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Aplicacin de
Macroinvertebrados y Diatomeas
como Bioindicadores en el Estudio
de la calidad de las Aguas
Mdulo II
Master en Ingeniera del Agua
Grupo TAR
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NDICE
1. INTRODUCCIN
2. SELECCIN DE ESTACIONES DE MUESTREO
2.1 INTRODUCCIN2.2 SEGUIMIENTO DE LA EVOLUCIN DE UN RO2.3 ELECCIN DE LAS ESTACIONES2.4 NMERO DE ESTACIONES
2.4.1 MUESTREO DE UN RO2.4.2 MUESTREO DE UN LAGO O EMBALSE
2.5 FRECUENCIA DEL MUESTREO
3. SELECCIN DE LOS PUNTOS DE MUESTREO EN CADA ESTACIN3.1 IBGN3.2 BMWP3.3 IBD
4. METODOLOGA DEL MUESTREO4.1 NDICE BIOLGICO GENERAL NORMALIZADO (IBGN). AFNOR 1992.4.2 BMWP (BIOLOGICAL MONITORING WORKING PARTY)4.3 NDICE BIOLGICO DIATMICO (IBD). AFNOR
5. TRATAMIENTO DE MUESTRAS.5.1. IBGN Y BMWP 5.2. IBD
6. IDENTIFICACIN DE LOS TAXONES DE MACROINVERTEBRADOS YDIATOMEAS.
6.1. MACROINVERTEBRADOS.6.1.1. IBGN.6.1.2. BMWP
6.2. DIATOMEAS.6.2.1. IBD
7. BIBLIOGRAFIA.
8. ANEXOS.
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1. INTRODUCCIN
Siguiendo las lneas marcadas por la Directiva 2000/60/CE, se hacen
necesarios la inclusin de parmetros biolgicos que certifiquen la calidad
ecolgica de un ro.
Estos ndices biolgicos estn referidos a poblaciones de
macroinvertebrados bentnicos y de diatomeas (algas pardas), que constituyen
los bioindicadores ms representativos de la calidad de las aguas.
Los ndices que vamos a tratar son ndices de calidad normalizados por
AFNOR, referidos a guas de diversidad francesas. Estos ndices son:
ndice Biolgico Diatmico (IBD) NF. T 90-354
ndice Biolgico General Normalizado (IBGN) NF. T 90-350
As mismo se ha considerado un segundo ndice para macroinvertebrados,
basado en la norma francesa, pero adaptado para Espaa que es el Biological
Monitoring Working Party (BMWP). Este ndice es menos restrictivo que el IBGN,
pero nos da una buena aproximacin sobre el estado ecolgico de un ro.
El presente documento est basado en el trabajo realizado por el equipo
del Grupo TAR para la Fundacin PRODTI y la Consejera de Obras Pblicas en
el Estudio de la Determinacin de la Diversidad Ecolgica en los Ros Andaluces,
y ha sido procesado como texto de estudio para el Mdulo II del Master
universitario en Ingeniera del Agua.
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2. SELECCIN DE ESTACIONES DE MUESTREO
2.1. INTRODUCCIN
Cada uno de los aspectos de la evolucin de un ro que se mencionan a
continuacin, han de estar simplificados en una rigurosa eleccin del emplazamiento
de las estaciones de muestreo, su nmero y el periodo de muestreo.
El propsito de un anlisis de agua es el de evaluar las propiedades de una
matriz (en este caso agua natural superficial o subterrnea, agua residual domsticao industrial, agua tratada), cuyos resultados deben ser de alta calidad y fiabilidad y
adecuados al propsito para el cual fueron solicitados, ya que en base a esta
informacin se toman importantes decisiones en materia de legislacin, medidas de
mitigacin, control y proteccin del medio ambiente, las cuales estn regidas por
normas y regulaciones de carcter oficial.
Las muestras recolectadas para los anlisis deben ser relevantes y
verdaderamente representativas, por lo tanto es el aspecto ms crtico de un
programa de monitoreo.
El objetivo de un muestreo de agua es obtener una parte representativa del
universo en consideracin a la cual se le analizarn los diferentes parmetros de
acuerdo al inters. Para lograr este objetivo es necesario que la muestra conservelas concentraciones de todos sus componentes y que no se presenten cambios
significativos en su composicin antes del anlisis. El muestreo es por lo tanto el
aspecto ms crtico de un programa de mediciones.
La recoleccin, preservacin y almacenamiento de las muestras son
crticos para los resultados de calidad del agua. Es por esto, que un programa de
muestreo debe ser planeado para satisfacer los objetivos de estudio. El nmero de
muestras y la localizacin de los sitios de muestreo deben ser determinados
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previamente y cumplir con los requerimientos necesarios para establecer los
estndares de calidad o lmites permitidos. La exactitud y fiabilidad de los resultados
se basan en la representatividad de la muestra.
2.2. SEGUIMIENTO DE LA EVOLUCIN DE UN RO.
El seguimiento de la evolucin de la calidad de un ro se har tanto
TEMPORAL como ESPACIAL.
TEMPORAL:seguimiento a lo largo del tiempo en ciclos de un ao y
bsqueda de las causas de la evolucin que podr ser:
Natural: inducidos por los ciclos estacionales de hidrologa,
especies, desarrollo de la vegetacin, temperatura,
Humana: provocando modificacin de las caractersticas del
medio.
Mixta: ciertas causas naturales pueden acelerar la alteracin de
la calidad del medio en el periodo de esto.
ESPACIAL: seguimiento a lo largo del curso de agua. La bsqueda de
las causas de la evolucin podr ser:
Natural: suponen una modificacin de hbitat debidos a
cambios geofsicos, edafolgicos,...
Humana: suponen una modificacin de hbitat debido a
poblaciones, actividades industriales, agrcolas,...
Mixta
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2.3. ELECCIN DE LAS ESTACIONES
Para definir la calidad de un curso de agua, hay que establecer un estado de
referencia dentro de una escala tipolgica y as poder establecer las sensibilidades ypotencialidades propias de una cuenca.
Los criterios bsicos para seleccin de las zonas a monitorear en cursos
hdricos superficiales depende de que se priorice su extensin territorial, cuenca,
ros, tramos de los mismos o lagos.
Definido el tema precedente pueden luego implementarse las fases de
seleccin de las estaciones de monitoreo de calidad de agua en tres niveles:
1. La macrocolocacin, que determina los tramos del ro que son
representativos del nivel de calidad de toda la cuenca.
2. La microcolocacin, que implica la ubicacin dentro del tramo
precedente de la estacin de muestreo.
3. Identificacin del o los puntos de toma que deben ser
representativos del rea (ejemplo: de toda la seccin transversal del tramo del
ro o de la columna de agua del lago en cuestin).
Esta ltima fase implica que la colecta de la muestra se efecte en una zona
homognea en cuanto a la distribucin espacial del poluente, o contaminante, en
cuestin; la seleccin final puede ser simple si no hay descargas puntuales en el
rea, pero en caso de estar cerca del vuelco de un efluente debe muestrearse aguas
abajo de la zona de mezcla. Existen formulaciones que estiman para el caso de ros
y lagos la extensin de la misma, a partir de la cual puede asumirse que slo
acontece un nivel de variacin menor al 10 % en el nivel de concentracin del
poluente.
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La relevancia ambiental de un tramo de ro puede determinarse segn la
cantidad de tributarios que va recibiendo en su transcurso hacia la desembocadura,
las descargas puntuales y distribuidas que recibe, flujo msico de determinados
poluentes, etc. Estas cantidades se dividen por la mitad para llegar al centroide por
cuenca, subcuenca y as sucesivamente si se ve la necesidad de seguir
subdividiendo la zona para evaluar el efecto de determinada descarga puntual,
aunque esto implica mayores gastos si se implementa una red demasiado amplia.
Pueden darse dos tipos de estaciones regularmente empleadas: fijas y
transitorias; convendr utilizar una u otra segn el tipo de estudio ambiental einformacin requerida para cumplimentar los mismos.
