UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS AGROPECUARIAS CARRERA...

UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS AGROPECUARIAS

CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

MACHALA2017

MORANTE BRAVO KATHERINE LICETMÉDICA VETERINARIA ZOOTECNISTA

DETERMINACIÓN DEL ÍNDICE DE PREVALENCIA DEL TOXOPLASMAGONDII EN FELINOS EN LA CIUDAD DE SANTA ROSA



MACHALA2017


DETERMINACIÓN DEL ÍNDICE DE PREVALENCIA DELTOXOPLASMA GONDII EN FELINOS EN LA CIUDAD DE

SANTA ROSA



MACHALA2017


DETERMINACIÓN DEL ÍNDICE DE PREVALENCIA DEL TOXOPLASMA GONDIIEN FELINOS EN LA CIUDAD DE SANTA ROSA

MACHALA, 12 DE SEPTIEMBRE DE 2017

ALVAREZ DIAZ CARLOS ARMANDO

TRABAJO TITULACIÓNTRABAJO EXPERIMENTAL

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http://www.foyel.com/paginas/2010/06/1297/toxoplasmosis_en_perros_y_gatos/

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3

U R K N DU

UTMACH


CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTÉCNIA

TITULO:

“DETERMINACIÓN DEL ÍNDICE DE PREVALENCIA DEL

TOXOPLASMA GONDII EN FELINOS EN LA CIUDAD DE SANTA

ROSA PROVINCIA DE EL ORO”

AUTOR:

KATHERINE LICET MORANTE BRAVO.

TUTOR:

DR. CARLOS ARMANDO ALVAREZ DIAZ PhD

MACHALA – EL ORO

2017

II

“DETERMINACIÓN DEL ÍNDICE DE PREVALENCIA DEL

TOXOPLASMA GONDII EN FELINOS EN LA CIUDAD DE SANTA

ROSA PROVINCIA DE EL ORO”

KATHERINE LICET MORANTE BRAVO.

AUTORA

C.I. 0705351708

[email protected]

DR. CARLOS ARMANDO ÁLVAREZ DÍAZ PhD.

TUTOR

C.I. 0706734557

[email protected]

Machala, 12 septiembre de 2017

III

DEDICATORIA

Este trabajo le dedico a mi madre, Tanya Elizabeth Bravo Vilela, que siempre ha

estado conmigo brindándome su apoyo incondicional guiándome para tomar

siempre las mejores decisiones, y dejándome lecciones de vida.

A Dios, por siempre llenarme de fe, valentía para luchar hasta el fin sin importar los

miles de tropiezos que he tenido antes de llegar a esta meta.

También dedico este trabajo a mi querido padre, Tomas Clotario Bravo Castillo, que

se me adelantó y ahora está gozando del cielo; no pudo verme lograr mi sueño,

pero quiero que se sienta orgullosa de mi, y que a pesar de todos los obstáculos

que tuve, lo logre.

IV

AGRADECIMIENTO

Agradezco a Dios por brindarme la fe, paciencia, fortaleza y salud para realizar mi

proyecto final.

A mi madre Tanya Elizabeth Bravo Vilela, a Roberto Enrique Lucio Mackenzie, por

siempre estar apoyándome, guiándome, retándome, para culminar hasta el final y

obtener mi título.

A mi querido docente, tutor, guía al Dr. Carlos Armando Álvarez Díaz PhD, quien

siempre confió en mí, y me brindó sus conocimientos para realizar mi proyecto de

titulación; al Dr. Luis Hurtado Flores MgSc y Dr. Wilson Torres Ríos MgSc por

guiarme y apoyarme en el laboratorio al momento de realizar el trabajo diagnóstico.

V

A. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA

En el cantón Santa Rosa se han reportados casos de toxoplasmosis en mujeres

embarazadas según muestran los registros del “Hospital Obstétrico Ángela Loayza

de Ollague” de los últimos dos años, de ahí la importancia de determinar el índice

de prevalencia del Toxoplasma gondii mediante el método coprológico en felinos,

principales vectores de la enfermedad, en diferentes sectores de la ciudad.

VI

RESUMEN

La toxoplasmosis es una enfermedad infecto contagiosa zoonósica provocada por el

parasito Toxoplasma gondii, protozoario que afecta a los animales de sangre caliente en

general y a los felinos en particular de manera que estos últimos se les considera como

huéspedes naturales, y a los demás homeotermos como hospedadores intermediarios.

Como principales hospedadores, los felinos parasitados, luego de haber ingerido presas

contaminadas como roedores, aves, agua, etc., expulsan los ooquistes por medio de las

heces fecales; los humanos adquieren el toxoplasma gondii al tener contacto con las heces

fecales de los gatos contaminados o al ingerir carne cruda contaminada. El objetivo de la

presente investigación fue determinar el índice de prevalencia de Toxoplasma gondii en

felinos de la ciudad de Santa Rosa, Provincia de El Oro. La metodología contemplo la

división normal en zonas (barrios) de la ciudad de Santa Rosa, cabecera del cantón

homónimo para el muestreo de los animales. Las variables estudiadas fueron el índice de

prevalencia de la parasitosis y su relación con el sexo, raza y edad. La técnica aplicada

para el diagnóstico fue la coprológica de flotación que detecta los ooquistes presentes en

las heces fecales. Se procesaron las muestras de heces fecales de 138 animales que fueron

analizadas en el laboratorio de Parasitología de la UACA de la UTMach mediante el método

de flotación aplicando la siguiente metodología diagnóstica: se tomaron dos gramos de

cada muestra que fueron colocadas en un mortero, agregando varias gotitas de solución

salina con el objetivo de propiciar una mayor trituración con la mano del mortero y

seguidamente se le agregó 20cc de solución salina a la mezcla con las heces fecales hasta

obtener una suspensión homogénea de las mismas para verter el contenido del mortero en

un vaso de plástico, a través de un colador de tela de alambre, y luego de llenar el mismo

