Post on 21-Dec-2015
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Incidencia de Mycoplasma meleagridis en pavos de engorda del rancho “El
trece”, así como su respuesta ante tratamientos con Tilosina y
Enrofloxacina.
Estrada Barrientos Ana Belen1, Jiménez Pacheco María Daniela 1, Pérez Ramírez Mariana1,
Navarro Hernández Nathalie1, Vara Ayala Saúl Alejandro1.
(1) Estudiante del módulo de Equilibrio de Nutrientes y Selección del Pie de Cría para Aves
comerciales correspondiente a la licenciatura de Medicina Veterinaria y Zootecnia en la
Universidad Autónoma Metropolitana, Unidad Xochimilco.
Resumen
La infección por Mycoplasma tiene un gran impacto económico en la industria
avícola de todo el mundo ya que afecta de un 5 a un 20% la producción, este es el
patógeno más común y de gran importancia dentro de toda la industria avícola en
general (Quiroz, 2007). La micoplasmosis puede ser producida por diversas
especies de Mycoplasma, incluidas las especies Mycoplasma gallisepticum, M.
synoviae , M. iowae, M. meleagridis; esta última es el agente patógeno más
importante, desde el punto de vista económico, en la producción de pavos
( Bradbury y Morrow, 2008). Las infecciones por este agente pueden causar
pérdidas económicas importantes por una enfermedad respiratoria crónica, que
afecta la conversión alimentaria, produce una disminución del crecimiento y
descenso de la producción de huevos, así como un aumento en el índice de
mortalidad. Las infecciones producidas por las diferentes especies de micoplasma
se conocen como micoplasmosis aviar, enfermedad respiratoria crónica (ERC) de
los pollos, sinusitis infecciosa de los pavos y conjuntivitis del pinzón mexicano
(The center for food security and public health, 2007), (Torres, et al.2010).
Los Mycoplasma causan enfermedad en los pollos, pavos, aves de caza como, los
faisanes, perdices de Chukar, codorniz común, codorniz japonesa y pavo real;
también se ha aislado de patos, gansos, loros de cuello amarillo del Amazonas,
palomas, flamencos rosados y halcones peregrinos salvajes en España. Su
distribución en hospederos es diversa y se encuentran en peces, reptiles, aves,
mamíferos y en el humano, por lo que es una zoonosis (Rivera, et al. 2001)
1
El objetivo del presente trabajo fue determinar la presencia de Mycoplasma
meleagridis en pavos de engorda presentes en Huitzilac estado de Morelos; así
como conocer la eficacia de diferentes tratamientos sobre la bacteria de
Micoplasma, utilizando un tratamiento con Tilosina (T1) y otro con Enrofloxacina
(T2).
Palabras clave: Micoplasmosis, Micoplasma meleagridis, tilosina, enrofloxacina, pavos.
Abstract
Mycoplasma infection has a great economic impact on the poultry industry
worldwide as it affects 5 to 20% of production, this is the most common pathogen
of great importance within the entire poultry industry in general (Quiroz , 2007).
The mycoplasma can be produced by various Mycoplasma species, including
Mycoplasma gallisepticum species, M. synoviae, M. iowae, M. meleagridis, the
latter is the pathogen most important from the economic standpoint in the
production of turkeys (Bradbury and Morrow, 2008). This agent infections can
cause major economic losses for chronic respiratory disease, affecting feed
conversion, a decrease of growth and decline in egg production and increased
mortality rates. Infections caused by different species of mycoplasma are known as
avian mycoplasmosis, chronic respiratory disease (CRD) of chickens, infectious
sinusitis of turkeys and finch conjunctivitis (The center for food security and public
health, 2007), (Torres, et al.2010).
The Mycoplasma cause disease in chickens, turkeys, and game birds, pheasants,
chukar partridge, bobwhite quail, Japanese quail and peacock has also been
isolated from ducks, geese, parrots yellow neck Amazon, doves, flamingos pink
and wild peregrine falcons in Spain. Distribution in diverse hosts is found in fish,
reptiles, birds, mammals and in humans, so it is a zoonosis (Rivera, et al. 2001)
The objective of this study was to determine the presence of Mycoplasma
meleagridis in fattening turkeys Huitzilac present state of Morelos, as well as
2
determine the effectiveness of different treatments on the bacterium Mycoplasma
using tylosin treatment (T1) and the other with Enrofloxacin (T2 ).
