Tesis - Poblacion Microbiana
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Instituto Politcnico Nacional
CENTRO DE INVESTIGACIN EN CIENCIA
APLICADA Y TECNOLOGA AVANZADA
UNIDAD QUERTARO
POSGRADO EN TECNOLOGA AVANZADA
Estudio de la poblacin microbiana productora de gaspresente en yacimientos petroleros de Chicontepec,
Veracruz
TESIS QUE PARA OBTENER EL GRADO DE
MAESTRA EN TECNOLOGA AVANZADA
PRESENTA
IBT Ginesa Elizet Arenas Isaac
Directora de Tesis:
Dra. Norma Gabriela Rojas Avelizapa
Santiago de Quertaro, Qro. Junio de 2012.
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El presente trabajo se realiz en el Laboratorio
Bioqumica del rea de Biotecnologa en el Centro
de Investigacin en Ciencia Aplicada y TecnologaAvanzada del Instituto Politcnico Nacional bajo la
direccin de la Dra. Norma Gabriela Rojas
Avelizapa.
La sustentante fue becaria CONACyT con registro 237762, becario PIFI durante el
periodo febrerojunio 2009 y agostodiciembre 2011.
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Dedicado
A mis padres quienes siempre me alentaron a seguir
adelante y para no abandonar mis sueos.
______________________________________________________
A Guillermo Castaeda por su paciencia, amor y apoyo
incondicional.
______________________________________________________
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Agradecimientos
A la Dra. Norma G. Rojas Avelizapa por guiar mis
pasos en el camino de la investigacin.
A Regina H. Gama por hacer ms ameno el ambiente
de trabajo y armonizar con risas los das difciles.
Al CICATA Quertaro por facilitar las instalaciones
para llevar a cabo el proyecto.
A CONACyT por el apoyo econmico.A PIFI por el apoyo econmico y cientfico.
Al Instituto Mexicano del Petrleo por proporcionar el
material para llevar a cabo la investigacin.
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ndice general
Resumen ............................................................................................................... vii
Abstract ................................................................................................................ viii
Introduccin........................................................................................................... 1
Marco terico......................................................................................................... 3
2.1
Yacimientos petroleros como hbitat de microorganismos extremfilos.... 4
2.2
Produccin de biosurfactantes y cidos..................................................... 5
2.3
Produccin de biopolmeros....................................................................... 5
2.4
Metabolismo de los microorganismos fermentativos.................................. 6
2.5
Metabolismo de los microorganismos metangenos.................................. 8
2.6
Enriquecimiento de medios de cultivo para incrementar poblaciones
nativas de pozos petroleros...................................................................... 112.7
Tecnologas de MEOR en el mundo......................................................... 15
2.8
Sitio de estudio......................................................................................... 16
Justificacin........................................................................................................ 19
Hiptesis.............................................................................................................. 21
Objetivos.............................................................................................................. 23
5.1
Generales................................................................................................. 23
5.2
Particulares............................................................................................... 23
Materiales y Mtodos.......................................................................................... 17
6.1
Anlisis bromatolgico (proximal) del polvo de cocoa y melaza de caa. 26
6.2
Caracterizacin microbiolgica de la muestra de aceite........................... 26
6.2.1 Preparacin de frascos con medio de cultivo base para
microorganismos anaerobios....................................................... 27
6.2.2 Procedimiento para el cultivo de bacterias sulfato reductoras
(BSR). .......................................................................................... 29
6.2.3
Procedimiento para el cultivo de bacterias fierro reductoras (BFR).
..................................................................................................... 30
6.2.4
Procedimiento para el cultivo de bacterias nitrato reductoras
(BNR.).......................................................................................... 31
6.2.5
Procedimiento para el cultivo de bacterias metanognicas (BM) . 32
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6.3
Obtencin de microorganismos fermentadores partiendo de la muestra de
aceite. ....................................................................................................... 33
6.3.1
Preparacin del medio de cultivo con melaza (Medio M)............. 33
6.3.2
Evaluacin de la produccin de CO2 con el medio de cultivo con
polvo de cocoa (Medio C)............................................................ 34
6.4
Obtencin de microorganismos metangenos......................................... 37
6.4.1
Evaluacin de BES como inhibidor de metanognesis durante la
produccin de CO2....................................................................... 38
6.5
Evaluacin de la produccin de gas y crecimiento de los cultivos en los
tratamientos experimentales..................................................................... 39
6.5.1
Evaluacin de la produccin de CO2 y CH4.................................. 40
Resultados........................................................................................................... 44
7.1
Anlisis proximal al polvo de cocoa y melaza de caa............................. 45
7.2
Caracterizacin de los grupos microbianos presentes en muestras de
aceite........................................................................................................ 47
7.3
Cultivo de bacterias fermentadoras a partir de una muestra de aceite..... 49
7.3.1
Microbiologa de los microcosmos evaluados.............................. 54
7.4
Efecto de la concentracin de polvo de cocoa en la produccin de CO2por
el cultivo fermentativo............................................................................... 55
7.5
Obtencin de los consorcios metangenos.............................................. 58
7.5.1
Microbiologa de los cultivos evaluados....................................... 60
7.6
Evaluacin de BES como inhibidor de la metanognesis durante la
produccin de CO2................................................................................... 62
7.7
Anlisis estadstico de los tratamientos.................................................... 66
7.7.1
Concentraciones de las fuentes de carbono................................ 66
7.7.2
Efecto de la concentracin de BES sobre los cultivos
metangenos............................................................................... 68
Discusiones......................................................................................................... 718.1
Efecto de las fuentes de carbono sobre la produccin de CO2................ 72
8.2
Efecto de la adicin de BES a un cultivo productor de CH4y CO2........... 73
Conclusiones....................................................................................................... 76
Bibliografa........................................................................................................... 78
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ANEXO 1. Mtodo de nmero ms probable (NMP) para la cuantificacin de
microorganismos anaerobios en una muestra de aceite. ...................................... viii
ANEXO 2. Preparacin de agua destilada anxica. ............................................... xi
ANEXO 3. Cuantificacin de nitritos para NMP de BNR. ...................................... xii
ANEXO 4. Valores tabulados de las mediciones de gases. ................................ xiii
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ndice de Tablas
Tabla 1 Caractersticas de los principales grupos extremfilos encontrados en
yacimiento .............................................................................................. 4
Tabla 2 Composicin nutricional de la melaza de caa de azcar .................... 12
Tabla 3 Composicin nutricional del polvo de cocoa ......................................... 13Tabla 4 Pases que han realizado pruebas utilizando el metablitos microbianos
involucrados en tcnicas de MEOR...................................................... 15
Tabla 5 Formulacin del medio de cultivo base ................................................. 28
Tabla 6 Formulacin del medio de cultivo modificado para el cultivo de
microrganismos fermentadores ............................................................ 33
Tabla 7 Formulacin del medio de cultivo de microrganismos fermentadores
adicionado con polvo de cocoa ............................................................ 35
Tabla 8 Plan de experimentacin para la produccin de CO2 en cultivos
fermentativos usando diferentes concentraciones del medio de cocoa ....
............................................................................................................. 35
Tabla 9 Concentracin en mol (M) del 2-bromoetano sulfonato de sodio en los
tratamientos .......................................................................................... 39
Tabla 10 Condiciones de operacin del cromatgrafo de gases ......................... 42
Tabla 11 Anlisis proximal del polvo de cocoa y melaza de caa ....................... 45
Tabla 12 Composicin de la solucin con oligoelementos .................................. 47Tabla 13 Solucin de oligoelementos para medio de cultivo base ........................ xi
Tabla 14 Valores obtenidos de la medicin de CO2 producido por el grupo
fermentativo proveniente del aceite ...................................................... xiii
Tabla 15 Valores obtenidos de la medicin de CO2 producido por el grupo
fermentativo utilizando medio con cocoa y medio con melaza ............. xiii
Tabla 16 Valores obtenidos de la medicin de CH4en el grupo metangeno con
el inhibidor BES .................................................................................... xiv
Tabla 17 Valores obtenidos de la medicin de CO2en el grupo metanognico con
el inhibidor BES .................................................................................... xiv
Tabla 18 Valores obtenidos de la medicin de CO2en el grupo fermentativo con
inhibidor BES ......................................................................................... xv
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ndice de Grficas.
Grfica 1 Produccin de CO2 en el microcosmos que contiene el medio de
cultivo adicionado con melaza e inoculado con la muestra de aceite
......................................................................................................... 50
Grfica 2 Produccin de CO2de la primera resiembra sin aceite que presentcontaminacin. ................................................................................. 51
Grfica 3 Produccin de CO2 del cultivo fermentativo en el medio de cultivo
adicionado con melaza e inoculado con una muestra de aceite ...... 52
Grfica 4 Produccin acumulada de CO2 por el cultivo fermentativo en los
medios de cultivo sin la adicin de aceite ........................................ 53
Grfica 5 Produccin acumulada de CO2 de los cultivos fermentativos a
diferentes concentraciones de polvo de cocoa y melaza ................. 56Grfica 6 Produccin en mg/ml de CH4 y CO2del cultivo metangeno ........... 59
Grfica 7 Produccin en mg/ml de CH4por el cultivo metangeno ................. 63
Grfica 8 Produccin de CO2en mg/ml por el cultivo mixto metangeno ....... 64
Grfica 9 Produccin de CO2en mg/ml por el cultivo fermentativo ................. 65
Grfica 10 Interacciones entre las diferentes fuentes de carbono con respecto al
tiempo de incubacin ....................................................................... 67
Grfica 11 Produccin de CO2en los diferentes tratamientos comparados con la
media de todo el tratamiento ............................................................ 68
Grfica 12 Interaccin entre la produccin de CO2y CH4................................. 69
Grfica 13 Produccin de CO2en los diferentes tratamientos comparados con la
media de todo el tratamiento con un nivel de confianza 98.80%. .... 70
ndice de Figuras.