con la solución salina se colocó un cubre objeto en la parte superior de la muestra dejándolo

reposar por 15 a 20 minutos y tomarlo para colocarlo suavemente en un porta objeto y

proceder a su observación al microscopio con lente 10x/0.25 e iluminación buena y

amortiguada. Los resultados muestran un índice de prevalencia del 28,98% con mayor

incidencia en animales machos, mestizos, menores de 6 meses de edad y mayor incidencia

en la ciudadela Las Palmeras. Estos resultados de las variables sexo y raza se relacionan

con los animales presentes en las áreas estudiadas, es decir, participantes en el muestreo

y que predominan en la ciudad, al tiempo que la variable edad se relaciona con lo reportado

en la literatura referente a que el diagnóstico coprológico positivo solo es válido para

animales menores de 6 meses por la presencia de oosquistes. Se recomiendan como

medidas manipular higiénicamente la arena de la caja o el lugar donde defeque el felino,

desparasitar como medida de prevención por lo menos 2 veces al año, limpiar y desinfectar

el área de descanso de nuestros felinos e ingerir alimentos manipulados con higiene y bien

cocinados.

Palabras Claves: Felinos - Toxoplasma gondii – Índice de prevalencia - Santa Rosa - El

Oro

VII

SUMMARY

Toxoplasmosis is a contagious infectious zoonosis disease provoked by the parasite Toxoplasma gondii, protozoan that affects animals of hot blood in general and felines in particular so that the latter are considered as natural guests, and the other homoeothermics as intermediaries guests. As main hosts, felines parasitized, after ingesting contaminated prey such as rodents, birds, water, etc., expel the oocysts by means of fecal feces; humans acquire the disease by having contact with fecal feces from contaminated cats or by ingesting contaminated fresh meat. The objective of this research was to determine the prevalence rate of Toxoplasma gondii in felines in the city of Santa Rosa, province of El Oro. The methodology use the normal division in zones (barrios) of the Santa Rosa city, head of the homonym canton for the sampling of animals. The variables studied were the prevalence rate of parasitic diseases and their relationship with sex, race and age. The technique applied for the diagnosis was the carpological of flotation that detects the oocysts present in fecal feces. Fecal stool samples were processed from 138 animals that were analyzed in the Parasitology Laboratory of the UACA of UTMach using the method of flotation applying the following diagnostic methodology: two grams of each sample were taken that were placed in a mortar, adding several droplets of saline with the aim of propitiating a greater crushing with the hand of the mortar and then added 20cc of saline solution to the mixture with the fecal stools to obtain a homogeneous suspension of the same to pour the contents of the mortar in a plastic glass, through a sieve of wire cloth, and after filling it with the saline solution was placed a cover object at the top of the sample show by letting it stand for 15 to 20 minutes and take it to gently place it in an object holder and observe the microscope with 10 x/0.25 lens with good and damped lighting. The results show a prevalence rate of 28.98% with higher incidence in males, mice race and under 6 months of age animals and greater incidence in the Citadel Las Palmeras. These results of the variables sex and race are related to the animals present in the areas studied, that is, participants in the sampling and that predominate in the city, while the variable age is related to the reported in the literature that the diagnosis stool positive is only valid for animals less than 6 months by the presence of oocysts. It is recommended as measures to hygienically manipulate the sand of the box and the place where defecate the feline, deworming as a prevention measure at least 2 times a year, clean and disinfect the rest area of our felines and ingest food handled with hygiene and well cooked. Key Words: Felines - Toxoplasma gondii - Prevalence Index-Santa Rosa-El Oro

VIII

ÍNDICE

I. INTRODUCCION ............................................................................................ 13

OBEJTIVOS .......................................................................................................... 14

Objetivo general: ................................................................................................ 14

Objetivos específicos ......................................................................................... 14

2. REVISIÓN LITERARIA ................................................................................... 15

2.1. DEFINICION ............................................................................................ 15

2.2. ETIOLOGIA .............................................................................................. 15

2.3. TAXONOMIA ............................................................................................ 17

2.4. MORFOLOGIA ......................................................................................... 17

2.4.1. Ooquiste y esporozoíto ...................................................................... 18

2.4.2. Taquizoíto .......................................................................................... 18

2.4.3. Bradizoíto .......................................................................................... 18

2.5. CICLO BIOLOGICO ................................................................................. 18

2.6. MEDIOS DE CONTAGIO ......................................................................... 20

2.7. PATOGENIA ............................................................................................ 21

2.8. DIAGNÓSTICO ........................................................................................ 22

2.9. TRATAMIENTO ....................................................................................... 23

2.10. EPIDEMIOLOGIA ................................................................................. 24

3. MATERIALES Y MÉTODOS ........................................................................... 26

3.1. MATERIALES .......................................................................................... 26

3.1.1. Localización Del Estudio ................................................................... 26

3.1.2. Equipos y materiales ......................................................................... 27

3.1.3. Población ........................................................................................... 27

3.1.4. Muestras ............................................................................................ 27

3.1.5. Variables a Analizar ........................................................................... 28

3.2. MÉTODO ................................................................................................. 29

3.2.1. Metodología ....................................................................................... 29

3.2.2. Método ............................................................................................... 29

3.2.3. Estadística ......................................................................................... 29

IX

4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN ....................................................................... 30

4.1. Muestras que dieron positivas y negativas según la edad. ...................... 31

4.2. Muestras que dieron positivas y negativas según el sexo. ....................... 32

4.3. Muestras que dieron positivas y negativas según la raza. ....................... 33

5. CONCLUSIONES ........................................................................................... 35

6. RECOMENDACIONES ................................................................................... 36

7. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS ............................................................... 37