Keywords: mycoplasmosis, Mycoplasma meleagridis, tylosin, enrofloxacin, turkeys.
Introducción
La micoplasmosis aviar es una
enfermedad ampliamente difundida
en el mundo (Cerdá, 1999);
convirtiéndose en uno de los más
importantes problemas sanitarios que
afectan la industria avícola. Los
Micoplasmas son bacterias primitivas
que, de acuerdo con la especie
pueden afectar los sistemas
respiratorio, reproductivo y/o
locomotor, colonizan principalmente
el epitelio de la tráquea, las
membranas de los sacos aéreos y la
mucosa interna del oviducto (Torres,
2010).
Mycoplasma gallisepticum y
Mycoplasma sinoviae son las
predominantes en las explotaciones
avícolas comerciales de pollos y
gallinas; mientras que el Mycoplasma
meleagridis es considerado como el
más importante para la industria de
pavos (Pulido, 2012). Pueden
encontrarse en humanos, en aves
comerciales y silvestres, plantas e
insectos. Por lo general colonizan
superficies mucosas y la mayoría de
especies no son invasivas (Bradbury,
2008).
Los mycoplasmas son procariotes
muy pequeños, son bacterias muy
exigentes de 0.3-0.8 μm diámetro que
carecen de pared celular y que
solamente están rodeados por una
membrana plasmática, esta
característica los hace resistentes a
los antibióticos cuyo mecanismo se
basa en la eliminación de la pared
celular (Nieves, et al. 2010).
Necesitan un medio de crecimiento
rico en CO2 y que contenga suero.
Estas no sobreviven durante más de
unas horas fuera del hospedador y
son vulnerables a los desinfectantes
comunes (Manual Merck de
Veterinaria, 2007), se destaca la
acción de los fenoles y el formol.
3
La transmisión de este
microorganismo se puede presentar
en forma vertical y horizontal. Los
mycoplasmas son transmitidos
horizontalmente vía aerógena, por
contacto directo con otras aves o por
contacto indirecto a través de
personas, animales, alimento, agua,
fómites, etc. Verticalmente se
transmiten a través del huevo, con un
periodo de incubación que varía de 6
a 21 días. El huevo se contamina
después del desprendimiento de la
yema del ovario en la
fase migratoria por el oviducto
(Yamato y Ortmayer, 2005).
El principal problema con estas
infecciones de Mycoplasmosis es que
reduce la producción de huevo en un
10-25%, ocasiona una depresión en
la ganancia de peso de 10-20%, baja
el consumo de un 10-20%, aumenta
la mortalidad embrionaria de un 5-
10% y tiene una mortalidad del 5-10%
(SENASA, 2010), lo cual se traduce
en una pérdida económica por la
compra y uso de antibióticos, una
baja conversión alimenticia y en un
retraso en la economía del productor.
Una de las enfermedades más
frecuentes es la Enfermedad Crónica
Respiratoria Complicada (ECRC),
desencadenada por la presencia de
Mycoplasmas (Torres, 2010) y otros
agentes como Escherichia coli y
Estreptoccocus spp, presentes en las
excretas contenidas en las camas de
las instalaciones donde se crían los
animales, en el medio que los rodea y
a ello se suma el factor estresante
por manejo inadecuado (Villamar,
2006). Las aves infectadas son
portadoras de Micoplasma durante
toda la vida y pueden no presentar
síntomas hasta que sufren algún
estrés (Pulido, 2012).
Usualmente estas infecciones por
Mycoplasma varían desde subclínicas
hasta muy graves. Las infecciones
más graves se observan cuando las
aves se infectan simultáneamente de
el virus de la enfermedad de
Newcastle, él de la bronquitis
infecciosa, Escherichia coli (Torres,
2010).