Los criterios de diseo de la red implican la localizacin de las estaciones y
puntos de toma representativos para el estudio de calidad en una cuenca; la
seleccin del nmero de muestras (N) para cada parmetro de inters para el
estudio y una frecuencia (F) adecuada al objetivo priorizado en el proyecto en
cuestin (ejemplo: deteccin de infracciones o de tendencias de calidad de agua)
La eleccin de las estaciones est en funcin del objeto de estudio y han de
tener unas propiedades esenciales determinadas:
Representativa: se elegir la estacin en una longitud determinada del
curso de agua que no presente variaciones significativas en los ndices, de tal
manera que los parmetros en la muestra tengan el mismo valor que en el
cuerpo de agua, en el lugar y tiempo de muestreo. Para ello, el cuerpo de
agua debe estar mezclado totalmente en el lugar de muestreo. Se har un
inventario de los distintos hbitats disponibles (pareja o par sustrato/
velocidad) y sus poblaciones representativas.
Comparativa:son una pareja de estaciones situadas desde un lado a
otro del foco de perturbacin sobre el medio a evaluar. Las dos estaciones
debern ser idnticas para el hbitat muestreado de forma que se diferencien
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nicamente por el impacto de la perturbacin. Se recomienda cartografiar las
estaciones indicando la posicin y dimensin de los hbitats muestreados.
Informativa: corresponde a un lugar aislado de un segmento de un
curso de agua que constituye un accidente ecolgico y que no va a ser
representativo. El valor obtenido en este tipo de estacin es extrapolable.
As procederemos del siguiente modo:
1. Seleccionar: un tramo del ro que no haya estado
recientemente inundado. Se recomienda muestrear las zonas ms
centrales y los mrgenes de ms de 0,2 m de profundidad.
2. Dividir: el tramo de ro a estudiar en tantas reas como
hbitats distintos:
zona de fuerte corriente y sustrato duro
zona lntica y sustrato duro
entre la vegetacin acutica emergida de los
mrgenes del ro
entre los macrfitos sumergidos o macroalgas
arena, grava o barro
Es muy importante seleccionar un tramo de ro que posea todos
los tipos de sustratos para poder recolectar la mxima biodiversidad.
Otros requisitos del sitio de muestreo a tenerse en cuenta son:
Acces ibilidad: la persona encargada de recolectar las muestrasnormalmente tiene que transportar una carga apreciable de equipo de
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muestreo, adems de las muestras; por lo tanto, se debe seleccionar un lugar
accesible bajo todas las condiciones meteorolgicas, vas de acceso,
puentes, etc.
Distancia hasta el Laboratorio: el tiempo requerido para el transporte
de las muestras regir el lmite de las determinaciones y la fiabilidad de los
resultados. En trminos prcticos, tiempos de transporte mayores de 24 horas
entre el sitio y el laboratorio hace reconsiderar la estacin o buscar un
laboratorio ms cercano; si no es posible, tener en cuenta esta circunstancia
en la interpretacin de los resultados.
Seguridad: la recoleccin de muestras en ros o lagos puede ser
peligrosa, particularmente bajo malas condiciones de tiempo y crecientes
altas; al considerar un lugar se debe dar la debida importancia a este aspecto.
Si no hay alternativa, se deben tomar siempre todas las precauciones y
proveerse de los equipos necesarios de seguridad.
2.4. NMERO DE ESTACIONES
Est en funcin del objeto de estudio; un slo sitio de muestreo
generalmente no es suficiente para definir la calidad del agua. Por lo tanto, la
seleccin de las estaciones, la frecuencia y el nmero de muestras depende
bsicamente de los objetivos y alcances del estudio, as como de los usos del agua.
Cuando los efectos en la calidad de un tributario son de inters, se debe
muestrear aguas arriba y aguas abajo de la confluencia y aproximadamente 60 m
aguas arriba de la desembocadura del tributario, donde no haya mezcla por reflujo
de la corriente receptora.
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Para evaluar el efecto de las descargas de desechos industriales, domsticos,
agropecuarios, etc., se deben tomar muestras aguas arriba de la descarga y aguas
abajo donde la mezcla vertical y horizontal sea completa.
2.4.1. Muestreo de un ro
Para estudiar el efecto de un impacto, se elegir una estacin ro arriba
(estacin de referencia)y dos ro abajo; es decir, una inmediatamente antes del
impacto, otra cercana a la perturbacin y la ltima ms alejada para verificar la
capacidad de recuperacin del medio.
Definiremos como estaciones de referencia aquellas donde la presin
humana y el impacto producido sobre el medio natural sean nulos o el mnimo
posible.
Los descriptores de la presin antropognica que se genera en la cuenca son
variables conservativas (poco oscilantes en el tiempo) y que influyen directamenteen la calidad de los tramos de ros donde confluyen sus aguas; de esta manera,
analizando el grado de humanizacin y presin antrpica sobre la subcuenca en
cada estacin, podremos discriminar aquellas poco perturbadas o sin perturbar.
A veces es necesario conocer el caudal de la corriente, con el fin de calcular
la carga de los parmetros medidos. Por ello, cuando existen estaciones de medida
del caudal, los sitios de muestreo se deben ubicar en dichas estaciones o cerca de
ellas.
2.4.2. Muestreo de un lago o embalse
Se debe contar con datos sobre las caractersticas tales como volumen, rea
superficial, profundidad media, tiempo de renovacin, as como las caractersticas
trmicas, batimtricas, hidrulicas y ecolgicas.
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Para el muestreo de un lago o embalse, la seleccin de los sitios de muestreo
depende del propsito que se tenga. Cuando el objetivo es conocer la potabilidad, se
deben tomar muestras de todos los afluentes y del espejo de agua en los sitios
cercanos a las posibles fuentes de contaminacin. Se debe evitar tomar muestras en
las mrgenes, superficie o fondo, pues la calidad no es uniforme en estos sitios.
2.5. FRECUENCIA DEL MUESTREO
El programa de muestreo puede estipular tiempos de muestreo al azar, pero
deben estar distribuidos ms o menos uniformemente a travs del ao. Si se conoce
el tiempo de mayor variabilidad o pico de la calidad del agua (poca de invierno o
verano), es conveniente incrementar la frecuencia en tales pocas o desviar haca
ellos ms esfuerzos en el monitoreo.
Los lagos naturales y artificiales muestran variaciones de composicin segn
la localizacin horizontal y la profundidad (estratificacin); en tales casos se debenexaminar las muestras separadamente antes de integrarlas.
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3. SELECCIN DE LOS PUNTOS DE MUESTREO EN CADA
ESTACIN.
3.1. IBGN
Tomaremos como ejemplo de la aplicacin de este mtodo un estudio
realizado en el ro Hueznar, en la Sierra Norte de la Provincia de Sevilla, Andaluca,
Espaa, donde se tomaron como referencia siete estaciones diferentes para el
estudio y, dentro de cada estacin, ocho puntos de muestreo.
Para la eleccin de estas estaciones no se han seguido criterios cuantitativos,sino cualitativos que permitan encontrar las causas de posibles variaciones de los
parmetros a estudiar.
El sentido de estos ocho puntos es la representatividad de ocho hbitats
distintos. Esta eleccin nos permitir apreciar la evolucin de la biomasa y detectar
los cambios impuestos de los hbitats a los macroinvertebrados y una visin
generalizada de los distintos grupos existentes en la estacin. Hay pues una relacin
directa entre la riqueza taxonmica y la riqueza del hbitat. Es imprescindibledistinguir estos ocho hbitats o al menos las facies lntica y ltica. Generalmente los
sistemas lticos son ms sensibles que los lnticos. La evidencia de perturbaciones
es facilitada en situaciones extremas, como con dficits de agua, temperaturas
extremas, etc. Cada hbitat viene establecido por la velocidad de corriente, la altura
del agua y la naturaleza del sustrato.
