 7,6 107 Temp: 14,1 ºc 5 30 0,09 20 minutos 4 3,03 14 7,5 104
Fecha:13/11/2009 6 40 0,09 20 minutos 6 2,6 10 7,4 103
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
201
Prueba # 5
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual - NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7,7 1 10 20 minutos 2 3,23 20 7,7 108 Color: 42 2 15 20minutos 2 1,54 9 7,6 106
Turbiedad: 6,50 3 20 20minutos 2 1,42 7 7,5 104 Alc Total: 118 4 25 20 minutos 2 2,91 18 7,5 103 Temp: 12,5ºC 5 30 20 minutos 2 3,63 23 7,4 102
Fecha:16/11/2009 6 40 20 minutos 2 3,75 24 7,4 101
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual - NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7,7 1 15 0,04 20 minutos 4 3,71 21 7,6 104 Color: 42 2 15 0,05 20minutos 4 3,84 25 7,5 103
Turbiedad: 6,50 3 15 0,06 20minutos 4 3,79 25 7,5 102 Alc Total: 118 4 15 0,07 20 minutos 4 3,45 22 7,5 102 Temp: 12,5ºC 5 15 0,08 20 minutos 4 3,96 26 7,5 101
Fecha:16/11/2009 6 15 0,09 20 minutos 4 1,15 7 7,5 100
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
202
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual – NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7,7 1 10 0,09 20 minutos 6 2,92 18 7,6 107 Color: 42 2 15 0,09 20minutos 6 2,05 12 7,5 106
Turbiedad: 6,50 3 20 0,09 20minutos 6 1,34 4 7,5 104 Alc Total: 118 4 25 0,09 20 minutos 6 2,16 13 7,4 104 Temp: 12,5ºC 5 30 0,09 20 minutos 6 2,45 14 7,4 102
Fecha:16/11/2009 6 40 0,09 20 minutos 6 2,61 16 7,4 100
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
203
Prueba # 6
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual - NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH:7,7 1 10 20 minutos 2 3,23 21 7,6 108 Color: 24 2 12,5 20minutos 2 1,14 7 7,6 106
Turbiedad: 6,64 3 15 20minutos 2 0,967 6 7,6 105 Alc Total: 112 4 17,5 20 minutos 2 1,26 8 7,5 104 Temp: 13,3ºC 5 20 20 minutos 2 1,93 13 7,5 102
Fecha:17/11/2009 6 25 20 minutos 2 2,53 16 7,5 101
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual - NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH:7,7 1 15 0,04 20 minutos 6 1,83 12 7,6 18 Color: 24 2 15 0,05 20minutos 6 1,51 10 7,5 105
Turbiedad: 6,64 3 15 0,06 20minutos 6 1,28 8 7,5 105 Alc Total: 112 4 15 0,07 20 minutos 6 0,789 5 7,5 104 Temp: 13,3ºC 5 15 0,08 20 minutos 6 0,913 6 7,5 103
Fecha:17/11/2009 6 15 0,09 20 minutos 6 0,718 5 7,4 101
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
204
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual – NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH:7,7 1 10 0,09 20 minutos 6 2,18 14 7,6 108 Color: 24 2 12,5 0,09 20minutos 6 1,87 12 7,5 106
Turbiedad: 6,64 3 15 0,09 20minutos 6 0,815 3 7,5 106 Alc Total: 112 4 17,5 0,09 20 minutos 6 1,93 13 7,5 104 Temp: 13,3ºC 5 20 0,09 20 minutos 6 2,04 13 7,5 103
Fecha:17/11/2009 6 25 0,09 20 minutos 6 2,67 17 7,4 101
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
205
Prueba # 7
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual - NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7,6 1 10 20 minutos 2 4,64 29 7,6 101 Color: 49 2 15 20minutos 2 1,52 9 7,5 101
Turbiedad: 7,50 3 20 20minutos 2 1,94 12 7,4 99 Alc Total: 4 25 20 minutos 2 1,83 11 7,4 97
Temp: 12.1ºC 5 30 20 minutos 2 5,53 34 7,3 95 Fecha:19/11/2009 6 35 20 minutos 2 4,32 27 7,3 90
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual - NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7,6 1 15 0,04 20 minutos 4 2,36 15 7,5 103 Color: 49 2 15 0,05 20minutos 4 1,33 8 7,5 103
