JORNADA DE CAPACITACIÓN EN SALUD PORCINA
Gustavo C. Zielinski, Med. Vet., MS, PhDSanidad animal, EEA Marcos Juárez
Proyectos “Enfermedades de la producción porcina”“Incremento de la productividad porcina”“Producción sustentable de ganado porcino”
Generalidades: nuevos conceptos en Salud porcina (¿cambios en los paradigmas?)
• Complejos (PRDC, PCVAD)
• Erradicación de enf-complejos (Auj, Resp.)
• Bioseguridad• Seguridad alimentaria• Evaluación del riesgo• Flujo de los animales• Pruebas clínicas• Verificación de procesos• Entrenamiento de RRHH
especializados
• Enfermedad
• Tratamiento, vacunación• Estab. extensivos• Trichinella• ???????• ????• Brucelosis, Auj. (?)• Registros (?)
• Generalistas
Principales afecciones infecciosas según categoría
• Lactancia– Diarrea neonatal
• Recría– Diarrea posdestete (E. coli)– Infecciones sistémicas (S. suis y H. parasuis)
• Desarrollo– Diarreas
• Ileitis• Salmonelosis
– Complejo respiratorio– PCVAD (PMWS, circovirus)
• Terminación– Complejo respiratorio– Diarreas
• Espiroquetosis• Disentería• Salmonelosis
– PCVAD (PDNS)• Pie de cría
– Brucelosis– Aujeszky– Parvovirosis– PCVAD
Argentina libre de PRRS. En duda: Influenza
Diarrea neonatal
• Procesos entéricos que producen diarrea en lechones hasta 10 días de edad
• Agentes etiológicos implicados Frecuencia– Escherichia coli +++– Rotavirus ?– Isospora suis +– Cl. perfringens tipos A y C ?– Clostridium difficile +
Diarrea neonatal por E. coli
• Multifactorial– Higiene Presión de infección– Alimentación madres Producción calostro– Calostrado Transferencia 6-12 horas PN– Temperatura Frío aletargamiento ingesta calostro– Ambiente (campo vs. confinamiento)
• Transmisión fecal-oral• E. coli etiología primaria + virus (Rotavirus) (o
viceversa)
Escherichia coli: factores de virulencia
• Pili– K88(F4), K99(F5), 987P(F6), F41, otros
• Antigénicos, no inmunidad cruzada
• Toxinas– LT, STa, STb, citotoxinas (Shiga-like,
VERO, Vt1, Vt2, otras)• + antigénicas, no inmunidad cruzada
• Cápsula– LPS
Síntomas y lesiones
• Hallazgos clínicos– Diarrea acuosa muy abundante– Deshidratación, acidosis, muerte– A VECES, colapso y muerte sin diarrea
• Lesiones – Distensión de int. delgado, color amarillento,
contenido mucoide, congestión vascular mesentérica.
– Colon similar– Porción fúndica del estomago hiperémica
Diagnostico
• Obvio• Laboratorio
Muestra:Int. Delgado
Hisopado rectal
E. coli
Sensibilidad antibiótica
Patotipo
STa, F4, F5, F4 + F5, F6, F6 + F41STa + STb F4, F4 +F5LT + STb F4, F4 + F6LT + STa + STb F4, F4 + F6STb F4, F6, no conocidos
Diagnostico diferencial
• Clostridiums– Tipo C: sanguinolenta, hiperaguda, alta letalidad– Tipo A: baja mortalidad, parecida a la E. coli: cultivo o tinción
de MF con Giemsa• Rotavirus
– Mic. Electrónica Centros de alta tecnología– ELISA antígeno Caro
• Isospora suis– Coproparasitológico– Histopatológico
• Cl. difficile– Histopatológico– Detección toxinas
Tratamiento
• Fluidoterapia• Antibióticos
– Antibiótico % de aislam sensibles (Quebec, 1994-96, Enf. cerdos)– Ampicilina 46– Apramicina 79– Ceftiofur 92– Enrofloxacina 100– Espectinomicina 41– Gentamicina 63– Tetraciclina 7– Tiamulina 5– Sulfa-trimetroprim 71
• Esquema de aplicación– Brotes agudos
• Madres 1 día pre-parto• Lechones: al nacimiento
• ¡CUIDADO CON LAS DISBACTERIOSIS Y LA GENERACIÓN DE RESISTENCIA!!!!!!!!!!!!!
Prevención• Vacunación
– Cachorras primíparas: 45 y 15 días pre-parto– Multíparas: 1 dosis 15 días pre-parto
• Bacterinas comerciales– Litterguard LT-C (F4, F5, F41, tox. Clost)– Suvaxyn EC (F4, F5, F41)– Etc.
• Bacterinas autógenas– Buen concepto teórico
» ¿Elaboración? ¿aislamiento con atributos de virulencia?
