UNIVERSIDAD TÉCNICA ESTATAL DE QUEVEDO · 2020. 12. 18. · iii universidad tÉcnica estatal de...
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i
UNIVERSIDAD TÉCNICA ESTATAL DE QUEVEDO
FACULTAD DE CIENCIAS PECUARIAS
CARRERA DE INGENIERÍA AGROPECUARIA
PORTADA
TESIS DE GRADO
PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE INGENIERA
AGROPECUARIA
TEMA DE TESIS
COMPATIBILIDAD DEL PATRÓN Y MÉTODOS DE MICRO-
INJERTACIÓN EN LA PROPAGACIÓN DEL CLON DE CACAO
(Theobroma cacao L.) CCN-51
AUTOR
MARIUXI ELIZABETH GÓMEZ CEDILLO
DIRECTOR:
Ing. Agr. M.Sc. ROMMEL RAMOS REMACHE
QUEVEDO – LOS RÍOS – ECUADOR
2015
ii
DECLARACIÓN DE AUTORÍA Y CESIÓN DE DERECHOS
Yo, Mariuxi Elizabeth Gómez Cedillo, declaro que el trabajo aquí descrito es de
mi autoría; que no ha sido previamente presentado para ningún grado o
calificación profesional; y, que he consultado las referencias bibliográficas que
se incluyen en este documento.
La Universidad Técnica Estatal de Quevedo, puede hacer uso de los derechos
correspondientes a este trabajo, según lo establecido por la Ley de Propiedad
Intelectual, por su reglamento y por la normatividad institucional vigente.
Mariuxi Elizabeth Gómez Cedillo
AUTORA
iii
UNIVERSIDAD TÉCNICA ESTATAL DE QUEVEDO
FACULTAD DE CIENCIAS PECUARIAS
CARRERA DE INGENIERÍA AGROPECUARIA
TESIS DE GRADO
TRIBUNAL DE APROBACIÓN DE TESIS
PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE INGENIERA AGROPECUARIA
TITULO:
COMPATIBILIDAD DEL PATRÓN Y MÉTODOS DE MICRO-INJERTACIÓN
EN LA PROPAGACIÓN DEL CLON DE CACAO (Theobroma cacao L.)
CCN-51
TRIBUNAL DE APROBACIÓN DE TESIS
APROBADO POR:
Ing. M.Sc. Gerardo Segovia Freire
PRESIDENTE DEL TRIBUNAL
Ing. M.Sc. Diana Véliz Zamora Ing M.Sc. Jaime Vera Chang
MIEMBRO DEL TRIBUNAL MIEMBRO DEL TRIBUNAL
iv
CERTIFICACIÓN
Ing. Agr. M.Sc. Rommel Ramos R, docente de la Escuela de Ingeniería
Agropecuaria de la Facultad de Ciencias Pecuarias de la Universidad Técnica
Estatal de Quevedo.
CERTIFICO: Que la egresada Mariuxi Elizabeth Gómez Cedillo, realizó la
investigación de la tesis de grado titulada: “COMPATIBILIDAD DEL PATRÓN Y
MÉTODOS DE MICRO-INJERTACIÓN EN LA PROPAGACIÓN DEL CLON DE
CACAO (Theobroma cacao L.) CCN-51”, bajo la dirección del suscrito,
habiendo cumplido con las disposiciones establecidas para el efecto.
.
Ing. Agr. M.Sc. Rommel Ramos Remache
DIRECTOR DE TESIS
v
LOS RESULTADOS DE LA PRESENTE INVESTIGACIÓN ES
RESPONSABILIDAD DE LA AUTORA
Quevedo, 10 de Julio del 2015
MARIUXI ELIZABETH GÓMEZ CEDILLO
vi
DEDICATORIA
Dedico este título a:
A Mi madre Indolfa Isabelina Cedillo Méndez que por sus consejos y amor me
supo dirigir en el camino correcto.
A mi padre José Raúl Gómez Casquete que gracias a su esfuerzo y
dedicación he podido realizar mis sueños.
A mis hermanos Jorge Gómez y Néstor Gómez por confiar y creer en mí.
A mi cuñada Gabriela Aguayo y mis sobrinas hermosas Angie Gómez, Génesis
Gómez y Maidelyn Vilela por conformar parte de mi familia y de mi felicidad.
vii
AGRADECIMIENTO
Mi más sinceros agradecimiento a:
A DIOS, Por darme la vida y ayudarme a cumplir mis metas.
Al Dr. Eduardo Díaz Ocampo, Rector de La Universidad Técnica Estatal de
Quevedo; A la Ing. Jenny Torres Navarrete, Decana de la Facultad de Ciencias
Pecuarias y Al Ing. Gerardo Segovia Freire, Coordinador de la Carrera de
Ingeniería Agropecuaria, por su correcto desempeño como autoridades de
nuestra prestigiosa Universidad.
Al Ing. Rommel Ramos, Director de Tesis; Ing. Gerardo Segovia, Presidente del
Tribunal de Tesis; Ing. Jaime Vera, Miembro del Tribunal de Tesis, Ing. Diana
Véliz Miembro del tribunal de tesis, por las sugerencias y contribución en la
redacción y análisis del presente trabajo de investigación.
A Christian José Perez Oñate compañero de mis triunfos y fracasos.
A mi familia por su apoyo invaluable e incondicional y todas las personas que de
una forma u otra, han colaborado en la culminación de este trabajo, para ellos
mis más sinceros agradecimientos.
viii
ÍNDICE
Capítulo Páginas
PORTADA…………………………………………………………………… i
DECLARACIÓN DE AUTORÍA Y CESIÓN DE DERECHOS………….. ii
TRIBUNAL DE APROBACIÓN DE TESIS……………………………….. iii
CERTIFICACIÓN…………………………………………………………… iv
DEDICATORIA……………………………………………………………… vi
AGRADECIMIENTO………………………………………………………… vii
ÍNDICE................................................................................................... viii
ÍNDICE DE CUADROS…………………………………………………….. xiii
ÍNDICE DE FIGURAS………………………………………………………. xv
ÍNDICE DE ANEXOS………………………………………………………. xvi
RESUMEN…………………………………………………………………… xix
ABSTRACT………………………………………………………………….. xx
CAPÍTULO I. MARCO CONTEXTUAL DE LA INVESTIGACIÓN……..
1.1. INTRODUCCIÓN………………………………………………… 1
1.2. Problematización………………………………………………… 2
1.3. Justificación……………………………………………………… 3
1.4. Objetivos…………………………………………………………. 4
1.4.1. Objetivo general…………………………………………………. 4
1.4.2. Objetivos específicos…………………………………………… 4
ix
1.5. Hipótesis…………………………………………………………. 4
CAPÍTULO II. FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA…………………………
2.1. MARCO TEÓRICO……………………………………………… 6
2.1.1. Generalidades del cacao Theobroma cacao L………………. 6
2.1.2. Fisiología del cacao relacionado a la injertación…………….. 7
2.1.2.1. Formación del tallo para el injerto…………………………….. 7
2.1.2.2. Secciones del tallo……………………………………………… 8
2.1.2.3. Fisiología del injerto…………………………………………….. 9
2.1.3. Importancia del injerto………………………………………….. 11
2.1.4. Ventajas del injerto……………………………………………… 11
2.1.5. Tipos de injerto………………………………………………….. 12
2.1.5.1. Injerto de Yema o Parche………………………………………. 12
2.1.5.2. Injerto de púa lateral……………………………………………. 12
2.1.5.3. Injerto de púa terminal………………………………………….. 14
2.1.6. Factores que influyen en el prendimiento de los injertos…… 15
2.1.7. Características comparativas de las técnicas de injertación
tradicional y microinjertación…………………………………… 16
2.1.8. Vivero de cacao…………………………………………………. 17
2.1.9. Sustrato………………………………………………………….. 18
2.1.9.1. Funciones del sustrato…………………………………………. 19
2.1.10. Selección de materiales vegetativos para la injertación……. 19
x
2.1.11. Selección de patrones………………………………………….. 20
2.1.11.1. Condiciones que debe reunir el patrón……………………….. 20
2.1.12. Características de los clones utilizados para patrón………… 20
2.1.12.1. Características del clon EET – 400…………………………… 20
2.1.12.2. Características del clon EET-399……………………………… 21
2.1.12.3. Características del clon IMC-67……………………………….. 21
2.1.1.1. Características del clon CCN-51……………………………….. 22
2.1.13. Investigaciones relacionadas al tema………………………… 24
CAPÍTULO III. METODOLOGÍA DE LA INVESTIGACIÓN…………….
3.1. MATERIALES Y MÉTODOS…………………………………… 28
3.1.1. Localización……………………………………………………… 28
3.1.2. Tipo de investigación…………………………………………… 28
3.1.3. Material vegetativo……………………………………………… 28
3.1.4. Materiales de Campo…………………………………………… 29
3.1.5. Materiales de Oficina…………………………………………… 30
3.1.7. Diseño experimental y Análisis estadístico…………………… 31
3.1.8. Variables…………………………………………………………. 31
3.1.8.1. Porcentaje de prendimiento……………………………………. 31
3.1.8.2. Tiempo optimo al trasplante (60 días)………………………… 32
3.1.8.3. Diámetro del injerto (30, 45, 60 días)…………………………. 32
xi
3.1.8.4. Longitud del injerto……………………………………………… 32
3.1.8.5. Número de hojas del injerto (30,45 y 60 días)……………….. 32
3.1.9. Manejo del Experimento……………………………………….. 33
3.1.9.1. Adecuación del vivero…………………………………………... 33
3.1.9.2. Mezcla del sustrato……………………………………………… 33
3.1.9.3. Llenado de fundas………………………………………………. 33
3.1.9.4. Recolección de los clones para patrones…………………….. 33
3.1.9.5. Tratamiento y desinfección de la semilla…………………….. 33
3.1.9.6. Siembra de la semilla…………………………………………… 33
3.1.9.7. Fertilización y riego en vivero………………………………….. 34
3.1.9.8. Control fitosanitario en vivero………………………………….. 34
3.1.9.9. Cámara húmeda…………………………………………………. 34
3.1.9.10. Microinjertación………………………………………………….. 34
CAPÍTULO IV. RESULTADOS Y DISCUSIÓN…………………………..
4.1. RESULTADOS Y DISCUSIÓN…………………………………. 36
4.1.1. Cuadrados medios y significancia estadística de las variables
estudiadas………………………………………………………... 36
4.1.2. Porcentaje de prendimiento de microinjertos de cacao
CCN-51…………………………………………………………… 37
4.1.3. Longitud de los microinjertos de cacao CCN-51 en diferentes
etapas…………………………………………………………….. 38
xii
4.1.4. Diámetro de los microinjertos de cacao CCN-51 en diferentes
etapas…………………………………………………………….. 40
4.2. Número de hojas totales de los microinjertos de cacao CCN-
51 en diferentes etapas………………………………………… 42
4.3. Número de hojas verdaderas de los microinjertos de cacao
CCN-51 en diferentes etapas………………………………….. 44
4.4. Número de hojas no verdaderas de los microinjertos de
cacao CCN-51 en diferentes etapas………………………….. 46
4.5. Plantas de cacao CCN-51 aptas para el trasplante…………. 47
4.6. Análisis económico……………………………………………… 48
CAPÍTULO V. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES…………..
5.1. CONCLUSIONES……………………………………………….. 51
5.2. RECOMENDACIONES…………………………………………. 52
CAPÍTULO VI. BIBLIOGRAFÍA……………………………………………
6.1. LITERATURA CITADA…………………………………………. 54
CAPÍTULO VII. ANEXOS..................................................................... 61
xiii
ÍNDICE DE CUADROS
Cuadro
1. Características comparativas de las técnicas de
injertación tradicional y microinjertación………………….. 16
2. El material genético básico de siembra con
características propias de la variedad Nacional sabor
“Arriba” (AGROCALIDAD, 2011a)…………………………. 19
3. Característica de clones IMC-67 y CCN-51……………… 22
4. Características climatológicas de la Finca Experimental
“La María”……………………………………………………. 28
5. Número de plantas por unidad experimental……………... 29
6. Descripción de los tratamientos……………………………. 30
7. Análisis de Varianza ADEVA del diseño experimental….. 31
8. Cuadrados medios y significancia estadística de las
variables de la microinjertación de cacao CCN-51, en
cuatro patrones y bajo tres métodos de injertación e
interacciones…………………………………………………. 36
9. Efectos simples de tres métodos de injertación y cuatro
patrones en el prendimiento (%) de los injertos de cacao
CCN-51 a los 30 días……………………………………….. 37
10. Interacción entre métodos de injertación y patrones en el
porcentaje de prendimiento de injertos de cacao CCN-51. 38
11. Efectos simples de tres métodos de injertación y cuatro
patrones en la longitud (cm) de los microinjertos de cacao
CCN-51 a diferentes etapas (días)………………………… 39
Página
xiv
12. Interacción entre métodos de injertación y patrones en la
longitud (cm) de los microinjertos de cacao CCN-51 a los
60 días……………………………………………………….. 40
13. Efectos simples de tres métodos de injertación y cuatro
patrones en el diámetro (cm) de los microinjertos de
cacao CCN-51 a diferentes etapas (días)………………… 41
14. Interacción entre métodos de injertación y patrones en el
diámetro (cm) de los microinjertos de cacao CCN-51 a los
60 días……………………………………………………. 42
15. Efectos simples de tres métodos de injertación y cuatro
patrones en el número de hojas totales de los
microinjertos de cacao CCN-51 a diferentes etapas
(días)………………………………………………………….. 43
16. Interacción entre métodos de injertación y patrones en el
número de hojas totales (verdaderas y no verdaderas) de
los microinjertos de cacao CCN-51 a los 60 días……….. 44
17. Efectos simples de tres métodos de injertación y cuatro
patrones en el número de hojas verdaderas de los
microinjertos de cacao CCN-51 a diferentes etapas
(días)………………………………………………………….. 45
18. Efectos simples de tres métodos de injertación y cuatro
patrones en el número de hojas no verdaderas de los
microinjertos de cacao CCN-51 a diferentes etapas
(días)………………………………………………………….. 46
19. Interacción entre métodos de injertación y patrones en el
número de plantas aptas al trasplante a los 60 días…….. 48
20. Análisis económico de los tratamientos…………………… 49
xv
ÍNDICE DE FIGURAS
Figura
1. Sección longitudinal de un ápice de tallo (Bidwell, 1993)... 7
2. Secciones de un tallo leñoso transversal y longitudinal
(Bidwell, 1993)………………………………………………. 8
3. Desarrollo radicular del patrón (Salvador, et al., 2012)…. 9
4. Procedimiento para realizar un injerto de yema o parche
(Camacho, 2010)……………………………………………. 13
5. Procedimiento para realizar un injerto de púa lateral…… 13
6. Procedimiento para realizar un injerto de púa terminal
(Mendoza, 2013)……………………………………………. 14
7. Interacción de las fases lunares en el prendimiento de
injertos y acodos (Alaro, 2014)……………………………. 15
8. Mazorca del clon EET- 400………………………………… 20
9. Mazorca del clon EET-39…………………………………… 21
10. Mazorca del clon IMC-67…………………………………… 21
11. Mazorca del clon CCN-51………………………………….. 23
Página
xvi
ÍNDICE DE ANEXOS
Anexo
1. Análisis de varianza del prendimiento de microinjertos de
cacao CCN-51 en cuatro patrones y bajo tres métodos de
injertación…………………………………………………….. 62
2. Análisis de varianza de la longitud del injerto de cacao
con tres métodos de injertación y cuatro patrones a los
30 días………………………………………………………... 62
3. Análisis de varianza de la longitud del injerto de cacao
con tres métodos de injertación y cuatro patrones a los
45 días………………………………………………………... 63
4. Análisis de varianza de la longitud del injerto de cacao
con tres métodos de injertación y cuatro patrones a los
60 días………………………………………………………... 63
5. Análisis de varianza del diámetro del injerto de cacao con
tres métodos de injertación y cuatro patrones a los 30
días……………………………………………………………. 64
6. Análisis de varianza del diámetro del injerto de cacao con
tres métodos de injertación y cuatro patrones a los 45
días……………………………………………………………. 64
7. Análisis de varianza del diámetro del injerto de cacao con
tres métodos de injertación y cuatro patrones a los 60
días……………………………………………………………. 65
8. Análisis de varianza del número de hojas totales del
injerto de cacao con tres métodos de injertación y cuatro
patrones a los 30 días………………………………………. 65
Página.