8. ANEXOS ......................................................................................................... 45

X

ÍNDICE DE TABLAS

Tabla 1.Clasificación zoológica del toxoplasma gondii. 17

Tabla 2. Animales diagnosticados según área de procedencia 31

Tabla 3. Resultados según categoría etaria. 31

Tabla 4. Animales positivos según su sexo. 32

Tabla 5. Animales positivos según la raza. 34

XI

INDICE DE FIGURAS

Figura 1. Estructura del toxoplasma gondii 17

Figura 2. Ciclo de vida de la toxoplasmosis. 19

Figura 3.Diferentes medios de contaminación de la toxoplasmosis 20

Figura 4.Ciclo infectivo de la toxoplasmosis en las mujeres en gestación. 25

Figura 5.Mapa del Cantón Santa Rosa 26

Figura 6. Índice de prevalencia del Toxoplasma gondii en felinos. 30

XII

ÍNDICE DE ANEXOS

Anexo 1. Presentación a los dueños para permitir obtener la muestra. 45

Anexo 2. Obtención de la muestra, en su respetiva cajita de arena. 45

Anexo 3. Obtención de la muestra, en su respetiva cajita de arena. 46

Anexo 4. Obtención de la muestra en lugares externos de la casa. 46

Anexo 5. Muestras llevadas al laboratorio de la Utmach. 47

Anexo 6. Se tritura la muestra en un mortero, con unas gotas de cloruro de sodio.

47

Anexo 7. Luego se coloca la muestra en un vaso, llenándolo con la solución de

cloruro de sodio. 48

Anexo 8. Se coloca, las muestras junto con su respectiva caja de heces

enumerada para identificarlas y también el porta objetos. 48

Anexo 9. A continuación, se coloca un cubre objeto encima de cada muestra

teniendo en cuidado que no se hunda, y se deja reposar entre 15 a 20 minutos. 49

Anexo 10. Con ayuda de una pinza vamos sacando el cubre objeto, colocándolo

en el porta objeto para llevar a observar en el microscopio. 49

Anexo 11. Se lleva la muestra al microscopio y se observa con lente de 10 x. 50

Anexo 12. Al ir observando en el microscopio, tener a un lado el cuaderno para ir

identificando los casos positivos y negativos. 50

Anexo 13. Caso positivo en muestra a toxoplasmosis en heces de felino. 51




Anexo 17. Registro que utilice para recoger las muestras. 53

13

I. INTRODUCCION

A medida que los medios de comunicación, tecnología, y otros pueden estar más a

la disposición de la sociedad, se ha permitido que se instruya, eduque y en de cierta

manera cambie el modo de cuidar a nuestras mascotas que, al ser tratadas como

parte de la familia, se les brindan los cuidados que necesitan para su sano desarrollo

físico y mental. El nivel socioeconómico de muchas personas, no les permite

instruirse y educarse, considerando a las enfermedades de sus mascotas como algo

fatal e inevitable provocado por el clima y otros factores ambientales.

Una de las enfermedades parasitarias más comunes en los gatos, la toxoplasmosis,

es provocada por el parasito Toxoplasma gondi, enfermedad zoonosica, de elevada

morbilidad en gatos. La ciudad de Santa Rosa presenta condiciones climatológicas

que permite que este parasito tenga cierta incidencia en la población felina por lo

que puede afectar a las personas principalmente a mujeres gestantes, de ahí la

necesidad de actualizar el índice de prevalencia de esta parasitosis en la localidad

para establecer medidas capaces de prevenirla.

En las mujeres embarazadas si la infección se produce durante la gestación, puede

ocurrir el aborto con posible afectación del sistema nervioso central del niño al

presentarse anomalías neurológicas como hidrocefalia, microcefalia e

irregularidades psicomotoras e inclusive provocar su muerte al nacimiento, además

los nacidos pueden padecer de retraso mental, linfoadenopatias, malestar general,

fiebre, linfocitosis y miocarditis. En el hospital Obstétrico Ángela Loayza, del cantón

Santa Rosa se pudo obtener información del año 2015, 2016 acerca de la cantidad

supuestos casos de mujeres embarazadas con toxoplasmosis; recién se ha

incrementado realizar examen de toxoplasmosis como examen rutinario a

pacientes.

En la ciudad de Santa Rosa, no se tiene referencias de trabajos anteriores sobre el

índice del Toxoplasma gondii en felinos, de ahí la importancia del presente trabajo

por ser una enfermedad zoonósica.

14

OBEJTIVOS

Objetivo general:

Determinar el índice de prevalencia del toxoplasma gondii mediante análisis coprológico en felinos en la ciudad de Santa Rosa, Provincia de El Oro.

Objetivos específicos

Determinar el índice de prevalencia del toxoplasma gondii en felinos en la ciudad de Santa Rosa, Provincia de El Oro mediante la prueba diagnóstica del método de flotación.

Relacionar el índice de prevalencia con las variables edad, sexo, raza.

15

2. REVISIÓN LITERARIA

2.1. DEFINICION

La toxoplasmosis es provocada por el parásito Toxoplasma gondii que es un

protozoario causante de una infección muy grave que abarca tanto animales como

a los humanos. Los principales hospedadores son los felinos que expulsan los

ooquistes por medio de las heces fecales, luego de haber ingerido presas como

roedores, aves, agua. En cambio, los humanos adquieren el toxoplasma gondii al

tener contacto con las heces fecales de los gatos(contaminados)o al ingerir carne

cruda contaminada o mal cocida. (1)

También se indica que este parasito no solo afecta a los gatos, si no a los animales

de sangre caliente por su gran tejido muscular y cerebral; los felinos se los determina

como huéspedes naturales, y los demás homeotermos como hospedadores

intermediarios. Pero se ha determinado que la especie canina podría ser parte de

la exposición del parasito en mención. (2)

Los gatos que se dedican la caza pueden infectarse alimentándose de cadáveres

de pequeños mamíferos o aves infectadas con T. gondii. (48)

La infección de toxoplasmosis tiene un alto riesgo en el deterioro inmunológico de

los individuos. (5)

Aunque esta enfermedad no es muy sonada como lo son la tuberculosis, ébola,

malaria, existe la toxoplasmosis en distribución baja en el mundo, se estima que el