Turbiedad: 7,50 3 15 0,06 20minutos 4 1,57 10 7,5 102 Alc Total: 4 15 0,07 20 minutos 4 1,29 8 7,5 102
Temp: 12.1ºC 5 15 0,08 20 minutos 4 1,18 7 7,4 101 Fecha:19/11/2009 6 15 0,09 20 minutos 4 1,09 6 7,4 101
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
206
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual – NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7,6 1 10 0,09 20 minutos 4 3,03 18 7,6 105 Color: 49 2 15 0,09 20minutos 4 2,16 13 7,4 101
Turbiedad: 7,50 3 20 0,09 20minutos 4 2,32 14 7,4 101 Alc Total: 104 4 25 0,09 20 minutos 4 2,75 17 7,3 97 Temp: 12.1ºC 5 30 0,09 20 minutos 4 1,44 6 7,3 94
Fecha:19/11/2009 6 35 0,09 20 minutos 4 6,41 40 7,3 91
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
207
Prueba # 8
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual - NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH:7,6 1 10 20 minutos 6 3,78 20 7,5 108 Color: 39 2 15 20minutos 6 2,2 10 7,4 105
Turbiedad:5,98 3 20 20minutos 6 2,57 13 7,4 103 Alc Total: 112 4 25 20 minutos 6 3,13 17 7,3 100 Temp: 14,1C 5 30 20 minutos 6 4,06 21 7,2 98
Fecha:20/11/2009 6 40 20 minutos 2 5,81 30 6,9 94
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual - NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH:7,6 1 15 0,04 20 minutos 6 2,1 10 7,4 102 Color: 39 2 15 0,05 20minutos 6 1,69 0 7,3 101
Turbiedad:5,98 3 15 0,06 20minutos 6 1,87 0 7,2 102 Alc Total: 112 4 15 0,07 20 minutos 6 1,41 0 7,2 102 Temp: 14,1C 5 15 0,08 20 minutos 6 1,08 0 7,2 102
Fecha:20/11/2009 6 15 0,09 20 minutos 6 0,735 0 7,2 102
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
208
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Modificador
PH Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación
Floculo Escala
WillcombTurbiedad
Residual – NTUColor - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH:7,6 1 0,09 10 0,09 20 minutos 6 2,82 14 7,4 107 Color: 39 2 0,09 15 0,09 20minutos 6 2,09 10 7,2 104
Turbiedad:5,98 3 0,09 20 0,09 20minutos 6 3,07 17 7,1 102 Alc Total: 112 4 0,09 25 0,09 20 minutos 6 2,98 13 7,1 98 Temp: 14,1C 5 0,09 30 0,09 20 minutos 6 3,17 17 7 95
Fecha:20/11/2009 6 0,09 40 0,09 20 minutos 4 4,11 20 6,9 93
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
209
Prueba # 9
AGUA CRUDA
DOSIFICACION mg/l
Observaciones Visuales AGUA SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio PolímeroTiempo de Formación
Floculo Escala
Willcomb Turbiedad Residual –
NTU Color -
UC pH Alcalinidad
mg/l pH: 7.5 1 10 20 minutos 2 4,36 28 7,4 106
Color: 43 2 15 20minutos 4 1,49 10 7,2 105Turbiedad:
6,50 3 20 20minutos 4 2,93 19 7,2 103 Alc Total:
112 4 25 20 minutos 4 2,15 14 7,1 101 Temp: 14ºC 5 30 20 minutos 4 1,54 11 7,1 100
Fecha: 23/11//2009 6 40 20 minutos 4 1,82 12 7,1 97
AGUA CRUDA
DOSIFICACION mg/l
Observaciones Visuales AGUA SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio PolímeroTiempo de Formación
Floculo Escala
Willcomb Turbiedad Residual –
NTU Color -
UC pH Alcalinidad
mg/l pH: 7.5 1 15 0,04 20 minutos 4 4,09 25 7,3 108
Color: 43 2 15 0,05 20minutos 4 3,45 21 7,3 107 Turbiedad:
6,50 3 15 0,06 20minutos 4 3,74 23 7,3 105 Alc Total:
112 4 15 0,07 20 minutos 4 3,52 22 7,2 102 Temp: 14ºC 5 15 0,08 20 minutos 4 2,71 16 7,2 100
Fecha: 23/11//2009 6 15 0,09 20 minutos 6 1,13 7 7,2 97
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
210
AGUA CRUDA
DOSIFICACION mg/l
Observaciones Visuales