xvii
9. Análisis de varianza del número de hojas totales del
injerto de cacao con tres métodos de injertación y cuatro
patrones a los 45 días………………………………………. 66
10. Análisis de varianza del número de hojas totales del
injerto de cacao con tres métodos de injertación y cuatro
patrones a los 60 días………………………………………. 66
11. Análisis de varianza del número de hojas verdaderas del
injerto de cacao con tres métodos de injertación y cuatro
patrones a los 30 días………………………………………. 67
12. Análisis de varianza del número de hojas verdaderas del
injerto de cacao con tres métodos de injertación y cuatro
patrones a los 45 días………………………………………. 67
13. Análisis de varianza del número de hojas verdaderas del
injerto de cacao con tres métodos de injertación y cuatro
patrones a los 60 días………………………………………. 68
14. Análisis de varianza del número de hojas no verdaderas
del injerto de cacao con tres métodos de injertación y
cuatro patrones a los 30 días………………………………. 68
15. Análisis de varianza del número de hojas no verdaderas
del injerto de cacao con tres métodos de injertación y
cuatro patrones a los 45 días………………………………. 69
16. Análisis de varianza del número de hojas no verdaderas
del injerto de cacao con tres métodos de injertación y
cuatro patrones a los 60 días………………………………. 69
17. Análisis de varianza plantas aptas al trasplante del injerto
de cacao con tres métodos de injertación y cuatro
patrones a los 60 días………………………………………. 70
xviii
18. Recolección de tierra de montaña…………………………. 71
19. Picado de los materiales para el sustrato………………… 71
20. Adquisición del aserrín de balsa…………………………… 71
21. Preparación del sustrato……………………………………. 71
22. Llenado de fundas 5.5 x 8………………………………….. 71
23. Ubicación del vivero………………………………………… 71
24. Siembra de los patrones……………………………………. 72
25. Desinfección de semilla…………………………………….. 72
26. Disposición de los tratamientos……………………………. 72
27. Cubierta de polietileno para plantas de microinjertación… 72
28. Disposición de material utilizado como patrones………… 72
29. Etiquetado de los tratamientos…………………………….. 72
30. Microinjerto de Púa terminal……………………………….. 73
31. Microinjertos ubicados en cámara húmeda………………. 73
32. Microinjerto de Yema……………………………………….. 73
33. Patrones recién injertados………………………………….. 73
34. Microinjerto de Púa lateral………………………………….. 73
35. Microinjertos de púa lateral, púa terminal y yema……….. 73
xix
RESUMEN
El experimento se realizó en el Programa de Plantas Ornamentales y
Medicinales de la Finca Experimental “La María” de la Facultad de Ciencias
Pecuarias perteneciente a la Universidad Técnica Estatal de Quevedo (UTEQ)
entre los meses de enero y abril del 2015. El objetivo fue evaluar el efecto del
patrón y los métodos de microinjertación en la propagación del clon de cacao
(Theobroma cacao L.) CCN-51. Empleando patrones de 35 días de edad con
una altura promedio de 18.06 ± 1.8 cm y 0.48 ± 0.06 cm de diámetro. Se utilizó
un Diseño Completamente al Azar con cinco repeticiones, en un arreglo
bifactorial de 3 métodos de injertación (yema, púa lateral y púa terminal) x cuatro
patrones (IMC-67, EET-400, CCN-51 y EET-400). Las variables evaluadas
fueron: Prendimiento; longitud; diámetro; producción de hojas (verdaderas, no
verdaderas y totales) y porcentaje de plantas optimas al trasplante en periodos
de 30, 45 y 60 días posterior a la injertación, los resultados fueron: Los métodos
de injertación que presentaron los porcentajes de prendimiento más adecuados
fueron púa terminal con 95.50% y púa lateral con 92.50%. No se presentó
incompatibilidad entre el injerto de cacao CCN-51 y los patrones empleados, ya
que se encontraron diferentes interacciones en todas las variables, el Factor
método de injertación presentó mayor significancia (p<0.05) en el porcentaje de
prendimiento, longitud y diámetro de los microinjertos, así también el patrón IMC-
67 mostro el 90% de plantas optimas a los 60 días. Se encontraron diferencias
(p<0.05) en la producción de hojas totales a los 60 días tanto en el método como
en el patrón, la formación de hojas verdaderas y no verdaderas únicamente
tuvieron efecto a los 30 días posterior a la injertación. El mayor beneficio/costo
fue 0.95 y se obtuvo con el injerto de púa terminal en el patrón IMC-67
alcanzando 95.27% de rentabilidad económica.
Palabras clave: Cacao, microinjertación, patrón, yema, púa lateral y púa
terminal.
xx
ABSTRACT
The experiment was carried out in the Programme of Ornamental and Medicinal
Plants of the Experimental "La Maria" of the Facultad de Ciencias Pecuarias
estate belonging to the Universidad Técnica Estatal de Quevedo (UTEQ)
between the months of January and April 2015. The objective was to evaluate
the effect of the pattern and methods of microinjertación in the spread of clone of
cocoa (Theobroma cacao L.) CCN-51. Using patterns of 35 days of age with an
average height of 18.06 ± 1.8 cm and 0.48 ± 0.06 cm in diameter. A design fully
randomized with five replications, was used in a bivariate array of 3 methods of
grafting (egg yolk, pua lateral and terminal pua) x four patterns (IMC-67, TSE-
400, CCN-51 and TSE-400). The variables evaluated were: arrest; length;
diameter; production of leaves (true, true, and total) and percentage of plants
optimal transplantation in periods of 30, 45 and 60 days after grafting, the results
were: grafting methods that presented the most appropriate percentages of arrest
were terminal with 95.50 pua and lateral pua with 92.50. Did not show
incompatibility between cocoa CCN-51 graft and patterns used, since different
interactions were found in all the variables, Factor method of grafting present
greater significance (p<0.05) in the percentage of arrest, length and diameter of
the transplant, so the IMC-67 pattern showed the 90 of plants optimal at 60 days.
They were 60 days (p<0.05) differences in total leaf production both in method
and in the pattern, the formation of true and not true leaves only took effect 30
days after grafting. The biggest beneficio costo was 0.95 and was obtained with
the graft of terminal spike pattern IMC-67 reaching profitability 95.27.
Key words: cocoa, microinjertacion, pattern, yolk, pua lateral and terminal spike.
xxi
0
CAPÍTULO I.
MARCO CONTEXTUAL DE LA INVESTIGACIÓN
1
1.1. INTRODUCCIÓN
El cultivo de cacao (Theobroma cacao L.), se cultiva desde época de la colonia
(400 años); después del banano y flores es la más importante cadena
agroalimentaria; Ecuador es primer productor de cacao fino y de aroma (61%
producción mundial); existen 433.000 ha (90% es fino de aroma); hay 20.000 ha.
de cacao especial y con certificación orgánico, Rainforest Alliance, Comercio
Justo y de Calidad-Origen; alto potencial para incrementar la oferta a 200.000 t
año-1 (FAO, MAGAP, 2010; Radi, 2005).
Tradicionalmente el cacao se ha multiplicado a través de semilla, el productor
suele seleccionar empíricamente los mejores materiales. Sin considerar la
característica de Alogamia de algunos cultivares por lo que han conllevado a la
existencia de plantaciones con una diversa capacidad de producción, tamaño y
calidad de la semilla y muy seguramente, en su comportamiento frente a plagas
y enfermedades (Camacho, 2010), por tanto lo recomendable es la vía asexual
o “clonación” (Quiroz & Mestanza, 2012).
Los países productores de cacao, empeñados en mejorar la productividad, han
procedido a la formación de nuevas plantaciones y a la rehabilitación de las
existentes. La renovación de nuevas plantaciones por medio de la propagación
asexual de plantas, favorece la conservación de caracteres deseables de
producción, que lo hace valioso para el desarrollo cacaotero (Quiroz & Mestanza,
2012).
En la generalidad de los casos, los intentos por iniciar programas de renovación
o establecimiento de nuevas plantaciones de cacao Nacional, se han visto
obstaculizados debido a la carencia de material genético mejorado, el cual ha
sido dependiente de las posibilidades de multiplicación mediante metodologías
tradicionales, basadas principalmente en procesos de injertación (con muchas
variantes) o el enraizamiento de ramas plagiotrópicas (Egüez, 2010) . Sin
embrago el costo que implica la propagación in vitro plantea la búsqueda de
alternativas a los métodos convencionales, que puede ser la microinjertación.
2
Al igual que la injertación tradicional, ésta es una forma especializada de
propagación en la cuales se injerta un fragmento de tejido vegetal en forma de
parche. El propósito del injerto es obtener una producción más temprana y una
plantación uniforme. El tipo de injerto conveniente en la microinjertación o
injertación temprana, es el de parche por ser más rápido, seguro y económico
además, porque cada yema es potencialmente capaz de producir una nueva
planta (Palencia & Mejía, 2004). Sin embargo (Somarriba, et al., 2010), indican
que con esta técnica también se pueden utilizar los métodos de Púa lateral y
terminal.
Con esta técnica de innovación tecnológica, se injertan los patrones en fases
tempranas de crecimiento con el fin de obtener clones listos para la siembra en
el menor tiempo posible, favoreciendo su calidad y reduciendo los costos de
producción. La injertación temprana comparada con la enjertación tradicional, no
solo disminuye costos sino que, además, reduce el tiempo de la planta en el
vivero, con lo cual se mejora el sistema radical y se maximiza la utilización de
yemas (Palencia, et al., 2009; Palencia & Mejía, 2004).
El objetivo del actual proyecto de tesis es evaluar los métodos de propagación
de parche o yema, púa lateral y púa terminal en la técnica de microinjertación
para lograr, la disminución del tiempo en el vivero, que a su vez permitirá reducir
los costos de mantenimiento y obtener plantas de calidad.
1.2. Problematización
Los métodos de propagación que actualmente se realizan implican generalmente
un tiempo considerablemente largo (siete a ocho meses) que encarece el costo
de producción de las plántulas por su mantenimiento. Sin embargo, existe una
técnica de innovación tecnológica que podría reducir este lapso de tiempo (entre
tres a cuatro meses), esta es la microinjertación, que permitiría obtener plantas
de calidad en el menor tiempo posible, reduciendo los costos (Somarriba, et al.,
2010; Palencia & Mejía, 2004).
3
En este contexto se propone la presente investigación para evaluar esta técnica
y lograr reducir el periodo de permanencia de las plantas clonadas en el vivero,
la optimización del área de producción y aclimatación para la obtención de
plantas de cacao en nuestro medio.
1.3. Justificación
Una proporción de los cultivos de cacao en el país son viejos y necesitan ser
renovados debido a sus bajos rendimientos. Por esta razón se aborda la
producción masiva de plántulas injertadas con materiales de alta productividad
(Cárdenas, et al., 2010).
Los países productores de cacao, empeñados en mejorar la productividad, han
procedido a la formación de nuevas plantaciones y a la rehabilitación de las
existentes. La renovación de nuevas plantaciones por medio de la propagación
asexual de plantas, favorece la conservación de caracteres deseables de
producción, que lo hace valioso para el desarrollo cacaotero (Quiroz &
Mestanza, 2012).
Una técnica practica para la obtención de clones en menor tiempo sin deteriorar
la calidad de la planta es la injertación temprana o microinjertación, la cual se
hace en patrones jóvenes (4-5 semanas), en donde se injerta un fragmento de
tejido vegetal en forma de parche que contiene una yema brotada o en desarrollo
(Somarriba, et al., 2010; Palencia, et al., 2009).
4
1.4. Objetivos
1.4.1. Objetivo general
Evaluar el efecto del patrón y los métodos de microinjertación en la propagación
del clon de cacao (Theobroma cacao L.) CCN-51.
1.4.2. Objetivos específicos
Establecer el porcentaje de prendimiento entre los métodos de
propagación, yema lateral, púa lateral y púa terminal.
Determinar la compatibilidad entre los patrones: EET-399, EET-400,
IMC-67, CCN-51, en la microinjertación del clon CCN-51.