Figura 3.1.Arriba se observa tpica facie ltica Figura 3.2 Tipica facie lentica
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El IBGN nos indica cmo efectuar una correcta eleccin de estos puntos. As
pues, se buscarn ocho parcelas de 1/20 m2. Se efectan ocho combinaciones
distintas de sustrato/velocidad (S-V). Cada hbitat est caracterizado por una pareja
distinta de sustrato-velocidad. Si no existen ocho tipos distintos de sustratos, se
debe tomar unos de ellos dos veces pero en puntos con distinta corriente ovelocidad. Si el terreno es montono, hay que hacer un muestreo en ocho puntos
distintos intentando recoger todo el sustrato significativo. Si existen ocho sustratos
distintos y uno de ellos presenta puntos con distinta corriente, se debe tomar la
muestra en aquel que sea ms significativo (el que tenga mayor superficie en
general dentro de la estacin). Con la velocidad se actuar igual: una falta de ciertos
hbitats puede solucionarse muestreando los sustratos por separado dentro de la
misma parcela. Por ejemplo, en ausencia de hbitat lntico en un cauce de montaase muestrear primero la superficie superior mientras que la superficie inferior y el
sustrato subyacente ser objeto de un segundo muestreo. Sin embargo, la
experiencia en nuestros ros andaluces objetos de este estudio, por ejemplo el
Huznar, nos indica que los distintos tipos de habitats estn bien representados.
Figura 3.3. Zona con corriente media.
Figura 3.4. Zona con corriente rpida Figura 3.5. Zona con corriente baja
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Puede ser til marcar cada punto elegido con una bandera. Este mtodo nos
dar una buena visin del conjunto de la estacin y de la eleccin de los hbitats
ms representativos. Adems, en el mapa de la estacin se marcarn siempre los
ocho puntos elegidos. Tambin es aconsejable la anotacin de cualquier
caracterstica reseable de cada punto en una ficha identificativa, como laaccesibilidad, presencia de elementos externos al ro, etc.
Efectuando combinaciones definidas en la tabla 3.1. As obtendremos
nuestros ocho puntos. Las velocidades superficiales son evaluadas para cada
hbitat mediante un caudalmetro o, si la diferencia es acusada, mediante simple
observacin. La categora de los sustratos estn clasificados en el orden de
sucesin figurante ordenado en la tabla (de 9 a 0). Esta sucesin recomienda
muestrear prioritariamente los hbitats ms hospitalarios para la fauna. En estos
estarn presentes los macroinvertebrados ms selectivos en cuanto a su hbitat.
Estos nos elevarn nuestro ndice. En presencia de una perturbacin ms o menos
acusada estos organismos desaparecern. Sin embargo aquellos invertebrados que
estn adaptados a situaciones estresantes o contaminantes permanecern. As
pues, habr que empezar siempre que se pueda por los hbitats de ms calidad.
Cuando esto no sea posible se irn eligiendo sucesivamente en orden descendente
en la tabla de S-V.
Figura 3.6. Briofitas Figura 3.7. Plantas flotantes o spermafitas.
Figura 3.8. Partculas de arena con dimetro menor de 25.
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3.2. BMWP.
Este ndice de macroinvertebrados, al contrario que el IBGN, no especifica las
zonas de muestreos. En un principio se podrn escoger dentro de una estacintantos puntos como hbitats distintos haya. Esto nos dar una representatividad ms
o menos adecuada de la estacin completa, aunque para facilidad del trabajo se
recomienda establecer pocos puntos, pero que sean representativos de la totalidad
de los hbitats.
3.3. IBD.
Se eligir un punto donde las condiciones de crecimiento de las diatomeas
sean ptimas, es decir, una zona no muy profunda, con una adecuada iluminacin, y
que sea aireada a travs de una corriente ms o menos fuerte. Generalmente estas
condiciones en los ros de la Sierra Norte de Sevilla son fciles de encontrar, ya que
hay muchas rocas superficiales dentro de la corriente donde crecern
adecuadamente estos microorganismos. Con una muestra por estacin bastar,
aunque en condiciones especiales se podrn muestrear varias zonas, escogiendo
distintos hbitats, en orden decreciente de agresividad del medio.
Figura 3.9. Encontraremos las diatomeas sobre las rocas en zonas de corriente y
con iluminacin como en la foto de adjunta.
Para poder muestrear en zonas muy profundas se tomarn muestras de agua
o incluso se pueden poner sustratos artificiales a una cierta altura.
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4. METODOLOGA DEL MUESTREO
Una vez determinados los puntos de muestreo en el apartado anterior, en
base a variables de sustrato, velocidad y hbitat, procederemos a efectuar el
muestreo en s.
Para ello, nos basaremos en las especificaciones de ndices biolgicos que
tratan de determinar la calidad ambiental de una determinada zona en base a la
tolerancia ambiental de los organismos que aparecen en circunstancias de estrs
ambiental.
El mtodo de muestro empleado para los macroinvertebrados viene
especificado en la norma francesa NT 90-350 y el material empleado corresponde a
la norma internacional ISO 7828:1985, Mtodos de muestreo biolgico. Gua para el
muestro manual con red de macroinvertebrados bentnicos. Para la toma de
muestras de diatomeas, se seguir la norma francesa NF. T 90-354.
Para que la toma de muestras sea objetiva, representativa y a su vez repetible
en el tiempo, se han de establecer una serie de pautas o pasos a seguir as como el
uso de unos materiales de campo cuyas medidas estn normalizadas. Es decir, se
trata de definir un protocolo de actuacin vlido para toda la zona que se desee
muestrear tanto en metodologa como en el tiempo.
4.1. NDICE BIOLGICO GENERAL NORMALIZADO (IBGN). AFNOR
1992.
Este mtodo deriva del ndice IBG (ndice Biolgico Normalizado, normaAFNOR experimental N T 90-350, Octubre 1985).
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Permite la evaluacin de la calidad general de un curso de agua mediante el
anlisis de la macrofauna bntica, la cual est considerada como indicador (o
expresin sinttica) de esta calidad general. Tambin permite la evaluacin del
efecto de una perturbacin en el medio receptor cuando es aplicado
comparativamente ro arriba y ro abajo de un vertido o de alguna otra perturbacin.
Los individuos son seleccionados y determinados hasta el nivel de familia, a
excepcin de aquellos grupos faunsticos dbilmente representados o donde la
identificacin es delicada.
Las caractersticas que deben recogerse en cada estacin de muestreo:
o la fecha.
o la localizacin geogrfica exacta (coordenadas UTM).
o la altitud.
o la anchura del lecho mojado en el momento del muestreo.
o la naturaleza del sustrato y la velocidad de corriente
correspondiente a las 8 muestras efectuadas sobre la estacin y el
hbitat dominante.
o la lista de taxones muestreados y eventualmente sus
abundancias relativas.
o la variedad taxonmica de la toma de muestra ( t).
o el grupo faunstico indicador (valor de GI).
Metodologa de muestreo.
1.-Indicar el muestreo de cada punto, indicando en la bolsa:
ro estacin n
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punto.
2.- El muestreo se debe realizar siempre a contracorriente, es decir,
debemos empezar a muestrear por el punto ms bajo de la estacin de muestreoe ir subiendo, para evitar as mover el punto siguiente y perder muestras de
macroinvertebrados que pueden ser arrastrados por la corriente al pisar nosotros
el terreno. De cada punto, se debe anotar:
tipo de sustrato.
velocidad de corriente aproximada.
3.-Las muestras son tomadas con la ayuda de una malla de 500 m. de
dimetro, de tipo Surber (facies lticas); o en aguas turbias (facies lnticas) por
traccin de 50 cm. o en su defecto por movimiento de vaivn sobre una superficie
equivalente. Si la superficie estuviera compuesta por rocas, se procedera a la
extraccin y recoleccin de las mismas depositndolas en cubetas para su
posterior retirada de los organismos a estudiar.