• Manejo de la higiene y ambiente– Confinamiento
• Establecer protocolos de higienización de instalaciones y cumplirlos• Controlar la temperatura, atención de partos, ambiente de la maternidad
– A campo• Remover la cama y lugar de localización de las parideras• Limpieza de comederos y bebederos
Diarreas pos-destete
• Causas predisponentes– Cambio de la dieta
• Proteína animal Proteína vegetal Potencial cambio de la flora Proliferación bacteriana anormal Patógeno
– Temperatura• Ideal: 30ºC a los 21 días
– Frío: cambio brusco
• Etiología– E. coli
• Lt, F4, F5 Diarrea• Vt1, Vt2, F18 Diarrea, enf. de los edemas
– Lawsonia intracelullaris (ileitis)
DIARREA
Diagnostico (sospecha E. coli)
Historia, síntomas y lesiones
Muestra:Intestino delgado
Escherichia coli β hemolítico
Siembra
Mc Conkey Agar Sangre
Sensibilidad antibiótica
Tratamiento y control
• Difícil el tratamiento del brote• Acostumbramiento pre-destete a la dieta
– Adición de suplementos dietarios• Oxido de Zinc (prohibido por cuest. ambientales CE)• Ácidos orgánicos
• Antibiótico preventivo a sucesivos destetes– 48 hs antes– 24-48-72 hs después
• No hay vacunas en el país
INFECCIONES POR Streptococcus suis y Haemophilus parasuis
Patologías ¿nuevas? ¿viejas? ¿emergentes? ¿re-emergentes?Sistemas intensivos vs. extensivos“All in-all out”Destete precozMas evidentes en manejos intensivos, aumento de la densidad animal
Colonizadores tempranos !!!!
Vías de entrada y transmisión
• Directa– Vertical
• Cerda canal del parto camada– Calostro: inmunidad protectiva lechones protegidos bajo %
de infectados eliminadores– Serotipos patogénicos o no patogénicos
– Horizontal• Mezcla de animales
– Destete, desarrollo– Acopiadores
• Indirecta– Fomites– Resistentes en el ambiente
• FLORA NORMAL
Consideraciones etiopatogénicas
• Streptococcus suis– 32 serotipos capsulares diferentes
• 1, ½-9, 14 patógenos, pero variables• No reaccionan inmunologicamente en forma cruzada• Existencia de portadores sanos
• Haemophilus parasuis– 15 serotipos conocidos
• Muy alta virulencia: 1, 5, 10, 12, 13, 14.• Alta virulencia: 2, 4, 15.
• Baja virulencia o avirulentos: 3, 6, 7, 8, 9, 11.
INFECCIONES POR Streptococcus suis y Haemophilus parasuis
• Producen
Meningitis Artritis Pericarditis Pleuritis Peritonitis
Encefalitis Endocarditis
Poliserositis
Diagnóstico
• Presuntivo: Signos clínicos y lesiones macro (Gottschalk, 2002).• Definitivo
* Signos clínicos compatibles* Aislamiento
*órganos blanco*cultivos puros o netamente preponderantes
* Serotipificación• Diferencial:
* Otras causales de poliserositis (erisipelas, Mycoplasma hyosinoviae), de muerte súbita (pseudorabia, intox. por sal) , de enf. septicémicas (salmonelosis)
None particularly obvious. Meningeal congestion and tags are suspicious but most veterinarians examine so few brains it would be difficult for them to differentiate between the normal range ofmeningeal changes.
Lesiones macroscópicas
Diagnostico (cont.)
• Toma de muestras– Streptococcus: LCR, encéfalo, liq. sinovial, hígado, bazo,
pulmón– Haemophilus: liq. pericárdico, hisopado pleural, pulmón,
encefalo• Serología
– No existen pruebas serológicas para uso granjas convencionales
– Haemophilus: ELISA especie especifico para núcleos genéticos
Control y prevención
• Manejo– Evitar el “stress”
• Cambios de categoría traslados• Densidad animal• Mezcla de grupos
• Terapia antibiótica– Inyectable individual– Metafiláctica en ración o agua
• Terapia de choque ante cambio de categoría
• Vacunación– Bacterinas comerciales– Bacterinas autógenas
Sensibilidad de Streptococcus suis aislados en brotes de Argentina(INTA-Marcos Juárez, 1995-2007)
14/162/16Oxitetraciclina
16/16Lincomicina
13/163/16Eritromicina
13/163/16Tilmicosin
6/1610/16Sulfamet-trim.
1/1615/16Enrofloxacina
1/1615/16Ampicilina
16/16Florfenicol
16/16Gentamicina
16/16Ceftiofur
ResistenteIntermediaSensibleDroga
3/112/116/11Sulfa-trimet.
11/11Oxitetraciclina
11/11Florfenicol
11/11Gentamicina
11/11Spectinomicina
11/110/11Lincomicina
10/111/11Eritromicina
10/111/11Tilosina
11/11Tilmicosina
11/11Ampicilina
11/11Ceftiofur
7/115/11Enrofloxacina
ResistenteMedianamente sensible
SensibleAntibióticoSensibilidad
Sensibilidad antibiótica de los aislamientos de H parasuis(INTA M. Juárez, 2006-2008, no publicado)
Susceptibilidad a los antibióticos de aislamientos de H. parasuisdel Laboratorio de Diagnostico Veterinario, Univ. de Minnesota
J. Swine Health and Production, 15(2) 99-103, 2007
Vacunación
– Bacterinas comerciales• No existen para S. suis• Serotipo especificas para H. parasuis
– Suvaxyn Respifend MH/HPS (sero. 4 y 5)– No se conocen los serotipos prevalentes.