Figura 1 Sntesis de CO2, H2y acetato a partir de glucosa .............................. 7Figura 2 Rutas metablicas de la metanognesis ............................................ 9
Figura 3 Coenzima M (CoM) de la metanognesis. Estructura del 2-
bromoetano sulfonato de sodio (BES ............................................... 10
Figura 4 Ubicacin de la zona de estudio en el paleocanal de Chicontepec .. 17
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Figura 5 Arreglo entre los frascos productores de gas y la solucin recolectora
con NaOH ........................................................................................ 41
Figura 6 Microcosmos que contienen medio de cultivo adicionado con melaza
de caa e inoculado con una muestra de aceite. ............................. 49
Figura 7 Cromatograma obtenido de la inyeccin de los gases del espacio
gaseoso de los microcosmos con el cultivo fermentativo ................. 52Figura 8 Fotografa que corresponde a la Tincin Gram del grupo de bacterias
fermentativas provenientes del cultivo inoculado con aceite ............ 54
Figura 9 Fotografa de los microcosmos con medio de cultivo y adicionados
con polvo de cocoa .......................................................................... 55
Figura 10 Fotografas de los microcosmos del cultivo metangeno ................. 58
Figura 11 Cromatograma que describe el perfil de los gases detectados en la
muestra del espacio gaseoso de los microcosmos de los cultivos
metangenos. .................................................................................. 59
Figura 12 Fotografas que muestran la Tincin Gram del grupo de bacterias
metangenas provenientes de la muestra proveniente del biorreactor
anaerobio. ........................................................................................ 61
Figura 13 Fotografa de los microcosmos del cultivo metangeno adicionados
con BES al inicio del tratamiento. ..................................................... 62
ndice de Ecuaciones.
Ecuacin 1 Frmula para cuantificar la produccin de CO2en mg ..................... 41
Ecuacin 2 Ecuacin de los gases ideales ......................................................... 42
Ecuacin 3 Produccin de CO2en moles/ml ...................................................... 43
Ecuacin 4 Produccin de CH4en moles/ml ....................................................... 43
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Resumen
La recuperacin mejorada de hidrocarburos por va microbiana o MEOR por sus
siglas en ingls (Microbial Enhanced Oil Recovery) refiere al uso de
microorganismos tales como bacterias y/o arqueas, provenientes de pozos
petroleros y de suelos o bien sus subproductos para aumentar la recuperacin de
hidrocarburos hasta en un 40% en yacimientos parcialmente agotados o de muy
difcil acceso. El proyecto Aceite Terciario del Golfo de Chicontepec, es una de las
cuatro reservas probadas y posibles de crudo en Mxico; el cual tiene condiciones
poco favorables para llevar a cabo una extraccin convencional. El presente
trabajo busca evaluar y optimizar la produccin microbiana de gas (CO2) utilizando
medios de cultivos enriquecidos usando melaza y polvo de cocoa para el
crecimiento de bacterias fermentadoras provenientes del pozo petrolero Coyotes
332 de Chicontepec. La primera etapa del proyecto consisti en una
caracterizacin de los grupos microbianos del petrleo, bacterias sulfato
reductoras, bacterias nitrato reductoras, bacterias fierro reductoras, bacterias
fermentativas y bacterias metanognicas; para la cual slo se lograron aislar
bacterias fermentadoras productoras de CO2, en el primer cultivo se obtuvo 11.03
mg/ml de CO2 a los 80 das de incubacin y en la resiembra sin aceite 12.35
mg/ml de CO2a los 75 das de incubacin; la segunda etapa evalu la produccinde gases en los cultivos con melaza y cocoa, obteniendo en el medio con cocoa al
20% una mejor produccin con respecto al medio con melaza produciendo 23.09
mg/ml de CO2 a los 90 das de incubacin con respecto al de melaza que ha
producido 15.66 mg/ml en el mismo tiempo de incubacin; en la tercera etapa el
uso del inhibidor BES a una concentracin de 6mM para inhibir a los grupos
metangenos ha logrado incrementar la produccin de CO2de 8.97 a 12.74 mg/ml
y disminuir el CH4 de 1.91 a 0 a los 77 das de incubacin para ambos casos; con
este trabajo experimental se prob que el polvo de cocoa mejora la produccin de
CO2; el inhibidor BES detiene la produccin de CH4a concentraciones de 6 mM.
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Abstract
Microbial enhanced oil recovery (MEOR) refers to the use of microorganisms such
as bacteria and/or archeas or their by-products to increase the recovery of
hydrocarbons up to 40% in partially depleted or difficult access reservoirs. The
Aceite Terciario del Golfo Project in Chicontepec is one of four proven and
potential crude oil reservoirs in Mexico. This oil reservoir is not in favorable
conditions to carry out a conventional extraction procedure. Appropriate
alternatives or solutions must be developed. The aim of this study was to evaluate
and optimize the microbial production of gas (CO2) using enriched microbial culture
by using molasses and cocoa powder for the growth of fermentative bacteria that
came from the oil well "Coyotes 332" Chicontepec. The first stage of the study
involved the characterization of the microbial groups present in oil samples, suchas sulfate-reducing bacteria, nitrate-reducing bacteria, iron-reducing bacteria,
fermentative bacteria and methanogenic bacteria. Only the fermentative group was
detected, which was able to produce 11.03 mg/ml of CO2 after 80 days of
incubation; the second stage evaluated the CO2production by cultures added with
molasses and cocoa powder, as it was demonstrated. Media added with cocoa at
20% produced 23.09 mg/ml of CO2at day 90. This production is higher than CO2
production obtained with molasses (15.66 mg/ml) at 10% under similar conditions.During the last and third stage of this study, it was demonstrated that the use of an
inhibitor (BES) at a concentration of 6 mM was able to completely inhibit
methanogens, increasing the CO2 production from 8.97 to 12.74 mg/ml and
decreasing CH4production from 1.91 to 0 at day 77 for both cases. According to
the results, it was demonstrated that cocoa powder enhances the production of
CO2by the fermentative group and the BES inhibitor stops the production of CH4at
concentrations of 6 mM as it was evaluated with the methanogen group used in the
present study.
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aptulo I
Introduccin
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Captulo I IBT Ginesa E. Arenas Isaac
Estudio de la poblacin microbiana productora de gas en yacimientos petroleros de Chicontepec, Ver. 1
Actualmente se conoce que los procesos microbianos tienen varias aplicaciones
en diferentes procesos industriales y los nuevos desarrollos en el rea de la
biotecnologa, han sido utilizados para mejorarlos y as, emplearlos con diversos
fines como son la reduccin y eliminacin de contaminantes, produccin de
metablitos de inters y para la obtencin de subproductos con alto valor
agregado.
Una de las aplicaciones de estos procesos y no muy reciente, es la recuperacin
de hidrocarburos residuales presentes en yacimientos petroleros, ya que cerca del
50% del petrleo del mundo se encuentra en reservas inactivas o parcialmente
agotadas y en la mayora de los casos, el aceite tiende a ser demasiado viscoso
para ser extrado de la manera convencional o por recuperacin primaria, lo queadems ha provocado un incremento considerable en su costo (OTA, 1984). Con
este fin en pases como China, India y Turqua, se implementaron mtodos
conocidos como de recuperacin artificial o secundaria, los cuales principalmente
utilizan una bomba que inyecta a presin gas o agua (water flooding) a travs de
los yacimientos para facilitar la extraccin del crudo; sin embargo, estos mtodos
no son capaces de obtener porcentajes, considerados como mnimos por
asociaciones petroleras, aproximadamente un 35 (Ferrer, 2001), adems de que
su implementacin, operacin y mantenimiento representan altos costos para la
industria petrolera.
La tecnologa de MEOR por sus siglas en ingls (Microbial Enhanced Oil
Recovery) es un trmino general que refiere al uso de bacterias/arquea y/o de sus
subproductos, para aumentar la recuperacin de hidrocarburos hasta en un 40%
en yacimientos parcialmente agotados o de muy difcil acceso (Behllgil &
Mehmetolu, 2002).
Los primeros microorganismos estudiados para la implementacin de la tecnologa
de MEOR solamente eran cultivados y estudiados bajo condiciones de
temperaturas de 20 a 45C, salinidad menor al 10% y presiones por debajo de los
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Captulo I IBT Ginesa E. Arenas Isaac
Estudio de la poblacin microbiana productora de gas en yacimientos petroleros de Chicontepec, Ver. 2
2 x 104kPa (Mueller & Nielsen, 1996) por lo que esta tcnica era vista como no
sustentable debido a la larga inversin de tiempo que requera su estudio e
implementacin. Sin embargo, con el desarrollo de nuevas tecnologas se ha
logrado avanzar en el desarrollo de tcnicas para el aislamiento y conocimiento de
microorganismos autctonos de yacimientos muy profundos, los cuales tienen
mecanismos para enfrentar condiciones de ausencia de oxgeno (anaerobiosis),
presin, salinidad y temperaturas elevadas; entre ellos se pueden nombrar a las
bacterias sulfato reductoras (BSR), bacterias nitrato reductoras (BNR), bacterias
hierro reductoras (BFR), bacterias fermentativas y bacterias metanognicas
(Mueller & Nielsen, 1996), con ello se estudia y evala su implementacin directa
o de sus subproductos en los procesos de MEOR (Almehaideb & Zekri, 2002).