4.-Se procede al tamizado de las muestras punto por punto por medio del
tamiz de 500 micras de malla, extrayendo los diferentes organismos si es que no
se ha realizado en el campo. De este modo se van separando las muestras
manualmente ayudndonos con pinzas u otro tipo de utensilios adecuados a tal
efecto.
5.-Una vez obtenida y separadas las muestras se conservan con formol al
6-10% y se dispensan en viales para facilitar la posterior separacin de los
organismos en el laboratorio. Es importante el hecho de rotular perfectamente
cada vial indicando el punto de muestreo, la estacin a la que pertenece y, si
fuese necesario, el cauce que estamos estudiando, as como algn que otro
aspecto que consideremos de importancia en ese momento.
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6.- Una vez separados y ordenados los organismos se procede a su
identificacin y recuento mediante claves (guas identificadoras) y con ayuda de
una lupa binocular y de un microscopio ptico.
Figura 4.4. , 4.5. y 4.6. Tamizado con la malla surber en distintas zonas de un r io.
Material.
En lo que se refiere al IBGN, se pueden usar una malla tipo Surber de
medidas normalizadas para ambientes de sustrato-velocidad de caractersticas
lticas, o una malla tipo Haveneau para ambientes de caractersticas lnticas.
Figura 4.7.Malla tipo Haveneau (zonas lenticas y profundas).
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Figura 4.8. Malla tipo Surber (zonas loticas).
En nuestro caso usaremos la primera: la malla tipo Surber, (ver figur
a), dado que nuestro mtodo ha demostrado ser vlido usando la misma tanto
para ambientes lticos como para ambientes lnticos.
Figura 4.9. Malla surber. Figura 4.10. Malla surber.
Igualmente precisamos para realizar el trabajo cubetas de plstico,
preferentemente anchas y con asa para su mejor manejo a la hora de tamizar la
muestra, as como otros elementos, (si procediera su uso), tales como guantes de
ltex, pinzas, bandejas tamizadoras con una luz de malla igual a la utilizada en la
malla Surber, es decir, un dimetro de 500 micras para mantener as constante el
tamao de poro y viales donde depositar la muestra a analizar una vez obtenida esta
ltima. Los viales pueden ser de plstico, pvc, u otro material semejante y con
paredes lisas para evitar la acumulacin de muestra en las mismas. Su capacidad
ser acorde al volumen de muestra a tratar, oscilando esta entre 50-100 ml de
capacidad.
Tambin precisaremos formaldehdo al 6% para la conservacin de las
muestras y su posterior anlisis en laboratorio.
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o Ventajas y lmites de la metodologa.
Este mtodo perfecciona al ndice predecesor IBG: cambia el orden de los
sustratos de la toma de muestra dando una prioridad a los sustratos mshospitalarios para la fauna macroinvertebrada; desplazamiento de ciertos taxones de
la tabla estndar de determinacin del ndice desde el sentido de una mayor
tolerancia a la polucin; aumentando el nmero de clases de variedad taxonmica y
del nmero de taxones a considerar; ciertos taxones no se tienen en cuenta si son
representados por menos de 10 individuos. Esta mejora contribuye a una mayor
sensibilidad del mtodo y, a nivel prctico, las ventajas de este mtodo residen en la
facilidad de clculo del ndice y la simplicidad de las determinaciones taxonmicas.
En tal caso, el IBG puede ser aplicado a todos los tipos de medios, excepto
en los medios muy profundos, debido a la dificultad de la toma de muestra.
Los macroinvertebrados son aqu considerados como expresiones sintticas
de la calidad general de los cursos de agua. En cambio, esta tcnica no permite
separar de la calidad general del agua la parte debida a las condiciones fsicas
naturales de un curso de agua y la parte debida a las perturbaciones. Esta incgnita
se elimina una vez realizada diferentes campaas que permitan conocer datos
histricos sobre la fauna acutica existente en el ro como hemos as constatado a lo
largo de las diferentes campaas en las que se ha validado el mtodo para cauces
fluviales andaluces.
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4.2. BMWP ( BIOLOGICAL MONITORING WORKING PARTY ).
La zona geogrfica empleada en su estudio inicialmente fueron las islasbritnicas. Dicho mtodo permite estimar la calidad de un agua para el estudio de la
fauna bntica, en funcin de la tolerancia frente a la polucin orgnica, los individuos
son identificados hasta nivel de familia, a cada cual le afecta un valor segn su
tolerancia a la polucin: un valor elevado refleja una tolerancia fiable frente a la
polucin y viceversa.
El ndice es calculado como la suma de valores correspondientes a las
distintas familias presentes en la toma de muestra.
Metodologa de muestreo.
1.- Sobre una estacin determinada por las caractersticas fsicas
homogneas, la toma de muestra se hace removiendo el sustrato con el pie, ro
arriba y con una red de toma de muestra estndar.
2.- La operacin debe efectuarse cubriendo todos los hbitats ms
importantes durante tres minutos, con un minuto de toma de muestra en los
lugares donde no pueden ser muestreados segn la metodologa precedente.
3.-Las caractersticas fsicas del medio deben ser anotadas.
4.-No se especifica el nmero de puntos de muestreo por estacin.
5.-Una vez obtenida las muestras se conservan con formol al 6-10%. Para
facilitar la separacin de los macroinvertebrados de la muestra.
6.-Se procede al tamizado de las muestras, si es que no se ha realizado
en el campo, y se va separando manualmente, bolsa a bolsa, ayudndonos con
unas pinzas y una mesa de luz.
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7.- Una vez separados los organismos se procede a su identificacin y
recuento mediante claves (guas identificadoras) y con ayuda de una lupa
binocular y de un microscopio ptico.
Material.
Para la toma de muestras es necesario disponer de una draga-malla de 500
micras, (tipo Surber), badeadoras, pinzas, bolsas, tamices ( uno de ellos debe ser de
500 micras). En el laboratorio sern necesarios una mesa de luz, unas cubetas,
pinzas finas, recipientes para separar los organismos, lupa binocular, microscopio
ptico, guas identificadoras de macroinvertebrados y formaldehdo al 6%.
Ventajas y lmites del mtodo.
Facilita la determinacin de macroinvertebrados. Clculo fcil de un ndice y
obtencin de una expresin sinttica de la calidad del agua fcilmente asimilable por
todas las personas. La escala BMWP vara en funcin de la talla y de la diversidad
especfica de las muestras, lo que hace que se obtenga sobre una misma estacin
los diferentes valores de esta escala segn el esfuerzo de toma de muestra
realizado por el operario.
Podramos considerar que la libertad a la hora de elegir el nmero de puntos
a muestrear en cada estacin sera un lmite del mtodo, ya que podran existir
variaciones segn el operario que realice el muestreo. No obstante, se intentar
siempre escoger un nmero de puntos suficiente para representar los distintos
hbitats de la estacin que se muestree.
4.3. NDICE BIOLGICO DIATMICO (IBD). AFNOR.
Para la confeccin de este ndice, usamos un grupo de microalgas que
son las diatomeas, pertenecientes al grupo de las crisofceas. Su uso en este ndice
se basa en la tolerancia que poseen ante distintos contaminantes y su respuesta
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ante ellos, de tal modo que las poblaciones varan en el espacio y en el tiempo
variando ecolgicamente frente a esos contaminantes. Es por ello que este grupo
de algas es usado como organismos bioindicadores.
Metodologa de muestreo.
Dependiendo del tipo de cauce en el que se vaya a muestrear, se tomarn las
muestras en columna de agua o sobre un sustrato. De tal modo que si el cauce es
grande y profundo, se toman muestras de agua, bien en superficie o bien en
profundidad, en un vial adecuado a la capacidad requerida, de tal modo que para el
tratamiento posterior precisaremos de 5 ml de muestra.