– Bacterinas autógenas• Ventajas:
– Cepas autóctonas de la granja• Desventajas:
– Aislamiento certero del agente patogénico– Serotipificación dificultosa– Elaboración correcta
Generalidades
• Cuidado con los cambios de genética.
• Ante un brote: medicación, aislamiento bacteriológico y elaboración de bacterina autógena
Cuadros digestivos en recría-terminación: enteropatía proliferativa y salmonelosis
• Enteropatía proliferativa– Etiología: Lawsonia intracelullaris
– Vía de entrada: oral• Animales portadores inaparentes: reposición, cachorros
– Dos presentaciones principales:• Adenomatosis intestinal: curso agudo a crónico lechones 6-20
semanas. Diarrea variable, pérdida de estado corporal. Necropsia: engrosamiento de la pared del ileon
• Enteropatía hemorrágica: curso agudo, animales mayores, alta mortalidad. Muerte súbita, diarrea hemorrágica. Necropsia:engrosamiento pared ileon terminal y colon, presencia de coágulos.
Diagnostico
• Necropsia– Histopatología: muestras ileon en formol al 10%
• Serológico– IFI: permite conocer prevalencia y dinámica de infección– ELISA: mas sensible y especifico.
• Bacteriológico– Cultivo no es posible– PCR de materia fecal
• Diferencial– Diarreas pos-destete, disenterias por B. hyodisenteriae y
pilosicoli, salmonelosis
Enteropatía proliferativa: tratamiento y control
– EP aguda en granjas libres de sintomatología• Medicación en ración durante 14 días: Tiamulina 120 ppm; tilosina
100 ppm, clortetraciclina 400 ppm
– Reposición de stock en granjas infectadas• 1ro:Acostumbramiento de animales por contacto• 2do: esquema anterior para evitar sintomatología
– Control de sintomatología en granjas endémicas• Medicación continua: tiamulina 50 ppm; clotetraciclina 200ppm;
lincomicina 110 ppm;
– Drogas ineficaces• Neomicina, gentamicina, apramicina, bacitracina, salinomicina
Vacunación
• Vacuna viva atenuada (Enterisol Ileitis® BoheringerIngelheim)– Liofilizada– Administración:
• A lechones a partir de 3 semanas (flujo continuo)• Mas grandes dependiendo dinámica de infección (múltiples
sitios)– En agua de bebida o dosificación individual– Sin administración de antibióticos 3 días antes y
después de vacunación– No impide la infección, pero mejora los parámetros
productivos
Salmonelosis• En cerdos: principal causal de zoonosis en Europa y
USA
• Categorías afectadas– Cachorros desarrollo-terminación
• Etiología– Salmonella cholerasuis– Salmonella typhimurium– Otros serotipos
• Curso clínico– Septicémica– Enteritis aguda– Enteritis crónica
• Lesiones– Septicémica: hemorragias submucosas y subserosas– Aguda: enteritis mucoide a seudomembranosa– Crónica: necrosis del ciego, ulceras, linfoadenomegalia
DiagnosticoHistoria, edad
Lesiones sospechosas
Muestras:GLM, hígado, bazo
Cultivo bacteriológico
Positivo
Sensibilidad antibiótica Serotipificación
Diagnóstico diferencial de la enterocolitis producidas por Salmonella typhimurium y Lawsonia
intracellularis según las características de la materia fecal
Idemanterior, hasta con sangre
+ (ID) forma EN
-+ (ID) forma EPHEnteropatíaproliferativa
Semisólida sin sangre
+++ (ID/IG)Salmonelosis
ConsistenciaFibrina (ID/IG)
Mucus (IG)
Sangre (ES/ID/IG)
Entidad
ES: estomago; ID: int. delgado; IG: int. grueso; EPH: enteropatía hemorrágica; EN: enteropatía necrótica
2/20/2Estreptomicina6/82/8Oxitetraciclina2/31/3Florfenicol2/53/5Cloranfenicol3/30/3Spectinomicina3/30/3Tilmicosin4/81/83/8Ampicilina1/43/4Ceftiofur
1/71/75/7Sulfa-trimetroprim
0/66/6Gentamicina
0/66/6Enrofloxacina(cipro)
ResistenteSens. Intermedia
SensibleAntibiótico
Sensibilidad antibiótica de una serie de 8aislamientos de S. typhimurium ( INTA Ms Juarez, no
publicado)
Tratamiento y control
• Medidas de higiene y desinfección• Administración prolongada de antibióticos en
ración e inyectables• Reposición de animales de establecimientos
libres• Erradicación difícil
Disenterias porcinas (Brachyspirahyodisenteriae y B. pilosicoli)
• Perdidas graves en invernaderos
• Afecta a desarrollo y terminación
• Diarreas mucofibrinosas con estrías de sangre
• Lesiones localizadas en Intestino grueso: colon y ciego.(Importante para diferencial)
• Diagnostico: lesiones características. Cultivo: difícil. PCR: posible
• Tratamiento: Antibióticos inyectables, en agua o ración: clortetraciclina- tiamulina, lincomicina, tilosina.