40% de la población una mundial son parte de la infección del toxoplasma gondii;

sobre todo en los humanos con sistema inmune bajo como lo son pacientes con VIH

que reciben daños en el cerebro, ojos que en si empeoran causarían la muerte. (36)

Se presenta la enfermedad congénita y se adquiere después del nacimiento, con

una incidencia de 1,5 en exámenes serológicos. Los quistes en el hospedador dan

pauta para recurrencias oculares. (39)

2.2. ETIOLOGIA

El nombre del parasito proviene del griego toxon que tiene como significado arco y

plasma que significa forma. Por ende, su nombre se da por la forma del parasito. (37)

16

La infección de la toxoplasmosis se suele relacionar con costumbres higiénicas, por

el nivel socioeconómico, sanidad y sobre todo por el contacto con hospedadores

definitivos. (7)

La infección llamada Toxoplasmosis es de gran distribución mundial, zoonosica que

tiene como síntoma común los abortos en mujeres; porque no hay síntomas muy

marcados ni característicos en el humano. (3)

La toxoplasmosis no se consideraba como una infección que puede ser provocada

por el consumo de agua contaminada, pero en Brasil existió un brote por consumir

agua de un reservorio subterránea no filtrada, en Canadá hubo un similar

acontecimiento. (2)

También existe la transmisión por medio de la leche procedentes de animales

infectados en distintas especies animales. (38)

Se observó una cabra de 4 años de edad, que fue inoculada 48 horas después del

parto, presentando la infección de forma aguda provocando fiebre, metritis,

agalactia, enteritis, inapetencia. (40)

Así como se lo asocia con los abortos en humanos, se lo relaciona con el nacimiento

de crías débiles. (6)

Al desarrollarse la enfermedad la respuesta inmune disminuye porque ciertos

parásitos se escapan al musculo tejido nervioso, retina, convirtiéndose en quistes

histicos. (29)

Uno de los animales que son susceptibles aparte de los gatos se encuentran los

hurones domésticos, suelen presentar anorexia, diarreas, hipotermia, letargia,

trombocitopenia, neutrofelia. (29)

La toxoplasmosis es de trasmisión vertical y horizontal, aunque de forma vertical es

menos frecuente. El 20% y 70 % de evidencia serológica por infección se presenta

en la población humana. (42)

17

2.3. TAXONOMIA

El toxoplasma gondii tiene la siguiente clasificación taxonómica:

Tabla 1.Clasificación zoológica del toxoplasma gondii.

Fuente: Serrano 2014.

2.4. MORFOLOGIA

Figura 1. Estructura del toxoplasma gondii

Fuente: Velásquez 2014

El toxoplasma gondii tiene dos formas: la una extracelular con similitud a un arco, la

cual mide de 4 a 6 micras de largo; de 2 a 3 micras de ancho. Y la otra de forma

Phylum Apicomplexa

Clase Conoidasida

Subclase Coccidia

Orden Eucoccidiorida

Suborden Efimerita

Familia Sarcocystidae

Subfamilia Toxoplasmatidae

Género Toxoplasma

Especie Gondii

18

intracelular de manera ovalada. Muere a las 48 horas, conservando su virulencia

por algunas semanas; tiene poca flexibilidad (21)

Este parasito está constituido por tres formas que son: taquizoitos, ooquistes, y

bradizoitos. (17)

2.4.1. Ooquiste y esporozoíto

Existen dos clases de ooquistes el primero sin esporular que tienen forma esférica,

con una medición de 10 a 12 um de diámetro, y los otros ooquistes son los que son

esporulados con forma elipsoidales con una medición de 11 a 13 micras de

diámetro. Ambos ooquistes contienen cuatro esporozoitos que miden 2 x 6-8 um,

con un gran número de lípidos. (28)

2.4.2. Taquizoíto

Tienen una forma de media luna, con una medida de 1 x 6 um; está conformado por

mitocondrias, aparato de Golgi, ribosomas, organelas, anillos polares, anillos

apicales, retículo endoplasmatico, película protectora, y con un núcleo a basa de

cromatina. (28)

Las células del bazo de ratones producen altos niveles de IFN-gamma cuando se exponen a taquizoitos vivos de Toxoplasma gondii o un extracto soluble de parásito, suficiente para estimular esta respuesta, que también es inducida por sobrenadantes libres de células de taquizoitos cultivados. (50)

2.4.3. Bradizoíto

Son quistes pequeños miden alrededor de 5 um los jóvenes y los adultos están

formados de cientos de organismos en su interior, pero carece de lípidos, números

de gránulos densos en su inferior, con un núcleo posterior, susceptibles a la enzima

proteolíticas causando la destrucción. (28)

2.5. CICLO BIOLOGICO

Existen identificadas cuatro cepas: I, II, III, IV; cada una posea su grado de infección,

y tiene su propio ciclo de vida. El toxoplasma gondii tiene tres estados que son:

ooquistes, Taquizoíto y bradizoito. (11)

19

Figura 2. Ciclo de vida de la toxoplasmosis.

Fuente: Espinoza 2015

Para un estudio más concreto se han establecido dos ciclos distintos: el primero que

se da en el intestino delgado de los felinos productores de ooquistes llamado:

enteroepiteleal; y el segundo que está a cargo de los bradizoitos y taquizoitos. (15)

En el intestino delgado de los gatos domésticos comienza la reproducción sexual,

al expulsar las heces los gametocitos que son transformaos en esporozoitos la cual

infectan tanto la tierra, verduras, frutas, hortalizas, agua. El felino se infecta al ingerir

roedores, aves contaminadas con quistes tisulares, los cuales tiene un tiempo de

desarrollo de 3 a 6 días, luego se continua con el ciclo enteroepitelial la cual los

esporozoitos son liberados, provocando los merozoitos invasores del epitelio.