AGUA SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual - NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7.5 1 10 0,09 20 minutos 4 2,42 15 7,4 108 Color: 43 2 15 0,09 20minutos 4 1,2 5 7,3 106
Turbiedad: 6,50 3 20 0,09 20minutos 4 3,46 20 7,2 105
Alc Total: 112 4 25 0,09 20 minutos 4 3,06 18 7,1 102
Temp: 14ºC 5 30 0,09 20 minutos 4 3,71 21 7,1 100
Fecha: 23/11//2009 6 40 0,09 20 minutos 4 3,26 19 7 97
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
211
Prueba # 10
AGUA CRUDA
DOSIFICACION mg/l
Observaciones Visuales
AGUA SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual - NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7.5 1 10 20 minutos 2 4,37 28 7,5 109 Color: 43 2 15 20minutos 2 4,06 26 7,4 108
Turbiedad: 6,46 3 20 20minutos 4 1,03 6 7,3 105
Alc Total: 110 4 25 20 minutos 4 1,19 7 7,3 104
Temp: 13,4ºC 5 30 20 minutos 4 1,34 8 7,2 102 Fecha:
24/11//2009 6 40 20 minutos 4 1,58 8 7,2 99
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
212
AGUA
CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual - NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7.5 1 20 0,04 20 minutos 4 1,45 9 7,4 106 Color: 43 2 20 0,05 20minutos 4 1,23 8 7,4 104
Turbiedad: 6,46 3 20 0,06 20minutos 4 1,72 11 7,3 103
Alc Total: 110 4 20 0,07 20 minutos 4 1,7 10 7,3 102
Temp: 13,4ºC 5 20 0,08 20 minutos 4 1,34 9 7,3 102 Fecha:
24/11//2009 6 20 0,09 20 minutos 6 1,02 6 7,3 101
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
213
AGUA
CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual – NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7.5 1 10 0,09 20 minutos 4 3,84 23 7,4 106 Color: 43 2 15 0,09 20minutos 4 2,17 13 7,3 106
Turbiedad: 6,46 3 20 0,09 20minutos 4 1,18 7 7,3 104
Alc Total: 110 4 25 0,09 20 minutos 4 2,76 17 7,3 103
Temp: 13,4ºC 5 30 0,09 20 minutos 4 2,04 13 7,3 101 Fecha:
24/11//2009 6 40 0,09 20 minutos 4 2,21 15 7,2 100
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
214
Prueba # 11
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual – NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7.6 1 10 20 minutos 6 2,95 19 7,3 106 Color: 40 2 15 20minutos 6 1,62 10 7,3 104
Turbiedad: 6,12 3 20 20minutos 6 1,97 11 7,2 102
Alc Total: 108 4 25 20 minutos 6 2,05 13 7,1 101 Temp: 13,8ºC 5 30 20 minutos 6 2,42 15 7,1 99
Fecha:26/11/09 6 40 20 minutos 6 2,83 18 7 95
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual – NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7.6 1 15 0,04 20 minutos 6 1,36 8 7,3 108 Color: 40 2 15 0,05 20minutos 6 0,974 7 7,3 105
Turbiedad: 6,12 3 15 0,06 20minutos 6 0,988 7 7,2 103
Alc Total: 108 4 15 0,07 20 minutos 6 1,4 9 7,2 101 Temp: 13,8ºC 5 15 0,08 20 minutos 6 1,27 8 7,2 99
Fecha:26/11/09 6 15 0,09 20 minutos 6 0,942 6 7,2 98
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
215
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual – NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7.6 1 10 0,09 20 minutos 6 2,6 16 7,3 107 Color: 40 2 15 0,09 20minutos 6 1,06 6 7,3 106
Turbiedad: 6,12 3 20 0,09 20minutos 6 2,55 15 7,2 104
Alc Total: 108 4 25 0,09 20 minutos 6 2,17 13 7,2 102 Temp: 13,8ºC 5 30 0,09 20 minutos 6 2,02 12 7,2 101
Fecha:26/11/09 6 40 0,09 20 minutos 6 2,16 13 7,1 98
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
216
Prueba # 12
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual – NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7.8 1 10 20 minutos 2 5,24 34 7,5 100 Color: 49 2 15 20minutos 4 1,09 7 7,4 96