• Posible erradicación: todo adentro-todo afuera, limpieza, antibióticos continuados por un cierto tiempo.
Circovirus (PCVAD, porcine circovirus associated diseases)
• Asociado a múltiples síndromes:– SMDP (PMWS) síndrome multisistémico de
desmejoramiento porcino– SDNP (PDNS) Síndrome de dermopatía y
nefropatía porcina– CRP (PRDC) complejo respiratorio porcino– Fallas reproductivas– Enteritis granulomatosa– Linfadenitis necrotizante– Temblores congénitos ?
Circovirus
• Epidemiología– 1ra descripción en Canadá, 1991– En todo el mundo, 1996– En Argentina, 2000, 1ra comunicación escrita, 2002
(Sarradell y cols)– Recién 2001 se cumplen los postulados de Koch– 98% de las granjas del Mundo INFECTADAS con PCV 2– Hay granjas CON infección, SIN enfermedad– Se transmite HORIZONTALMENTE x contacto directo e
indirecto– Anticuerpos calostrales protectores– Virus ADN, MUY RESISTENTE en el ambiente y
desinfectantes
Patogenia del circovirus (L.Batista, 2008)
Diferencias encepas PCV2
Coinfecciones Estimulación inmune Susceptibilidadhuésped
PCV2
PCV2
Infección tejidolinfoide
Depleción linfoide +Reemplazo histiocitico
Viremia alta y leucopenia
Seroconversión +
Dispersión sistémica
Sintomatología clínica
Viremia baja
Seroconversión +
Libre de infección
Subclínica
70-80 % letalidad
5-20%
Signos clínicos y lesiones macroscopicas
• PMWS=SMDP sindrome multisistemico de desmedro porcino– En lechones posdestete: 6 semanas en adelante– Enflaquecimiento progresivo– Anemia– Ictericia– Diarrea– Sintomatología respiratoria– Ganglios linfáticos hipertroficos y congestivos (inguinal sup.)– Ulceras gástricas– Neumonía intersticial– Nefritis
Signos clínicos y lesiones macroscopicas
• SDNP: síndrome de dermopatia y nefropatia porcina– En animales de mas edad 14 semanas en adelante– Lesiones cutaneas– Frecuentemente muerte– Menor prevalencia que el PMWS
Diagnostico
• Existe un criterio a cumplir:– Signos clínicos compatibles– Lesiones macroscópicas compatibles– Lesiones microscópicas compatibles– Visualización del agente (IHQ, IF, etc)
Control
• 20 puntos de Madec (Investigador francés especialista en cerdos)– Maternidad
• 1 todo adentro-todo afuera, lavado, desinfectado• 2 Lavar y desinfectar a las hembras antes de entrar, control
parásitos• 3 Evitar transferencias o hacerlas antes de 24 hs
– Destete• 4 Uso de corrales con paredes solidas, no mas de 20/corral• 5 Todo adentro todo afuera, lavado, desinfección entre partidas• 6 Correcta densidad animal (0.38 m2 lechón)• 7 Correcto espacio en comederos ( + de 7 cm/lechón)• 8 Buena ventilación• 9 Correcta temperatura• 10 No mezclar edades en los corrales
Control
• 20 puntos de Madec (cont.)– Engorde
• 11 Uso de corrales pequeños (mismos de engorde ideal)• 12 Todo adentro-todo afuera, lavado y desinfección• 13 No mezclar animales del destete• 14 No mezclar animales de distintos grupos de engorde• 15 Evitar altas densidades (0.85 m2/cerdo)• 16 Controlar temperatura y ventilación
– Adicionalmente• 17 Programa de vacunación apropiado• 18 Respetar medidas de bioseguridad internas y externas• 19 Higiene estricta (agujas, jeringas, botas, escobas, etc)• 20 Eliminar de la línea cerdos sintomáticos (a enfermería o sacrificio)
2Diluvactocopherol
Capsido viralLechónPorcilisPCV
Intervet
1SL_CDacuoso
Inactivada + agrecombinante
PCV1 y 2
Lechón + de 4 semanas
SuvaxynPCV2 One
Dose
Fort Dodge
1Polímero acuoso
Capsido viralLechones 3 semanas
IngelvacCircoflex
Boehringer* Ingelheim
2 + refuerzo
Aceite mineral
PCV2 InactivadaMadresCircovacMerial*
Nº de dosis
AdyvanteTipo de vacuna
Administración a:
NombreLaboratorio
Vacunación
* En proceso de registro en el País !!!!!!!
Vacunación contra circovirus
Eficacia de la vacunación (?)