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aptulo II
Marco terico
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Captulo II IBT Ginesa E. Arenas Isaac
Estudio de la poblacin microbiana productora de gas en yacimientos petroleros de Chicontepec, Ver. 4
2.1 Yacimientos petroleros como hbitat de microorganismos
extremfilos.
Un yacimiento de petrleo est formado por fluidos tales como agua,
hidrocarburos, gases; y rocas de tipo sedimentario entre ellas arcillas y zeolitas.Los minerales de las rocas son suministro de nutrientes y constituyen un factor
importante que permite la propagacin de microorganismos, mientras que el aceite
y el agua contienen compuestos orgnicos e inorgnicos que son utilizados como
fuente de carbono y energa por microorganismos anaerobios diversos (Camper,
et al., 1993; Magot, et al., 2000).
Dadas las caractersticas anteriores, en un yacimiento se sostiene vida microbiana
que en su mayora corresponder a microorganismos termfilos, hipertermfilos,
halfilos, barfilos, quimioauttrofos y quimiohetertrofos anaerobios; en la Tabla
1 se muestra las caractersticas de los grupos extremfilos:
Tabla 1 Caractersticas de los principales grupos extremfilos encontrados enyacimiento.
Grupo microbiano Factor ambiental Caracterstica
Termfilo Temperatura 65C
Hipertermfilo Temperatura 80C
Barfilo Presin hidrosttica 500 psi
Alcalfilo pH 9
Halfilo Salinidad 2 %como NaCl
* (Madigan, et al., 2004) (Eckford & Fedorak, 2002)
Los productos metablicos generados por el conjunto de microorganismos
anaerobios encontrados en yacimientos van desde biopolmeros (Vargas, et al.,
1999), biosurfactantes y cidos orgnicos (Bryant, et al., 1993) hasta la produccin
de gases, principalmente CO2y H2los cuales son miscibles en el aceite (Behllgil
& Mehmetolu, 2002), siendo estos gases producidos por bacterias fermentativas.
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Captulo II IBT Ginesa E. Arenas Isaac
Estudio de la poblacin microbiana productora de gas en yacimientos petroleros de Chicontepec, Ver. 5
2.2 Produccin de biosurfactantes y cidos.
Existen microorganismos especficos que pueden producir biosurfactantes, estos
reducen la tensin interficial (IFT) entre el petrleo y el agua, adems de favorecerla formacin de emulsiones estables entre estos dos. Estas sustancias de igual
manera, incrementan la permeabilidad de los yacimientos debido al intercambio de
humedad que se lleva a cabo desde el centro del yacimiento, creando una
condicin ms hmeda, estudios anteriores en tecnologa del petrleo han
mostrado que Bacillus licheniformisy Clostridium sp., son capaces de lograr esta
condicin (Vargas, et al., 1999).
Algunos microorganismos son capaces de producir ciertos tipos de cidos, los
cuales causan la disolucin de las rocas y disminucin en la tensin interficial
entre el petrleo y los yacimientos salobres. La produccin in situde estos cidos
puede utilizarse en el tratamiento de varios problemas, tales como baja
permeabilidad del crudo atrapado debido a la baja permeabilidad de la roca.
2.3 Produccin de biopolmeros
Adems de clulas en crecimiento, las bacterias producen biopolmeros insolubles
en agua; si se agregan estas sustancias en zonas de alta permeabilidad se puede
mejorar la recuperacin de hidrocarburos (Muoz-Colunga, et al., 2009).
La acumulacin de estos biopolmeros en roca de alta permeabilidad (hasta 2000
md), da como resultado que el tamao de poro disminuya, forme canales que
favorezcan el flujo del agua a travs de la roca y de esta manera el agua llegue adonde se encuentra el crudo. En estudios anteriores se ha probado que la
inyeccin de Leuconostoc mesenteroides y el uso de una fuente de glucosa y
peptona reduce la porosidad de la roca (Belyaev, et al., 2004).
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Captulo II IBT Ginesa E. Arenas Isaac
Estudio de la poblacin microbiana productora de gas en yacimientos petroleros de Chicontepec, Ver. 6
2.4 Metabolismo de los microorganismos fermentativos.
La produccin de gases como H2, CO2, N2y CH4en un yacimiento, es llevada a
cabo por un conjunto de bacterias y archeas anaerbicas, que mediante un
metabolismo fermentativo son capaces de producir hidrgeno (H2), dixido decarbono (CO2), acetato y butirato, durante la fase inicial del proceso fermentativo
como se muestra en la Fig. 1 (Behllgil & Mehmetolu, 2002).
El CO2 es miscible en el petrleo logrando la disminucin de su viscosidad,
adems favorece el incremento de la presin en el yacimiento, mejorando la
movilizacin del petrleo en pozos parcialmente despresurizados (Stalcup, 2004),
buscar la produccin y/o incremento in situde este gas en pozos donde el petrleo
a recuperar tiende a ser altamente viscoso o pesado y para zonas que se
encuentran despresurizadas, es un elemento importante y juega un papel
significativo para la tecnologa MEOR (Belyaev, et al., 2004).
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Estudio de la poblacin microbiana productora de gas en yacimientos petroleros de Chicontepec, Ver. 7
Figura 1 Sntesis de CO2, H2 y acetato a partir de glucosa (Schrder, et al.,1994).
Glucosa
Glucosa-6-fosfato
Fructosa-6-fosfato
Fructosa-1,6-bifosfato
Gliceraldehdo-3-fosfatoDihidroxiacetona fosfato
2 NAD+
2 NADH
2 Fdox
2 Fdred
4 H+
2H2
ATP
ADP
ATP
ADP
2 x 1,3-Bisfosfoglicerato
2 ADP
2 ATP
2 x 3-Bisfosfoglicerato
2 x 2-Bisfosfoglicerato
2 x Fosfoenolpiruvato
2 ADP
2 ATP
2 x piruvato
2 Fdox
2 Fdred
4 H+
2 H2
2 CoA
2 CO2
2 x Acetil-CoA
2 x Acetil-fosfato
2 Acetato
2 ADP
2 ATP
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Captulo II IBT Ginesa E. Arenas Isaac
Estudio de la poblacin microbiana productora de gas en yacimientos petroleros de Chicontepec, Ver. 8
2.5 Metabolismo de los microorganismos metangenos.
Los microorganismos metangenos producen gas metano (CH4), este gas que
aunque se produce de manera in situ en el yacimiento, al combinarse una
corriente de este gas con petrleo, la reaccin tiene el potencial suficiente para
alterar su composicin qumica (Stalcup, 2004), entendindose ste cambio
cuando las fases del petrleo y del gas se encuentran separadas y no en una
emulsin equilibrada o estable como normalmente debera encontrarse;
provocando as, una migracin del petrleo a las profundidades del pozo,
fenmeno conocido como migracin fraccionaria (Silverman, 1965).
El CH4 producido en el pozo por bacterias metangenas quimiolitotrficas,provocan el decremento y cada de la produccin de CO2 y H2, puesto que el
metabolismo metangeno puede llegar a utilizar estos gases como fuente de
carbono o energa para iniciar su ciclo productivo como se muestra en laFigura 2,
ocasionando que la presencia de este metabolismo perjudique la produccin de
CO2.
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Figura 2 Rutas metablicas de la metanognesis: hidrogenotrficas (flechasnegras), acetoclsticos (flechas grises). La ruta hidrogenotrficapuede iniciar de formato o H2/CO2. La ruta acetoclstica obtieneelectrones de la oxidacin de CO producido por la divisin del acetato
(Almeida, et al., 2011).
Para lograr detener la metanognesis, se han estudiado varios compuestos que ya
han sido probados para disminuir la produccin de CH4; ionforos, cidos
orgnicos, cidos grasos y compuestos halogenados son algunos de ellos (Chae,
et al., 2010; Zinder, et al., 1984) sin embargo para los 3 primeros, se ha reportado
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una elevada tasa de inespecificidad sobre el metabolismo metangeno, afectando
a otros organismos estudiados en un cultivo mixto, adems de que el costo de
obtenerlos y usarlos es elevado (Liu, et al., 2011; Lee, et al., 2009).
A diferencia de los compuestos anteriores, los compuestos halogenados como el
cido bromoetanosulfnico o BES (2-bromoetanosulfonato de sodio,
BrCH2CH2SO3Na) se reporta como uno de los inhibidores ms eficaces debido a
sus efectos especficos sobre bacterias metanognicas; ste compuesto tiene un
efecto inhibidor sobre la reductasa metlica de la coenzima M del ltimo paso de la
metanognesis (Xu, et al., 2009) en la Fig. 3 se muestra las estructuras qumicas
de la enzima y el compuesto inhibidor:
Figura 3 a) Coenzima M (CoM) de la metanognesis. b) Estructura del 2-bromoetano sulfonato de sodio (BES). (Keltjens, 1984; Liu, et al.,
2011)
En un estudio utilizando este compuesto, se observ que el BES redujo la
produccin de CH4 hasta en un 76% en cultivos mixtos obtenidos del rumen de
vaca (Lee, et al., 2009) y hasta un 60% en cultivos de bacterias termfilas (Zinder,
et al., 1984). Dadas las condiciones del yacimiento objeto de estudio, se propone
favorecer e incrementar la produccin de CO2, dado que este gas acta de
manera eficaz en la disminucin de la viscosidad del crudo pesado con respecto al
CH4 (gas que tambin es producido de manera in situ) inhibiendo a la poblacin
metanognica.
b)a)
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2.6 Enriquecimiento de medios de cultivo para incrementar
poblaciones nativas de pozos petroleros.