En cambio si se trata de muestrear una zona con un cauce pequeo, se toma
la muestra de una zona del ro con buena oxigenacin y corriente, preferiblemente
de la orilla, procedindose al raspado de la capa de materia orgnica y sedimento
que est adherida al mismo, introduciendo la muestra en un vial con un poco de
agua del cauce, procedindose a su tratamiento posterior en laboratorio.
Es de importancia el rotular correctamente la muestra en cuestin, el punto de
muestreo, la estacin y si fuese necesario el cauce fluvial que se est estudiando,
as como otras consideraciones de inters, tales como la fecha, hora de recogida y
autor del muestreo.
Figura 4.1. Cocconeis Figura 4.2. Cyclotella Figura 4.3. Cymbella
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5. TRATAMIENTO DE MUESTRAS
Una vez obtenidas las muestras de cada punto de muestreo,
procederemos al tratamiento adecuado de stas. Debido a la fragilidad demacroinvertebrados y diatomeas, este procedimiento debe ser realizado con gran
delicadeza ya que de ello depende la correcta identificacin de los individuos
capturados. A continuacin se detallan los pasos a seguir para un ptimo procesado
de las muestras.
5.1. IBGN Y BMWP
Material necesario:
Pinzas de relojero
Bandeja de fondo blanco (30 x20 x 5 aprox.)
Bandeja clasificadora
Lquido conservante (formaldehdoal 6% o alcohol 70 + glicerina al10%)
Frasco lavador
Para comenzar la separacin de las muestras se debe elegir un lugar bien
iluminado debido al pequeo tamao de muchos de los macroinvertebrados.
Comenzamos vertiendo el contenido de los viales en la bandeja de fondo
blanco. El color de esta bandeja nos facilitar la localizacin de los organismos ya
que la tonalidad predominante de stos es oscura, debido a la necesidad de pasar
inadvertidos frente a sus depredadores en su ambiente natural. Lavamos los viales
para evitar que los macroinvertebrados se queden adheridos a las paredes.
Con las pinzas iremos removiendo los pequeos granos de arena con el fin de
dejar al descubierto aquellos individuos que tienden a refugiarse en el sedimento.
Los ejemplares que extraigamos los iremos colocando, con mucho cuidado de nopartirlos con las pinzas, en los distintos pocillos de la bandeja clasificadora, los
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cuales estarn rellenos de lquido conservante (formaldehdo 6% o alcohol 75),
reuniendo a los individuos morfolgicamente ms parecidos en un mismo pocillo,
realizando as una primera clasificacin visual de los organismos. Esto nos facilitar
luego la identificacin de los distintos taxones. Este procedimiento se repetir con
todas las muestras que compongan cada punto de muestreo, indicando en cadapocillo la procedencia de los individuos que contengan. Se utilizar un pocillo distinto
por cada punto de muestreo y grupo morfolgico. Una vez se hayan obtenido todos
los macroinvertebrados se proceder a su identificacin con ayuda de una lupa y las
correspondientes guas de identificacin.
Figura 5.1. Bsqueda de ejemplares en bandejas de tonalidad clara para una mejor visualizacin.
5.2. IBD
En este caso se hace mucho ms necesario el correcto tratamiento de las
muestras ya que la extrema fragilidad del caparazn silceo de las diatomeas junto
con el tamao microscpico de stas nos obliga a extremar el cuidado de los
procesos de manipulacin. Una mala preparacin puede provocar que las diatomeas
se partan en pedazos que imposibilitaran su posterior identificacin, o bien que
restos orgnicos mal digeridos interfieran, de forma que oculten diatomeas o
distorsionen las preparaciones.
Para el tratamiento de las muestras se necesitar el siguiente material:
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H2O2 (110-130 Vol.)
cido clorhdrico
Tubos de ensayo
Pipetas de 2 y 5 ml
Ultra centrfuga
Estufa de secado
Portaobjetos ycubreobjetos
Resina NAPHRAX
El procedimiento a realizar sera el descrito a continuacin:
1. Agitar la muestra
2. Tomar 2 ml de muestra (no tomarlo del fondo para evitar impurezas) e
introducirlo en un tubo de ensayo.
3. Aadir 8 ml de perxido de hidrgeno para destruir la materia orgnica.
4. Dejar reposar 12 horas para digerir toda la materia orgnica.
5. Si fuera necesario, aadir cido clorhdrico para eliminar el carbonato clcico,
antes o despus del tratamiento con perxido de hidrgeno.
6. Transcurridas las 12 horas se procede a sedimentarlas mediante
centrifugacin a 1500 vueltas/minuto durante 5 minutos. Una vez sedimentado se
procede al lavado.
7. Se retira el perxido de hidrgeno (sobrenadante), se aade agua destilada y
se centrifuga a 1500 vueltas/minuto, durante 2 minutos. Este procedimiento se repite
tres veces, cambiando el agua destilada cada vez que se centrifuga.
8. Una vez limpias todas las muestras se retira todo el sobrenadante, se toma
todo el sedimento y se reparten en dos cubreobjetos y se dejan que se sequenencima de la estufa a una temperatura no superior a 40C.
9. Una vez secas, se aade una gota de resina naphrax en el portaobjetos sobre
el cual se colocar el cubre con la muestra, con mucho cuidado de repartirlo por toda
la superficie del cubreobjetos y de no formar burbujas entre el cubre y el porta.
10. Dejar secar durante al menos 48 horas antes de su visualizacin al
microscopio.
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6. IDENTIFICACIN DE LOS TAXONES DE
MACROINVERTEBRADOS Y DIATOMEAS
Una vez realizado el tratamiento de las muestras, procedemos a laidentificacin de los organismos indicadores de calidad. Para ello vamos a estudiar
dos tipos de organismos diferentes: los macroinvertebrados y las diatomeas.
6.1. MACROINVERTEBRADOS:
Son los organismos ms frecuentemente utilizados como indicadores decalidad de agua por varias razones:
Son organismos con escasa capacidad de movimiento, por lo
que se pueden ver directamente afectados por los vertidos.
Poseen un ciclo de vida largo en comparacin con otros
organismos, por lo que se pueden realizar estudios durante largos periodos.
Poseen un espectro ecolgico muy amplio (grupo muyheterogneo).
Tambin tienen un tamao ptimo.
Son organismos que no tienen espina dorsal y que son visibles sin usar
microscopio. El estudio de macroinvertebrados es el ms utilizado debido a la
variedad y abundancia de las comunidades que lo forman, la facilidad de recogida
de muestras y la diversidad de tolerancias que presentan a las variaciones de las
condiciones del agua.
Los ndices biticos (aquellos que ordenan las especies de
macroinvertebrados segn la tolerancia a la contaminacin orgnica) que vamos a
aplicar son los siguientes:
IBGN (ndice Biolgico Global Normalizado)
BMWP (Biological Monitoring Working Party)
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6.1.1. IBGN
Es un ndice francs, norma AFNOR, Diciembre 1992. Deriva del IBG (ndice
Biolgico Normalizado), que es norma AFNOR experimental N T 90-350, deOctubre 1985.
Dicho ndice permite evaluar la calidad general del curso del agua mediante
anlisis de la macrofauna bntica, la cual est considerada como indicador de la
calidad general. Tambin se puede evaluar el efecto de una perturbacin cuando
es aplicado comparativamente ro arriba y ro debajo de un vertido o de cualquier
otra perturbacin.
La unidad taxonmica utilizada para la determinacin es la familia, a
excepcin de aquellos grupos faunsticos dbilmente representados o donde la
identificacin es delicada.
Para determinar el ndice utilizaremos una tabla cruzada (ANEXO 9.3) dondese confronta el nmero total de taxones encontrados (t), situado en la abscisa y el
primer grupo faunstico indicador de la tabla (G.I), situado en la ordenada. Cada
taxn ser representado nicamente si el nmero de individuos encontrados es
mayor o igual que tres o mayor o igual que diez (para ciertos taxones).