Turbiedad: 7,03 3 20 20minutos 4 2,72 17 7,3 91
Alc Total: 100 4 25 20 minutos 4 1,16 8 7,2 89 Temp: 14,5ºC 5 30 20 minutos 4 2,07 13 7,2 84
Fecha:30/11/09 6 40 20 minutos 4 2,1 13 7,2 79
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual – NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7.8 1 15 0,04 20 minutos 6 1,22 8 7,4 98 Color: 49 2 15 0,05 20minutos 6 0,976 6 7,4 96
Turbiedad: 7,03 3 15 0,06 20minutos 6 0,86 5 7,4 94
Alc Total: 100 4 15 0,07 20 minutos 6 0,972 6 7,4 92 Temp: 14,5ºC 5 15 0,08 20 minutos 6 0,977 6 7,4 88
Fecha:30/11/09 6 15 0,09 20 minutos 6 0,716 4 7,4 84
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
217
AGUA CRUDA DOSIFICACION
mg/l Observaciones
Visuales AGUA
SEDIMENTADA
Nº Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual – NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7.8 1 10 0,09 20 minutos 4 4,59 27 7,6 98 Color: 49 2 15 0,09 20minutos 6 1,94 9 7,4 94
Turbiedad: 7,03 3 20 0,09 20minutos 6 1,34 8 7,4 90
Alc Total: 100 4 25 0,09 20 minutos 6 1,76 9 7,4 86 Temp: 14,5ºC 5 30 0,09 20 minutos 6 1,15 6 7,3 82
Fecha:30/11/09 6 40 0,09 20 minutos 6 2,08 12 7,2 78
Prueba # 13
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
218
AGUA CRUDA
DOSIFICACION mg/l
Observaciones Visuales
AGUA SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual – NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7.6 1 10 20 minutos 4 2,25 14 7,7 100 Color: 41 2 15 20minutos 4 1,09 6 7,6 96
Turbiedad: 7,75 3 20 20minutos 4 4,07 24 7,5 94
Alc Total: 105 4 25 20 minutos 4 3,71 22 7,4 91 Temp: 13,2ºC 5 30 20 minutos 4 6,11 37 7,4 90 Fecha:1/12/09 6 40 20 minutos 4 3,65 22 7,3 90
AGUA CRUDA
DOSIFICACION mg/l
Observaciones Visuales
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual – NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7.6 1 15 0,04 20 minutos 4 2,6 18 7,6 107 Color: 41 2 15 0,05 20minutos 4 2,34 18 7,5 106
Turbiedad: 7,75 3 15 0,06 20minutos 6 2,32 17 7,5 104
Alc Total: 105 4 15 0,07 20 minutos 6 1,94 12 7,4 104 Temp: 13,2ºC 5 15 0,08 20 minutos 6 1,67 12 7,4 102 Fecha:1/12/09 6 15 0,09 20 minutos 6 1,53 10 7,4 101
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
219
AGUA CRUDA
DOSIFICACION mg/l
Observaciones Visuales
AGUA SEDIMENTADA
Nº
Jarra Sulfato de Aluminio Polímero
Tiempo de Formación Floculo
Escala Willcomb
Turbiedad Residual – NTU
Color - UC pH
Alcalinidad mg/l
pH: 7.6 1 15 0,09 20 minutos 6 1,38 6 7,6 104 Color: 41 2 20 0,09 20minutos 6 3,14 18 7,5 102
Turbiedad: 7,75 3 25 0,09 20minutos 6 3,9 20 7,4 100
Alc Total: 105 4 30 0,09 20 minutos 6 4,56 24 7,3 99 Temp: 13,2ºC 5 35 0,09 20 minutos 6 1,04 5 7,3 98 Fecha:1/12/09 6 45 0,09 20 minutos 6 2,75 17 7,2 96
Anexo 2 - TABLAS DE MUESTREO PARA EL CONTROL DE CALIDAD DEL AGUA
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
220
DETERMINACION DE COLIFORME TOTAL Y FECAL
P. Presuntiva (24-48h, 35 ° C)
P. Confirmativa Coliforme Fecal (24h. 44.5 ° C)
Nº Fecha de Procedencia Tiempo de incubación Prueba
D I L U C I O N E S CODIGO NMP/100ML
Análisis Horas 10 ml 1 ml
10 -1 ml
10-2 ml
10-3 ml
09/11/2009 Ingreso 24 Total 5/5 5/5 2/5
1 Planta Uchupucún 48 552 500
24 Fecal 5/5 5/5 2/5 Cl2 0,0 24 552 500
Sedimentador 1 24 Total 5/5 2/5 2/5
2 Planta Uchupucún 48 522 90
24 Fecal 5/5 2/5 2/5 Cl2 0,0 24 522 90
Sedimentador 2 24 Total 5/5 3/5 0/5
3 Planta Uchupucún 48 530 80
24 Fecal 5/5 3/5 0/5 Cl2 0,0 24 530 80
Sedimentador 3 24 Total 5/5 4/5 1/5