Cuando comienza la diferenciación sexual tienden aparecer los macrogametocitos

y microgrametocitos que en la fecundación unen los gametos, creando el ooquiste

unicelular, el cual, al llegar al suelo, con contacto con la humedad, oxigeno,

temperatura, tiene 3 cambios formando dos células con cuatro esporozoitos. (11)

Todo este proceso dura alrededor de 25 días cuando ingieren los gatos los

ooquistes del suelo, se dice que luego de 20 días de su infección se elimina 10

millones de ooquises por día de forma inmadura hacen cierto contacto con el

ambiente permaneciendo durante un año viable. (11)

20

Los ooquistes son demasiados resistentes a desfavorables condiciones

ambientales, incluso permanecen activos en presencia del agua por 54 meses y en

el suelo por un año. (14)

Se encuentra en altas cantidades los bardizoitos, pues persisten en el organismo

de forma indefinida, estos son causantes de la fase crónica donde se obtiene una

respuesta inmune polarizadas de células Th2 hemáticos. (11)

En cambio, los taquizoitos tiene una forma de multiplicarse muy rápida, son

causantes de la fase aguda de la infección, la división se produce cada 4 a 6 horas,

las células se rompen y se liberan en el sistema retículo endotelial (menos en los

glóbulos rojos); hasta en la saliva, orina, liquido peritoneal, leche, linfa y sangre. (11)

2.6. MEDIOS DE CONTAGIO

Figura 3.Diferentes medios de contaminación de la toxoplasmosis

Fuente: Fernández 2015

Una de las causas de transmisión de mayor influencia es por la vía digestiva, luego

se puede decir que por la vía transparentaría, existe una replicación del parásito en

hospedadores inmunocompetentes a las respuesta inmune, celular y humoral. (9)

Otro de los medios de contagio es por la trasfusión de sangre o el trasplante de

órganos; pero la más común es por digerir carne cruda, mal cocida. (10)

21

El mal lavado de los utensilios por falta de agua, jabón, el consumir frutas

contaminadas, las carnes más comunes que suelen tener el parasito por no

cocinarlas son las de cerdo y cordero. (22)

2.7. PATOGENIA

Para determinar los signos de la toxoplasmosis depende de su localización, estos

pueden ser en el sistema respiratorio, neuromuscular, gastrointestinal. (4)

Cuando se presenta la toxoplasmosis clínica que se notan hallazgo muy marcados

como son fiebre persistente, ictérica, desordenes oculares, neurológicos,

pulmonares, hepáticos, musculares, gastrointestinales y leucopenia. (18)

El toxoplasma gondii en estado infectante (taquizoito) tienen a multiplicarse

intracelular en el tracto gastrointestinal, estos a la vez se diseminan en nódulos

linfáticos mesentéricos por invasión linfática o por hematógena. No ocurre la

acidificación porque las proteínas del huésped son bloqueadas por las vacuolas

pasaritoforas que producen los taquizoitos, estos pueden ser destruidos por

intermediarios reactivos del oxígeno, acidificación, fluctuaciones osmóticas,

intermediarios reactivos del nitrógeno, anticuerpos específicos. La forma de quistes

del parasito es causantes de la infección residual, latente y sobre todo persistente

del cerebro, ojo y musculo. (17)

El toxoplasma gondii en pequeños carnívoros, con condiciones normales obtiene

una respuesta inmunológica humoral, celular, por lo anticuerpos que disminuyen la

etapa del taquizoito que tiene poca actividad en formas celulares, teniendo en

cuenta que los animales inmunodeprimidos la ruptura de los quistes se reactiva la

infección. (20)

En el miocardio de ciertos animales se localiza el toxoplasma gondii, en el sistema

nervioso suelen tener gravedad de localización, en el tejido los quistes se

encuentren en las meninges; y con un exudado puede variar entre seroso y

hemorrágico. Cuando hay casos de encefalitis y hepatitis se observa la presencia

de taquiozoitos. (20)

Cuando hay lesiones en el pulmón que se dan en los gatos contaminados con fase

aguda de la infección presenta endocarditis, miocarditis. En lesiones oculares se da

la uveítis anterior granulomatosa. (20)

22

2.8. DIAGNÓSTICO

La toxoplasmosis en los animales vivos se puede realizar una biopsia, con títulos

crecientes o anticuerpos específicos; como diagnóstico clínico de rutina se realizan

pruebas serológicas, teniendo en cuenta que en los gatos adultos es muy escaso

presenten síntomas clínicos. Una de las pruebas más comunes es la coprológica

que detecta los ooquistes por medio de las heces fecales de gatos, realizando la

técnica de flotación. (20)

Otro método es por medio de sedimentos teñidos de líquido cerebroespinal,

exudados, saliva, tejidos sospechosos obtenidos por punciones, necropsias y

biopsias. Hay que tener en cuenta que, para observar los quistes en cerebro, retina,

hígado, pulmón se realizan técnicas histológicas por medio de inmunohistoquimicas

específicas. (20)

Como pruebas serológicas se tiene a Sabin-Feldman, Dye- Test y IFAT de

microaglutinacion directa (MAT) o (ELISA). Teniendo en cuenta que la prevalencia

de anticuerpos del toxoplasma gondii tienen un positivo de 1:32. Un solo título

positivo de IgG no permite distinguir la infección activa de la crónica entonces se

debe realizar por lo menos 2 determinaciones séricas de IgG de 2 a 3 semanas. (20)

En los felinos la seroprevalencia, aumenta según su edad y sobre todo en machos,

de pelo corto depende de la alimentación, una de las pruebas más comunes en los

gatos es detectar por medio del suero, la cual se eliminan los ooquistes; un felino

seronegativo podría estar sano o haber estado infectado recientemente. En la

toxoplasmosis digestiva se determina por medio del fluido abdominal a traces de

técnicas de inmunohistoquimicas con suero anti-toxoplasma gondii. (20)

Existen algunos estudios complementarios como son radiología, resonancia

magnética, ecografía, electroretinografia, angiografía, tomografía que son de gran

ayuda para el diagnóstico dependiendo del grado de evolución de patológicas que

afectan a los ojos y al SNC. Es muy común las convulsiones en los gatos. (20)