La determinacin del grupo indicador la realizaremos siguiendo la tabla de
arriba abajo y pararemos en la primera presencia significativa de un taxn (n
mayor que tres o n mayor que diez) de la lista de indicadores de calidad, siendo
n el nmero de individuos de cada taxn .As, el valor del IBGN resultar de la
combinacin del grupo faunstico indicador y de la variedad de taxones
encontrados de la macrofauna bntica ( ver tabla en ANEXO 9.3).
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Existen 138 taxones (ver tabla indicadora de taxones de IBGN en ANEXO
9.2) susceptibles de participar en la variedad total y 38 grupos de individuos que
pueden actuar como grupos indicadores.
Los valores del IBGN van desde 0 (muy mala calidad) a 20 (muy buena
calidad).En la tabla siguiente, podemos observar el valor del IBGN asociado a la
calidad del agua y al color asignado en cada caso:
IBGN >17 calidad excelente
16 > IBGN > 13 calidad buena
12> IBGN > 9 pasable
8 > IBGN > 5 mediocre
IBGN < 4 mala
Tabla 6.1. Cdigo de colores y calidades de las aguas analizadas segn el valor del IBGN.
El color azul indica que las aguas son muy limpias; el verde, aguas no
alteradas sensiblemente; el amarillo, es indicativo de signos de contaminacin; el
naranja, aguas contaminadas y el rojo supone aguas muy contaminadas.
Un ejemplo de aplicacin del IBGN, remitindonos a la tabla, sera el
siguiente: si el primer taxn representativo es Perlidae, tendremos como grupo
indicador el 9. Si el nmero de individuos encontrados de este grupo es 35, vemosen la tabla cruzada que nos corresponde un valor de IBGN de 18.
Tambin podemos calcularlo mediante la relacin siguiente:
IBGN= GI + (clase variedad 1), con IBGN menor o igual a 20.
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6.1.2. BMWP
Este ndice es una aplicacin del BMWP, que es un ndice britnico revisado
por Helawell en 1978. Fue ajustado por Alba-Tercedor y Snchez Ortega en 1988 yadoptado en el VI Congreso Espaol de Limnologa (Granada 1991) para su
aplicacin a la Pennsula Ibrica, debido a su fcil utilizacin.
Tiene como finalidad estimar la calidad del agua para el estudio de la fauna
bntica, en funcin de la tolerancia frente a la polucin orgnica.
Dicho ndice no est acotado por arriba. El autor asigna a cada grupo
faunstico una puntuacin en funcin de su exigencia en cuanto a la calidad del
agua. El valor que se asigna est comprendido entre uno y diez. Las familias ms
exigentes (algunos Plecpteros, Efemerpteros, Tricpteros,) tienen una
puntuacin de diez, mientras que los menos exigentes (clase Oligochaeta, por
ejemplo) tienen una puntuacin de uno. Esto significa que les corresponde un valor
de diez a familias que no toleran la contaminacin y les corresponde un valor de uno
a familias que viven en aguas muy contaminadas.
El valor del ndice bitico se calcula sumando las puntuaciones de los
distintos grupos faunsticos encontrados en cada punto de muestreo. Cuanto ms
elevado es el valor del ndice bitico, la calidad del agua es mayor y si corresponde
un valor ms bajo del ndice, la calidad del agua ser menor. El valor rara vez
supera la puntuacin de 200, an en las zonas mejor conservadas y carentes decontaminacin.
En el ndice BMWP, que es la aplicacin del BMWP a los ros ibricos, se
incluyen algunas familias que no se encuentran en la fauna britnica. Adems,
cambian algunas puntuaciones de familias que s estn en ambos lugares.
Generalmente, los valores de BMWP suelen ser mayores, aunque ambos tienen
fuertes correlaciones. En el caso de BMWP, asigna los valores de cinco clases de
calidad. La clase I indica mejor calidad de agua y la V indica una calidad de aguams deficiente.
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Tabla 6.2. Cdigo de colores y calidad de las aguas segn el valor del BMWP
Los valores intermedios entre las clases (cinco puntos por abajo y por arriba
del lmite marcado entre dos clases), se considera transicin entre ambas y se
dibujan con trazos alternos de los dos colores.
En la siguiente tabla, relacionamos los dos ndices biticos antes
mencionados, IBGN y BMWP, y su significado con respecto a la calidad del agua.
IBGN BMWP SIGNIFICADO
>150
101-120
Aguas muy limpias
Aguas no contaminadas o noalteradas de modo sensible
16-13 61-100Son evidentes algunos efectos de
contaminacin
12-9 36-60 Aguas contaminadas
8-5 16--35 Aguas muy contaminadas
150 Clase I(a).Aguas muy limpias.
101
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qumicas del medio y existen mayor nmero de especies indicadoras de calidad de
agua, basta con la existencia de un solo individuo por especie (ver tabla indicadora
de taxones de BMWPen ANEXO 9.4).
6.2. DIATOMEAS:
Son el siguiente grupo de organismos que vamos a estudiar como indicadores
de calidad. Las algas, en general, se utilizan como indicadores de calidad de agua
gracias a la sensibilidad a los cambios del medio en que viven, por tanto se
convierten en un referente del estado ecolgico de cualquier sistema acutico.
Una de las caractersticas ms importantes de las algas es su capacidad
depuradora del medio ambiente, ya que a travs de la fotosntesis incorporan
oxgeno, contribuyendo de esta manera a la oxidacin de la materia orgnica, por un
lado y, por otro, a aumentar el oxgeno disuelto en agua, el cual ser utilizado por
otras comunidades u organismos que componen la flora y fauna del medio acutico
donde viven.
Se considera que cuanto mayor es la diversidad de especies existentes en el
medio, las aguas son de mejor calidad.
El nfasis del estudio est centrado en el grupo de algas diatomeas, que son
algas unicelulares, pardas, capaces de colonizar los sistemas acuticos, muy
sensibles a la polucin (especialmente al nitrgeno y fsforo). Son capaces de
colonizar cualquier tipo de sustrato; son muy resistentes a la accin de los
elementos, incluso a altas temperaturas. Se pueden encontrar en forma libre o
formando colonias. Son estrictamente auttrofas y constituyen el grupo ms
importante del fitoplancton, debido a que contribuyen con cerca del 90% de la
productividad de los sistemas.
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Tienen la particularidad de que permanecen en el tiempo, pues sus paredes
silceas no se degradan. Se las encuentra en todos los ambientes y son las algas
ms utilizadas en todo el mundo para el biomonitoreo de ambientes actuales y
fsiles.
A travs de distintos estudios realizados, se sabe que los cambios en las
comunidades algales delatan el inicio de contaminacin que pueda existir en un
sistema acutico, lo cual se refleja en las modificaciones de la estructura poblacional
y en la proliferacin de especies asociadas a determinados aportes. Las respuestas
de estos organismos frente a los cambios de las condiciones del medio los
convierten en finos sensores de la calidad del agua y en referentes del estado
ecolgico del medio ambiente.
Estas algas poseen una membrana celular constituda fundamentalmente por
pectina, fuertemente impregnada de slice, de modo que resiste la accin de los
cidos y bases fuertes. A este caparazn silceo en forma de estuche de dos valvas
se le da el nombre de frstulo o teca. ste se encuentra formado por dos partes, que
se unen como las piezas de una caja: son las semitecas. Existe una semitecasuperior, llamada epiteca y una inferior, llamada hipoteca. Tanto epiteca como
hipoteca constan de porciones perfectamente delimitadas. La regin superior de la
epiteca y la inferior de la hipoteca se denominan valvas y, segn corresponda, se
nombran epivalva e hipovalva. Los bordes de las semitecas reciben el nombre de
pleuras, existiendo epipleura e hipopleura. En base a lo anterior y a la regin del
frstulo que se est observando de un ejemplar, ser la denominacin que reciba la
vista; si se observa epivalva o hipovalva, ser vista valvar y si se observa epipleura ohipopleura, ser vista pleural. Los frstulos de diatomeas presentan una serie de
ornamentaciones, as como la estructura externa, que tambin presenta una serie de
elementos tales como espinas, salientes, etc., que sirven de unin entre las distintas
clulas. Tambin, aquellas diatomeas que presentan simetra bilateral poseen una
estructura central, denominada rafe.