La mayora de los procesos de MEOR involucran la inyeccin de microorganismos
dentro del yacimiento para que estos produzcan los metablitos segn el inters y
necesidades en el yacimiento, sin embargo cabe sealar las desventajas que
conlleva, estas van desde problemas de corrosin por la produccin de sulfuro de
hidrogeno hasta el taponamiento de la roca por el tamao de las clulas (Brown,
2010), adems existe el riesgo de que al ingresar microorganismos exgenos a un
nuevo ambiente, esto genere el desplazamiento de la microbiota nativa cambiando
drsticamente el ambiente.
Puesto que los microorganismos candidatos a inyectarse dentro de un pozo han
sido cultivados en condiciones ptimas de laboratorio (temperatura < 40C, pH 5-
8, concentracin de sales < 10%) no se garantiza su sobrevivencia en un
ambiente de yacimiento, ambiente en el que encontramos temperaturas entre los
60-150 C, concentracin salina superior al 30 % y presiones atmosfricas por
encima de los 2 x 104 kPa, adems de presentar condiciones anaerbicas y
fuentes nutricionales de difcil asimilacin (McInerney, et al., 1999).
En estudios de laboratorio simulando las condiciones de un yacimiento
(condiciones PVT), se demostr que la inyeccin de nutrientes in situestimula el
incremento en las poblaciones microbianas nativas, logrando que en zonas con
excesiva permeabilidad, sta se redujera hasta lograr el paso efectivo del aceite
entre los poros de la roca (McInerney, et al., 1999) y al mismo tiempo tambin se
estimula la produccin gases principalmente de CO2, H2 y CH4 por
microorganismos fermentadores (Belyaev, et al., 2004).
Buscando estimular el crecimiento de las poblaciones microbianas nativas, se ha
probado la inyeccin de medios de cultivo enriquecidos con fuentes de carbono de
fcil asimilacin para los microorganismos, tales como melaza de caa,
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favoreciendo el metabolismo fermentativo, sulfato reduccin y metangeno; la
fermentacin de la melaza produce CO2 y cidos grasos (Belyaev, et al., 2004;
Zhang, et al., 1999), las bacterias anaerobias facultativas producen 2 moles de H2
y 2 de CO2, las anaerobias estrictas producen 4 de H2por mol de glucosa:
C6H12O6 CH3CH2CH2COOH + 2 CO2+ 2 H2
Utilizando melaza de caa se producen 1.58 moles de CO2/mol de sustrato (Nath
& Das, 2004), la melaza es el sustrato ms utilizado como fuente de carbono dado
a que es considerado materia de desecho y tiene un bajo costo.
Las melazas se obtienen como un subproducto final en la elaboracin del azcarde caa, es una mezcla compleja que contiene azcares fermentables (sacarosa,
glucosa, fructosa y rafinosa), azcares invertidos, sales y otros compuestos
solubles (Fajardo-Castillo & Sarmiento-Forero, 2007), en la Tabla 2 se muestra la
composicin de la melaza de caa de azcar obtenida de un proceso estndar:
Tabla 2 Composicin nutricional de la melaza de caa de azcar.
Componente ConstituyenteContenido
(% en 100g)
Componentes mayores
Materia seca 78 %
Protenas 3 %
Sacarosa 6063 %
Azcares reductores 35 %
Sustancias disueltas 48 %
Agua 16 %
Grasa 0.40 %
Cenizas 9 %
Minerales
Calcio 0.74 %
Magnesio 0.35 %
Fsforo 0.08 %
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Potasio 3.67
Aminocidos
Glicina 0.10 %
Leucina 0.01 %
Lisina 0.01 %
Treonina 0.06 %
Valina 0.02 %
Colina 600 ppm
Niacina 48.86 ppm
Vitaminas
c. Pantotnico 42.90 ppm
Piridocina 44 ppm
Riboflavina 4.40 ppm
Tiamina 0.88 ppm(Swan & Karalazos, 1990)
Sin embargo, adems de las melazas, existen otras fuentes de carbono de fcil
aprovechamiento como el polvo de cocoa, que aunque no es considerado un
material de deshecho, tiene un aporte energtico importante (Gabis, et al., 1999),
el polvo de cocoa, es un producto obtenido por transformacin mecnica de los
granos de cocoa (Theobroma cacao), una vez que se obtuvo la manteca, contiene
del 936 % de grasa, menos del 8 % de humedad y su pH vara entre 5.5 6.2
(cocoa cida) o 7.08.0 (cocoa alcalina) en la Tabla 3 se muestra la composicin
del polvo de cocoa (Camu, et al., 2007).
Tabla 3 Composicin nutricional del polvo de cocoa.
Componente ConstituyenteContenido
(g/100g)
Componentes mayores
Grasa 3 g
Carbohidratos 63.36 g
Azcares 44.89 g
Protena 16.10 g
Minerales Sodio 1.12 g
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Calcio 0.576 g
Hierro 0.004 g
Zinc 0.003 g
Fsforo 0.893 g
Potasio 2.7 g
Yodo 0.003 g
Magnesio 0.208 g
Vitaminas
Niacina 0.0018 g
Vitamina B1 0.27 mg
Vitamina B12 1.62 g
Vitamina B2 1.40 mg
Vitamina B3 1.08 mgVitamina B5 3.83 mg
Vitamina B6 0.32 mg
Vitamina B9 15 g
Vitamina C 1.80 mg
Vitamina E 0.43 mg
Vitamina K 9.10 g
(Camu, et al., 2007)
En Nieto y Chegwin (2010), se compar el uso el polvo de cocoa como fuente de
carbono y melaza de caa para el cultivo de hongos, obteniendo 20% mayor
crecimiendo para el cultivo con cocoa respecto al medio con melaza y Osorio et.
al. (2008) obtuvo un 11.5 % en el crecimiento de Mucor mieheiutilizando medios
de cultivos con polvo de cocoa con respecto a la melaza de caa.
Por lo anterior el polvo de cocoa es una fuente de carbono que aunque no es un
material propiamente de deshecho provee nutrientes asimilables para el
crecimiento de hongos y bacterias con un mayor rendimiento con respecto a la
melaza de caa (Osorio, et al., 2008).
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2.7 Tecnologas de MEOR en el mundo.
En pases como Estados Unidos, Australia, China, Rumania y Rusia se han
evaluado y probado una amplia variedad de tcnicas MEOR, mismas que van de
la inyeccin de microorganismos seleccionados o de la inyeccin de medios de
cultivo con fuentes de carbono complejas como melaza de caa, las cuales
incrementan la produccin de los metablitos de inters anteriormente
mencionados (Muoz-Colunga, et al., 2009). En la mayora de los casos se ha
reportado una recuperacin del hidrocarburo de un 13 a un 30% (Vargas, et al.,
1999). En la Tabla 4 se muestran los porcentajes de recuperacin de crudo por
algunos pases que han aplicado los metablitos microbianos en MEOR (Bao, et
al., 2009):
Tabla 4 Pases que han realizado pruebas utilizando el metablitosmicrobianos involucrados en tcnicas de MEOR.
(Bao, et al., 2009; Behllgil & Mehmetolu, 2002; Bryant, et al., 1993; Vargas, et al., 1999).
Investigaciones previas han encontrado que el proceso de MEOR es aplicable en
un 40 a 50% de los yacimientos petroleros de Amrica puesto que las condiciones
para poderlo llevar a cabo en un yacimiento pueden ser restrictivas dado el tipo de
roca, la temperatura del pozo, profundidad y caractersticas del crudo (Zhang, et
al., 1999).
Actividad de inters Ciudades/Pas Recuperacin (%)
Produccin de CO2y solventes. Ankara, Turqua 19.4
Produccin de tensoactivos y cidos. Oklahoma, E. U. A. 20
Produccin de biopolmeros. Santander,
Colombia
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Inyeccin de nutrientes selectivos. Shengli, China 11.4
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Hoy en da se puede decir que estas tcnicas MEOR pueden incrementar la
produccin de hidrocarburos hasta en un 25% y disminuir los costos de
recuperacin y operacin de extraccin secundaria de una manera muy
perceptible (Muoz-Colunga, et al., 2009).
2.8 Sitio de estudio
En la regin denominada Paleocanal de Chicontepec se encuentra el 38.2% de las
reservas totales del pas y el 86% de la regin norte, el yacimiento se conoce
desde 1926 y se sabe que el crudo est atrapado dentro de pequeos
compartimentos de roca fragmentada por lo que resulta muy difcil extraerlo de la
manera primaria; slo se ha explotado una mnima parte de la enorme reserva,posee una superficie aproximada de 3815 km2, su profundidad vara entre 800 y
2400 m y el intervalo de temperatura se encuentra entre 65 y 75C (PEMEX,
2011).
Chicontepec est dividido en 29 campos y es altamente laminado compuesto por
finas intercalaciones de areniscas y arcillas. Su valor de porosidad media se
encuentra alrededor del 11% con un amplio rango de permeabilidades que oscilan
entre 0.1 md hasta 15 md, con un promedio de 0.4 md. Como parte de este
yacimiento se encuentra el pozo denominado Coyotes 332 el cual fue designado
para este estudio, en la Fig. 4 se muestra la ubicacin geogrfica del sitio de
estudio.
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Figura 4 Ubicacin de la zona de estudio en el paleocanal de Chicontepec.(PEMEX, 2005).
El pozo Coyotes, se encuentra localizado en el rea norte de Chicontepec, este se
encuentra localizado cerca de la ciudad de Poza Rica en la provincia Norte de
Veracruz, Mxico, las formaciones en este campo son muy compactas y con baja
permeabilidad (Gutirrez, et al., 2009).