Analizar el beneficio/costo de los métodos de propagación.
1.5. Hipótesis
H1: El método de propagación de púa terminal presentó un mejor
porcentaje de prendimiento.
H2: El patrón CCN–51 mostró una mejor compatibilidad en la
microinjertación de este clon.
H3: La microinjertación realizada al clon CCN-51 utilizando como patrón
el mismo material y propagados mediante el método de púa terminal
indicó la mejor rentabilidad.
5
CAPÍTULO II.
FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA
6
2.1. MARCO TEÓRICO
2.1.1. Generalidades del cacao Theobroma cacao L.
Taxonomía. Linneo, en 1753, dio al árbol de cacao el nombre de Theobroma
cacao (cacao: “bebida de los dioses”), por su exquisito aroma y sabor (Vargas,
2014). Originario posiblemente del Alto Amazonas, Theobroma cacao L. es una
especie diploide, (2n=20), Malvácea; umbrófila, cauliflora, hermafrodita y
pentámera de polinización entomófila. Se caracteriza por ser alógama y
autogama, de autoincompatibilidad controlada por genes y procesos bioquímicos
(etileno, ácido-abscísico y ácido-indolacético) pueden conducir abscisión floral.
Prospera espontáneamente desde México a Bolivia en la Selva Amazónica. Se
agrupa en Forasteros (Bajo y Alto Amazónicos); Criollos y Trinitarios (Criollos x
Trinitarios). El cacao posee una amplia variación morfológico-productiva debida
a factores genéticos y ambientales (Monteiro & Ahnert, 2007).
El árbol de cacao es una planta de la selva tropical de América. Existen 22
especies conocidas del género Theobroma, algunos con potencial de fruta de
mesa, como Theobroma cacao, es casi la única económicamente explotada para
producir semillas que después de seco y procesado, será la base de chocolates
y derivados (Sodré, 2007).
En la época entre los 80 y 90 el cacao en el Ecuador fue un cultivo de importancia
económica y social siendo este en épocas de independencia uno de las
principales fuentes de financiamiento convirtiéndose en soporte económico de
gran parte de población de la costa ya sea de manera directa o indirectamente
como generador de trabajo (Torres, 2012).
Una de las enfermedades más desbastadora del cultivo de cacao es la
Moniliophthora es un hongo que causa la moniliasis, una enfermedad de la
mazorca en el cultivo de cacao (Theobroma cacao L.), con pérdidas hasta del
60% de la cosecha (Suárez & Rangel, 2013).
7
2.1.2. Fisiología del cacao relacionado a la injertación
2.1.2.1. Formación del tallo para el injerto
(Fajardo, 2004), indica que los tallos constituyen la vía por la cual las sustancias
se transportan de las raíces a las hojas, además de ser el sostén de las hojas
para lograr su exposición a la luz. El lugar de inserción de las hojas se llama
nudo y la zona comprendida entre dos nudos es el entrenudo. En la axila de cada
hoja y en el ápice del tallo se encuentran las yemas, sitio de los meristemas más
apicales.
En el tallo se pueden reconocer de afuera hacia adentro las siguientes
estructuras: una epidermis, con estomas y frecuentemente con pelos; el córtex,
formado por parénquima, colénquima y esclerénquima; dentro del córtex se
encuentran el cilindro central, donde el xilema y floema se agrupan en cordones
o haces vasculares. De acuerdo con la disposición del xilema y el floema, estos
pueden ser colaterales o concéntricos. En las dicotiledóneas y gimnospermas,
los haces están en un círculo alrededor de la medula, conformando la eustela.
En las monocotiledóneas hay numerosos haces dispersos o ubicados en varios
círculos denominados atactostela y en este grupo de plantas no se observa
región medular (Fajardo, 2004).
Figura 1. Sección longitudinal de un ápice de tallo (Bidwell, 1993).
8
2.1.2.2. Secciones del tallo.
El tallo está estructurado por una capa externa de epidermis, usualmente
cubierta en su lado externo con una cutícula cerosa. El tipo principal de célula
del material fundamental es el de parénquima; ésta es una célula grande, de
pared delgada y relativamente indiferenciada. Por fuera de los haces vasculares
está la corteza, compuesta usualmente de elementos parenquimatosos más
pequeños y diferenciados, y en el interior se localiza la médula compuesta de
células algo mayores y paredes más delgadas. El xilema está compuesto
principalmente de células conductoras muertas, de pared gruesa, ya sean vasos
(células grandes sin paredes transversas que forman estructuras tubulosas que
corren a lo largo del tallo) o traqueidas (mucho menores en diámetro, con
paredes terminales, y por lo regular con engrosamientos secundarios más
acentuados). El floema está compuesto principalmente de células de diámetro
grande y pared delgada con placas terminales características a manera de
cribas, llamadas elementos cribosos, alineados extremo con extremo para
formar tubos cribosos; éstos se asocian con pequeñas células parenquimatosas
llamadas células acompañantes. El xilema y el floema están separados por una
capa de células capaces de dividirse llamada cambium (Bidwell, 1993).
Figura 2. Secciones de un tallo leñoso transversal y longitudinal
(Bidwell, 1993).
9
2.1.2.3. Fisiología del injerto
El injerto se compone de dos partes independientes y de composición genética
diferente entre sí, las cuales llegan a formar una sola planta, un solo individuo.
La yema o vareta (injerto) es tomada de una planta seleccionada por su
producción (clon), la cual se va transformar en la copa del nuevo árbol. La otra,
el patrón (porta-injerto), constituye la base o el soporte de la planta, por lo que
conforma el sistema radicular, indispensable para el estado nutricional de la
planta. El patrón debe ser seleccionado por su adaptabilidad a diferentes
condiciones de suelo y clima, tolerancia a diferentes plagas y enfermedades
radiculares (Ceratocystis sp. y Phytophthora sp.), y por su buen vigor vegetativo
(Hernández, et al., 2012).
Sistema radicular: La planta de cacao originada de una semilla tiene una raíz
principal (raíz pivotante), de la cual nacen cuantiosas raíces secundarias. En los
30 primeros centímetros son numerosas, formando una densa red de raicillas en
la superficie del suelo, la cual se favorece por una capa de materia orgánica en
descomposición que la protege de la radiación solar directa y de la erosión
superficial del suelo (Salvador, et al., 2012).
El sistema de raíz pivotante le permite a las plantas originadas de semilla, estar
ancladas en el suelo, mientras que las pequeñas raíces de las plantas
provenientes de estacas no brindan un soporte adecuado (Salvador, et al., 2012).
Figura 3. Desarrollo radicular del patrón (Salvador, et al., 2012).
10
Para que se dé un resultado efectivo, se necesita la correspondencia botánica
de las especies que se emplean; es decir, que existe afinidad o cercanía entre
especies y/o que pertenezcan a la misma familia botánica. Además el injerto es
más fácil cuando los tejidos son jóvenes. Otros factores ambientales que influyen
en el éxito de la soldadura del injerto son las temperaturas y la humedad
ambiental. El injerto está limitado a las dicotiledóneas en las angiospermas y a
las coníferas en las gimnospermas. En las monocotiledóneas es muy raro y difícil
(Forero, 2004).
El injerto consiste en la unión de dos partes, cada una de ellas procedentes de
individuos distintos, soldando sobre una planta madre con raíces (patrón) una
porción de otra planta llamada injerto, la cual se va a desarrollar sobre el patrón
que le sirve de sostén. El injerto se realiza durante el tiempo de actividad de la
planta, es decir cuando hay circulación de la savia. La operación permite
combinar las cualidades del injerto y del patrón (Acuña, 2002) citado por,
(Moreira & Pinargote, 2009).
Estos mismos autores indican que el injerto se selecciona por las características
siguientes:
Rendimiento alto.
Calidad de los frutos u otros productos.
Rapidez de producción, y época de producción diferente del patrón.
Resistencia a plagas y enfermedades.
Porte.
El patrón por su parte, debe de tener algunas cualidades también:
Vigor y desarrollo de raíz.
Resistencia a las plagas y enfermedades.
Adaptación a las condiciones de suelo. Una vez que el injerto esta
prendido, patrón e injerto van a desarrollarse como una sola planta, pero
ambas partes conservan sus características.
11
2.1.3. Importancia del injerto
La injertación del cacao es una alternativa ventajosa para la propagación
vegetativa o asexual de este cultivo, lo cual es de gran importancia para los
agricultores cacaoteros ecuatorianos debido a que con el injerto se consiguen
plantas más vigorosas y resistentes a las enfermedades, y como resultado
plantaciones con una mayor producción y por ende mayor rentabilidad (Moreira
& Pinargote, 2009).
Tradicionalmente este procedimiento a requerido la utilización de plantas de 6 a
12 meses de edad en el vivero (Flores, 1981), por lo tanto utiliza un gran número
de mano de obra dependiendo del número de plantas a propagar.
2.1.4. Ventajas del injerto
La injertación del cacao es una alternativa ventajosa, de gran importancia para
los agricultores cacaoteros ecuatorianos (Moran & Vera, 2012).
Las ventajas de la Injertación según Acuña, (2002) citado por, (Camacho, 2010;
Moreira & Pinargote, 2009) son las siguientes:
La plantación tendrá un rendimiento uniforme.
Las plantas Injertadas producen en menor tiempo y son precoces.
Presentan una mejor calidad y alta productividad.
Son plantas tolerantes a plagas y enfermedades.
Su manejo técnico es fácil y económico.
Plantas de porte bajo, por lo que tendremos un mayor número de plantas
por hectárea.
La planta producida conserva las cualidades del arboles de donde se
obtuvo la yema.
Permite un mayor aprovechamiento del material que se desea propagar.
Porque tenemos plantas que producen más.
12
2.1.5. Tipos de injerto
2.1.5.1. Injerto de Yema o Parche
En la vareta porta yema (procedente de la planta madre) con la ayuda de una
navaja de injertar, se realiza un corte rectangular superficial alrededor de la
respectiva yema, dejando listo para su desprendimiento y posterior inserción
sobre el patrón (Figura 4).
En el patrón ya preparado con anterioridad, empleando una navaja de injertar de
realizan tres cortes en forma de “U” invertida en el tallo, bajo la cicatriz de los
cotiledones, posteriormente se remueve una esquina de la incisión para
desprender aproximadamente dos centímetro de la corteza, y se realiza el
amarre con la banda de parafilm para garantizar su prendimiento, una vez
realizado el injerto se debe retirar el parafilm a los 15 días para que inicie su fase
de aclimatación (Diaz, et al., 2012).
El método de propagación más usado son los injertos de parche, el cual presenta
algunos inconvenientes como una efectividad a veces muy baja, altos costos de
producción debido a la cantidad de sustrato usado, los costos de mantenimiento
en el vivero y del transporte de las plantas del vivero al sitio de siembra, por lo
que surge la necesidad de contar con una metodología más rápida, barata y
eficiente para la multiplicación de las plantas (Mata, 2006).
2.1.5.2. Injerto de púa lateral
Consiste en colocar en la parte lateral de un patrón, el extremo terminal de una
vareta con tres o cuatro yemas funcionales; para realizar este tipo de injerto se
procede a hacer una abertura en el costado del patrón de aproximadamente dos
centímetros de longitud y en la vareta porta yema se hacen dos cortes lisos a los
lados en forma de una cuña, de tal manera que penetre en la hendidura y
coincida con el corte del patrón, luego se amarra fuerte el injerto, utilizando
Parafilm o cinta de injertar (Figura 5). Se cubren las varetas injertadas con
plástico transparente (blanco) durante 21 días, tiempo en que se retira la cinta y
se continúa con el proceso de aclimatación de injertos prendidos (Quiroz &
Mestanza, 2012).
13
Figura 4. Procedimiento para realizar un injerto de yema o parche (Camacho, 2010).
Figura 5. Procedimiento para realizar un injerto de púa lateral (MCCH, 2009).
14
2.1.5.3. Injerto de púa terminal
Púa terminal esta técnica, es una variación del injerto de púa, sin embargo, en
vez de hacerse a un lado del patrón se hace en la parte superior del mismo. Para
el cual se debe realizar el despuntado del patrón a 15 centímetros de altura.
Luego cortamos el tallo, hacia abajo, unos 4 centímetros, abriendo el tallo en dos
mitades, entre las que vamos a colocar la vareta; Tomamos una vareta que
contenga 3 o 4 yemas del mismo grosor del patrón y en el lado más grueso
hacemos dos cortes inclinados de 4 centímetros, uno a cada lado, para darle la
forma de una cuña; Introducimos la cuña de la vareta en el corte realizado en el
tallo del patrón; Amarramos el injerto con cinta plástica, sujetándolo bien. Una
vez amarrado, se le coloca una bolsa de plástico transparente, para protegerlo
de la humedad y favorecer el prendimiento; El injerto se suelta a los 45 días de
haberse realizado. (Somarriba, et al., 2010).
Figura 6. Procedimiento para realizar un injerto de púa terminal (Mendoza, 2013).
15
2.1.6. Factores que influyen en el prendimiento de los injertos
Existen diferentes factores que pueden ser internos o externos entre estos
tenemos según lo expresado por (Camacho, 2010; Diaz, et al., 2012).
Temperatura. Se recomienda hacer los injertos por la mañana y en época
seca.
El lugar.- debe de estar limpio, aireado y bajo sombra.
Material de Yemas y Varetas.- debe de estar en buenas condiciones
sanitaria.
Protección.- debe de estar protegida de animales.
Técnicas a utilizar.- debe utilizarse la más adecuada para el mayor
prendimiento.
Fase lunar.- Tomar en cuenta las fechas del calendarios lunar para realzar
los injertos, es mejor en luna llena y cuarto creciente.
Interacción patrón/injerto.- compatibilidad entre genotipo patrón / injerto.
Figura 7. Interacción de las fases lunares en el prendimiento de injertos y acodos (Alaro, 2014).
La luna llena es muy favorable para la activación de las yemas, número de
brotes, y altura de los brotes en los injertos (yema y púa) con mayor notoriedad
para el injerto de púa. Y la luna nueva propicia el prendimiento y la emisión de
16
hojas en los injertos (yema, púa) siendo más evidente en el injerto de púa
(Yunga, 2012).