4 Planta Uchupucún 48 541 170
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
221
24 Fecal 5/5 4/5 1/5 Cl2 0,0 24 541 170
Sedimentador 4 24 Total 5/5 3/5 0/5
5 Planta Uchupucún 48 530 80
24 Fecal 5/5 3/5 0/5 Cl2 0,0 24 530 80 Filtro 1 24 Total 5/5 3/5 0/5
6 Planta Uchupucún 48 530 80
24 Fecal 5/5 3/5 0/5 Cl2 0,0 24 530 80 Filtro 2 24 Total 5/5 1/5 0/5
7 Planta Uchupucún 48 510 30
24 Fecal 5/5 1/5 0/5 Cl2 0,0 24 510 30
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
222
DETERMINACION DE COLIFORME TOTAL Y FECAL
P. Presuntiva (24-48h, 35 ° C)
P. Confirmativa Coliforme Fecal (24h. 44.5 ° C)
Nº Fecha de Procedencia Tiempo de incubación Prueba
D I L U C I O N E S CODIGO NMP/100ML
análisis Horas 10 ml 1 ml
10 -1 ml
10-2 ml 10-3 ml
Filtro 3 24 Total 5/5 3/5 0/5
8 Planta Uchupucún 48 530 80
24 Fecal 5/5 3/5 0/5 Cl2 0,0 24 530 80 Filtro 4 24 Total 5/5 2/5 0/5
9 Planta Uchupucún 48 520 50
24 Fecal 5/5 2/5 0/5 Cl2 0.0 24 520 50 Filtro 5 24 Total 5/5 3/5 2/5
10 Planta Uchupucún 48 532 140
24 Fecal 5/5 3/5 2/5 Cl2 0.0 24 532 140 Filtro 6 24 Total 5/5 3/5 0/5
11 Planta Uchupucún 48 530 80
24 Fecal 5/5 3/5 0/5 Cl2 0.0 24 530 80
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
223
Salida 24 Total 0/10
12 Planta Uchupucún 48 <1.1
24 Fecal 0/10 Cl2 1,1 24 <1.1 Repartidor 24 Total 0/10
13 Uchupucún 48 <1,1 24 Fecal 0/10 Cl2 1,1 24 <1,1
Tanque de 400 m3 24 Total 0/10
14 Uchupucún 48 <1,1 24 Fecal 0/10 Cl2 1,1 24 <1,1
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
224
DETERMINACION DE COLIFORME TOTAL Y FECAL
P. Presuntiva (24-48h, 35 ° C)
P. Confirmativa Coliforme Fecal (24h. 44.5 ° C)
Nº Fecha de Procedencia Tiempo de incubación Prueba
D I L U C I O N E S CODIGO NMP/100ML
análisis Horas 10 ml 1 ml
10 -1 ml
10-2 ml
10-3 ml
Tanque de 500 m3 24 Total 0/10
15 Uchupucún 48 <1,1 24 Fecal 0/10 Cl2 1 24 <1,1
Tanque de 600 m3 24 Total 0/10
16 Uchupucún 48 <1,1 24 Fecal 0/10 Cl2 1,1 24 <1,1
Tanque de 450 m3 24 Total 0/10
17 Uchupucún 48 <1,1 24 Fecal 0/10 Cl2 1 24 <1,1 10/11/2009 Ingreso 24 Total 5/5 5/5 5/5
18 Planta Uchupucún 48 555 >1600
24 Fecal 5/5 5/5 5/5 Cl2 0,0 24 555 >1600
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
225
Salida 24 Total 0/10
19 Planta Uchupucún 48 <1,1
24 Fecal 0/10 Cl2 1.1 24 <1,1 Repartidor 24 Total 0/10 <1.1
20 Uchupucún 48 24 Fecal 0/10 <1.1 Cl2 1.1 24
Tanque de 500 24 0/10 <1.1
21 Uchupucún 48 Total 24 Fecal 0/10 <1.1 Cl2 1.1 24
DETERMINACION DE COLIFORME TOTAL Y FECAL
P. Presuntiva (24-48h, 35 ° C)
P. Confirmativa Coliforme Fecal (24h. 44.5 ° C)
Nº Fecha de Procedencia Tiempo de incubación Prueba
D I L U C I O N E S CODIGO NMP/100ML
análisis Horas 10 ml 1 ml
10 -1 ml
10-2 ml
10-3 ml
Tanque de 400 24 Total 0/10 <1.1
22 Uchupucún 48 24 Fecal 0/10 <1.1 Cl2 1.1 24
Tanque de 600 24 Total 0/10 <1.1
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
226
23 Uchupucún 48 24 Fecal 0/10 <1.1 Cl2 1.2 24
Tanque de 450 24 Total 0/10 <1.1
24 Uchupucún 48 24 Fecal 0/10 Cl2 1.1 24 <1.1 11/11/2009 Ingreso 24 Total 5/5 5/5 3/5
25 Planta Uchupucún 48 5-5-3 900
24 Fecal 5/5 5/5 2/5 Cl2 0,0 24 552 500 Salida 24 0/10
26 Planta Uchupucún 48 Total <1,1
24 Fecal 0/10 Cl2 1.0 24 <1,1
Tanque 500 m3 24 Total 0/10 <1.1
27 Uchupucún 48 24 Fecal 0/10 <1.1 Cl2 1.0 24
Tanque 450 m3 24 Total 0/10 <1.1
28 Uchupucún 48 24 Fecal 0/10 <1.1 Cl2 1.0 24
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
227
DETERMINACION DE COLIFORME TOTAL Y FECAL
P. Presuntiva (24-48h, 35 ° C)