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Justificacin
La creciente necesidad de buscar alternativas para el incremento de la produccin
del sector petrolero mexicano, ha motivado la bsqueda de alternativas de alto
rendimiento y econmicamente sustentables, las tcnicas empleadas en aos
posteriores proponen porcentajes de recuperacin de petrleo de un 5% adicional,
al porcentaje de extraccin obtenido de manera convencional.
Dadas las caractersticas geolgicas del paleocanal de Chicontepec, se considera
que la produccin in situ de CO2 por microorganismos provenientes de este
ambiente, es la tcnica ms conveniente para la recuperacin de aceite, el estudio
de medios de cultivo enriquecidos con fuentes de carbono alternativas, ofrece
nuevas posibilidades y para evitar que la produccin de CO2 disminuya por laproduccin microbiana de CH4, se propone el uso de un inhibidor que acte de
manera especfica para estos organismos.
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aptulo IV
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Hiptesis
Si se emplean microorganismos nativos de pozos petroleros cultivados en medios
de cultivo enriquecidos con fuentes de carbono alternativas e inhibidores
especficos de la metanognesis, se lograr incrementar la produccin de CO2 y
disminuir la produccin de CH4.
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Objetivos
5.1 Generales.
Evaluar e incrementar la produccin de dixido de carbono (CO2) por bacterias
fermentadoras provenientes del pozo petrolero Coyotes 332 de Chicontepec.
5.2 Particulares.
Caracterizar el metabolismo de los consorcios microbianos provenientes de
muestras del pozo petrolero Coyotes 332.
Obtener bacterias fermentadoras utilizando fuentes de carbono complejas
(melaza de caa y polvo de cocoa).
Evaluar el efecto de la concentracin y tipo de fuente de carbono sobre la
produccin de dixido de carbono (CO2) por el cultivo fermentativo
utilizando cromatografa de gases.
Evaluar el efecto de inhibicin del 2-bromoetanosulfonato de sodio (BES)
sobre la ruta metanognica de un cultivo mixto en la produccin de metano
(CH4) y dixido de carbono (CO2).
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Materiales y Mtodos
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Para llevar a cabo la fase experimental se realizaron cultivos de microorganismos
utilizando como inculo el aceite extrado del pozo petrolero Coyotes 332 en
botellas serolgicas de 125 ml selladas hermticamente con sello de goma y aro
metlico, la condicin de anaerobiosis se logr mediante reduccin de los medios
de cultivo y desplazamiento de O2usando N2de alta pureza e incubando a 70 C.
La metodologa para llevar a cabo este estudio se llev a cabo en las siguientes
etapas:
Etapa 1 Anlisis proximal a las fuentes de carbono.
Caracterizacin microbiolgica de la muestra de aceite.
Etapa 2 Obtencin de microorganismos fermentadores a partir de la muestra
de aceite.
Evaluacin de la produccin de CO2 en el medio de cultivo con
melaza (Medio M) y medio de cultivo con cocoa (Medio C).
Etapa 3 Obtencin de microorganismos metangenos.
Evaluacin del efecto de BES como inhibidor de la metanognesis
durante la produccin de CO2.
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Estudio de la poblacin microbiana productora de gas en yacimientos petroleros de Chicontepec, Ver. 26
ETAPA I
6.1 Anlisis bromatolgico (proximal) del polvo de cocoa y melaza
de caa.
Para evaluar las caractersticas bromatolgicas de las fuentes de carbono
empleadas para los tratamientos se realizaron los siguientes anlisis:
1. % Humedad.
2. % Grasa.
3. pH en solucin.
4. Protena total.
5. Metales (minerales).
Esto se realiz con el fin de comparar las caractersticas reportadas en la
literatura, con respecto a las reales que se manejaron para los experimentos. Las
determinaciones de humedad, grasa, pH y protena total se realizaron conforme a
la tcnica reportada por Lerena, et al., (1998), la determinacin de minerales
(metales) se realiz por espectroscopa de emisin atmica acoplado a un inductor
de plasma (ICP).
6.2 Caracterizacin microbiolgica de la muestra de aceite.
Se caracterizaron los microorganismos por tipo de consorcios cultivables a partir
de la muestra de aceite anteriormente mencionada mediante tcnicas reportadas
en Arce y col. (2006) para el cultivo de microorganismos anaerobios segn su
metabolismo entre los que se han reportado bacterias sulfato reductoras, bacterias
nitrato reductoras, bacterias fierro reductoras y bacterias metanognicas.
Para cuantificar el nmero de microorganismos presentes en las muestras lquidas
existen diversos mtodos, la estimacin por el mtodo del Nmero ms Probable
(NMP) es ms adecuado para el conteo de bacterias anaerobias, puesto que
permite mantener un ambiente anaerobio dentro de los frascos, sin necesitar de
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Estudio de la poblacin microbiana productora de gas en yacimientos petroleros de Chicontepec, Ver. 27
sistemas anaerobios ms complejos como cmaras anaerobias (Arce, et al.,
2006).
El mtodo del nmero ms probable fue descrito por McCrady en 1915 y
actualmente sigue siendo ampliamente utilizado (Hurley & Roscoe, 1983). En un
principio este mtodo fue empleado para estimar el nmero de microorganismos
en muestras de alimentos y aguas. Sin embargo, se ha demostrado que tambin
puede ser aplicado para la determinacin de microorganismos aerobios y
anaerobios en lodos, sedimentos marinos y suelos contaminados (Wrenn &
Venosa, 1996; Vester & Ingvorsen, 1998; Kuai, et al., 2001) el desarrollo y detalle
de la tcnica se encuentra en el Anexo 1.
6.2.1 Preparacin de frascos con medio de cultivo base para
microorganismos anaerobios.
Se prepararon los medios de cultivo base para anaerobios basndonos en la
aplicacin de dos principios fundamentales:
1) Exclusin total de trazas de oxgeno en la preparacin y almacenamiento
de los medios de cultivo.
2) Mantenimiento de condiciones reductoras estrictas.
Los medios de cultivo especficos para cada grupo de bacterias anaerobias estn
constituidos por un medio de cultivo mineral en condiciones anxicas, al cual slo
hay que adicionar los aceptores de electrones correspondientes para cada tipo de
microorganismo que se quiere cultivar.
Medio de cultivo base.
En un matraz Erlenmeyer se disolvi en 1L de agua destilada los reactivos listados
en laTabla 5.Una vez disueltos todos los compuestos se obtuvo una solucin con
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tonalidad rosa debido a la resarzurina, el cual es un indicador de que hay oxgeno
presente en el medio.
Tabla 5 Formulacin del medio de cultivo base.
FrmulaCantidad
g/l agua anxica
NH4Cl 1.0 g
KH2PO4 0.3 g
H2PO4 0.3 g
MgCl2 6H2O 0.2 g
NaCl 2.0 g
CaCl2 2H2O 0.1 gKCl 0.1 g
Extracto de levadura 1.0 g
Triptona o peptona 1.0 g
Solucin de
oligoelementos
10 ml
Cistena-HCl 0.5 g
Resarzurina 0.1 % 1 ml
* El procedimiento para la preparacin de la solucin de oligoelementos y del agua anxica seencuentran en el Anexo 2.
Una vez preparada la solucin con los elementos anteriores se ajust el pH a 8
agregando KOH 1N, se adicionaron 35 ml de medio de cultivo base a cada frasco,
se taparon con el septo de plstico y aro metlico en una atmosfera de nitrgeno.
Al finalizar se esterilizaron los frascos con medio de cultivo en autoclave durante
20 minutos a una temperatura de 121C a 15 lb/in2, la fuente de carbono vara
dependiendo del microorganismo a cultivar y se especfica en las secciones
siguientes.
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6.2.2 Procedimiento para el cultivo de bacterias sulfato
reductoras (BSR).
Este mtodo se basa en el cultivo de bacterias sulfato reductoras presentes en la
muestra, en un medio de cultivo mineral utilizando acetato de sodio (C2H3O2Na)
como fuente de carbono y sulfato de sodio como aceptor de electrones. La
formacin de un precipitado negro de sulfuro de fierro resultado de la reaccin de
sulfuro de hidrgeno producido por la reduccin biolgica de sulfatos, con el
cloruro de fierro presente en el medio de cultivo es el indicador positivo de
crecimiento y posteriormente cuantificados por la tcnica del NMP como se
desarrolla en el Anexo 1.
Soluciones y reactivos:
1. Acetato de sodio (C2H3O2Na) 0.15 g/ml.
2. Sulfato de sodio (Na2SO4) 1M.
3. Cloruro ferroso (FeCl2.4H2O) 1.8 mg/ml.
A) Adicin de sustratos y aceptores de electrones.
Se agregaron 35 ml medio de cultivo base, 0.7 ml de la solucin estril de acetato
de sodio, 0.7 ml de solucin de sulfato de sodio y 0.7 ml de cloruro frrico a un
frasco serolgico con septo de goma de 125 ml.
B) Condiciones de cultivo.
Los frascos fueron inoculados con 4 ml de petrleo y se incubaron a una
temperatura controlada de 70C durante 30 das.
C) Anlisis de resultados, indicativo de sulfato reduccin.
Una vez terminado el tiempo de incubacin se determin el nmero de frascos
positivos observando la formacin de un precipitado negro en el medio de cultivo y
posteriormente se cuantifico el crecimiento por la tcnica de NMP.
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6.2.3 Procedimiento para el cultivo de bacterias fierro reductoras
(BFR).