2.1.7. Características comparativas de las técnicas de injertación
tradicional y microinjertación
Existen tres posibles períodos de tiempo para que las plantas estén listas para
ser injertadas, dependiendo del tipo de injerto: para microinjerto
aproximadamente un mes; para injertación temprana de dos a tres meses (al
igual que para las plantas provenientes de semilla), y para injertación tradicional
unos seis meses (Hidalgo, 2014). El proceso de Injertación, es práctico y de fácil
implementación, existen diferencias en las técnicas utilizadas tradicionalmente,
sin embargo la microinjertación nos trae características comparativas superiores
que se detallan en el siguiente Cuadro 1:
Cuadro 1. Características comparativas de las técnicas de injertación tradicional
y microinjertación.
Características Microinjertación Injertación Tradicional
Tiempo al injertar
4 a 5 semanas 4 a 5 meses
Características del patrón
Tallo 0,5 cm grosor color verde Tallo 1,0 cm grosor color café claro
Tiempo al trasplante
4 - 5 meses 7 a 8 meses
Métodos de injertación
Parche y Púa Terminal Parche, Púa, Ingles y Púa Terminal
Características de vareta
Color Verde Café Haz - Verde Envés de y 60 días
Consideraciones especiales
Las yemas se deben utilizar el mismo día que se corta, recolección antes de las 10 a.m.
Varetas con 3 a 4 yemas
Número de hojas al despuntar al patrón
2 - 4 hojas 6 Hojas o más
Momento para decapitar al patrón
4 hojas nuevas 5 Hojas nuevas
Fuentes: (Somarriba, et al., 2010; Camacho, 2010; Palencia & Mejía, 2004; Quiroz & Mestanza, 2012).
17
La diferencia marcada demostrada en el Cuadro 1. Indica que esta alternativa
nos permitiría obtener plantas en menor tiempo sin deteriorar la calidad,
disminuyendo costos y reduciendo la permanencia de la planta en el vivero.
2.1.8. Vivero de cacao
(AGROCALIDAD, 2011a), define como vivero, al ambiente que permite el
desarrollo de material vegetal en condiciones controladas o, espacio físico o local
donde se realiza el proceso de multiplicación vegetal, sean estos laboratorios de
cultivo in-vitro, invernaderos o campos de reproducción.
Los viveros de cacao permiten prevenir y controlar las plagas y enfermedades
del cacao las mismas que son susceptibles a daños debido a su mayor
vulnerabilidad (Vera, et al., 2015). Las plantas enfermas o muertas deben
examinarse con cuidado para determinar su grado de peligrosidad y ubicarlas
en otro lugar para su tratamiento o destrucción, según el caso.
El vivero de cacao se construye en época de verano entre enero y febrero. Las
plantas necesitan manejo durante 4 a 5 meses hasta su trasplante definitivo en
el campo el cual se recomienda realizarlo entre Junio y Julio (Moreno & Ríos,
2012).
El vivero debe estar protegido contra vientos fuertes, y bien cerrado para evitar
los daños que ocasionan los animales domésticos como gallinas, perros,
chanchos, etc. o algunos animales silvestres (Enríquez, 2004; Rodriguez, 2011).
El vivero, ya sea para híbridos o clones en general, debe construirse teniendo en
cuenta los siguientes aspectos (Enríquez, 2004):
El tamaño se definirá de acuerdo con el número de hectáreas que se vaya
a sembrar (1200 plantas para una hectárea a 3x3 metros considerando
que se estima del 5 al 10% de muerte en el campo).
Debe estar cerca de una fuente de agua que sea limpia y con plena
disponibilidad.
Debe escogerse terrenos planos en la cual debe construirse pequeñas
zanjas de drenaje para eliminar el exceso de aguas de las lluvias. El vivero
18
debe estar protegido contra vientos fuertes y cercados para evitar daño
por animales.
Debe tener una sombra apropiada que proporcione como mínimo un 70%
de sombramiento inicial.
Antes del trasplante al campo definitivo, se elimina la sombra poco a poco, hasta
dejar el vivero a libre exposición solar. La disminución de la sombra hace que las
plantas de cacao se robustezcan y se acondicionen para su trasplante al campo.
En condiciones óptimas de manejo del vivero, las plantas tendrán de 4 a 5 pares
de hojas y estarán listas para su trasplante definitivo al campo (Paredes, 2009).
Para mejorar el desarrollo de las plantas puede usarse una fertilización mensual
usando una fórmula completa como con macronutrientes (NPK): (10-30-10) a
razón de 2 g (una tapa de refresco) por bolsa. Debe tenerse el cuidado de colocar
el fertilizante lo más lejos de la plantita, en el borde de la bolsa para evitar que la
queme (Vera, et al., 2015).
2.1.9. Sustrato
La biofertilización del cacao en vivero con los microorganismos utilizados, solos
o combinados, favorece el desarrollo y la asignación de materia seca de los
componentes morfológicos y fisiológicos del rendimiento de la planta (Aguirre, et
al., 2007).
Aquellos materiales que son, puros o en mezclas, son empleados para
reemplazar al suelo en el cultivo de plantas en contenedores (macetas, fundas,
sacos, etc.). Todo material solido distinto al suelo, cuyo origen pude ser natural,
de síntesis o residual, material u orgánico, que colocado en un contenedor en
forma pura o mezclado, permite el anclaje del sistema radicular
(AGROCALIDAD, 2011b).
Una de las características que debe de tener el sustrato, es que al coger con la
mano y aplastarlo debe ser esponjoso al tacto y no quedar compacto y con
facilidad poder soltarlo. Las raíces crecen más rápido en sustratos esponjosos
que en densos como los arcillosos (Salvador, et al., 2012).
19
2.1.9.1. Funciones del sustrato
Los sustratos cumplen con las siguientes funciones (Sarango, 2008):
Proporcionan humedad a las semillas.
Dotan de aireación a las semillas durante el proceso de germinación.
La textura del sustrato influye directamente en el porcentaje de semillas
germinadas así como en la calidad del sistema radicular que se ha formado de
las semillas, la que funciona como depósito de sustancias nutritivas.
2.1.10. Selección de materiales vegetativos para la injertación
Actualmente existen diferentes estudios acerca de la compatibilidad y selección
de una serie de plantas (clones, plantas madres de donde se van a obtener
yemas) que están siendo utilizadas con éxito en varios países, como Colombia,
Ecuador, Bolivia y Perú (Hernández, et al., 2012).
Las Estaciones Experimentales disponen de clones o cultivares de alta
producción y de alta tolerancia de las enfermedades en algunas regiones del
país (Enríquez, 2004).
Cuando el injerto se va a realizar en patrones de vivero, es requisito fundamental
que éstos presenten tolerancia a la enfermedad Mal del Machete; lo cual se logra
sembrando semilla de los siguientes clones: IMC-67, PA-132, UF-613, EET-400,
EET-399, Pound 12 y SPA-9 (Hidalgo, 2014).
Cuadro 2. El material genético básico de siembra con características propias de
la variedad Nacional sabor “Arriba” (AGROCALIDAD, 2011a).
Clones
INIAP:
Santa
Elena:
Clones para
patrones
Híbridos Manabí
Clones
Manabí
Amazoni
a
EET-19 EET-544 EET-116 EET-19 x EET-110 ETT-575 EET-19
EET-48 EET-558. EET-399 EET-48 x EET-110 EET-576 EET-95
EET-95 EET-400 EET-48 x EET-332 EET-450 EET-96
EET-96 IMC-67 EET-95 x EET-332 EET-454 EET-103
EET-103 POUND-12 EET-103 x EET-387 EET-576
EET-575
EET-576
EET-577
Fuente: (AGROCALIDAD, 2011a). Elaboración: autora
20
2.1.11. Selección de patrones
2.1.11.1. Condiciones que debe reunir el patrón
El patrón debe ser seleccionado por su adaptabilidad a diferentes condiciones
de suelo y clima, tolerancia a diferentes plagas y enfermedades radicales
(Ceratocystis y Phytophthora), y por su buen vigor vegetativo (Echeverri, 2006).
(Echeverri, 2006; Hidalgo, 2014), recomiendan que las semillas provengan de
los clones IMC-67, PA-121, PA-46, PA-150, Pound 7, Pound 12, EET 399, EET-
400 y SPA-9, por su tolerancia a los hongos de la raíz. La semilla del patrón se
debe obtener de una plantación sembrada para este fin.
2.1.12. Características de los clones utilizados para patrón
2.1.12.1. Características del clon EET – 400
En el Ecuador los grupos de los clones EET-399 Y EET-400 (ambos
descendientes del Silecia-1 PA-132 x IMC-62) con otros resistentes están dando
buenos resultados, pues sus descendientes muestran alta tolerancia de campo
y los árboles, en general, son robustos, buenos productores y presentan otras
características agronómicas deseables (Enríquez & Soria, 1984; Salinas, 1997).
Las mazorcas son amelonadas, pero con estrangulaciones en la base y en ápice
de la misma con surcos y lomos poco profundos, resalta además el gran tamaño
de sus semillas, el color de la mazorca es de tonalidad café oscura en estado
verde y amarillo verdoso al madurar.
Figura 8. Mazorca del clon EET- 400
21
2.1.12.2. Características del clon EET-399
Es un clon con reconocida resistencia a Ceratocystis fimbriata (Mal de machete)
según (Vidal & Zuñiga, 1995) y también a escoba de bruja (Soria, 1976)
Figura 9. Mazorca del clon EET-399
2.1.12.3. Características del clon IMC-67
Se conoce también este clon con la denominación de EET-116 (Flores, 1981),
procede del tipo genético Amazónico (Salinas, 1997). De acuerdo a Arguello
(1997) citado por (García, et al., 2014), el clon IMC-67 se considera tolerante
ante la moniliasis con resultados promisorios. Por su parte (Vidal & Zuñiga,
1995), indican que este clon tiene resistencia a Ceratocystis fimbriata (Mal de
machete), con un grado de resistencia de 0.60 (resistente según la escala 0.00-
0.99) (Soria & Salazar, 1965).
Figura 10. Mazorca del clon IMC-67
22
Cuadro 3. Característica de clones IMC-67 y CCN-51.
Nota: AC-autocompatible; AI-autoincompatible; T- tolerante; S– susceptible. Fuente: (Delgado, 2012).
2.1.1.1. Características del clon CCN-51
(Crespo & Crespo, 1997), indican que el clon CCN-51 fue seleccionado y
estudiado por el agrónomo Homero Castro, hace más de 30 años. Este científico
investigo la población de cacao en el altos amazonas, coleccionando material
genético para usarlos en programas de cruzamiento con variedad trinitaria y
otros cultivares buscando un clon de alta productividad resistentes a
enfermedades que afectan a los huertos de cacao: “escoba de bruja”, “Monilia”
y Ceratocystis (mal de machete).
Sus mazorcas son rojizas-moradas cuando tiernas y de color rojizo anarjadas
cuando maduras. Presentan sabor a cacao medio a bajo. Su potencial se
encuentra en la producción de manteca de cacao (Paredes, 2009).
El clon CCN-51 cuyo genotipo es (ICS-95 x IMC-67) x Canelo (Escobar, 2008).
En Ecuador se ha desarrollado el clon CCN-51, que posee cierto grado de
tolerancia a la escoba de bruja, y que presenta mayor productividad (precocidad
en la producción y marcada diferencia en la cantidad de quintales producidos por
hectárea) y otras características económicas deseables (granos más grandes,
mayor nivel de tolerancia a enfermedades, mayor capacidad de adaptación a
condiciones ambientales adversas) (Schmid, 2013). Debido estas características
CARACTERÍSTICAS IMC-67 CCN-51
Origen Perú Ecuador
Compatibilidad AI AC
Color mazorca Verde Rojo
Color semilla Purpura Purpura
Almendras Mazorcas Kg-1 42 48
Cacao Seco Kg-1 21 -
Peso de una mazorca(g) 1,2 1,4
Mazorca árbol-1-ano-1 2,6 -
Altitud recomendada(m) 100-1200 -
Monilla T T
Phytophtora S T
Ceratosystis T T
23
se ha dado la expansión del CCN-51 en las fincas de los productores pequeños
y medianos quienes por su alto índice de productividad lo han utilizado como
material de resiembra para cubrir espacios dentro de la huerta o sembrar
pequeños lotes como parte de la unidad productiva (Quiroz, 2012).
Este cultivo requiere de un clima cálido y húmedo con temperaturas promedio
anual de 23 a 26 oC, precipitación anual entre 1500 y 2500mm con un mínimo
mensual de 100 a 120mm en caso contrario requiere riego. Es importante tener
en cuenta que cuando la temperatura baja a menos de 22 oC casi no hay
floración, mientras entre promedios superiores a 25 oC la formación de flores es
abundante la cual significa abundancia de mazorcas. La mazorca CCN-51 tarda
aproximadamente 140 días en madurar en los meses calurosos, mientras que
en los meses más frescos se demoran aproximadamente 160 días (Crespo &
Crespo, 1997).
Estos mismos autores (Crespo & Crespo, 1997), indican que el cacao
tradicionalmente, se lo ha sembrado bajo sombra; sin embargo en el caso del
CCN-51 cultivado en el Litoral Ecuatoriano, bajo riego, fertilización, poda y
controles fitosanitarios se lo plantado con éxito con autosombramiento y con
rendimientos mayores comparados con las huertas que viven bajo la sombra de
otros árboles.
Figura 11. Mazorca del clon CCN-51.
24
2.1.13. Investigaciones relacionadas al tema
Se ha compilado los principales resultados de investigaciones relacionadas al
tema con principal énfasis en los métodos de injertación y los patrones utilizados.
La investigación realizada por (Beltran & Cordoba, 2012), de tipo trifactorial
(Clones x Método de injertación x Intervalos de tiempo) en donde se incluía el
clon CCN-51, los injertos de aproximación, malayo y parche. Los resultados
sobresalientes fueron: La respuesta en el porcentaje de prendimiento indicaron
que el método de injertación que mejor comportamiento presentó es el método
de “parche” con un porcentaje que va desde el 88% al 100%, seguidamente el
método de “aproximación” registró un porcentaje del 71% y en ultimas el método
que menor porcentaje registró es el método “malayo” con porcentajes que van
del 28.5% al 57.1%. Se presentó el clon ICS 95 con los mayores resultados de
prendimiento en estos 3 métodos su vez el clon ICS 60 registra los menores
resultados en el método de “parche” y en el método “malayo”. Los clones que
mayor emisión de nudos y hojas presentaron a lo largo de la investigación fueron
los clones CCN 51 e ICS 95 respectivamente comparados con los clones TSH
565 e ICS 60, siendo este último clon el que mayor periodo de latencia presentó.