Otras alternativas de control
• “Suero-terapia”– Inyección de suero hiperinmune a PCV2 a lactantes– Resultados inciertos– Inoculación inmediatamente antes de la viremia
• Inoculación de autovacunas– Licuado, filtrado e inactivado de ganglios linfáticos de
animales enfermos– Material debe tener alta carga viral (?)– Dificultades para la inactivación viral (¿transmisión de enf?)– A veces buenos resultados (¿Cómo se evalúan?)
Neumonía enzoótica porcina (NEP)
Mycoplasma hyopneumoniae
Epidemiología: Vías de transmisión
• Vía directa: – Contacto cerdo a cerdo
• Madre a lechón– Excreción en la cerda es paridad dependiente
• Entre cerdos de la misma edad– Transmisión horizontal muy eficiente
• Mezcla de diferentes edades– Idem concepto anterior
Epidemiología: Vías de transmisión
• Vía indirecta– Aire (?) 3,2 km?
• Dependiente de área geográfica, condiciones climáticas, etc. Concepto relativo.
– Objetos infectados• Personas, vehículos, utensilios.• Consideraciones en cuanto a bioseguridad
Epidemiología: formas de presentación
• Diferente presentación en:– Un sitio/flujo continuo presentación temprana– AI/AO un sitio presentación tardía (¿aguda?)– Tres sitios y multisitios idem anterior
• Dependiente de:– Prevalencia de la infección al destete– Nivel de inmunidad materna
Presión de infección al destete
Diagnóstico: objetivos y métodos
• Conocer la etiología de la enf. respiratoria– Sintomatológico: tos– Anatomopatológico
• Cualitativo: necropsia, histopatología, IFD.– Bacteriológico: cultivo (M hyop. muy difícil), PCR.
• Evaluar el impacto productivo en la granja– Anatomopatológico
• Cuantitativo (?): inspección en frigorífico
• Contribuir a la planificación del programa de control– Serológico: ELISA
Obtención de score neumónico anteroventral
Score Severidad0 Ausente1-14 Media15-29 Moderada30-55 Severa
Cuantitativo: Evaluación de lesiones en tropas (inspección de faena)Evaluación del impacto productivo de la NEP
Inspección en frigorífico: planilla resumen de datos
Manchas leche
Ot.PericardOtrosAbscesoPleuritisPleuropneumScore micoplasma
HHíígado gado CorazCorazóón n PulmonesPulmonesCatCat..
1
5
2
Score total pulmón derecho: 8
6
8
2
Score total pulmón derecho: 16
1) Scores neumónicos de lesiones anteroventralesScores mayores a 15 podrían significar perdidas económicas por retraso de crecimiento(Vet. Diagn. Lab., Iowa State University)
9.89,21230-557.316915-295542,7681-142632320
HoyAnterior (15-2-07)
Porcentaje animalesNumero/total animales
Scores
2) Resultados inspección para pleuroneumonía, pleuritis, abcesos pulmonares, pericarditis,manchas de leche en hígado.
-----Severa--1--Moderada--52-Leve
Manchas de leche
PericarditisAbcesoPleuritisPleuropneumoniaCantidad de animales afectadosSeveridad
Variación estacional de los scores neumónicos en frigorífico
010203040506070
Nov. ´06 Feb. ´07 Junio ´07
Fecha Inspección
% a
nim
ales S/L
LeveModeradaSevera
Contribuir a la planificación de los programas de control
• Serología– Fijación del complemento (no se usa)– ELISA
• Idexx• Dako• Hipra
– Determinación de perfiles serológicos» Tasas de prevalencia intrapredial» Dinámica de la infección intrapredial
Perfil serológico granja A (Casilda)
0
5
10
15
20
25
Adultas Recría Desarrollo
n an
imal
es
Positivos
Sospechosos
Negativos
Perfil serológico granja B (Laspiur)
0
2
4
6
8
10
12
Cach. 1erparto
Cach.2do
parto
Adultas Destete Destetegrande
Cach. 4meses
Gordos
n an
imales
Positivos
Sospechosos
Negativos
Perfil serologico granja C (Chivilcoy)
02468
10121416
Hembras 10 sem 14 sem 20 sem 23 sem
n an
imal
es Positivo
Sospech.
Negativo
Perfil serológico de la línea de producción Granja D (Corral de Bustos)
0
1
2
3
4
5
6
48 d 68 d 76 d 90 d 105 d 142 d 150 d 165 d
Positivos
Sospech.
Negativos
Estrategias de control de la NEP
• Modificar los factores de manejo, ambientales y nutricionales que obran como predisponentes.– Enfermedades “accidentales”– Enfermedades enzoóticas
• Manejo de “LA VACUNA” tratando de estabilizar inmunologicamente el pie de cría y la línea de producción.
• Medicación estratégica– Fluoroquinolonas, ceftiofur, tilmicosin, clortetraciclina.– ¡¡¡¡¡¡¡Ayudan a eliminar contaminantes secundarios!!!!!!