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Segn la simetra, podemos diferenciar entre aquellas que poseen simetra
radial (Orden Biddulphiaes o Centrales) y las que poseen simetra bilateral (Orden
Bacillariales o Pennales).
A continuacin, mostramos una imagen de una diatomea, en la que se
pueden diferenciar las distintas partes (diatomea perteneciente al gnero
Achnanthes):
Figura 6.1. Estructu ra de una diatomea.
El ndice que vamos a utilizar para la determinacin de las algas diatomeas es
el IBD.
6.2.1. IBD
Es el ndice Biolgico Diatmico. Es un ndice francs, norma AFNOR N F. T90-354.
El principio de este ndice es el mismo que para los ndices biticos, tambin
influye la cantidad relativa de los taxones. Viene referido para todos los ecosistemas
de agua dulce, porque las diatomeas se caracterizan por estar presentes en todas
partes y, sobre todo, en todo tipo de sustratos.
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Si el nmero de diatomeas contadas es menor que 400 despus de ver toda
la preparacin, es necesario hacer una nueva preparacin a partir del agua de
origen, con el fin de completar el contaje. Para evitar este problema, la preparacin
se hace doble.
Clculo del IBD:
Para realizar este clculo, vamos a seguir una serie de pautas:
Clculo del porcentaje de la abundancia (representada
por A) de los taxones que aparecen y de los taxones asociados.
Eliminacin de los taxones que aparecen pero que
presentan A menor que los valores que indica la norma. Todos los
taxones que aparecen presentan A menor que 7,5% (es decir, tres
diatomeas de 400), todos stos son eliminados sistemticamente. Se
considera que el efecto producido por ms de tres individuos de un
taxn asociado es ms peligroso que si considersemos que fuese en
realidad una contaminacin de la muestra.
Clculo de probabilidad de presencia de un taxn de los
que aparece es significativo de la poblacin. Son los que se estudian
para determinar la calidad del agua, utilizando la siguiente frmula:
F (i) = Ax* Px (i)*Vx / Ax*Vx
Ax es la abundancia del taxn x que aparece en porcentaje.
Px (i) es la probabilidad de presencia del taxn x de la clase de
calidad i.Vx es el valor ecolgico del taxn x.
n es el nombre de los taxones que aparecen.
Existen siete valores de F (i), porque el IBD define siete clases
de calidad de agua.
Clculo de B, que corresponde al valor del IBD y que
constituye un valor intermedio.
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B = 1*F(1)+2*F(2)+3*F(3)+ 4*F(4)+5*F(5)+6*F(6)+7*F(7)
Clculo del IBD sobre 20
IBD/20 = 4.75 * IBD - 8.5
IBD >17 calidad excelente
16 > IBD > 13 calidad buena
12 > IBD > 9 pasable
8 > IBD > 5 mediocre
IBD < 4 mala calidad
Tabla 6.4. Cdigo de colores y calidad del agua analizada segn el valor del IBD.
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FAMILIAS BIOTOPO CORRIENTE ALIMENTO NUTRICIN
Glossiphonidae
g. hemiclepsis Lagos, estanques(corrientes deagua)
Limnfilos Pescado Succionan sangre
g. HelobdellaLagos, corrientes
de agua,vegetacin
LimnfilosArtrpodos,
GasterpodosSuccionan sangre
g. GlossiphoniaSustrato duro,
lagosLimnfilos Gasterpodos Succionan sangre
Hirudidae
g. HirudoLagos, estanques Limnfilos
Mamfero
(parsitos)Succionan sangre
Erpobdellidae
Riberas (lagos y
estanques)
Refilos
Limnfilos
Invertebrados
acuticos Predador
ORDEN PLECPTEROS
FAMILIAS BIOTOPO CORRIENTE ALIMENTO NUTRICIN
Glossiphonidae
g. hemiclepsis
Lagos,estanques(corrientesde agua)
Limnfilos Pescado Succionan sangre
CapniidaeSustratosblandos,restos
Refilos Restos vegetales Fitfagos
g. GlossiphoniaSustrato
duro, lagosLimnfilos Gasterpodos Succionan sangre
Hirudidae
g. Hirudo
Lagos,estanques
LimnfilosMamfero
(parsitos)
Succionan sangre
ErpobdellidaeRiberas(lagos y
estanques)
Refilos
Limnfilos
Invertebradosacuticos
Predador
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CLASE GASTERPODOS
FAMILIAS BIOTOPO CORRIENTE ALIMENTO NUTRICIN
Viviparidae
Sustratoduro
Potamn
Limnfilos Macrfitos, restosFitfagos, raspan el
sustrato
BythinellidaeMacrfitos
CrenonRefilos Micrfitos Raspan el sustrato
Hydrobiidae Macrfitos Limnfilos Restos vegetalesFitfagos, raspan y
filtran
AncylidaeSustrato
duro,macrfitos
Refilos Micrfitos Raspan el sustrato
FerrisiidaeAcroloxidae
Macrfitos,limos, fango
Limnfilos Micrfitos, restos Raspan el sustrato
PlanorbidaeMacrfitos(sustrato
duro)Limnfilos Macrfitos
Fitfagos, raspan elsustrato
PhysidaeMacrofitos(sustrato
duro)Limnfilos Macrfitos
Fitfagos, raspan elsustrato
LymnaieidaeMacrfitos(sustrato
duro)Limnfilos Macrfitos
Fitfagos, raspan elsustrato
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ORDEN EFEMERPTEROS
FAMILIAS BIOTOPO CORRIENTE ALIMENTO NUTRICIN
Ephemeridae Arenas, gravas RefilosRestos orgnicos y
vegetalesColectores
PolymitarcidaeCienos, limos,
gravas, potamonLimnfilos
Restos orgnicos yvegetales
Colectores
HeptageniidaeBloques,
empedradosRefilos
Restos orgnicos yperifiton
Colectores
CaenidaeLimos
recubriendo laspiedras
Refilos y limnfilosRestos orgnicos
finosDetritvoros
baetidae Empedrados Refilos
Algasmicroscpicas,
restos orgnicosfinos, larvas
Colectores
LeptphlebiidaeLagos, aguas
lentas, potamonRefilos
Algas microscpicasy restos orgnicos
Detritvoros
CLASE CRUSTCEOS
FAMILIAS BIOTOPO CORRIENTE ALIMENTO NUTRICIN
Gammaridae Variado Refilos Restos orgnicos Detritvoro
LimnadiidaeSustratosblandos
Limnfilos Invertebrados Predador
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ORDEN PLECPTEROS
FAMILIAS BIOTOPO CORRIENTE ALIMENTO NUTRICIN
Taeniopterygidae
Musgo
vegetacinacutica, gravas
Limnfilos,Refilos
Restosvegetales,algas
unicelularesFitfagos
NemouridaeEmpedrados,
musgosRefilos Restos vegetales Fitfagos
CapniidaeTierras blandas,
restosRefilos Restos vegetales Fitfagos
Chloroperlidae Sustratos duros Refilos Invertebrados Predador
Perlodidae Sustratos duros Refilos Invertebrados Predador
ORDEN ODONATAS
FAMILIAS BIOTOPO CORRIENTE ALIMENTO NUTRICIN
GomphidaeArena ofango
LimnfilosInsectos,pequeoscrustceos