Se tiene como prueba de rutina a la prueba de hemaglutinación, pero no es muy

específica porque presente reacciones cruzadas en otros parásitos. (8)

Se puede realizar como examen en PCR, que sirve para observa los ooquistes solo

que suelen confundirse con la morfología de ciertos protozoarios. y como técnicas

de lesiones se utilizan la hepatitis necrótica, linfadenitis, neumonía intersticial. (15)

En gatos sanos, se suele recomendar el examen de heces para encontrar los

ooquistes utilizando el método de flotación, se pude realizar un examen

23

hematológico que revela la eosinofilia en el perro infectado provocando problemas

en el SNC. (43)

En los animales, la biosíntesis de ácidos grasos es potencialmente un excelente

objetivo para la terapéutica dirigida contra la Toxoplasmosis y otras enfermedades

mediadas por apicomplexos. (49)

2.9. TRATAMIENTO

Como antibiótico recomendado es aquel del grupo de las lincosamidas la

clindamicina que actuara como inhibidor de la peptilidiltransferasa; como dosis se

recomienda darles a los felinos de 12,5 a 25 mg/kg, por vía intravenosa cada 12

horas alrededor de 2 semanas. (20)

Otro antibiótico recomendado es la sulfadiazina con dosis de 30 mg/kg; y la

pirimetamina con dosis de 0,4 mg/kg; estas se pueden combinar durante 14 días,

cada 12 horas dando un excelente resultado. Pero están contraindicadas para

animales en edad gestantes. (20)

Para los animales en gestación se recomienda la espiramicina; para evitar la

excreción de los ooquistes se puede administrar la toltrazuril, monensina,

sulfamidas(anticoccidiosicas). (20)

En el caso de los humanos infectados también tienen un tratamiento a base de la

pirimetamina con una dosis de 100 a 200 mg como dosis inicial y luego 50 a 100

mg por día con ácido fólico utilizando la dosis de 10 mg/día más sulfadicina con

dosis de 2 a 8 g/día, administración vía oral por un lapso de 6 semanas. (26)

Cuando se da la miocarditis toxoplasmaticas en los felinos se lo realiza con el

tratamiento tradicional, pero cuando los felinos presentan granulomas encefálicos

el tratamiento inmediato es una intervención quirúrgica administrándole fenobarbital

para las convulsiones. (29)

Para disminuir el riesgo de trasmisión al feto en los humanos., se recomienda la

espiramicina durante las 3 a 4 semanas primeras luego de la sero- conversión. (44)

Teniendo en cuenta que el problema de la toxoplasmosis en mujeres embarazadas

es que se produce una infección asintomática, pero ya en el tercer mes aumenta el

71% de sero- conversión produciendo manifestaciones en el sistema nervioso

central, retardo mental, y desordenes inflamatorios. (45)

24

Estudios epidemiológicos recientes indican que los agentes infecciosos pueden

contribuir a algunos casos de esquizofrenia. En los animales, la infección con

Toxoplasma gondii puede alterar el comportamiento y la función del

neurotransmisor. En los seres humanos, la infección aguda con T. gondii puede

producir síntomas psicóticos similares a los mostrados por personas con

esquizofrenia (46)

2.10. EPIDEMIOLOGIA

En la mayoría de los países de América Latina, por abandono social,

desconocimiento de la población. enfermedades de transmisión, problema sanitario,

se da una alta morbilidad de enfermedades zoonocicas importantes provocadas por

parásitos como la toxoplasmosis. (13)

El contagio vertical de toxoplasmosis gondii se provoca por vía transparentaría al

feto mediante la transmisión del protozoario por la primera infección materna,

dependiendo de la edad gestacional del feto, exactamente unas 13 semanas,

período más común para la infección del toxoplasma gondii. (16)

El diagnóstico temprano de toxoplasmosis en mujeres embarazadas da una pausa

para un buen tratamiento, tratando de reducir la tasa de transmisión y el daño

congénito. (19)

Como medidas de prevención de toxoplasmosis se centra en la higiene de cajones

de arena para los gatos, por medio de una limpieza diaria, alejada de cocinas y

comedores; al momento de manipular la caja de arena usar guantes y de inmediato

el lavado de las manos. El contacto directo con un felino raramente puede causar la

trasmisión, por eso se debe controlar que los mismo no ingieran ratones, aves,

carne infectada. (20)

En el caso de las mujeres es gestación se debe observar la relación con los gatos,

porque es susceptible a la infección cuando no tiene anticuerpos anti-toxoplasmas

gondii. También se debe lavar las manos al manipular carne cruda, vegetales;

cuando se realiza trabajo de jardinería siempre se debe utilizar guantes, y lavado

de manos. (20)

25

Figura 4.Ciclo infectivo de la toxoplasmosis en las mujeres en gestación.

Fuente: Almeida 2016

En el 2014 se realizó un estudio en mujeres embarazadas en la provincia de El Oro

para determinación del toxoplasma gondii, utilizan un método explicativo básico, a

mujeres de 15 a 40 años, en el primer trimestre de embarazo; dando como resultado

un 50% en Machala, un 36,8% en Pasaje. (25)

Se tiene un estudio en Argentina donde el 25% de la población está infectada de

toxoplasmosis, porque un felino puedo excretar más de 1 x 107 ooquistes por día,

lo cual contaminan alimentos, incluso el agua. (27)

Se mostró que beber agua directamente de la llave estuviera asociado

estadísticamente a un riesgo mayor, se encontró que tomar bebidas con agua sin

hervir aumenta el riesgo de infección 4,5 veces y que beber agua de botella, bolsa

o botellón, es un factor protector. (47)

26

3. MATERIALES Y MÉTODOS

3.1. MATERIALES

3.1.1. Localización del Estudio

El presente trabajo de investigación se realizó en la ciudad de Santa Rosa, ciudad

cabecera del Cantón Santa Rosa de la provincia de El Oro ubicada al sudoeste del

Ecuador (Figura 5).