Algunas propuestas (+ ó – racionales)Fuente: Dr. Edgar Diaz, Boheringer Ingelheim
1) Vacunación de hembras pre parto sin vacunación de la línea– Reduce los índices de prevalencia al destete
• Para granjas con sitios múltiples• Sin riesgo de transmisión horizontal• Con grandes medidas de bioseguridad (personal,
utensilios, etc)
Algunas propuestas (+ ó – racionales)Fuente: Dr. Edgar Diaz, Boheringer Ingelheim
2) Vacunación de hembras pre parto y lechones 5-6 semanas– Granjas con severos problemas clínicos.– Programa para granjas con flujos continuos
3) Vacunación temprana de lechones sin vacunación de hembras– Granjas con bajos índices de prevalencia al destete
y altos índices de estabilidad inmunológica del pie de cría.
Algunas propuestas (+ ó – racionales)Fuente: Dr. Edgar Diaz, Boheringer Ingelheim
4) Vacunación temprana de lechones CON medicación de hembras– Reduce la transmisión hembra-lechón
• Por tanto reduce prevalencia al destete– Reduce la circulación en la línea
– Exige medidas de bioseguridad– Altos costos
Algunas propuestas (+ ó – racionales)Fuente: elaboración propia
5) O una combinación de las anteriores a la medida de cada granja, en cada situación particular y de acuerdo a las metas de productividad que le sean adecuadas.
PLEURONEUMONIA INFECCIOSA
Pleuroneumonía por App: actualización epidemiológica, serotipos actuantes en Argentina (Gottschalk, 2005, com. personal)
SiSiI15
NoNoII14NoNoII13SiSiI12
NoNoI11
NoSiI10NoNoI y II9SiSiI8
SiSiI y II7
NoSiI6SicSiI5b
SicSiI5ª
NoSiI y II4
SiSiI3NoSiI y II2
SiSiI1
ArgentinaUSA yCanadáBiotipoSerotipo
Ninguno12
Ninguno10
Ninguno5
74
6, 8 y 153
Ninguno2
9 y 111
Reacciona cruzadamente conSerotipo
Reacción inmunológica cruzada entre serotipos
XXX15
XX12
XXX11
XX10
XXX9
XXX8
XX7
XXX6
XXX5
XXX4
XXX3
XXX2
XXX1
Especifica de App
-Hemolítica-++citotóxica
+ hemolítica+ citotóxica
++ hemolítica++citotóxica
ApxIVApxIIIApxIIApxI
Expresión de citotoxinas según serotipo(Bosse y cols, 2002, Blackall y cols, 2002)
Dinámica de la infección: transmisión
• Idem neumonía enzoótica• Contacto directo
– Madre-lechón: • anticuerpos calostrales protectivos• colonizadores tardíos pero lechón puede infectarse a partir de
los 11 días (bajo nº)• Seroconversión + en cachorros a partir de 12 semanas, pero
variable según manejo
– Entre cachorros• Mezcla de edades• Mezcla de serotipos
– Pueden coexistir mas de 2 serotipos distintos en la misma granja
Dinámica de la infección
• En granjas multisitio con producción en bandas o “todo adentro-todo afuera” la infección de las hembras condiciona la infección de la línea.
• En granjas de un solo sitio con flujo contínuo y producción en bandas la dinámica es similar a la anterior.
• En granjas de flujo continuo tradicionales, las hembras y el estado de infección de la línea es mas importante.
• En engordaderos la transmisión horizontal entre cachorros es determinante
Diagnóstico: objetivos, medios y métodos
• Diagnóstico clínico-patológico
• Diagnóstico etiológico– Bacteriología convencional– Separación inmunomagnética y cultivo
• Permite serotipificación– Manipulación genética
• PCR y variantes.– Permite identificación taxonómica y serotipificación.– Muy sensible apta en planteos de control de erradicación
• Diagnóstico serológico– Determinación de la dinámica de infección, contribuye a la vigilancia
y optimiza programas de control• ELISA
– Especie-específica anticuerpos contra toxina apxIV– Serotipo-específica anticuerpos contra # serotipos capsulares
Diagnostico clínico patológicoLesiones
Diagnostico bacteriológico: Bacteriología convencional
Manipulación genética: PCR y variantes.
05/07/07Pcr Apx OmlA. Extracción: CTAB.Muestras: OmlA S1, P 876 , P741-06M1, P741-06M2
Apx S1, P 876 , P741-06M1, P741-06M2Gel: 1%Resultados: OmlA: positivo. Serotipos: S1 positivo, P876: S3, P741-06M1, P741-06M2: S7
Ser. 1 Ser. 3 Ser. 7 Ser. 7
S1, P 876 P741-06M1, P741-06M2
Resultados preliminares: Determinación del serotipo de aislamientos autóctonos de App a través de la amplificación de fragmentos
génicos que codifican toxinas (Zbrun, Zielinski y cols. IX Cong. Nac. Prod. Porc. San Luis, 2008)
• Introducción– Cada serotipo o grupo de serotipos de App tiene un perfil de expresión de
toxinas propio.– Las diferentes toxinas están codificadas por genes que se pueden identificar
a través de la amplificación de secuencias propias y únicas (primers) de cada una.