Predador
Aeschnidae Restosvegetales
LimnfilosInsectos,pequeoscrustceos
Predador
Platycnemididae Vegetacin(ribera)
LimnfilosInsectos,pequeoscrustceos
Predador
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ORDEN TRICPTEROS
FAMILIAS BIOTOPO CORRIENTE ALIMENTO NUTRICIN
Glossosomati-daeSustrato
duro,capassuperiores
Refilos Micrfitos (restos) Fitfagos
HydroptilidaeAlgas
filamento-sas, piedras
LimnfilosAlgas
filamentosasFitfagos
HydropsichidaeSustrato
duroRefilos
Restos finos,algas
microscpicasDetritvoro
PhilopotamidaeSustrato
duroRefilos
Algas (finos restosorgnicos9
Detritvoro
Polycentropo-tamidae
Sustrato dur,ramas
Refilos Invertebrados Predador
Psychomyiidae
Sustratoduro,
maderasumergida
Refilos Micrfitos Fitfagos
EcnomidaeSustrato
duro,vegetacin
Limnfilos - Fitfagos
Phryganeidae Macrfitos LimnfilosInvertebrados y
macrfitosPredador
BeraeidaeRaices,musgos,detritus
Limnfilos algas Fitfagos
limnephilidaeArena,crenon
Refilos vegetales Fitfagos
ORDEN HIMENPTEROS
FAMILIAS BIOTOPO CORRIENTE ALIMENTO NUTRICIN
Agriotypidae Tricpteros Indiferente segnsus huspedes
Segn sushuspedes
Colector
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ORDEN DPTEROS
FAMILIAS BIOTOPO CORRIENTE ALIMENTO NUTRICIN
Tipulidae
Sedimentosde maderacubiertosde agua
Limnfilos Restos vegetales Colector
AthericidaeSustrato
duro,macrfitos
Refilos Invertebrados Colector
LimoniidaeSediment
os demadera
RefilosOligoquetos,Inverebrados
Colector
Anthomyidae Macrfitos RefilosOligoquetos,
chironomidae,invertebrados
Colector
Culicidae
Fondoslimosos,aguas
estancadas
LimnfilosRestos finos,
microfloraColector
SimuliidaeSustrato
duro,macrfitos
RefilosFlora microscpica,
restos finosColector
ChironomidaeSustrato
duro,macrfitos
Limnfilos Refilos Microinvertebrados,algas, restos finos Colector
CeratopogonidaeArena,gravas
Limnfilos Restos orgnicos Detritvoro
EmpididaeSustrato
duro,macrofitos
RefilosSimuliidae,
invertebradosColector
TabanidaeArena,gravas
Refilos Invertebrados Colector
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ORDEN HETERPTEROS
FAMILIAS BIOTOPO CORRIENTE ALIMENTO NUTRICIN
CorixidaeMacrofitos,potamon
Limnfilos Algas, restos Predador
NaucoridaeMacrfitos,
aguasestancadas
Limnfilos Invertebrados predador
NotonectidaeAguas
estancadasLimnfilos Invertebrados Predador
Nepidae
Aguas poco
profundasestancadas Limnfilos
Invertebrados,
pequeos peces Predador
MesoveliidaeVegetacinde ribera
Limnfilos Invertebrados predador
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8.2. TABLAS DE TAXONES INDICADORES DE IBGN.
Lista de los 138 taxones ut ilizados para la determinacin del IBGN
INSECTES
PLCOPTRESCapniidae
ChloroperlidaeLeuctridae
NemouridaePerlidae
PerlodidaeTaeniopterygidae
TRICHOPTRESBeraeidae
BrachycentridaeEcnomidae
GlossosomatidaeGoeridae
HelicopsychidaeHydropsychidae
HydroptilidaeLepidostomatidae
LeptoceridaeLimnephilidae
MolannidaeOdontoceridaePhilopotamidaePhryganeidae
PolycentropodidaePsychomyidaeRhyacophilidae
SericostomatidaeThremmatidae
PHMROPTRESBaetidae
CaenidaeEphemerellidaeEpherneridaeHeptageniidae
LeptophlebiidaeOligoneuriidaePolymitarcidaePotamanthidae
ProsopistomatidaeSiphlonuridae
HTROPTRESAphelocheiridae
CorixidaeGerridaeHebridae
HydrometridaeNaucoridae
NepidaeNotonectidaeMesoveliidae
PleidaeVlildae
COLOPTRESCurculionidae
DonaciidaeDryopidaeDytiscidaeEubriidaeElmidae
GyrinidaeHaliplidaeHelodidae
HelophoridaeHydraenidaeHydrochidae
HydrophilidaeHydroscaphidae
HygrobiidaeLimnebiidaeSpercheidae
DIPTRESAnthomyidaeAtheric idae
BlephariceridaeCeratopogonidaeChaoboridae
ChironomidaeCulicidaeDixidae
DolichopodidaeEmpididaeEphydridaeLimoniidae
PsychodidaePtychopteridae
RhagionidaeScatophagidaeSciomyzidaeSimuliidae
StratiomyidaeSyrphidaeTabanidae
ThaumaleidaeTipulidae
ODONATESAeschnidae
CalopterygidaeCoenagrionidae
CordulegasteridaeCorduffidaeGomphidae
LestidaeLibellutidae
Platycnemididae
MGALOPTRESSialidae
PLANIPENNESOsmylidaeSysyridae
HYMNOPTRES
LPIDOPTRESPyralidae
CRUSTACS
BRANCHIOPODES
AMPHIPODESGammaridae
ISOPODESAsell idae
DCAPODESAstacidaeAtyidae
Grapsidae
Cambaridae
MOLLUSQUES
BIVALVESCorbiculidaeDreissenidaeSphaeriidaeUnionidae
GASTROPODESAncylidaeBithyiridae
BythinellidaeHydrobiidaeLimnaeidae
NeritidaePhysidae
PlanorbidaeValvatidaeViviparidae
VERS
ACHTESErpobdellidae
GlossiphonfidaeHirudidae..
PiscicolidaeTRICLADES
DendrocoelidaeDugesitdaePlanaffidae
OLIGOCHTES
NMATHELMINTHES
HYDRACARIENS
HYDROZOAIRES
SPONGIAIRES
BRYOZOAIRES
NMERTIENS
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8.3. TABLA TAXONMICA CRUZADA
Valores de IBGN segn la naturaleza y la variedad taxonmica de la
macrofauna
Clase de variedad 14 13 12 11 10 9 8 7 6 5 4 3 2 1
Taxonest
2> 49 44 40 36 32 28 24 20 16 12 9 6 3
GI 50 45 41 37 33 29 25 21 17 13 10 7 4 1
ChloroperlidaePerlidae.....Perlodidae
Taeniopterygidae
9 20 20 20 19 18 17 16 15 14 13 12 11 10 9
CapniidaeBrachycentridae
OdontoceridaePhilopotamidae
8 20 20 19 18 17 16 15 14 13 12 11 10 9 8
LeuctridaeGlossosomatidae
Beraeidae......Goeridae
Leptophlebiidae
7 20 19 18 17 16 15 14 13 12 11 10 9 8 7
NemouridaeLepidostomatidaeSericostomatidae
Epherneridae
6 19 18 17 16 15 14 13 12 11 10 9 8 7 6
HydroptilidaeHeptagenildaePofymiTARcidaePotamanthidae
5 18 17 16 15 14 13 12 11 10 9 8 7 6 5
LeptoceridaePolycentropodidae
PsychomyidaeRhyacophilidae
4 17 16 15 14 13 12 11 10 9 8 7 6 5 4
Limnephilidae 1)HydrapsychidaeEphemerellidae1)Aphelocheiridae
3 16 15 14 13 12 11 10 9 8 7 6 5 4 3
Baetidae 1)Caenidae 1)Elmidae 1)
Gammaridae 1)Mollusques
2 15 14 13 12 11 10 9 8 7 6 5 4 3 2
Chironomidae 1)Asell idae 1)
AchtesOligochtes
1 14 13 12 11 10 9 8 7 6 5 4 3 2 1
1) Taxones representados para menos de 10 individuos Los otros paramenos de 10 individuos.2) t Sumatorio de t
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8.5. ESQUEMA DE LAS ESTACIONES DEL RIVERA DEL HUEZNAR
Estacin n6
7 m
1
7
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Estacin n6
7
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