El método de injertación donde mejor se comportaron los clones es el método de
“Aproximación” con una diferencia significativa frente a los métodos de “Parche
y Malayo”.
El experimento sobre influencia de ambientes semi controlados y técnicas de
injertación sobre el prendimiento del injerto de Cacao Nacional realizado por
(Moreira & Pinargote, 2009) encontraron que: Con el injerto de púa se alcanzó el
mayor porcentaje de prendimiento a los 60 días (48%) en ambiente a la
intemperie sin cubierta. El injerto de púa mostró los mejores resultados para las
variables vegetativas evaluadas, (tamaño y diámetro de los injertos y hojas
número de hojas a los 80 días. En los ambientes de la cámara húmeda la
Humedad Relativa: supera el 85% mientras que a la intemperie es de alrededor
del 70%. Los injertos a la intemperie y sin cubierta se desarrollaron de mejor
manera, exceptuando la variable número de hojas que se desarrollaron en mayor
número en cámara húmeda con cubierta. Los injertos de yema y de púa sufrieron
el ataque de hongos y de insectos, tanto en cámara húmeda como a la
25
intemperie, pudiendo observar mayores implicaciones negativas en los
ambientes de cámara húmeda, lo que permite establecer la injerencia del tipo de
ambiente en la aparición de enfermedades en plantas injertadas. Además el
tamaño del patrón si influye porque los patrones con mayor vigor hídrico
presentaron un mayor porcentaje de prendimiento ante los de menor tamaño que
no prendieron.
En un estudio bifactorial realizado por (Sarango, 2008), sobre tipos de cacao
(Factor A.) y métodos de injertación (Factor B.) en dos épocas del año, encontró
que: la respuesta del tipo de cacao (Factor A), en cuanto a las variables
evaluadas fueron similares en invierno y verano, sin embargo el valor promedio
más alto, se obtuvo en A3(EET-103) y A4(trinitario) con el 100% de prendimiento
en invierno, y para verano en A1(EET-95), A3(EET-103) con 95.83% y 95.14%
de prendimiento, respectivamente. La respuesta del Factor B (tipos de injerto),
para la mayoría de las variables evaluadas fueron similares, sin embargo el valor
promedio más alto, se tuvo en B2: (injerto doble hendidura) con 99.17% de
prendimiento invierno, y en verano B1: injerto lateral con 92.50% de
prendimiento. Se utilizó como patrones CCN-51 y cacao de tipo Nacional.
El trabajo titulado: Efecto del comportamiento del brote de yemas, en varetas
injertadas sobre un patrón lignificado de cacao (Theobroma cacao L.) bajo tres
tiempos de desate, investigado por (Alaro, 2014), consistió en la injertación
directa sobre patrones ya establecidos en el campo definitivo con la edad de un
año y tres tipos de altura; la primera de 50 a 70 centímetros, la segunda con 74
a 96 centímetros y ultima de 98 a 120 centímetros donde se evaluaron tomando
en cuenta el diámetro de cada una de ellas, el número de hojas, la altura del
brote y el tiempo óptimo de desate como variables de respuesta; obteniendo
como resultado final que el tiempo óptimo para el desarrollo de la nueva plántula
que fue a los 51 días después del desate, a un diámetro de 1.3 centímetros y
una altura de 98 a 1.20 centímetros de altura después del injertado de la misma.
El método de injertación fue de púa lateral. Con porcentajes de prendimiento de
hasta el 100%.
26
(Yunga, 2012), realizó un interesante estudio sobre la respuesta de dos tipos de
injerto de cacao y tres tipos de cinta (parafina, cinta cera, polietileno) en
diferentes fases lunares, determinó que los tratamientos difieren
significativamente, en cada una de las fases lunares estudiadas, resaltando los
promedios del injerto de púa sobre el de yema, agregando que la naturaleza de
cinta empleada para amarrar el injerto al patrón dio diferencias significativas. Por
otro lado en el análisis combinado de varianza, se encontró que la interacción
fases lunares por tratamientos resultó ser altamente significativa
estableciéndose que la luna llena es muy favorable para la activación de las
yemas, número de brotes, y altura de los brotes en los injertos (yema y púa) con
mayor notoriedad para el injerto de púa. Y la luna nueva propicia el prendimiento
y la emisión de hojas en los injertos (yema, púa) siendo más evidente en el injerto
de púa. El mejor beneficio económico para los injertos de yema y púa fue con la
cinta cera por el ahorro de mano de obra que brinda.
(Luzuriaga, 2011), realizó un estudio en la parroquia Balao Chico del cantón
Naranjal, en la hacienda “Agrícola Balao Chico” cuyos objetivos fueron 1.
Establecer la respuestas de diferentes tamaños y números de yemas en el injerto
de cacao; 2. Evaluar la eficiencia del tamaño de la vareta tanto para injerto inglés
y lateral. 3. Determinar el tamaño ideal de vareta y número de yemas para el
injerto. El material genético consistió en varetas tomadas de dos variedades de
cacao, Nacional EET- 544, EET-558 y CCN-51 con una, dos, tres, cuatro y cinco
yemas, los patrones a injertar se los sembró con semillas de la variedad Nacional
para porta injerto de CCN-51; y, para porta injerto de Nacional semillas de CCN-
51. Los resultados para la propagación vegetativa de los híbridos de cacao
Nacional EET-544 y EET- 558 y el injerto inglés en la variedad CCN- 51. A los
60 días la mayor altura de las plantas injertadas correspondieron a la variedad
CCN- 51 con el injerto inglés y en la variedad dependió del número de yemas
por vareta, obteniéndose los mejores índices de crecimiento con varetas de 3 a
5 yemas. Los mejores niveles de prendimiento con 100% del injerto inglés se dio
en la variedad CCN- 51, activándose las yemas a los 21 días después de
realizado el injerto. En los híbridos EET- 554 y ETT- 558, el mayor prendimiento
de los enjertos no sobrepaso el 65% con injerto inglés.
27
CAPÍTULO III.
METODOLOGÍA DE LA INVESTIGACIÓN
28
3.1. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1.1. Localización
El experimento se realizó en el Programa de Plantas Ornamentales y
Medicinales de la Finca Experimental “La María” de la Facultad de Ciencias
Pecuarias perteneciente a la Universidad Técnica Estatal de Quevedo (UTEQ),
localizada en el Km. 7.5 vía Quevedo – Mocache, Provincia de Los Ríos. Su
ubicación geográfica es de 01° 06´ 20” Latitud Sur y 79° 29´ Longitud Oeste, con
una Zona Ecológica de Bosque Húmedo Tropical; presenta una altura de 73
m.s.n.m.
Cuadro 4. Características climatológicas de la Finca Experimental “La María”
Parámetros Promedio
Temperatura °C 25.47
Humedad relativa, % 85.84
Precipitación, anual. Mm 2223.78
Heliofanía, horas/ luz /año 898.77
Evaporación, promedio anual (%) 78.30
Zona ecológica bh – T
Topografía Ligeramente Ondulada
Fuente: (Departamento Agrometeorológico del INIAP, 2014).
3.1.2. Tipo de investigación
La investigación realizada es de tipo experimental, tributa a la línea de
investigación: 2. Desarrollo de conocimiento y tecnologías de agricultura
alternativa aplicable a las condiciones del trópico húmedo y semihúmedo del
Litoral ecuatoriano. Pertenece al área de Agricultura alternativa y biodiversidad.
3.1.3. Material vegetativo
Para la presente investigación se utilizaron 240 plantas de cacao para patrones
o porta Injertos, 20 por cada genotipo y tipo de injerto distribuidas de la manera
siguiente:
29
Cuadro 5. Número de plantas por unidad experimental
Tipo de injertación patrón Nº de plantas Nº de
repeticiones Total de
injertados
Yema + IMC-67 4 5 20
Yema + EET-400 4 5 20
Yema + CCN-51 4 5 20
Yema + EET-399 4 5 20
Púa Lateral + IMC-67 4 5 20
Púa Lateral + EET-400 4 5 20
Púa Lateral + CCN-51 4 5 20
Púa Lateral + EET-399 4 5 20
Púa Terminal + IMC-67 4 5 20
Púa Terminal + EET-400 4 5 20
Púa Terminal + CCN-51 4 5 20
Púa Terminal + EET-399 4 5 20
TOTAL 240
3.1.4. Materiales de Campo
Machete
Bomba manual
rastrillo
martillo
Tijeras podadoras
Baldes
Costalillo
Cinta métrica
Calibrador
Cámara fotográfica digital
Cuaderno de campo
Fertilizantes
Mesa
Caña guadua
Fundas para vivero de 5.5x8 perforadas
30
3.1.5. Materiales de Oficina
Computador
Remas de papel
Impresora
Pen drive
3.1.6. Descripción de los tratamientos
Se aplicaron los siguientes tratamientos considerando dos Factores A. Métodos
de Injertación (Yema lateral, Púa lateral y Púa terminal); B. Patrones (IMC-67,
EET-400, EET-399, CCN-51).
Cuadro 6. Descripción de los tratamientos
Tratamiento Descripción Código
T1 Yema + IMC-67 Y +IMC67
T2 Yema + EET-400 Y+EET-400
T3 Yema + CCN-51 Y+CCN-51
T4 Yema + EET-399 Y+EET-399
T5 Púa Lateral + IMC-67 PL+IMC67
T6 Púa Lateral + EET-400 PL+EET-400
T7 Púa Lateral + CCN-51 PL+CCN-51
T8 Púa Lateral + EET-399 PL+EET-399
T9 Púa Terminal + IMC-67 PT+IMC67
T10 Púa Terminal + EET-400 PT+EET-400
T11 Púa Terminal + CCN-51 PT+CCN-51
T12 Púa Terminal + EET-399 PT+EET-399
31
3.1.7. Diseño experimental y Análisis estadístico
Para el presente estudio se empleó un arreglo factorial 3x4 siendo el Factor A.
Método de Injertación (Yema, Púa lateral y Púa terminal) y Factor B. Patrones
(IMC-67; EET-400; CCN-51 y EET-399), tal como se muestra en el Cuadro 4.
Dentro de un Diseño Completamente al Azar DCA, con 5 repeticiones.
El análisis de datos se realizó mediante el ADEVA y las medias fueron
separadas mediante la prueba de Tukey (P≤0,05), con la utilización del paquete
estadístico “SAS SYSTEM”.
El modelo estadístico del diseño experimental que se utilizó es el siguiente:
Dónde:
μ = Media poblacional.
i = Efecto del Método de Injertación.
i = Efecto del Patrón
= Efecto de la interacción del Método de Injertación sobre el Patrón
= Error Experimental
Cuadro 7. Análisis de Varianza ADEVA del diseño experimental
3.1.8. Variables
3.1.8.1. Porcentaje de prendimiento
Esta variable se realizó por diferencia, el número de plantas injertas menos el
número de las plantas muertas y se realizara con la siguiente formula:
( )ij
Fuente de Variación Grados de libertad
Tratamientos ab-1 11
Método de Injertación(A) a-1 2
Patrón (B) b-1 3
AxB (a-1)(b-1) 6
Error ab (r-1) 48
Total abr-1 59
32
Dónde:
I.V.= % 𝑃𝑟𝑒𝑛𝑑𝑖𝑚𝑖𝑒𝑛𝑡𝑜𝐼.𝑉
𝑇.𝐼𝑋100Injertos vivos
T.I.= Total injertados
3.1.8.2. Porcentaje de plantas aptas al trasplante (60 días)
El registro de esta variable consistió en contabilizar el número de días a partir de
la microinjertación hasta el momento en que el microinjerto presentó hojas
adultas.
3.1.8.3. Diámetro del injerto (30, 45, 60 días)
Los datos de esta variable se registraron a partir de la medición del diámetro del
microinjerto en milímetros con la ayuda de un calibrador bernier.
3.1.8.4. Longitud del injerto
El registro de esta variable consistió en medir la longitud de los microinjertos
desde el punto de inserción en el patrón.
3.1.8.5. Número de hojas del injerto (30, 45 y 60 días)
Esta variable se contabilizó el número de hojas formadas en el microinjerto a los
30, 45 y 60 días.
33
3.1.9. Manejo del Experimento
3.1.9.1. Adecuación del vivero
El vivero estuvo compuesto por dos secciones bien definidas 1. El umbráculo
con sarán 70% de sombra donde se instaló la cámara húmeda de polietileno. 2.
Área de patrones a cielo abierto donde germinaron las plántulas y permanecieron
hasta el momento de la injertación.
3.1.9.2. Mezcla del sustrato
Para el sustrato se utilizó tierra de montaña; humus y aserrín de balsa en una
relación (3-1-1), el cual se mezcló y se homogenizó.
3.1.9.3. Llenado de fundas
Se utilizaron fundas de vivero de alta densidad (5,5x8), las cuales se llenaron
completamente y ligeramente compactadas.
3.1.9.4. Recolección de los clones para patrones
La recolección de los materiales para patrones o porta injertos se recolecto de
un jardín multi-clonal, de las plantas más vigorosas y con una arquitectura
uniforme, con mazorcas completamente maduras y libres de ataque de insectos
y enfermedades.
3.1.9.5. Tratamiento y desinfección de la semilla
La extracción de la semilla se realizó con un machete, teniendo precaución de
no dañar las semillas. Se extrajo completamente con el mucilago para
seleccionar las semillas de la sección media las cuales se trataron con CARBIN
® para su siembra.
3.1.9.6. Siembra de la semilla
Se realizó hoyos de 3 cm aproximadamente donde se colocó las semillas
teniendo en cuenta que la sección que estaba adherida al mucilago quede en la
34
parte inferior (esto garantiza una emergencia más rápida y evita desviación en el
tallo).