Figura 5.Mapa del Cantón Santa Rosa

Fuente: Duran

La ciudad de Santa Rosa cuenta con una población estimada de 74.148 habitantes.

Sus coordenadas geográficas e indicadores climáticos son:

Latitud -3.43333

Longitud -79.9667

Altitud 13 msnm

Superficie 825,04 Km2

Temperatura 22 -280C

27

Límites:

Al norte con los cantones Machala y Pasaje

Al sur con los cantones Arenillas y Piñas

Al este con los cantones Atahualpa y Pasaje

Al oeste con el cantón Arenillas(23)

3.1.2. Equipos y materiales

Mandil

Mortero

Varilla

Heces

Cajas de heces

Porta objeto

Cubre objeto

Colador de alambre

Algodón

Guantes

mascarillas

Hojas de registro

Cámara fotográfica

Solución saturada de sal (cloruro de sodio)

Vasos de plástico de 1.5 onza

Nevera

Extractor de heces

Solución salina

3.1.3. Población

La ecuación más conocida para determinar el tamaño de la muestra necesario para

calcular el porcentaje de la población que pudiera tener o no la variable de interés,

es la utilizada, que la describe el libro de Epidemiologia Veterinaria. (30)

3.1.2. Muestras

Para determinar la muestra a investigar se tomó en cuenta el nivel de confianza

siendo un 95% aplicando la ecuación 1. (30)

https://es.wikipedia.org/wiki/Cant%C3%B3n_Machalahttps://es.wikipedia.org/wiki/Cant%C3%B3n_Pasajehttps://es.wikipedia.org/wiki/Cant%C3%B3n_Arenillashttps://es.wikipedia.org/wiki/Cant%C3%B3n_Pi%C3%B1ashttps://es.wikipedia.org/wiki/Cant%C3%B3n_Atahualpahttps://es.wikipedia.org/wiki/Cant%C3%B3n_Pasajehttps://es.wikipedia.org/wiki/Cant%C3%B3n_Arenillas

28

Ecuación 1

n =Z2 𝑝𝑞

d2

Donde:

n= Total de la población

Z2 = 1.96 (si la seguridad es del 95 %)

p = proporción esperada (en este caso 10% = 0.10)

q = 1 – p (en este caso 1-0.10 = 0.90)

d = precisión (en este caso deseamos un 5 %= 0,05). (30)

n =(1,96)2 (0,10)(0,90)

(0,05)2

n =(3,8416)(0,10)(0,90)

0,0025

n =0,3457

0,0025

n = 138

3.1.3. Variables a Analizar

Grupo etario: gatitos de 0 a 6 meses, jóvenes de 7 a 12 meses y adultos de 1 a 7

años.

Sexo: hembras y machos.

Raza

29

3.2. MÉTODO

3.2.2. Metodología

El estudio, de tipo investigativo no experimental, se realizó a nivel del laboratorio a

partir de muestras de heces fecales obtenidas de la población felina. Las muestras

de heces fueron debidamente identificadas con un número y conservadas en

refrigeración para su posterior traslado al laboratorio donde se procedió a realizar el

diagnóstico mediante el método de flotación; los resultados se registraron en cada

hoja de control.

3.2.3. Método

Se tomaron 2 gramos de cada muestra de heces fecales que fueron

colocadas en un mortero, para seguidamente y con el objetivo de

humedecerlas se les fue agregando varias gotitas de solución salina,

comenzando su trituración con la mano del mortero para agregarle 20cc de

solución salina la que fue mezclada con las heces fecales empleando la

mano del mortero hasta obtener una suspensión homogénea de las heces.

(24)

Seguidamente se vertió el contenido del mortero en un vaso de plástico, a

través de un colador de tela de alambre, y luego se llenó el mismo con la

solución salina colocándose el cubre objeto en la parte superior de la muestra

dejándolo reposar de 15 a 20 minutos. (24)

A continuación, se colocó el cubre objeto en la porta objeto muy despacio y

se procedió a observar en el microscopio con lente 10x/0.25 e iluminación

buena y amortiguada. (24)

3.2.4. Análisis estadístico

Se utilizó la siguiente fórmula:

Número de casos positivos

Índice de prevalencia = x 100

Número de casos investigados

30

4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

4.1. Índice de Prevalencia del Toxoplasma gondii en felinos en la ciudad de

Santa Rosa.

El número total de muestras analizadas fueron 138 (100%) de las cuales resultaron

positivas 40, para un índice de prevalencia del 28,98% en los distintos barrios de la

ciudad (Figura 6); estos resultados muestran un nivel de Toxoplasmosis superior en

la población felina que los reportados por Napo (2014) quien determinó una

prevalencia muy baja (0,5 %) para la ciudad de Machala, capital provincial de El

Oro.

Figura 6. Índice de prevalencia del Toxoplasma gondii en felinos.

4.2. Procedencia de los animales muestreados.

Como se aprecia en la tabla 2, las muestras de heces fecales de los felinos que

participaron en la presente investigación fue bastante homogénea por área de

procedencia; se destaca la ciudadela Las Palmeras como la de mayor cantidad de

animales infestados al diagnosticarse el 55,55% de los animales muestreados como

positivos a Toxoplasma gondii mientras que en las ciudadelas “El Paraíso” y la

“Teniente Hugo Ortiz” de 23 animales muestreados, todos resultaron negativos.

0

20

40

60

80

100

120

140

160

TOTAL ANIMALES POSITIVOS NEGATIVOS % POSITIVOS

31

Tabla 2. Animales diagnosticados según área de procedencia

4.3. Variable edad.

En la Tabla 3, se observa la cantidad de casos positivos y negativos según grupo

etario destacándose la positividad de los animales, solo para los menores de 6

meses de edad, que representaron el 36,23% del total de animales muestreados.

Para esta categoría etaria, menor a 6 meses, el diagnóstico positivo de Toxoplasma

gondii en las heces fecales involucró al 80% de los animales.