La cuantificacin se basa en el crecimiento especfico de las bacterias reductoras
de hierro presentes en un medio de cultivo anaerobio utilizando acetato de sodio
(C2H3O2Na) como fuente de carbono y Fe3+ como aceptor de electrones. El
cambio de color del medio de cultivo, de amarillo a transparente es indicador
positivo del crecimiento; el color amarillo del medio se debe a la presencia de
citrato de hierro y el cambio a transparente indica la reduccin de Fe 3+a Fe2+.
Soluciones y reactivos:
1. Acetato de sodio (C2H3O2Na) 0.15 g/ml.
2. Citrato de fierro (FeC6H5O7) 0.1 g/ml.
A) Adicin de sustratos y aceptores de electrones.
Se agregaron 35 ml de medio de cultivo base, 0.7 ml de las soluciones estriles de
citrato de fierro y 0.7 ml acetato de sodio a un frasco con septo de goma de 125
ml.
B) Condiciones de cultivo.
Los frascos fueron inoculados con 4 ml de petrleo y se incubaron a una
temperatura controlada de 70C durante 30 das.
C) Anlisis de resultados, indicativo de fierro reduccin.
Al trmino del tiempo de incubacin se contaron los frascos positivos por el
cambio de color del medio de cultivo de amarillo a incoloro y se calcul el nmero
de bacterias por la tcnica de NMP.
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6.2.4 Procedimiento para el cultivo de bacterias nitrato
reductoras (BNR).
La cuantificacin se basa en el crecimiento especfico de bacterias nitrato
reductoras presentes en un medio de cultivo anaerobio por la reduccin de
nitratos, empleando acetato como fuente de carbono. El nmero de bacterias se
determin por el mtodo NMP analizando la aparicin de nitritos por la adicin de
los reactivos de Griess Llosvay y polvo de zinc.
Soluciones y reactivos:
1. Acetato de sodio (C2H3O2Na)
0.15 g/ml.2. Nitrato de potasio (KNO3) 50
g/L.
3. cido actico (CH3-COOH) 5N.
4. cido sulfanlico (C6H7NO3S)
8g/L.5. Solucin cida de alfa-
naftilamina (C10H9N) 5g/L.
A) Adicin de sustratos y aceptores de electrones.
Se agregaron 35 ml de medio de cultivo base, 0.7 ml de la solucin estndar
estril de nitrato de potasio y 0.7 ml de solucin de acetato de sodio bajo
condiciones estriles y anxicas.
B) Condiciones de cultivo.
Los frascos fueron inoculados con 4 ml de petrleo y se incubaron a una
temperatura de 70C durante 30 das.
C) Anlisis de resultados, indicativo de nitrato reduccin.
Al trmino del tiempo de incubacin se realiz la determinacin de nitritos en cada
tubo como se indica en el Anexo 3 y finalmente se contaron los frascos con
reaccin positiva y se calcul el nmero de bacterias por NMP.
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6.2.5 Procedimiento para el cultivo de bacterias metanognicas
(BM).
La cuantificacin se basa en el crecimiento especfico de bacterias metanognicas
en un medio de cultivo base empleando acetato sodio como fuente de carbono. El
indicador positivo del crecimiento es la produccin de metano, el cual es medido
por cromatografa de gases utilizando un detector de conductividad trmica (DCT).
Soluciones y reactivos
1. Acetato de sodio (C2H3O2Na) 0.15 g/ml.
A) Adicin de sustratos y aceptores de electrones.Se agregaron 35 ml de medio de cultivo base, 0.7 ml de solucin estril de acetato
de sodio a un frasco con septo de goma de 125 ml.
B) Condiciones de cultivo.
Los frascos fueron inoculados con 4 ml de petrleo y se incubaron a una
temperatura controlada de 70C durante 30 das.
C) Anlisis de resultados, indicativo de metanognesis.
Al finalizar la incubacin se determin la produccin de metano en los frascos de
cultivo, el gas producido se midi en un cromatgrafo de gases (GOW-MAC)
utilizando un detector de conductividad trmica (TCD). Los sistemas con formacin
de gas son considerados positivos y fueron tomados para determinar el nmero de
bacterias por NMP.
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ETAPA II
6.3 Obtencin de microorganismos fermentadores partiendo de la
muestra de aceite.
Para favorecer el crecimiento de los consorcios fermentadores se prepar un
medio de cultivo tomando como referencia el medio de cultivo base como se
reporta en Arce O., (2006) el cual fue modificado agregando melaza de caa como
fuente de carbono (Hernandez, 2010).
6.3.1 Preparacin del medio de cultivo con melaza (Medio M).
Utilizando la metodologa que se reporta en la seccin 6.1.1 se prepar el medio
de cultivo con melaza de caa al 10% al que denominamos Medio M sustituyendoalgunos elementos de la Tabla 5 de la seccin 6.1.1 por los que se muestran en la
Tabla 6:
Tabla 6 Formulacin del medio de cultivo modificado para el cultivo demicroorganismos fermentadores.
Frmula Cantidad
NH4Cl 0.250 g
KH2PO4 0.140 g
MgCl2 6H2O 1 g
NaCl 30 g
CaCl2 2H2O 0.140 g
KCl 0.335 g
Extracto de levadura 2.0 g
Triptona o peptona 2.0 g
Cistena-HCl 0.5 gResarzurina 0.1 % 1 ml
Melaza al 10 % 10 ml / c 50 ml
NaHCO3 8.5 % 3 ml / c 50 ml
Na2S 2% 1 ml / c 50 ml
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* Las cantidades se disolvieron en 1 L de agua anxica; la melaza, el bicarbonato y el sulfurode sodio se aadieron de manera individual a los frascos en la relacin sealada en la tabla.
Una vez preparado el medio, se agregaron 35 ml de este, en frascos de 125 ml
utilizando un flujo continuo de N2 para mantener las condiciones anxicas, se
sellaron los frascos con el septo de goma y el aro metlico para su esterilizaron en
autoclave durante 20 minutos, a una temperatura de 121C a 15 lb/pulg2 de
presin.
Como inculo se aadi 5 ml de petrleo en los frascos, los cuales posteriormente
se incubaron a una temperatura de 70C, el crecimiento se determin de manera
directa monitoreando la produccin de gas cada 168 h (7 das) tomando 2 ml de la
atmosfera gaseosa de los ambientes e inyectndolos en un cromatgrafo de
gases.
6.3.2 Evaluacin de la produccin de CO2con el medio de cultivo
con polvo de cocoa (Medio C).
Una vez que se obtuvo el grupo de bacterias fermentativas y que iniciaron la
produccin de CO2 utilizando el medio M con melaza, se evalu la adicin depolvo de cocoa como fuente de carbono alternativa.
Se prepar medio de cultivo base con la composicin que se indica en la Tabla 7 y
posteriormente se prepararon 4 series experimentales, tres de ellas corresponden
a medio de cultivo ms polvo de coca al 10, 15 y 20 % (Medio C) y la cuarta con
melaza al 10 % (Medio M) para llevar a cabo la evaluacin de la produccin de
gas en los tratamientos.
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Tabla 7 Formulacin del medio de cultivo de microorganismos fermentadoresadicionado con polvo de cocoa.
Frmula Cantidad
NH4Cl 0.250 g
KH2PO4 0.140 g
MgCl2 6H2O 1 g
NaCl 30 g
CaCl2 2H2O 0.140 g
KCl 0.335 g
Extracto de levadura 2.0 g
Triptona o peptona 2.0 g
Cistena-HCl 0.5 gResarzurina 0.1 % 1 ml
NaHCO3 3 ml/50 ml
Na2S 1 m/50 ml
Polvo de cocoa 10,15 y
20%
10 ml/50 ml
Melaza de caa 10% 10 ml/50 ml
A cada frasco de 125 ml se agregaron 35 ml segn tratamiento correspondiente
obteniendo al final una matriz experimental que se muestra en la Tabla 8:
Tabla 8 Plan de experimentacin para la produccin de CO2 en cultivosfermentativos usando diferentes concentraciones del medio de cocoa.
Tratamiento Medio de cultivo Inculo
1 Medio C 10%R1 Resiembra
2 Medio C 15%R1 Resiembra
3 Medio C 20%R1 Resiembra
4 Medio M 10%R1 Resiembra
5 Medio C 10%R0 No
6 Medio C15%R0 No
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7 Medio C 20%R0 No
8 Medio M 10%R0 No
*La resiembra para los cultivos R1 se tomaron de los cultivos frescos provenientes delaceite; los medios de cultivos rotulados como R0 no fueron inoculados ya que estos setomaron como controles de la produccin de CO
2.
Se utiliz un flujo continuo de N2 para propiciar las condiciones anxicas,
posteriormente se esterilizaron en autoclave durante 20 minutos a una
temperatura de 121C a 15 lb/pulg2de presin.
Terminada la esterilizacin se tomaron 3 ml del cultivo fresco de fermentadoras
como inculo para los tratamientos, estos se incubaron a 70C y la produccin de
gas fue monitoreada cada 168 h (7 das).
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ETAPA III
6.4 Obtencin de microorganismos metangenos.
El cultivo microbiano metangeno se obtuvo de un digestor anaerobio que trabaja
a 35 C y contiene biota mixta utilizada en la degradacin de residuos vegetales
en el cual coexisten bacterias metangenas y fermentativas, el cual esta
constituido principalmente por 3 grupos: Firmicutes(89.5%),Actinobacteria (6.9%),
Bacteroidetes (2.3%). Este cultivo fue proporcionado por el Departamento de
Bioprocesos de la Unidad Profesional Interdisciplinaria de Biotecnologa (UPIBI)
(Garca-Pea, et al., 2011).