P. Confirmativa Coliforme Fecal (24h. 44.5 ° C)
Nº Fecha de Procedencia Tiempo de incubación Prueba
D I L U C I O N E S CODIGO NMP/100ML
análisis Horas 10 ml 1 ml
10 -1 ml
10-2 ml
10-3 ml
12/11/2009 Ingreso 24 Total 5/5 5/5 5/5
29 Planta Uchupucún 48 555 >1600
24 Fecal 5/5 5/5 5/5 Cl2 0.0 24 555 >1600 Salida 24 Total 0/10 <1.1
30 Planta Uchupucún 48
24 Fecal 0/10 <1.1 Cl2 1.1 24 Repartidor 24 Total 0/10 <1.1
31 Uchupucún 48 24 Fecal 0/10 <1.1 Cl2 1.0 24
Sedimentador 1 24 Total 5/5 4/5 1/5
32 Planta Uchupucún 48 541 170
24 Fecal 5/5 4/5 1/5 Cl2 0.0 24 541 170
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
228
Sedimentador 2 24 Total 5/5 5/5 2/5
33 Planta Uchupucún 48 552 500
24 Fecal 5/5 5/5 2/5 Cl2 0.0 24 552 500 Filtro 3 24 Total 2/5 0/5 0/5
34 Planta Uchupucún 48 200 4
24 Fecal 1/5 0/5 0/5 Cl2 0.0 24 100 2 Filtro 6 24 Total 3/5 0/5 0/5
35 Planta Uchupucún 48 300 8
24 Fecal 3/5 0/5 0/5 Cl2 0.0 24 300 8
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
229
DETERMINACION DE COLIFORME TOTAL Y FECAL
P. Presuntiva (24-48h, 35 ° C)
P. Confirmativa Coliforme Fecal (24h. 44.5 ° C)
Nº Fecha de Procedencia Tiempo de incubación Prueba
D I L U C I O N E S CODIGO NMP/100ML
análisis Horas 10 ml 1 ml
10 -1 ml
10-2 ml
10-3 ml
16/11/2009 Ingreso 24 Total 5/5 5/5 5/5
36 Planta Uchupucún 48 555 >1600
24 Fecal 5/5 5/5 5/5 Cl2 0.0 24 555 >1600 Salida 24 Total 0/10
37 Planta Uchupucún 48 <1.1
24 Fecal 0/10 Cl2 1.1 24 <1.1 17/11/2009 Ingreso 24 Total 5/5 5/5 5/5
38 Planta Uchupucún 48 555 >1600
24 Fecal 5/5 5/5 5/5 Cl2 0.0 24 555 >1600 Salida 24 Total 0/10
39 Planta Uchupucún 48 <1.1
24 Fecal 0/10 Cl2 1.1 24 <1.1
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
230
Repartidor 24 Total 0/10 40 Uchupucún 48 <1.1 24 Fecal 0/10 Cl2 1.0 24 <1.1
Sedimentador 3 24 Total 5/5 4/5 1/5
41 Planta Uchupucún 48 541 170
24 Fecal 5/5 4/5 1/5 Cl2 0.0 24 541 170 Filtro 1 24 Total 4/5 1/5 0/5
42 Planta Uchupucún 48 410 17
24 Fecal 2/5 0/5 0/5 Cl2 0.0 24 200 4
DETERMINACION DE COLIFORME TOTAL Y FECAL
P. Presuntiva (24-48h, 35 ° C)
P. Confirmativa Coliforme Fecal (24h. 44.5 ° C)
Nº Fecha de Procedencia Tiempo de incubación Prueba
D I L U C I O N E S CODIGO NMP/100ML
análisis Horas 10 ml 1 ml
10 -1 ml
10-2 ml
10-3 ml
18/11/2009 Ingreso 24 Total 5/5 5/5 5/5 43 Planta Uchupucún 48 555 >1600 24 Fecal 5/5 5/5 5/5 Cl2 0.0 24 555 >1600 Salida 24 Total 0/10
44 Planta Uchupucún 48 <1.1
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
231
24 Fecal 0/10 Cl2 1.2 24 <1.1 Sedimentador 4 24 Total 5/5 4/5 1/5
45 Planta Uchupucún 48 541 170 24 Fecal 5/5 4/5 1/5 Cl2 0.0 24 541 170 Filtro 2 24 Total 4/5 1/5 0/5
46 Planta Uchupucún 48 410 17 24 Fecal 2/5 0/5 0/5 Cl2 0.0 24 200 4 Borrero Charasol -
47 Familia N.N 48 <2,2 24 Fecal 0/5 Cl2 0.6 24 <2,2 Borrero Charasol -
48 Familia Ruiz Saquisilí 48 <2,2
24 Fecal 0/5 Cl2 0.8 24 <2,2
Banco de la Vivienda - 24 Total 0/5
49 Dr. Pesantez 48 <2,2 24 Fecal 0/5 Cl2 0.8 24 <2,2
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
232
DETERMINACION DE COLIFORME TOTAL Y
FECAL
P. Presuntiva (24-48h, 35 ° C)
P. Confirmativa Coliforme Fecal (24h. 44.5 ° C)
Nº Fecha de Procedencia Tiempo de incubación Prueba
D I L U C I O N E S CODIGO NMP/100ML
análisis Horas10 ml 1 ml
10 -1 ml
10-2 ml
10-3 ml
Banco de la vivienda - 0/5
50 Familia N.N. <2,2 24 Fecal 0/5 Cl2 0.8 24 <2,2
Av. Che Guevara - 24 Total 0/5
51 Terminal Terrestre 48 <2,2
24 Fecal 0/5 Cl2 0.8 24 <2,2 Av. Ignacio Neira 24 Total 0/5
52 Funeraria San Marcos <2,2