• M & M– Se utilizaron aislamientos de App de brotes de pleuroneumonía los cuales se
identificaron por técnicas bacteriológicas convencionales– Se amplificaron primers de las distintas toxinas en un sistema de PCR
multiplex• Resultados
– De un total estudiado de 17 aislamientos de distintos brotes en distintas ubicaciones geográficas (Córdoba, Santa Fé, Bs Aires) se identificaron a
• 13 pertenecientes al serotipo 1, 9 ú 11• 2 pertenecientes al serotipo 7• 1 pertenecientes al serotipo 5• 1 perteneciente al serotipo 3
Diagnóstico serológico: diferentes ELISAs, ventajas y desventajas
• ELISA especie-específico – Idexx labs (ex Bommeli). Determinación de anticuerpos anti-toxina
ApxIV• Detecta portadores tonsilares• Una sola determinación para cada suero• No discrimina serotipos• No se conoce con exactitud la sensibilidad y especificidad
• ELISA serotipo-específico– Biovet labs (Canada). Determinación de anticuerpos anti-LPS de
cadena larga y exopolisacáridos• Test mas probado que el anterior• Permite determinar serotipo infectante• Cada suero debe ser procesado por 6 kits distintos ($$$$$ y
tiempo) para ser considerado NEGATIVO
Diagnóstico serológico: para que sirve?
• Determinación de existencia de infección subclínica– Ayuda a la vigilancia epidemiológica– Categorización de las granjas respecto al status-infección
enfermedad (Marsteller y Fenwick, 1999)
• Determinación de la dinámica de la infección– Contribuye a planificar programas de control– Contribuye a monitorear la marcha de esos programas
++IV-+III+-II--I
SerologíaSint. clínicaCategoría
Diagnóstico serológico: como combinar las distintas pruebas?
Muestra: no menos de 30 sueros/categoría
ELISA ApxIV
Negativos Positivos
ELISA Biovet
Negativos Positivos.Serotipos
Screening
Ejemplo: dinámica de infección por App en una granja en confinamiento total (Cat. I), partos semanales, AI/AO por
corral, subclínica
Virg. 1erparto
2doparto
3erparto
mas 3partos
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
% s
erop
ositi
vas
Reactividad de una cohorte de hembras contra toxina ApxIV de App, según nº ordinal de parto
0
20
40
60
80
100
% r
eact
oras
Ago-Dic. 0́4 n=4 Ene-Ago. 0́5 n=4
Reactividad serológica en cachorras de reposiciónPositivos
Sospechosos
Negativos
010
2030
40
5060
70
8090
% r
eact
ores
Julio 0́4 Setiembre 0́6
Reactividad serológica en recría (en periodo de enf. subclinica y clínica)
Positivo
Sospechoso
Negativo
0
20
40
60
80
100
% r
eact
ores
Destete Recría Terminación
Reactividad serológica de la linea de producción (Dic. 2005, enf. subclinica)
Positivo
Sospechoso
Negativo
0
20
40
60
80
100
% r
eact
ores
Jul-Dic ´04 n=5 Ene-Oct.´05 n=2 Set. ´06
Reactividad serológica en terminación (en período subclínico y clínico)
Positivos
Sospechosos
Negativos
18,5254412,5
% de sueros negativos a los
4 serotipos anteriores
% de sueros positivos a los serotipos 3, 6,
8 y 15
% de sueros positivos al serotipo 5
% de sueros positivos a los serotipos 1, 9
y 11
Reactividad serológica utilizando la prueba de ELISA serotipo-especifico(Biovet) en una cohorte de hembras positivas al ELISA ApxIV
Circulación de varios serotipos de App!!!????
End of story
• En Agosto de 2006 se aisló App serotipo 7 a partir de pulmones con lesiones necro-hemorrágicas muertos en granja. Total muertos con lesiones compatibles con App: 5 animales.
• En Febrero 2007 se aisló App serotipo 7 a partir de pulmones de frigorífico con lesiones de consolidación anteroventral
• En Abril de 2007 se repitió el aislamiento de esta especie en las mismas condiciones que en Febrero (frigorífico).
Tratamiento y control
• Brote agudo– Medicación metafiláctica
• Inyectable• Contínua en ración o agua
– Terapia de sostenimiento (AINE´s)– Manejo
• Situación endémica– Manejo– Medicación pulsátil
• Como continuación del esquema anterior• Terapia de choque
1189STM3466OTC0100GEN2575FFN2179SPC85411ERY496TIM1981AMP0100CEF34361ENR
Resisten.IntermediaSensible Droga%/total aislamientos
Sensibilidad antibiótica de una colección de aislamientosde campo (Zielinski, Zbrun y cols, IX Cong. Nac. Prod. Porcina, San Luis, 2008)
Prevención inmunológica: vacunas
• Convencionales– Bacterinas inactivadas y adyuvantadas– Serotipo especificas– Disminuyen mortalidad– Disminuyen índice lesional– Mejoran perfomance productiva– No impiden la infección– No impiden la enfermedad
• Nueva generación– Constituidas por subunidades bacterianas– Toxoides– Especie especificas– Mejoran perfomance productiva– No impiden la infección– No impiden la enfermedad
Parámetro Nivel normal Nivel deinterferencia
% madres enestro, 10 días
Pos-parto
90% 85%
Retorno al estroregular
4% 10%
Retorno al estroirregular
1% 2.5%
Diag. preñeznegativo
4% >4%
Abortos 1% 2.5%Tasa de parición 90% 85%
Enfermedades que afectan al pie de Cría
PARÁMETROS REPRODUCTIVOS NORMALES
Enfermedades que afectan al pie de Cría
PARÁMETROS REPRODUCTIVOS NORMALES (cont.)