Se trabaj con este cultivo ya que la muestra de aceite (petrleo) que fue
proporcionada para los experimentos no se obtuvo crecimiento para este grupo.
Para obtener un cultivo fresco de la muestra de metangenos, se prepar un
medio de cultivo tomando como referencia el medio de cultivo base como se
reporta en Arce, et al., (2006) y Lee, et al., (2009) en la seccin 6.2.5 de este
documento.
Se agregaron 35 ml de medio de cultivo base a cada frasco de 125 ml utilizando
un flujo continuo de N2 para mantener las condiciones anxicas del sistema;
posteriormente se esterilizaron en autoclave durante 20 minutos a una
temperatura de 121C a 15 lb/pulg2de presin.
Una vez esterilizados los frascos como inculo se tom el 10% de la muestra con
respecto al volumen total de medio de cultivo en los frascos, una vez inoculados
fueron incubados a 35C y se monitoreo la produccin de gases (CO2 y CH4)
como indicativo de crecimiento la medicin se realiz cada 168 h (7 das).
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6.4.1 Evaluacin de BES como inhibidor de metanognesis
durante la produccin de CO2.
Para comprobar la hiptesis de que inhibiendo el crecimiento de los
microorganismos metangenos se lograr mantener la produccin de CO2en los
cultivos en tratamientos se prob el 2-bromoetano sulfonato de sodio
recomendado para la inhibicin especfica de la ruta metanognica de bacterias
termfilas (Zinder, et al., 1984; Xu, et al., 2010) mencionada al inicio del
documento.
Una vez obtenido un cultivo fresco de metangenos, se prepar una serie
experimental para evaluar el efecto de la adicin del 2-bromoetano sulfonato desodio (BES) estos sistemas se prepararon bajo las mismas condiciones que se
mencionaron anteriormente, se prepar adems un control bajo las mismas
condiciones sin la adicin del BES. La evaluacin del tratamiento se realiz
midiendo la produccin del CH4 y CO2 producidos por el cultivo cada 168 h
(7das), tomando 2 ml de la atmosfera gaseosa de los frascos e inyectando a un
cromatgrafo de gases.
La concentracin recomendada para una inhibicin eficiente de la ruta
metanognica que utiliza CO2 in vivo es de 0.05 M (Xu, et al., 2009; Zinder, et al.,
1984), con el fin de encontrar una concentracin apropiada para esta aplicacin de
manera ex situ, en este trabajo se probaron tres concentraciones 0.04 M, 0.05 M
y 0.06 M a fin de evaluar el efecto que este inhibidor puede tener para esta
aplicacin.
Preparacin de solucin madre de 2-bromoetano sulfonato de sodio 0.5 M.
1. Agregar 50 ml de agua destilada anxica al matraz Erlenmeyer.
2. Pesar 5.275 g de BES y adicionarlos al matraz.
3. Agregar el agitador magntico y colocar el matraz en la placa en agitacin
hasta que el reactivo se disuelva en el agua.
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De la solucin madre se tomaron las alcuotas en ml como se indican en la Tabla 9
para lograr la concentracin final en el medio de cultivo la cual depender del
volumen total de medio de cultivo e inoculo en los frascos.
Tabla 9 Concentracin en mol (M) del 2-bromoetano sulfonato de sodio en lostratamientos.
Cantidad (ml) Concentracin molar final
(30 ml de volumen total)
2.580 ml 0.04 M
3.333 ml 0.05 M
4.137 ml 0.06 M
* Cantidades en ml que se agreg a los frascos con medio de cultivo y concentracionesfinales en el medio.
Como controles se prepararon sistemas inoculados a los cuales no se les adicion
inhibidor y adems se realiz un tratamiento el cual consisti en aadir el BES en
las mismas concentraciones antes mencionadas a los cultivos productores de CO 2
(bacterias fermentadoras obtenidas en la seccin 6.3) con el fin de evaluar el
efecto que pudiera tener el compuesto inhibidor sobre el grupo fermentativo.
En este ltimo tratamiento, las condiciones de cultivo fueron las mismas a la
seccin 6.3.1, diferencindose en la adicin de las soluciones del BES como se
indic en la Tabla 9, se incubaron a 70C y se monitore la produccin de CO2
cada 168 h (7 das).
6.5 Evaluacin de la produccin de gas y crecimiento de los
cultivos en los tratamientos experimentales.
Una vez preparados los experimentos anteriormente mencionados, se evalu la
produccin de gases en los tratamientos principalmente CO2 y CH4, parmetros
que permite evaluar las fases del crecimiento de los microorganismos.
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Para estas mediciones los tratamientos fueron monitoreados cada 168 h (7 das)
para obtener concentraciones de gas acumulado y representativo de las muestras
iniciando en tiempo 0 h con el primer da de incubacin.
6.5.1 Evaluacin de la produccin de CO2 y CH4.
Cuando se habla de evaluar procesos biolgicos (degradacin de algn
compuesto) por parte de microorganismos un parmetro importante a monitorear
es la produccin de gases, segn sea el microorganismo con el que trabajemos
podemos evaluar CO2, CH4y H2, parmetros efectivos y confiables para evaluar la
actividad microbiana (Oh, et al., 2000).
Para la medicin de estos existen varios mtodos tanto indirectos como directos
(ej. Titulacin, Cromatografa). La cromatografa es un mtodo fisicoqumico de
separacin donde la muestras de desplaza por una fase mvil que puede ser
gaseosa encargada de mover la muestra a travs de una columna donde
permanece estacionario y el cual es medido por un detector que toma una seal y
la manda a un software para su posterior anlisis, la cromatografa ofrece un
mtodo rpido, fcil y preciso para la medicin directa de gases (Skoog, et al.,
2001), sin embargo cuando no se cuenta con uno es fcil recurrir a los mtodosindirectos para su cuantificacin como la titulacin cido-base, como la utilizada en
la respirometra de Bartha, donde un agente alcalino como el hidrxido de sodio
(NaOH), cloruro de bario (BaCl2) retienen el CO2 en forma de carbonato para
posteriormente ser cuantificado por titulacin con cido clorhdrico (HCl) y
fenolftalena como indicador (Kijchavengkul, et al., 2006) .
Las primeras mediciones de CO2 para los cultivos fermentativos se realizaron
utilizando respirmetros tipo Bartha modificados por Luna y Sanchez-Yaez,
(1991), los cuales estuvieron estructurados de un matraz Erlenmeyer de 125 ml, el
cual tenia tena provisto un tapn de goma No. 4 de dnde se le adapt una
manguera cuyos extremos contaba con agujas de 16 x 1.1/4 pulgadas de acero
inoxidable para penetrar los tapones de los frascos y de esta manera evitar que al
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abrir el sistema se perdiera la atmosfera anaerbica y el CO2producido en la Fig.
5 se muestra el montaje final del sistema.
Figura 5 a) Arreglo entre los frascos productores de gas y la solucinrecolectora con NaOH. b) Adicin del BaCl y fenolftalena. c)Titulacin con HCl.
El matraz Erlenmeyer contena una solucin de NaOH al 0.5 N, una vez
recolectado el CO2 de los frascos se agreg la solucin de BaCl2 al 1%, las
cantidades de NaOH y de BaCl2deben ser equitativas, si el matraz contiene 25 ml
de NaOH se deber agregar la misma cantidad de BaCl2; para la titulacin se
agregaron de 3-4 gotas de fenolftalena y se titul con HCl al 0.5 N (Luna &
Snchez-Yaez, 1991).
El CO2producido en mg se calcul con la siguiente frmula:
[( )( ) ( )( )
Ecuacin 1 Frmula para cuantificar la produccin de CO2 en mg. (Luna &Snchez-Yaez, 1991)
Dnde:
ml NaOH= Cantidad en mililitros de la solucin de NaOH en el matraz.
N NaOH= Normalidad de la solucin de NaOH.
ml HCl= Cantidad en mililitros gastados durante la valoracin de HCl.
N HCl= Normalidad de la solucin de HCl.
22= Constante de disociacin del CO2en NaOH.
a)
b) c)
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El seguimiento de la produccin se realiz consecuentemente utilizando un
cromatgrafo de gases GOW-MAC No. 580 equipado con un detector de TCD y la
columna CTR 1. Este mtodo es aplicable para medir el O2, N2 CO2 y CH4 en
sistemas cerrados.
El mtodo de anlisis se realiz conforme a la Tabla 10, estas condiciones son
generales para el uso del detector de conductividad trmica.
Tabla 10 Condiciones de operacin del cromatgrafo de gases.
De la atmsfera (headspace) de los frascos se tom una muestra de 2 ml con una
jeringa tipo semforo para headspace y se inyect al cromatgrafo dnde los
gases de la muestra son acarreados con gas helio (He), y detectados con el
detector de conductividad trmica.
Para la cuantificacin se tomaron las reas de los picos obtenidos en el
cromatograma y posteriormente se calcularon las concentraciones de CO2y CH4
correspondientes presente en los sistemas, utilizando la ecuacin de los gases
ideales:
Ecuacin 2 Ecuacin de los gases ideales. (Arce, et al., 2006)
Condicin
Columna CTR 1 Temperatura ambiente (25 C)
Inyector 40 C
Detector 100 C
Gas acarreador (He) Flujo 30 ml/min
Corriente 125 mAmp
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El resultado en mol CO2/ml del sistema, se calcul de la siguiente forma:
Ecuacin 3 Produccin de CO2en moles/ml. (Arce, et al., 2006)
Dnde:
%CO2= rea del pico de CO2en porcentaje.
P= presin atmosfrica (atm).
V= volumen de la atmsfera de los sistemas a medir (L).
R= constante de los gases (0.082205 L * atm / mol * K).