24 Fecal 0/5 Cl2 0.6 24 <2,2 Emilio Abad - 0/5
53 Comedor Municipal 48 <2,2
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
233
24 Fecal 0/5 Cl2 0.8 24 <2,2
Calle Luis Cordero - 24 Total 0/5
54 Asadero Texas 48 <2,2 24 Fecal 0/5 Cl2 0.5 24 <2,2
Calle Luis Cordero -
55 Farmacia San Martín 2 48 <2,2
24 Fecal 0/5 Cl2 0.8 24 <2,2
Calle Bolívar y Azuay - 24 Total 0/5
56 Los Picantes 48 <2,2 24 Fecal 0/5 Cl2 0.7 24 <2,2
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
234
DETERMINACION DE COLIFORME TOTAL Y FECAL
P. Presuntiva (24-48h, 35 ° C)
P. Confirmativa Coliforme Fecal (24h. 44.5 ° C)
Nº Fecha de Procedencia Tiempo de incubación Prueba
D I L U C I O N E S CODIGO NMP/100ML
análisis Horas 10 ml 1 ml
10 -1 ml
10-2 ml
10-3 ml
Calle Vintimilla - 24 Total 0/5
57 Familia. Calvo Campoverde <2,2
24 Fecal 0/5 Cl2 0.8 24 <2,2 Colegio Luis Cordero 24 Total 0/5
58 1 de Mayo 48 <2,2 24 Fecal 0/5 Cl2 0.7 24 <2,2 23/11/2009 Salida 24 Total 0/10
59 Planta Uchupucún 48 <1.1 24 Fecal 0/10 Cl2 1.2 24 <1.1 Sedimentador 3 24 Total 5/5 4/5 1/5
60 Planta Uchupucún 48 541 170 24 Fecal 5/5 4/5 1/5 Cl2 0.0 24 541 170
Calle Bolivar y Azuay - 24 Total 0/5
61 Pollo Broster 48 <2,2
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
235
24 Fecal 0/5 Cl2 0.8 24 <2,2 Calle Luis Cordero 24 Total 0/5
62 Centro de Rayos X 48 <2,2 24 Fecal 0/5 Cl2 0.8 24 <2,2 Calle 4 de noviembre 24 Total 0/5
63 Recinto Ferial 48 <2,2 24 Fecal 0/5 Cl2 0.7 24 <2,2
DETERMINACION DE COLIFORME TOTAL Y FECAL
P. Presuntiva (24-48h, 35 ° C)
P. Confirmativa Coliforme Fecal (24h. 44.5 ° C)
Nº Fecha de Procedencia Tiempo de incubación Prueba
D I L U C I O N E S CODIGO NMP/100ML
análisis Horas 10 ml 1 ml
10 -1 ml
10-2 ml
10-3 ml
Calle Macas 24 Total 0/5 64 Sr. Raúl Abad <2,2 24 Fecal 0/5 Cl2 0.8 24 <2,2 Calle Macas 24 Total 0/5
65 Sr. Cristóbal León 48 <2,2 24 Fecal 0/5 Cl2 0.7 24 <2,2
Calle Luis González 24 Total 0/5
66 Dr. Mazzilli 48 <2,2
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
236
24 Fecal 0/5 Cl2 0.6 24 <2,2
Gimnasio Ivan Castanier 24 Total 0/5
67 48 <2,2 24 Fecal 0/5 Cl2 0.6 24 <2,2 Chacapamba 0/5
68 Flia N.N. 48 <2,2 24 Fecal 0/5 Cl2 0.6 24 <2,2
Panamericana Norte 24 Total 0/5
69 Flia N.N. 48 <2,2 24 Fecal 0/5 Cl2 0.6 24 <2,2 24/11/2009 Ingreso 24 Total 5/5 5/5 5/5
70 Planta Uchupucún 48 555 >1600 24 Fecal 5/5 5/5 5/5 Cl2 0.0 24 555 >1600
DETERMINACION DE COLIFORME TOTAL Y FECAL
P. Presuntiva (24-48h, 35 ° C)
P. Confirmativa Coliforme Fecal (24h. 44.5 ° C)
Nº Fecha de Procedencia Tiempo de incubación Prueba
D I L U C I O N E S CODIGO NMP/100ML
análisis Horas 10 ml 1 ml
10 -1 ml
10-2 ml
10-3 ml
Salida 24 Total 0/10
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
237
71 Planta Uchupucún 48 <1.1
24 Fecal 0/10 Cl2 1.1 24 <1.1
Sedimentador 1 24 Total 5/5 4/5 1/5
72 Planta Uchupucún 48 541 170
24 Fecal 5/5 4/5 1/5 Cl2 0.0 24 541 170 Filtro 3 24 Total 4/5 1/5 0/5
73 Planta Uchupucún 48 410 17
24 Fecal 2/5 0/5 0/5 Cl2 0.0 24 200 4 25/11/2009 Ingreso 24 Total 5/5 5/5 5/5
74 Planta Uchupucún 48 555 >1600
24 Fecal 5/5 5/5 5/5 Cl2 0.0 24 555 >1600 Salida 24 Total 0/10
75 Planta Uchupucún 48 <1.1
24 Fecal 0/10 Cl2 1.1 24 <1.1
Sedimentador 2 24 Total 5/5 4/5 1/5
76 Planta 48 541 170
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
238
Uchupucún 24 Fecal 5/5 4/5 1/5 Cl2 0.0 24 541 170 Filtro 4 24 Total 4/5 1/5 0/5
77 Planta Uchupucún 48 410 17
24 Fecal 2/5 0/5 0/5 Cl2 0.0 24 200 4
DETERMINACION DE COLIFORME TOTAL Y FECAL