Nacidosvivos/camada
10.5 10
Natimortos 5% 8%Momificados 0.5% 1%
<8lechones/camada
10% 15%
Nºdestet/camada
9.5 9
Mortalidadpredestete
8% 12%
Camadas/madre/año
2.2 2
Capones/madre/año
20 18
(Thacker, BJ. Current Therapy in Theriogenology, 1986)
Brucelosis: transmisión
• Eliminación durante parto o aborto infección vía oral
• Semen contaminado eyaculación intrauterina infección vía venérea
• A campo: fauna silvestre portadora: liebre, jabalí.
BRUCELOSIS: diagnóstico
• PRUEBAS DE LABORATORIO• Sangrado de los reproductores:• BPA →→(-) Negativo. Animal NEGATIVO • →→(+) Positivo→SAT• →2-Mercaptoetanol
• SAT 2-mercapto Animal• + + POSITIVO• + - NEGATIVO
BRUCELOSIS: control y prevención
• Eliminación de POSITIVOS
• Control serológico de NEGATIVOS
• Desinfección de instalaciones
• Control de la reposición
• BIOSEGURIDAD
ENFERMEDAD DE AUJESZKY
(PSEUDORABIA)
Transmisión de la enfermedad
Cerdo infectado eliminador
Cerdo susceptible: se infecta
Saliva, sec. nasales,orina, leche
Virus
Cama, agua, comederos, desperdicios
Cerdo susceptible: se infecta
Cerdo susceptible: se infecta
Gatos, perros, otros.Virus
Muerte
Enferma o no
Enferma o no
Enferma o no
Latencia
Latencia
Latencia
Síntomas de la enfermedad• Lechones recién nacidos y lactantes
– Falta de apetito, apatía, fiebre (41ºC)– Síntomas nerviosos (temblores, convulsiones, etc.)– Muerte
• Lechones destetados (3-9 semanas)– Falta de apetito, apatía, fiebre– Síntomas respiratorios, tos, descargas nasales– Síntomas nerviosos (temblores, etc.) con muerte o no.
• Cachorros recría-desarrollo-terminación– Síntomas respiratorios leves a graves (contam. 2rias)– Algunos con sint. nerviosos, baja mortalidad (1-2%)– Retraso en el crecimiento y engorde
• Adultos– Algunos síntomas respiratorios– En hembras: trastornos reproductivos
• Infección en 1 mes de gestación: muerte embrionaria• Infección 2 y 3 mes de gestación: aborto• Infección cercana al parto: lechones débiles, muerte 1-2 días pos-nacimiento
Diagnostico
• Clínico y por lesiones: poco confiable• Análisis complementarios en laboratorio
– Aislamiento e identificación del virus– Inoculación en conejo– Inmunofluorescencia en tejidos– Serología: análisis de los sueros é
identificación de anticuerpos• ELISA• Aglutinación en látex• Seroneutralización
ELISA
• NO para animales con síntomas agudos (aborto)
• NO para animales menores de 4 meses (anticuerpos maternos)
• SI para animales portadores asintomáticos (latentes)
• Animales vacunados ELISA diferencial• ELISA PRVgp1 lab. Bommeli, distribuido por
Biotay
• CONTROL– Eliminación de reactores positivos y/o
vacunación de todo el plantel reproductor.• PREVENCIÓN
– BIOSEGURIDAD• Ingreso de negativos• Barreras de contención• Personas• Fauna silvestre• Equipos y vehículos
ENFERMEDAD DE AUJEZSKY:CONTROL Y PREVENCION
Parvovirosis porcina
• Etiología: parvovirus porcino 2 (PPV-2)• Transmisión
– Muy resistente en el medio ambiente Transmisión fecal-oral
• Signos Clínicos– Adultos: inaparente– Cachorras: muerte embrionaria o fetal, repetición
de celos regular o irregular- Momificación, disminución nº nacidos vivos, a veces:
aborto
Parvovirosis porcina
Diagnostico• Fetos: inmunofluorescencia• Sueros madres: serología: inhibición de la
hemoaglutinación.– Verificar seroconversión
– Control y prevención• Acostumbramiento de la cachorra (inmunización
natural)• Vacunación pre-servicio: vacuna combinada
parvovirosis-leptospirosis