3.1.9.7. Fertilización y riego en vivero
Se fertilizó las plántulas de manera mensual con 1 gramo de YARAMILA ®. Y la
adición de fitohormonas. El riego se realizará de manera manual de acuerdo a
las condiciones climatológicas.
3.1.9.8. Control fitosanitario en vivero
Se realizó fumigaciones periódicas con fungicidas preventivos y con insecticidas
si se presentan ataques de plagas.
3.1.9.9. Cámara húmeda
Se implementó una cámara húmeda, en donde permanecieron las plántulas
posteriores a su injertación.
3.1.9.10. Microinjertación
Se realizó en las primeras horas de la mañana, desinfectando con alcohol los
materiales a utilizar, las varetas de la misma edad de los patrones se recolecto
el mismo día teniendo precaución de evitar la deshidratación (envolviéndolas en
papel periódico humedecido). Se injertó con los tres métodos establecidos y se
colocó al interior de la cámara húmeda debidamente rotulado.
35
CAPÍTULO IV.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
36
4.1. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
4.1.1. Cuadrados medios y significancia estadística de las variables
estudiadas
En el siguiente Cuadro 8, se describe los cuadrados medios y la significancia
estadística de cada una de las variables estudiadas.
Cuadro 8. Cuadrados medios y significancia estadística de las variables de la
microinjertación de cacao CCN-51, en cuatro patrones y bajo tres
métodos de injertación e interacciones.
Métodos
de Patrones Interacciones
Variables Injertación
CM SE CM SE CM SE
Prendimiento 3406.250 *** 454.861 NS 1142.361 **
Longitud (L)
L 30 días 42.974 *** 1.607 NS 2.801 NS
L 45 días 52.374 *** 3.114 NS 2.486 NS
L 60 días 80.399 *** 8.267 ** 5.758 **
Diámetro (D)
D 30 días 0.0124 ** 0.0043 * 0.0019 NS
D 45 días 0.0127 * 0.0059 NS 0.0089 *
D 60 días 0.0847 *** 0.0074 ** 0.0055 **
Número de hojas totales (NH)
NH 30 días 0.2166 NS 1.0888 NS 1.0848 NS
NH 45 días 1.6666 NS 2.8000 NS 3.3333 NS
NH 60 días 5.8500 ** 3.1277 * 2.6590 **
Hojas verdaderas (Hv)
Hv 30 días 6.3166 ** 3.6000 * 3.9166 **
Hv 45 días 1.0666 NS 1.3777 NS 1.3777 NS
Hv 60 días 2.1166 NS 2.2388 NS 1.0722 NS
Hojas no verdaderas (Hnv)
Hnv 30 días 0.8666 NS 4.5777 NS 7.9111 **
Hnv 45 días 1.5166 NS 0.2388 NS 0.6055 NS
Hnv 60 días 2.150 ** 0.816 NS 0.416 NS
Plantas aptas al trasplante 702.050 NS 46.111 NS 961.494 NS
Análisis realizado con el paquete estadístico “SAS Profesional versión 2004”. CM= Cuadrado Medio. SE= Significancia Estadística. NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001.
37
4.1.2. Porcentaje de prendimiento de microinjertos de cacao CCN-51
El análisis de varianza realizado a la variable porcentaje de prendimiento
(Cuadro 1 del anexo), mostro significancia estadística tanto para el Factor A.
Método de injertación, como también para la interacción AxB. Métodos x
Patrones de cacao, no siendo así para el Factor B. Patrones (Cuadro 8.)
En el Cuadro 9, se puede observar los promedios y coeficiente de variación de
la variable porcentaje de prendimiento del Factor A. Métodos de injertación y B.
Patrones, en la propagación del clon de cacao CCN-51
Cuadro 9. Efectos simples de tres métodos de injertación y cuatro patrones en
el prendimiento (%) de los microinjertos de cacao CCN-51 a los 30
días.
Factores Prendimiento (%) SE
Métodos (A)
Yema 71.25 b
Púa Lateral 92.50 a
Púa Terminal 95.00 a
Patrón (B)
IMC-67 80.00 a
EET-400 90.00 a
CCN-51 83.33 a
EET-399 91.66 a
Promedio 86.25
CV (%) 17.14
ab Promedios en cada fila con letras iguales no difieren estadísticamente (Tukey p≤0.05); SE: Significancia estadística; CV: Coeficiente de Variación.
En lo que respecta al Factor A. los métodos de púa terminal (PT) y púa lateral
(PL) tuvieron el mayor (p<0.05) porcentaje de prendimiento con 95.00 y 92.50%,
respecto a yema (YM) que obtuvo el porcentaje más bajo con el 71.25%. De igual
manera (Moreira & Pinargote, 2009) en un estudio biFactorial: métodos x
ambientes controlados, reportaron mayores porcentajes de prendimiento en el
injerto de púa con > 60%, también en los ambientes a la intemperie con cubierta
o sin cubierta con > 60%, indican además que en aquellos tratamientos donde
38
se estudió con cámara húmeda los porcentajes fueron bajos < 35%. Por lo tanto
se acepta la hipótesis H1: El método de propagación de púa terminal presentará
un mejor porcentaje de prendimiento.
En cuanto al Factor B. Patrones, no existieron diferencias significativas (p>0.05)
entre los patrones, no obstante el EET-399 fue superior numéricamente con
91.66%. Al respecto, (Luzuriaga, 2011), determinó mejor respuesta en la
injertación de cacao CCN-51 con patrones de tipo nacional con prendimientos
muy cercanos al 100%. Sin embargo (Sarango, 2008), demostró un efecto
satisfactorio al utilizar como patrón en clon CCN-51 que es de polinización libre
con porcentajes de prendimiento sobre el 90%.
En la interacción del método de injertación y el patrón si existieron diferencias
(p<0.05), demostrando los mejores promedios de prendimiento (100%), los
injertos de PT+IMC-67, PT+CCN-51 y PL+EET-399, el menor porcentaje fue
reportado por YM+IMC-67 con 45% respectivamente (Cuadro 10.).
Cuadro 10. Interacción entre métodos de injertación y patrones en el porcentaje
de prendimiento de los microinjertos de cacao CCN-51.
Métodos
Patrones
IMC-67 SE EET-400 SE CCN-51 SE EET-399 SE
Yema 45.00 c 95.00 ab 65.00 ab 80.00 ab
Púa Lateral 95.00 ab 90.00 ab 85.00 ab 100.00 a
Púa Terminal
100.00 a 85.00 ab 100.00 a 95.00 ab
Promedio 80.00 90.00 83.33 91.67
CV % 38.02 5.56 21.07 11.35 abc Promedios en las interacciones con letras iguales no difieren estadísticamente (Tukey p≤0.05); SE: Significancia estadística; CV: Coeficiente de variación.
4.1.3. Longitud de los microinjertos de cacao CCN-51 en diferentes etapas.
Los análisis de varianza realizados a la variable longitud (cm) de los microinjertos
a los 30, 45 y 60 días (Cuadro 2, 3 y 4 del Anexo) indican, que existieron
39
diferencias significativas (p<0.05) entre el Factor A. Métodos de injertación, en
las tres etapas de muestreo, en el Factor B. Patrones se mostraron diferencias
solo a los 60 días, de igual manera que en la interacción de los Factores AxB.
Métodos x Patrones (Cuadro 8.)
En el Cuadro 11, se muestra los promedios y coeficientes de variación de la
variable longitud de los microinjertos a los 30, 45 y 60 días de muestreo, en el
Factor A. Métodos de injertación y B. Patrones.
Cuadro 11. Efectos simples de tres métodos de injertación y cuatro patrones en
la longitud (cm) de los microinjertos de cacao CCN-51 a diferentes
etapas (días).
Factores Tiempo (días)
30 SE 45 SE 60 SE
Métodos (A)
Yema 5.34 a 6.71 a 8.57 a
Púa Lateral 3.19 b 4.65 b 5.85 b
Púa Terminal 2.54 b 3.52 b 4.65 c
Patrón (B)
IMC-67 3.77 a 5.33 a 6.81 a
EET-400 3.69 a 4.73 a 6.30 ab
CCN-51 3.26 a 4.45 a 5.33 b
EET-399 4.05 a 5.35 a 6.98 a
Promedio 3.69 4.95 6.36
CV % 49.67 30.36 17.39
abc Promedios en cada fila con letras iguales no difieren estadísticamente (Tukey p≤0.05); SE: Significancia estadística; CV: Coeficiente de Variación.
En el Factor A. métodos de injertación, se indica que el injerto de yema (YM)
presentó el mayor crecimiento longitudinal a los 30, 45 y 60 días con 5.35, 6.71
y 8.57 cm respectivamente, mientras el injerto de púa terminal (PT), obtuvo los
promedios más bajos con 2.54, 3.52 y 4.65 cm. Por lo tanto puede decirse que
en la microinjertación o injertación temprana el método de yema es el más
eficiente, a diferencia de la metodología tradicional en el que el método de púa
ha sido descrito como mejor en varias investigaciones (Yunga, 2012; Moreira &
40
Pinargote, 2009), inclusive al injertar directamente en plantas desarrolladas en
el campo (Alaro, 2014).
En el Factor B. Los patrones utilizados no presentaron diferencias (p>0.05) a los
30 y 45 días, no obstante, si a los 60 días de muestreo, demostrando que en el
patrón EET-399 se desarrollaron de mejor manera los injertos, con una longitud
de 6.98 cm.
En la interacción del método de injertación por patrón A x B, el injerto de YM en
el patrón EET-399, presentó la mayor longitud con 10.64 cm, sin embargo el
promedio más bajo de 3.73 cm, se encontró en el injerto de PT con este mismo
patrón (Cuadro 12.). (Sarango, 2008), encontró que el injerto de púa lateral,
presentó buenos resultados al injertar clones de cacao nacional en patrones de
CCN-51 con 12.60 cm de longitud.
Cuadro 12. Interacción entre métodos de injertación y patrones en la longitud
(cm) de los microinjertos de cacao CCN-51 a los 60 días.
Métodos Patrones
IMC-67 SE EET-400 SE CCN-51 SE EET-399 SE
Yema 8.84 ab 7.86 bc 6.93 bcd 10.64 a
Púa Lateral 5.71 cdef 6.27 cde 4.85 def 6.59 bcde
Púa Terminal 5.89 cdef 4.79 def 4.21 ef 3.72 f
Promedio 6.81 6.31 5.33 6.98
CV % 25.79 24.34 26.68 49.79
abcdef Promedios en las interacciones con letras iguales no difieren estadísticamente (Tukey p≤0.05); SE: Significancia estadística; CV: Coeficiente de variación.
4.1.4. Diámetro de los microinjertos de cacao CCN-51 en diferentes etapas.
Los análisis de varianza de la variable diámetro del injerto (cm) en los 30, 45 y
60 días que se muestran en los Cuadros 5, 6 y 7 del anexo, expresan diferencias
significativas en el Factor A. Métodos de injertación en los tres periodos de
41
muestreo. En el Factor B. Patrones, se encontró diferencias significativas a los
30 y 60 días de muestreo mientras que en la interacción de los Factores AxB.
Métodos x Patrones, el análisis estadístico indica diferencias a los 45 y 60 días
respectivamente.
El Cuadro 13, presenta los promedios y coeficientes de variación de la variable
diámetro de los microinjertos a los 30, 45 y 60 días respectivamente para el
Factor A. Métodos de injertación y para el Factor B. Patrones.
Cuadro 13. Efectos simples de tres métodos de injertación y cuatro patrones en
el diámetro (cm) de los microinjertos de cacao CCN-51 a diferentes
etapas (días).
Factores Tiempo (días)
30 SE 45 SE 60 SE
Métodos (A)
Yema 0.17 a 0.24 a 0.38 a
Púa Lateral 0.14 b 0.21 ab 0.30 b
Púa Terminal 0.12 b 0.19 b 0.25 c
Patrón (B)
IMC-67 0.14 ab 0.21 a 0.30 ab
EET-400 0.15 ab 0.23 a 0.31 ab
CCN-51 0.12 b 0.19 a 0.28 b
EET-399 0.17 a 0.23 a 0.33 a
Promedio 0.14 0.21 0.31
CV % 24.74 27.6 12.61
abc Promedios en cada fila con letras iguales no difieren estadísticamente (Tukey p≤0.05); SE: Significancia estadística; CV: Coeficiente de Variación.
En cuanto al Factor A. métodos de injertación, en el diámetro de los microinjertos
el injerto de YM, reporto los mayores promedios con 0.17, 0.24 y 0.38 cm a los
30, 45 y 60 días respectivamente, frente a PT con 0.12, 0.19 y 0.25 cm que
fueron los promedios más bajos en cada periodo respectivamente.
42
El Factor B. Patrones, muestra que con el EET-399 presentaron los mayores
promedios en los tres periodos de muestreo con 0.17, 0.23 y 0.33 cm
respectivamente. (Moreira & Pinargote, 2009), obtuvieron a los 80 días de
muestreo 0.41 a 0.44 cm de diámetro en injertos de yema sobre patrones IMC-
67 con 147 días de edad. En términos generales cuanto mayor sea el diámetro
del patrón y el de la vareta, más vigoroso y más rápido será el crecimiento del
injerto (Hardy, 1960).
En las interacciones de los Factores AxB. Método de injertación x patrón, que se
expresa en el Cuadro 14, el injerto de YM+EET-399, demostró el mayor (p<0.05)
diámetro con 0.44 cm, mientras PT+CCN-51 y PT+EET-399, los promedios más
bajos con 0.23 y 0.22 cm respectivamente.
Cuadro 14. Interacción entre métodos de injertación y patrones en el diámetro
(cm) de los microinjertos de cacao CCN-51 a los 60 días.
Métodos Patrones
IMC-67 SE EET-400 SE CCN-51 SE EET-399 SE
Yema 0.34 ab 0.38 ab 0.34 ab 0.44 a
Púa Lateral 0.29 cde 0.31 bcde
0.27 cde 0.34 bcd
Púa Terminal
0.28 cde 0.26 de 0.23 e 0.22 e
Promedio 0.30 0.32 0.28 0.33
CV % 10.60 19.03 19.88 33.05 abcde Promedios en las interacciones con letras iguales no difieren estadísticamente (Tukey p≤0.05); SE: Significancia estadística; CV: Coeficiente de variación.