P. Presuntiva (24-48h, 35 ° C)
P. Confirmativa Coliforme Fecal (24h. 44.5 ° C)
N° Fecha de Procedencia Tiempo de incubación Prueba
D I L U C I O N E S CODIGO NMP/100ML
análisis Horas 10 ml 1 ml
10 -1 ml
10-2 ml
10-3 ml
26/11/2009 Ingreso 24 Total 5/5 5/5 5/5
78 Planta Uchupucún 48 555 >1600
24 Fecal 5/5 5/5 5/5 Cl2 0.0 24 555 >1600 Salida 24 Total 0/10
79 Planta Uchupucún 48 <1.1
24 Fecal 0/10 Cl2 1.2 24 <1.1 Sedimentador 3 24 Total 5/5 4/5 1/5
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
239
80 Planta Uchupucún 48 541 170
24 Fecal 5/5 4/5 1/5 Cl2 0.0 24 541 170 Filtro 5 24 Total 4/5 1/5 0/5
81 Planta Uchupucún 48 410 17
24 Fecal 2/5 0/5 0/5 Cl2 0.0 24 200 4
Calle Fco. Carrasco 24 Total 0/5
82 Familia Carangui 48 <2,2
24 Fecal 0/5 Cl2 0.8 24 <2,2
Calle Fco. Carrasco 24 Total 0/5
83 Familia Peñafiel 48 <2,2
24 Fecal 0/5 Cl2 0.9 24 <2,2 Cdla. Flores 24 Total 0/5
84 Familia N.N. 48 <2,2 24 Fecal 0/5 Cl2 0.8 24 <2,2
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
240
DETERMINACION DE COLIFORME TOTAL Y FECAL
P. Presuntiva (24-48h, 35 ° C)
P. Confirmativa Coliforme Fecal (24h. 44.5 ° C)
Nº Fecha de Procedencia Tiempo de incubación Prueba
D I L U C I O N E S CODIGO NMP/100ML
análisis Horas 10 ml 1 ml
10 -1 ml
10-2 ml
10-3 ml
Av. 24 de Mayo 24 Total 0/5 85 Carpas Idrovo <2,2 24 Fecal 0/5 Cl2 0.7 24 <2,2
Banco de la Vivienda 24 Total 0/5
86 Familia Espinoza 48 <2,2
24 Fecal 0/5 Cl2 0.6 24 <2,2 Sra. Duman 24 Total 0/5
87 Ingapirca - Polígono 48 <2,2
24 Fecal 0/5 Cl2 0.6 24 <2,2
Borrero Charasol 24 Total 0/5
88 Familia N.N. 48 <2,2 24 Fecal 0/5 Cl2 0.5 24 <2,2
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
241
Av. Che Guevara 24 Total 0/5
89 Terminal Terrestre 48 <2,2
24 Fecal 0/5 Cl2 0.8 24 <2,2
Av. Ignacio Neira 24 Total 0/5
90 Free Karaoque 48 <2,2 24 Fecal 0/5 Cl2 0.7 24 <2,2 30/11/2009 Salida 24 Total 0/10
91 Planta Uchupucún 48 <1.1
24 Fecal 0/10 Cl2 1.2 24 <1.1
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
242
DETERMINACION DE COLIFORME TOTAL Y FECAL
P. Presuntiva (24-48h, 35 ° C)
P. Confirmativa Coliforme Fecal (24h. 44.5 ° C)
Nº Fecha de Procedencia Tiempo de incubación Prueba
D I L U C I O N E S CODIGO NMP/100ML
análisis Horas 10 ml 1 ml
10 -1 ml
10-2 ml
10-3 ml
Sedimentador 4 24 Total 5/5 4/5 1/5
92 Planta Uchupucún 48 541 170
24 Fecal 5/5 4/5 1/5 Cl2 0.0 24 541 170 Filtro 6 24 Total 4/5 1/5 0/5
93 Planta Uchupucún 48 410 17
24 Fecal 2/5 0/5 0/5 Cl2 0.0 24 200 4 01/12/2009 Salida 24 Total 0/10
94 Planta Uchupucún 48 <1.1
24 Fecal 0/10 Cl2 1.2 24 <1.1
Sedimentador 1 24 Total 5/5 4/5 1/5
95 Planta Uchupucún 48 541 170
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
243
24 Fecal 5/5 4/5 1/5 Cl2 0.0 24 541 170 Filtro 1 24 Total 4/5 1/5 0/5
96 Planta Uchupucún 48 410 17
24 Fecal 2/5 0/5 0/5 Cl2 0.0 24 200 4 02/12/2009 Salida 24 Total 0/10
97 Planta Uchupucún 48 <1.1
24 Fecal 0/10 Cl2 1.2 24 <1.1
Sedimentador 1 24 Total 5/5 4/5 1/5
98 Planta Uchupucún 48 541 170
24 Fecal 5/5 4/5 1/5 Cl2 0.0 24 541 170
UNIVERSIDAD DE CUENCA
AUTOR: CECIBEL IDROVO
244
DETERMINACION DE COLIFORME TOTAL Y FECAL
P. Presuntiva (24-48h, 35 ° C)
P. Confirmativa Coliforme Fecal (24h. 44.5 ° C)
Nº Fecha de Procedencia Tiempo de incubación Prueba
D I L U C I O N E S CODIGO NMP/100ML
análisis Horas 10 ml 1 ml
10 -1 ml
10-2 ml
10-3 ml
03/12/2009 Salida 24 Total 0/10
99 Planta Uchupucún 48 <1.1
24 Fecal 0/10 Cl2 1.2 24 <1.1 Repartidor 24 Total 0/10
100 Uchupucún 48 <1,1 24 Fecal 0/10 Cl2 1,1 24 <1,1