T= temperatura del sistema ( K).
ml = mililitros de la muestra.
Para la cuantificacin de CH4 se utiliz la misma frmula, en este caso la
sustitucin fue del porcentaje de rea del pico de CH4. El resultado en mol CH4/ml
del sistema, se calcul de la siguiente forma:
Ecuacin 4 Produccin de CH4en moles/ml. (Arce, et al., 2006)
Dnde:
%CH4= rea del pico de CH4en porcentaje.
P= presin atmosfrica (atm).
V= volumen de la atmsfera de los sistemas a medir (L).
R= constante de los gases (0.082205 L * atm / mol * K).
T= temperatura del sistema ( K).
ml= mililitros de la muestra.
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aptulo VII
Resultados
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Etapa I
7.1 Anlisis proximal al polvo de cocoa y melaza de caa.
Con el fin de conocer y evaluar las caractersticas de las materias primas
utilizadas en el presente estudio, se realizaron los anlisis de pH, contenido de
grasas, protena total, algunos metales y humedad a estos materiales. Dicha
informacin se considera valiosa ya que la composicin de un medio de cultivo es
determinante en el metabolismo de los microorganismos a estudiar. En la Tabla 11
se presentan los resultados obtenidos de este anlisis.
Tabla 11 Anlisis proximal del polvo de cocoa y melaza de caa.
Melaza decaa
Polvo deCocoa
Humedad (%) 7.57 1.25
Grasa (%) 0.77 14.63
Protena (%) 3 16.01
pH 5.64 5.91
Metales (ppm) Se 0.003 0.01
Ca 3.20 13.21
P 11.61 0.75
Sr 0.03 0.006
Sb 0.06 0.05
Sn 0.03 0.03
B 0.02 -
Na 0.26 1.7
Al 0.52 0.23
Cr 0.009 -
Cu 0.06 -
Fe 0.45 0.66
K 37.38 91.62
Mg 10.09 5.66
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Ni 0.03 -
Zn 0.08 -
(-) No detectado.
El porcentaje de grasa de la melaza es menor (0.77 %) con respecto al del polvode cocoa (14.63 %) sin embargo, en ambos casos el contenido de grasa es ms
alto al que reporta Camu, et al., (2007) y Swan y Karalazos, (1990) en el caso de
la cocoa este datos es importante ya que este contenido de grasa puede
compensar la baja concentracion de azucares; las grasas, adems de los
azcares proveen una fuente de carbono y energa para los microorganismos. Por
otro lado, el contenido de humedad favorece la actividad de agua, la cual a su vez
facilita el crecimiento de los microorganismos; la protena provee la cantidad de
nitrgeno que los microorganismos necesitan para su metabolismo, el nitrgeno es
la molcula principal para la sntesis de algunas enzimas y protenas que las
clulas necesitan para su crecimiento; altas concentraciones de protena
garantizan este crecimiento.
El pH medido en solucin para ambas fuentes de carbono es cido, por lo que al
aadirlas al medio de cultivo ocasion una disminucin del pH del medio,
situacin que requiri realizar un ajuste con KOH 1 N buscando mantenerlo entre
8 y 8.5, el cual se considera el pH ptimo para el crecimiento de microorganismos
(Arce, et al., 2006; Bao, et al,, 2009; Belyaev, et al., 2004).
El anlisis de metales muestra que existe un mayor contenido de estos en la
melaza con respecto al polvo de cocoa, siendo este contenido mayor al que se
reporta en la literatura (Nieto y Chegwin A., 2010); en el polvo de cocoa tambin
se encontr una mayor cantidad a la reportada por Camu et al, (2007); hecho quees favorable para la cocoa, ya que es importante que los minerales esenciales
como potasio (K), Calcio (Ca), Hierro (Fe) se encuentren presentes, pues son
determinantes para el crecimiento de los microorganismos, su presencia en un
medio de cultivo favorece muchos procesos bioqumicos de la clulas; estos
minerales en su forma inica actan como catalizadores de la hidrlisis de
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diversos compuestos orgnicos. Normalmente las soluciones de oligoelementos
(minerales) se preparan utilizando la formulacin que se presenta en la Tabla 12,
estos elementos proveen al medio de cultivo los minerales que las clulas
requieren para su funcionamiento.
Tabla 12 Composicin de la solucin con oligoelementos.
Compuesto Cantidad g/L
MgCl2 6H2O 2.5 g
MnCl2 4H2O 0.6 g
NaCl 1.0 g
FeCl2 4H2O 0.1 g
CoCl2 6H2O 0.1 g
AlCl3 0.01g
H3BO3 0.01g
Na2MoO4
2H2O
0.01 g
CuCl2 2H2O 0.01g
CaCl2 2H2O 0.1 g
ZnCl2 0.1 g(Arce, y otros, 2006)
7.2 Caracterizacin de los grupos microbianos presentes en
muestras de aceite.
En botellas serolgicas de 125 ml se prepararon los medios de cultivo selectivos
para cada grupo microbiano (bacterias sulfato reductoras BSR, fierro reductoras
BFR, nitrato reductoras BNR, fermentativas y metanognicas) segn se report en
la seccin 6.1, as como su cuantificacin utilizando la metodologa de nmero
ms probable (NMP). El ambiente de anaerobiosis se logr mediante la reduccin
del medio de cultivo usando N2, los sistemas fueron incubados a 70C durante 30
das.
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A partir de la muestra de aceite solo pudo recuperarse el grupo de bacterias
fermentativas cuyo crecimiento fue evaluado mediante la produccin de CO2.
Algunas de las razones por las cuales nicamente el grupo fermentativo pudo
obtenerse se pueden relacionar al largo periodo de almacenamiento de la muestra
previo a su anlisis, pues la muestra fue colectada durante el mes de Octubre de
2010; adems de que el grupo restante de microorganismos (BSR, BNR, BHR,
Metanogenas) tienen un metabolismo muy estricto. El grupo fermentativo
recuperado a partir de la muestra de aceite fue utilizado para la realizacin del
presente estudio.
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Etapa II
7.3 Cultivo de bacterias fermentadoras a partir de una muestra de
aceite.
Siguiendo la metodologa reportada en la seccin 6.3 se evalu el crecimiento de
los consorcios fermentadores en 16 frascos serolgicos de 125 ml, midiendo la
produccin de CO2 y utilizando un medio de cultivo a base de sales minerales,
como fuente de carbono se utiliz melaza de caa al 10%, tomando como inculo
una muestra de aceite de 5 ml. En paralelo se prepar un sistema control que
consisti en medio de cultivo sin aceite con el fin de descartar una potencial
contaminacin y evidenciar que, en ausencia de aceite/inoculo, no tiene lugar la
produccin de gas.
En la Fig. 6 se muestra una fotografa de los microcosmos empleados durante la
experimentacin. La primera medicin de gas se llev a cabo utilizando un
respirmetro tipo Bartha modificado (ver seccin 6.5.1).
Figura 6 Fotografa de los microcosmos que contienen medio de cultivo
adicionado con melaza de caa e inoculado con una muestra deaceite.
En los sistemas inoculados con 5 ml de aceite y con melaza de caa como fuente
de carbono; se logr obtener al grupo de bacterias fermentadoras cuya produccin
de CO2se muestra en la Grfica 1; donde se puede observar que la produccin de
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Captulo VII IBT Ginesa E. Arenas Isaac
Estudio de la poblacin microbiana productora de gas en yacimientos petroleros de Chicontepec, Ver. 50
CO2 tiene lugar en el tratamiento que fue inoculado con la muestra de aceite, el
sistema control que no fue inoculado o adicionado con la muestra de aceite no
present produccin de CO2. Con base en lo anterior se descarta la contaminacin
del medio de cultivo y la produccin abitica de este gas.
Grfica 1 Produccin de CO2 en el microcosmos que contiene el medio de
cultivo adicionado con melaza e inoculado con la muestra de aceite.Control, cultivo sin inoculo; Incubacin a 70 C por 91 das.
En la Grafica 1 se observa tambin que durante los primeros 14 das, la
produccin de CO2fue lenta, lo anterior puede deberse a que los microorganismos
se estaban adaptando al nuevo medio alcanzando una produccin de 1.98 mg/ml
de CO2, se observa tambin que la produccin de CO2 increment en forma
importante a partir del da 21 hasta los 70 das, con una produccin mxima de
11.41 mg/ml; a partir del da 71 y hasta los 91 das, la produccin CO2alcanz unafase estable de produccin.
Durante esta etapa de la experimentacin, se realiz una resiembra de los cultivos
en crecimiento sin utilizar aceite, en su lugar se tom como inculo una alcuota de
0.0
2.0
4.0
6.0
8.0
10.0
12.0
14.0
0 7 14 21 28 35 42 49 56 63 70 77 84 91 98
C
O2mg/ml
Das
CO2
Control
-
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los medios de cultivo con edad de 20-25 das. Como se observa en la Grfica 2,
este lote experimental present problemas de contaminacin, esto es, los cultivos
control, los cuales no fueron inoculados y contenan nicamente medio de cultivo
estril presentaron crecimiento y produccin de gas.
En la Grfica 2 se observa la produccin de CO2por el sistema control, alertando
sobre el problema de contaminacin por lo tanto al da 40 se detuvo la
experimentacin en este lote.
Grfica 2 Produccin de CO2 de la primera resiembra sin aceite que presentcontaminacin. Control, cultivo sin inculo; incubacin 70C por 42das.
Debido a la perdida de los cultivos, nuevamente se volvi a sembrar la muestra de
aceite utilizando el medio de cultivo descrito anteriormente. Los sistemas se
incubaron a 7