4.2. Número de hojas totales de los microinjertos de cacao CCN-51 en
diferentes etapas.
Los análisis de varianza de la variable número de hojas totales en los periodos
de muestreo de 30, 45 y 60 días (Cuadro 8, 9 y 10 del Anexo) indican diferencias
estadísticas en el Factor A. Métodos de injertación y en el Factor B. Patrones
43
solo a los 60 días de muestreo, mientras que en la interacción de AxB. Métodos
x Patrones, se reportó únicamente diferencias estadísticas a los 60 días.
Los promedios y coeficientes de variación de la variable número de hojas totales
en los periodos de muestreo de 30, 45 y 60 días se muestran en el siguiente
Cuadro 15, para los Factores A. Métodos de injertación y B. Patrones.
Cuadro 15. Efectos simples de tres métodos de injertación y cuatro patrones en
el número de hojas totales de los microinjertos de cacao CCN-51 a
diferentes etapas (días).
Factores Tiempo (días)
30 SE 45 SE 60 SE
Métodos (A)
Yema 3.40 a 4.30 a 6.10 a
Púa Lateral 3.55 a 4.30 a 5.35 b
Púa Terminal 3.35 a 4.80 a 6.40 a
Patrón (B)
IMC-67 3.66 a 5.06 a 6.60 a
EET-400 3.40 a 4.46 a 5.93 ab
CCN-51 3.60 a 4.06 a 5.60 b
EET-399 3.06 a 4.26 a 5.66 b
Promedio 3.43 4.46 5.95
CV 21.76 30.51 15.64
abc Promedios en cada fila con letras iguales no difieren estadísticamente (Tukey p≤0.05); SE: Significancia estadística; CV: Coeficiente de Variación.
Respecto al Factor A. Método de injertación, el injerto de yema (YM) y púa
terminal (PT) a los 60 días fueron estadísticamente iguales (p<0.05) con 6.40 y
6.10 hojas totales, en comparación al de púa lateral que presentó 5.35 hojas.
En el Factor B. Patrones, los microinjertos con el patrón IMC-67 presentaron
mayor formación de hojas totales con 6.60 en promedio, la menor formación de
hojas se dio con el patrón CCN-51 con 5.60 respectivamente.
En la interacción de los Factores (AxB) métodos x patrones, el injerto de púa
terminal (PT) en el patrón IMC-67, presentó el mayor (p<0.05) número de hojas
con 7.60 a los 60 días posterior a la injertación. En su análisis comparativo
44
(Moreira & Pinargote, 2009) determinaron de igual manera que el método de púa
supera al de yema (12.00 vs 3.25), consecutivamente el injerto de PL+EET-400
presentó el menor número de hojas (5.00). De manera general los resultados
obtenidos fueron inferiores a los indicados por (Beltran & Cordoba, 2012) que
reportan una emisión de 10.25 hojas en injertos de CCN-51 con patrones IMC-
67.
En el Cuadro 16, se muestran los promedios y coeficientes de variación de la
interacción entre los Factores AxB. Métodos x Patrones a los 60 días.
Cuadro 16. Interacción entre métodos de injertación y patrones en el número de
hojas totales (verdaderas y no verdaderas) de los microinjertos de
cacao CCN-51 a los 60 días.
Métodos Patrones
IMC-67 SE EET-400 SE CCN-51 SE EET-399 SE
Yema 6.80 ab 6.20 ab 5.60 ab 5.80 ab
Púa Lateral
5.40 b 5.00 b 5.60 ab 5.40 b
Púa Terminal
7.60 a 6.60 ab 5.60 ab 5.80 ab
Promedio 6.60 5.93 5.60 5.67
CV % 16.87 14.03 0.00 4.08 ab Promedios en las interacciones con letras iguales no difieren estadísticamente (Tukey p≤0.05); SE: Significancia estadística; CV: Coeficiente de variación.
4.3. Número de hojas verdaderas de los microinjertos de cacao CCN-51
en diferentes etapas.
Los análisis de varianza de la variable número de hojas verdaderas a los 30, 45
y 60 que se encuentran en los Cuadros 11, 12 y 13 del Anexo, muestran
significancia estadística únicamente a los 30 días de muestreo tanto para el
Factor A. Métodos de injertación como para el Factor B. Patrones y la interacción
de estos AxB respectivamente.
A continuación en el Cuadro 16, se indican los promedios y coeficientes de
variación del Factor A. Métodos de injertación y del Factor B. Patrones en los
periodos de muestreo de 30, 45 y 60.
45
Cuadro 17. Efectos simples de tres métodos de injertación y cuatro patrones en
el número de hojas verdaderas de los microinjertos de cacao CCN-
51 a diferentes etapas (días).
Factores Tiempo (días)
30 SE 45 SE 60 SE
Métodos (A)
Yema 1.85 b 2.80 a 5,05 a
Púa Lateral 2.20 ab 3.20 a 4.40 a
Púa Terminal 2.95 a 3.20 a 4.70 a
Patrón (B)
IMC-67 1.66 b 3.40 a 5.13 a
EET-400 2.66 a 3.13 a 4.80 a
CCN-51 2.26 ab 3.06 a 4.20 a
EET-399 2.73 a 2.66 a 4.73 a
Promedio 2.33 3.06 4.71
CV 42.13 43.44 25.38
ab Promedios en cada fila con letras iguales no difieren estadísticamente (Tukey p≤0.05); SE: Significancia estadística; CV: Coeficiente de Variación.
Para el Factor A. Métodos de injertación, el mayor número de hojas verdaderas
a los 30 días fue púa terminal con 2.95 en promedio, sin embargo a los 60 días
la mayor formación de hojas verdaderas, presentó el injerto de yema con 5.05,
aunque no existió diferencias estadísticas (p>0.05) en este periodo.
En el Factor B. Patrones, el IMC-67 en el periodo de 60 días alcanzo 5.13 hojas
verdaderas. Resultados similares a los obtenidos por (Beltran & Cordoba, 2012)
quienes reportaron en el injerto de yema o parche un promedio de 5.78 hojas
verdaderas al injertar cacao CCN-51 en patrones IMC-67.
En la interacción de Factores AxB. Métodos x Patrones no se encontraron
diferencias (p>0.05) en los 60 días de muestreo. A los 30 días el injerto de
YM+IMC-67 no presentó hojas verdaderas.
46
4.4. Número de hojas no verdaderas de los microinjertos de cacao CCN-
51 en diferentes etapas.
En los análisis de varianza de la variable número de hojas no verdaderas para
los periodos de muestreo de 30, 45 y 60 días, que se encuentran en los Cuadros
14, 15 y 16 del Anexo, se indica que en el Factor A. Métodos de injertación, se
presentaron diferencias estadistas únicamente a los 60 días, mientras que para
el Factor B. Patrones, no se mostraron diferencias en ninguno de los intervalos,
para las interacciones AxB. Métodos x Patrones, únicamente a los 60 días se
encontraron diferencias.
El Cuadro 18, muestra los promedios y coeficientes de variación de la variable
número de hojas verdaderas en los intervalos de muestreo de 30, 45 y 60 días
para el Factor A. métodos de injertación y Factor B. Patrones.
Cuadro 18. Efectos simples de tres métodos de injertación y cuatro patrones en
el número de hojas no verdaderas de los microinjertos de cacao
CCN-51 a diferentes etapas (días).
Factores Tiempo (días)
30 SE 45 SE 60 SE
Métodos (A)
Yema 2.00 a a 2.50 a a 1.60 ab ab
Púa Lateral 2.10 a a 2.20 a a 1.35 b b
Púa Terminal 1.70 a a 1.95 a a 2.00 a a
Patrón (B)
IMC-67 2.26 a a 2.13 a a 1.73 a a
EET-400 1.40 a a 2.20 a a 1.53 a a
CCN-51 2.53 a a 2.40 a a 1.93 a a
EET-399 1.53 a a 2.13 a a 1.40 a a
Promedio 1.93 2.21 1.65
CV 64.56 36.13 51.30
ab Promedios en cada fila con letras iguales no difieren estadísticamente (Tukey p≤0.05); SE: Significancia estadística; CV: Coeficiente de Variación.
47
En el Factor A. Métodos de injertación, el mayor número de hojas no verdaderas
a los 30 días se presentó en los microinjertos de púa lateral con 2.10, a los 45
días el método de yema supero los otros con 2.50, mientras que a los 60 días el
injerto de púa terminal presentó el mayor promedio con 2.00 respectivamente.
Esta reducción aparente a través de los intervalos indica la maduración de las
hojas que al avanzar el tiempo se convirtieron en hojas verdaderas.
El Factor B. Patrones, en la variable de hojas no verdaderas, no presentó
diferencias estadísticas significativas (p>0.05).
En la interacción de los Factores AxB. Métodos x Patrones únicamente a los 30
días de muestreo se reportaron diferencias estadísticas. Indicando que en esta
variable no se explica un efecto claro del método de injertación como del patrón
empleado en la microinjertación, se obtuvo una media de 1.65, inferior a lo
reportado por (Beltran & Cordoba, 2012) que indican 3.39 hojas no verdaderas
en injertos de CCN-51. Cabe señalar que la brotación de yemas y nuevas hojas
es termoperiódica y tiene lugar cuando la temperatura media sobrepasa cierto
valor y está asociado con un rango amplio de la temperatura diaria (Hardy,
1960).
4.5. Porcentaje de plantas de cacao CCN-51 aptas para el trasplante.
En el análisis de varianza (Cuadro 17 del Anexo) se muestra que no existió
diferencia significativa en los Factores A. Métodos de injertación y B. Patrones
así como de su interacción AxB. Métodos x Patrones. Sin embargo se determinó
numéricamente que el injerto de PT+IMC-67 alcanzo un 90% de plantas aptas
para el trasplante, mientras tanto el injerto de PT+EET-399 solo alcanzó el 51%.
Por lo cual se rechaza la hipótesis, H2: El patrón CCN–51 mostrará una mejor
compatibilidad en la microinjertación de este clon.
Los promedios obtenidos y los coeficientes de variación de la interacción de los
Factores AxB. Métodos x Patrones, se presentan a continuación en el Cuadro
19.
48
Cuadro 19. Interacción entre métodos de injertación y patrones en el porcentaje
de plantas aptas al trasplante a los 60 días.
Métodos Patrones
IMC-67 SE EET-400 SE CCN-51 SE EET-399 SE
Yema 60.00 a 66.80 a 83.40 a 80.00 a
Púa Lateral
60.00 a 61.80 a 56.60 a 68.40 a
Púa Terminal
90.00 a 73.40 a 70.00 a 51.60 a
Promedio 70.00 67.33 70.00 66.67
CV % 24.74 8.64 19.14 21.42
ab Promedios en las interacciones con letras iguales no difieren estadísticamente (Tukey p≤0.05); SE: Significancia estadística; CV: Coeficiente de variación.
Más del 50% de plantas en todos los microinjertos presentaron características
deseables para la disposición al campo definitivo, conforme a lo demostrado por
(Palencia & Mejía, 2004), que indican una actitud de trasplante en los
microinjertos a los 2 o 3 meses.
4.6. Análisis económico.
En el análisis económico se detalla en el Cuadro 20, se muestra que la mayor
relación beneficio/costo (B/C) y rentabilidad (%) se obtuvo del tratamiento 9.
PT+IMC-67 con 0.95 y 95.27%, seguido del tratamiento 11. PT+CCN-51 con 0.51
y 51.87% y el tratamiento 8. PL+EET-399 con 0.48 y 48.40% respectivamente.
El tratamiento 1. YM+IMC-67, obtuvo indicadores negativos con -0.41 y -41.42%
proporcionalmente, ya que este tratamiento obtuvo el menor porcentaje de
prendimiento, además este análisis se determinó tomando en cuenta las
plántulas con mayor número de hojas verdaderas (Cuadro 17.), esto concuerda
con lo descrito por (Paredes, 2009), que menciona que las plantas tendrán de 4
a 5 pares de hojas para su trasplante definitivo al campo, por lo tanto se
constituyen aptas para la venta. Estos resultados permiten rechazar la hipótesis
planteada H3: La microinjertación realizada al clon CCN-51 utilizando como
patrón el mismo material y propagados mediante el método de púa terminal
indicará la mejor rentabilidad.
49
Cuadro 20. Análisis económico de los tratamientos.
YM: Yema; PL: Púa lateral y PT: Púa terminal
T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8 T9 T10 T11 T12
YM-IMC67 YM-EET400 YM-CCN51 YM-EET399 PL-IMC67 PL-EET400 PL-CCN51 PL-EET399 PT-IMC67 PT-EET400 PT-CCN-51 PT-EET399
Ingresos
Plantas injertadas 20.00 20.00 20.00 20.00 20.00 20.00 20.00 20.00 20.00 20.00 20.00 20.00
% Prendimiento 45.00 95.00 65.00 80.00 95.00 90.00 85.00 100.00 100.00 85.00 100.00 95.00
Plantas prendidas 9.00 19.00 13.00 16.00 19.00 18.00 17.00 20.00 20.00 17.00 20.00 19.00
% aptas al trasplante 60.00 66.80 83.40 80.00 60.00 61.80 56.60 68.40 90.00 73.40 70.00 51.60
Plantas aptas para el trasplante 5.40 12.69 10.84 12.80 11.40 11.12 9.62 13.68 18.00 12.48 14.00 9.80
Precio de planta 0.55 0.55 0.55 0.55 0.55 0.55 0.55 0.55 0.55 0.55 0.55 0.55
Total ingresos (USD) 2.97 6.98 5.96 7.04 6.27 6.12 5.29 7.52 9.90 6.86 7.70 5.39
Egresos
Injertador ($ 0.10/planta) 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00 2.00
Control Fitosanitario y fertilizacion 1.23 1.23 1.23 1.23 1.23 1.23 1.23 1.23 1.23 1.23 1.23 1.23
Materiales 1.84 1.84 1.84 1.84 1.84 1.84 1.84 1.84 1.84 1.84 1.84 1.84
Total egresos (USD) 5.07 5.07 5.07 5.07 5.07 5.07 5.07 5.07 5.07 5.07 5.07 5.07
Beneficio neto -2.10 1.91 0.89 1.97 1.20 1.05 0.22 2.45 4.83 1.79 2.63 0.32
Relacion B/C -0.41 0.38 0.18 0.39 0.24 0.21 0.04 0.48 0.95 0.35 0.52 0.06
Rentabilidad (%) -41.42 37.68 17.62 38.86 23.67 20.67 4.38 48.40 95.27 35.36 51.87 6.36
Rubros
Tratamientos
50
CAPÍTULO V.
CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
51
5.1. CONCLUSIONES
Los métodos de injertación que presentaron los porcentajes de
prendimiento más adecuados fueron púa terminal con 95.50% y púa
lateral con 92.50%.
No se presentó incompatibilidad entre el injerto de cacao CCN-51 y los
patrones empleados, ya que se encontraron diferentes interacciones en
todas las variables, el Factor método de injertación presentó mayor
significancia (p<0.05) en el porcentaje de prendimiento, longitud y
diámetro de los microinjertos, así también el patrón IMC-67 mostro el
90% de plantas optimas al trasplante a los 60 días
Se encontraron diferencias (p<0.05) en la producción de hojas totales a
los 60 días tanto en el método como en el patrón, la formación de hojas
verdaderas y no verdaderas únicamente tuvieron efecto a los 30 días
posterior a la injertación.
El mayor beneficio/costo fue 0.95 y se obtuvo con el injerto de púa
terminal en el patrón IMC-67 alcanzando 95.27% de rentabilidad
económica.
52
5.2. RECOMENDACIONES
Se ha demostrado en esta investigación que se pueden obtener plantas de cacao
de calidad en menor tiempo que en la metodología tradicional, por lo que se
recomienda:
Utilizar los tratamientos T8. PT+EET-399; T11. PT+CCN-51 y T9.
PT+IMC-67 en la propagación del clon de cacao CCN-51 ya que
demostraron una excelente compatibilidad entre el patrón y el injerto.
Emplear en la propagación masiva del clon CCN-51 el tratamiento T9.
PT+IMC-67 ya que ofrece la mayor rentabilidad respecto a los demás.
Validar en campo definitivo los métodos de microinjertación desarrollados
en la presente investigación, mediante un estudio comparativo del
comportamiento agronómico de estos versus plantas propagadas por la
metodología tradicional.
53
CAPÍTULO VI.
BIBLIOGRAFÍA
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6.1. LITERATURA CITADA.
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Técnica de Machala. Machala, Ecuador : Universidad Técnica de
Machala.
61
CAPÍTULO VII.
ANEXOS
62
7.1. Cuadros del Anexo
Anexo 1. Análisis de varianza del prendimiento de microinjertos de cacao CCN-
51 en cuatro patrones y bajo tres métodos de injertación.
Fuente GL Suma de
Cuadrados
Cuadrado de
la media F-Valor Pr > F
Tratamiento 11 15031.25000 1366.47727 6.25*** <.0001
Método de Injertación(A)
2 6812.500000 3406.250000 15.57*** <.0001
Patrón (B) 3 1364.583333 454.861111 2.08NS 0.1153
AxB 6 6854.166667 1142.361111 5.22** 0.0003
Error 48 10500.00000 218.75000
Total 59 25531.25000
NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001
Anexo 2. Análisis de varianza de la longitud del injerto de cacao con tres
métodos de injertación y cuatro patrones a los 30 días.
Fuente GL Suma de
Cuadrados
Cuadrado de
la media F-Valor Pr > F
Tratamiento 11 107.5809783 9.7800889 2.90** 0.0052
Método de Injertación(A)
2 85.94906333 42.97453167 12.75*** <.0001
Patrón (B) 3 4.82145833 1.60715278 0.48NS 0.6999
AxB 6 16.81045667 2.80174278 0.83NS 0.5517
Error 48 161.7878800 3.3705808
Total 59 269.3688583
NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001
63
Anexo 3. Análisis de varianza de la longitud del injerto de cacao con tres
métodos de injertación y cuatro patrones a los 45 días.
Fuente GL Suma de
Cuadrados
Cuadrado de
la media F-Valor Pr > F
Tratamiento 11 129.0082600 11.7280236 5.16*** <.0001
Método de Injertación(A)
2 104.7490300 52.3745150 23.05*** <.0001
Patrón (B) 3 9.3427800 3.1142600 1.37NS 0.2631
AxB 6 14.9164500 2.4860750 1.09NS 0.3797
Error 48 109.0864400 2.2726342
Total 59 238.0947000
NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001
Anexo 4. Análisis de varianza de la longitud del injerto de cacao con tres
métodos de injertación y cuatro patrones a los 60 días.
Fuente GL Suma de
Cuadrados
Cuadrado de
la media F-Valor Pr > F
Tratamiento 11 220.1509133 20.0137194 16.35*** <.0001
Método de Injertación(A)
2 160.7982433 80.3991217 65.68*** <.0001
Patrón (B) 3 24.8016200 8.2672067 6.75** 0.0007
AxB 6 34.5510500 5.7585083 4.70** 0.0008
Error 48 58.7583200 1.2241317
Total 59 278.9092333
NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001
64
Anexo 5. Análisis de varianza del diámetro del injerto de cacao con tres métodos
de injertación y cuatro patrones a los 30 días.
Fuente GL Suma de
Cuadrados
Cuadrado de
la media F-Valor Pr > F
Tratamiento 11 0.04993833 0.00453985 3.30** 0.0020
Método de Injertación(A)
2 0.02492333 0.01246167 9.07** 0.0005
Patrón (B) 3 0.01309833 0.00436611 3.18NS 0.0323
AxB 6 0.01191667 0.00198611 1.45NS 0.2173
Error 48 0.06596000 0.00137417
Total 59 0.11589833
NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001
Anexo 6. Análisis de varianza del diámetro del injerto de cacao con tres métodos
de injertación y cuatro patrones a los 45 días.
Fuente GL Suma de
Cuadrados
Cuadrado de
la media F-Valor Pr > F
Tratamiento 11 0.09680500 0.00880045 2.40* 0.0185
Método de Injertación(A)
2 0.02541000 0.01270500 3.46* 0.0395
Patrón (B) 3 0.01781833 0.00593944 1.62NS 0.1977
AxB 6 0.05357667 0.00892944 2.43* 0.0392
Error 48 0.17628000 0.00367250
Total 59 0.27308500
NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001
65
Anexo 7. Análisis de varianza del diámetro del injerto de cacao con tres métodos
de injertación y cuatro patrones a los 60 días.
Fuente GL Suma de
Cuadrados
Cuadrado de
la media F-Valor Pr > F
Tratamiento 11 0.22525833 0.02047803 13.15*** <.0001
Método de Injertación(A)
2 0.16954333 0.08477167 54.43*** <.0001
Patrón (B) 3 0.02221833 0.00740611 4.76** 0.0055
AxB 6 0.03349667 0.00558278 3.58** 0.0051
Error 48 0.07476000 0.00155750
Total 59 0.30001833
NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001
Anexo 8. Análisis de varianza del número de hojas totales del injerto de cacao
con tres métodos de injertación y cuatro patrones a los 30 días.
Fuente GL Suma de
Cuadrados
Cuadrado de
la media F-Valor Pr > F
Tratamiento 11 11.93333333 1.08484848 1.94NS 0.0567
Método de Injertación(A)
2 0.43333333 0.21666667 0.39NS 0.6805
Patrón (B) 3 3.26666667 1.08888889 1.95NS 0.1341
AxB 6 11.93333333 1.08484848 1.94NS 0.0567
Error 48 26.80000000 0.55833333
Total 59 38.73333333
NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001
66
Anexo 9. Análisis de varianza del número de hojas totales del injerto de cacao
con tres métodos de injertación y cuatro patrones a los 45 días.
Fuente GL Suma de
Cuadrados
Cuadrado de
la media F-Valor Pr > F
Tratamiento 11 31.7333333 2.8848485 1.55NS 0.1443
Método de Injertación(A)
2 3.33333333 1.66666667 0.90NS 0.4146
Patrón (B) 3 8.40000000 2.80000000 1.51NS 0.2247
AxB 6 20.00000000 3.33333333 1.79NS 0.1204
Error 48 89.2000000 1.8583333
Total 59 120.9333333
NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001
Anexo 10. Análisis de varianza del número de hojas totales del injerto de cacao
con tres métodos de injertación y cuatro patrones a los 60 días.
Fuente GL Suma de
Cuadrados
Cuadrado de
la media F-Valor Pr > F
Tratamiento 11 29.25000000 2.65909091 3.07** 0.0035
Método de Injertación(A)
2 11.70000000 5.85000000 6.75** 0.0026
Patrón (B) 3 9.38333333 3.12777778 3.61* 0.0198
AxB 6 29.25000000 2.65909091 3.07** 0.0035
Error 48 41.60000000 0.86666667
Total 59 70.85000000
NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001
67
Anexo 11. Análisis de varianza del número de hojas verdaderas del injerto de
cacao con tres métodos de injertación y cuatro patrones a los 30
días.
Fuente GL Suma de
Cuadrados
Cuadrado de
la media F-Valor Pr > F
Tratamiento 11 46.93333333 4.26666667 4.41*** 0.0001
Método de Injertación(A)
2 12.63333333 6.31666667 6.53* 0.0031
Patrón (B) 3 10.80000000 3.60000000 3.72* 0.0174
AxB 6 23.50000000 3.91666667 4.05** 0.0023
Error 48 46.40000000 0.96666667
Total 59 93.33333333
NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001
Anexo 12. Análisis de varianza del número de hojas verdaderas del injerto de
cacao con tres métodos de injertación y cuatro patrones a los 45 días.
Fuente GL Suma de
Cuadrados
Cuadrado de
la media F-Valor Pr > F
Tratamiento 11 14.53333333 1.32121212 0.74NS 0.6912
Método de Injertación(A)
2 2.13333333 1.06666667 0.60NS 0.5524
Patrón (B) 3 4.13333333 1.37777778 0.78NS 0.5130
AxB 6 8.26666667 1.37777778 0.78NS 0.5926
Error 48 85.20000000 1.77500000
Total 59 99.73333333
NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001
68
Anexo 13. Análisis de varianza del número de hojas verdaderas del injerto de
cacao con tres métodos de injertación y cuatro patrones a los 60
días.
Fuente GL Suma de
Cuadrados
Cuadrado de
la media F-Valor Pr > F
Tratamiento 11 17.38333333 1.58030303 1.10NS 0.3799
Método de Injertación(A)
2 4.23333333 2.11666667 1.48NS 0.2386
Patrón (B) 3 6.71666667 2.23888889 1.56NS 0.2108
AxB 6 6.43333333 1.07222222 0.75NS 0.6139
Error 48 68.80000000 1.43333333
Total 59 86.18333333
NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001
Anexo 14. Análisis de varianza del número de hojas no verdaderas del injerto de
cacao con tres métodos de injertación y cuatro patrones a los 30
días.
Fuente GL Suma de
Cuadrados
Cuadrado de
la media F-Valor Pr > F
Tratamiento 11 62.9333333 5.7212121 3.67** 0.0008
Método de Injertación(A)
2 1.73333333 0.86666667 0.56NS 0.5771
Patrón (B) 3 13.73333333 4.57777778 2.94NS 0.0626
AxB 6 47.46666667 7.91111111 5.08** 0.0004
Error 48 74.8000000 1.5583333
Total 59 137.7333333
NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001
69
Anexo 15. Análisis de varianza del número de hojas no verdaderas del injerto de
cacao con tres métodos de injertación y cuatro patrones a los 45
días.
Fuente GL Suma de
Cuadrados
Cuadrado de
la media F-Valor Pr > F
Tratamiento 11 7.38333333 0.67121212 1.05NS 0.4230
Método de Injertación(A)
2 3.03333333 1.51666667 2.36NS 0.1049
Patrón (B) 3 0.71666667 0.23888889 0.37NS 0.7733
AxB 6 3.63333333 0.60555556 0.94NS 0.4730
Error 48 30.80000000 0.64166667
Total 59 38.18333333
NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001
Anexo 16. Análisis de varianza del número de hojas no verdaderas del injerto de
cacao con tres métodos de injertación y cuatro patrones a los 60 días.
Fuente GL Suma de
Cuadrados
Cuadrado de
la media F-Valor Pr > F
Tratamiento 11 9.25000000 0.84090909 1.17NS 0.3301
Método de Injertación(A)
2 4.30000000 2.15000000 3.00** 0.0592
Patrón (B) 3 2.45000000 0.81666667 1.14NS 0.3426
AxB 6 2.50000000 0.41666667 0.58NS 0.7433
Error 48 34.40000000 0.71666667
Total 59 43.65000000
NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001
70
Anexo 17. Análisis de varianza plantas aptas al trasplante del injerto de cacao
con tres métodos de injertación y cuatro patrones a los 60 días.
Fuente GL Suma de
Cuadrados
Cuadrado de
la media F-Valor Pr > F
Tratamiento 11 7311.40000 664.67273 0.82NS 0.6213
Método de Injertación(A)
2 1404.100000 702.050000 0.87NS 0.4274
Patrón (B) 3 138.333333 46.111111 0.06NS 0.9820
AxB 6 5768.966667 961.494444 1.19NS 0.3301
Error 48 38941.60000 811.28333
Total 59 46253.00000
NS No significativo * Significativo P≤0.05 ** Significativo P≤0.01 *** Significativo P≤0.0001
71
7.2. Imágenes del Anexo
Anexo 18. Recolección de Tierra de montaña
Anexo 19. Picado de los materiales para el sustrato
Anexo 20. Adquisición del Aserrín de balsa
Anexo 21. Preparación del sustrato
Anexo 22. Llenado de fundas 5.5 x 8 Anexo 23. Ubicación del vivero
72
Anexo 28. Disposición de material utilizado como patrones
Anexo 25. Desinfección de semilla Anexo 24. Siembra de patrones
Anexo 29 Etiquetado de tratamientos
Anexo 26. Disposición de los tratamientos
Anexo 27. Cubierta de polietileno para las plantas de microinjertación
73
Anexo 30. Microinjerto de Púa terminal Anexo 31. Microinjertos ubicados en cámara húmeda
Anexo 32. Microinjerto de yema Anexo 33. Patrones recién injertados
Anexo 34. Microinjerto púa lateral Anexo 35. Microinjertos de púa lateral, púa terminal y yema