Tabla 3. Resultados según categoría etaria.

PROCEDENCIA POSITIVOS NEGATIVOS TOTAL

NUEVO SANTA ROSA 4 7 11

LOS HELECHOS 3 8 11

CDLA EL PARAISO 0 9 9

TENIENTE HUGO ORTIZ 0 14 14

MI ROSITA 4 10 14

24 DE MAYO 4 9 13

MIRAFLORES 3 10 13

SAN MARCOS 4 5 9

LAS PALMERAS 10 8 18

CALDERON 2 7 9

EL ORITO 3 6 9

GALAPAGOS 3 5 8

TOTAL 40 98 138

EDAD POSITIVOS NEGATIVOS

> 6 meses 40 10

6-12 meses 0 47

˂ 1 año 0 41

TOTAL 40 98

32

Los animales de edad superior a los 6 meses fueron negativos, es decir, el índice

de prevalencia para estas edades fue de cero como se aprecia en la Figura 7; estos

resultados coinciden con lo reportado en la literatura clásica como Grandía, Entrena

y Cruz (2013) y Torre, Yanet, Mariana y David (2015) que señalan la no presencia

de Toxoplasma gondii en heces fecales a partir de esta edad por lo que para estas

edades deben efectuarse estudios serológicos.

Figura 7. Porcentajes de Animales positivos según categoría etaria.

4.4. Variable sexo.

En la Tabla 4, se observa que la cantidad de machos muestreados es superior a la

de hembras (88 vs 50) diagnosticándose mayor prevalencia en machos (39,68%)

que en hembras (30%).

Tabla 4. Animales positivos según su sexo.

SEXO POSITIVOS NEGATIVOS

MACHOS 25 63

HEMBRAS 15 35

TOTAL 40 98

0

20

40

60

80

100

120

> 6 meses 6-12 meses ˂ 1 año TOTALPOSITIVOS NEGATIVOS

33

La toxoplasmosis es una enfermedad infecto-contagiosa que afecta a los animales

independientemente del sexo como reportan Troncoso Toro (2015) y Uribe

Henriquez(2015); En la presente investigación los resultados referentes a que la

cantidad de machos infestados sea superior a la de hembras se debe a que en la

localidad hay mas machos que hembras y no al efecto “sexo” (Figura 8 ).

Figura 8. Porcentajes positivos y negativos referente al sexo.

4.5. Variable raza.

La Tabla 5, muestra la predominancia de los gatos mestizos en la localidad, de ahí

que el 100% de los diagnosticados con toxoplasma gondii fueran de la raza mestiza,

nótese que solamente 2 animales fueron de raza pura lo que puede explicarse por

el “efecto comunidad” al tener animales más resistentes a enfermedades y más

efectivos para cazar roedores que tener gatos como mascotas muy sensibles a

enfermedades por lo que requieren más atención y cuidados. Estos resultados

coinciden con lo reportado en la literatura por Castillo (2012) y Noé (2014).

0

20

40

60

80

100

120

MACHOS HEMBRAS TOTAL

POSITIVOS NEGATIVOS

34

Tabla 5. Animales positivos según la raza.

RAZA POSITIVOS NEGATIVOS

MESTIZO 40 96

SIAMES 0 1

AZUL 0 1

TOTAL 40 98

35

5. CONCLUSIONES

1- El índice de prevalencia del Toxoplasma gondii en felinos de la ciudad de Santa

Rosa fue del 28,98%.

2- El diagnóstico coprológico por el método de flotación para la detección del

Toxoplasma gondii solo es válido en animales menores de 6 meses de edad.

3- Los resultados se relacionaron con animales machos y mestizos debido a que

fueron la raza y el sexo predominante en el área de estudio.

4- La ciudadela “Las Palmeras” resultó la del porcentaje más elevado de animales

positivos (55,55%) mientras que las ciudadelas “El Paraíso” y “Teniente Hugo

Ortiz” resultaron negativas en todos los animales muestreados.

36

6. RECOMENDACIONES

1- Aplicar las medidas higiénicas recomendadas para la manipulación del cajón de

arena o del área empleada por los felinos para defecar.

2- Llevar un control de antiparasitarios a nuestros gatos como medida de

prevención por lo menos 2 veces al año, siempre siguiendo las instrucciones del

veterinario, que es quien decidirá la pauta de desparasitación adecuada para

nuestra mascota.

3- Limpieza y desinfección frecuente del área de descanso de nuestros felinos.

4- Tener un mayor cuidado al ingerir alimentos, que deben estar bien cocinados,

sobre todo los que expenden en la calle.

37

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8. ANEXOS

Anexo 1. Presentación a los dueños para permitir obtener la muestra.

Anexo 2. Obtención de la muestra, en su respetiva cajita de arena.

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Anexo 3. Obtención de la muestra, en su respetiva cajita de arena.

Anexo 4. Obtención de la muestra en lugares externos de la casa.

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Anexo 5. Muestras llevadas al laboratorio de la Utmach.

Anexo 6. Se tritura la muestra en un mortero, con unas gotas de cloruro de sodio.

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Anexo 7. Luego se coloca la muestra en un vaso, llenándolo con la solución

de cloruro de sodio.

Anexo 8. Se coloca, las muestras junto con su respectiva caja de heces enumerada para identificarlas y también el porta objetos.

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Anexo 9. A continuación, se coloca un cubre objeto encima de cada muestra teniendo en cuidado que no se hunda, y se deja reposar entre 15 a 20 minutos.

Anexo 10. Con ayuda de una pinza vamos sacando el cubre objeto, colocándolo en el porta objeto para llevar a observar en el microscopio.

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Anexo 11. Se lleva la muestra al microscopio y se observa con lente de 10 x.

Anexo 12. Al ir observando en el microscopio, tener a un lado el cuaderno para ir identificando los casos positivos y negativos.

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Anexo 13. Caso positivo en muestra a toxoplasmosis en heces de felino.


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Anexo 17. Registro que utilice para recoger las muestras.

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