Los animales infectados desarrollan
síntomas respiratorios como
estertores, estornudos, secreciones
nasales y disnea. Es ocasional la
presencia de conjuntivitis en aves
jóvenes. La producción se reduce por
4
disminución de peso, de la
conversión alimentaria y de la
producción de huevos (Acuña, 2012).
En los pavos generalmente se
presenta una forma grave de la
enfermedad, con frecuencia
acompañada de inflamación de los
senos paranasales (infraorbitales). Es
frecuente la presencia de conjuntivitis
con exudado ocular espumoso en los
pavos y ocasionalmente en los pollos
(Pulido, 2012), (Torres, 2010).
Los síntomas de la micoplasmosis se
desarrollan lentamente y el curso de
la enfermedad puede ser prolongado.
Las lesiones post mortem
generalmente en los pavos son
sinusitis mucopurulenta grave, con
traqueítis y aerosaculitis (Pulido,
2012).
Actualmente el principal exportador
de carne de pavo son los Estados
Unidos (EUA) con 319,000 toneladas
en el 2011, y que llegaron a 336,000
toneladas en 2012, aunque para 2013
se prevé una reducción a alrededor
de 313,000 toneladas. Las ventas a
México subieron 5% a casi 90,000
toneladas. Del total exportado, 78% o
129,000 toneladas fueron adquiridas
por solo cinco países: México, China,
Hong Kong, Canadá y Filipinas.
México por sí solo representó el 54%
(FAO, 2012).
Mundialmente México es el principal
importador de carne de pavo con
recibos de productos
frescos/congelados que alcanzaron
casi 195,000 toneladas en 2008.
Después de una fuerte caída en las
compras en 2009, las importaciones
han aumentado cada año y llegaron a
unas 164,000 toneladas a principios
de 2012 (FAO, 2012). Hasta el 2012
la producción de pavo en México fue
de más de 21 mil toneladas, según
estadísticas de Servicio de
Información Agroalimentaria y
Pesquera (SIAP), organismo de la
Secretaria de Agricultura, Ganadería,
Desarrollo Rural, Pesca y
Alimentación (SAGARPA). El pavo es
producido en 19 entidades de la
República Mexicana, principalmente
en los estados de Yucatán, con seis
mil 236 toneladas, y Chihuahua, con
tres mil 215 toneladas, al 30 de
noviembre de 2011 (FAO, 2012).
El guajolote es también producido en
entidades como Estado de México,
5
Puebla, Tabasco, Guerrero, Veracruz,
e Hidalgo, Chiapas, Campeche,
Oaxaca y Tlaxcala.
El control de enfermedades es
esencial para las unidades de
producción avícolas y una
enfermedad común en estas
explotaciones es el Mycoplasma; si
se controlara la incidencia de
micoplasmosis en pavos entre otras
cosas, México podría reducir el índice
de importaciones y comenzar a
producir más toneladas de carne de
pavo para el propio consumo del país
y podría incrementar sus
exportaciones y esto ayudaría
positivamente en la economía del
país.
Material y Métodos.
El trabajo se realizó en el rancho de
la Universidad Autónoma Chapingo
“El trece “ubicado en el municipio de
Huitzilac, Edo. De Morelos. Los pavos
ubicados en en este sitio son para
consumo humano. Se realizaron dos
muestreos de sangre a 116 pavos de
6 semanas de edad. Los pavos se
muestrearon por primera vez el 26 de
mayo del 2013, la muestra se tomó
de la vena debajo del ala (vena
radial), extrayendo el 1% de su peso
vivo (3ml) con el fin de determinar la
presencia de Mycoplasma, se
utilizaron jeringas de 5 ml,
posteriormente se virtieron las
muestras en tubos vacutainer sin
anticoagulante (color rojo) a un
ángulo de 45° y se dejaron reposar
un día bajo temperatura ambiente
para la obtención del suero.
Posteriormente se acondicionaron
dos corrales (encalados, con
bebederos, comederos y cercados)
en donde se separaron al azar 58
pavos en cada uno de estos corrales;
a los dos corrales se les proporcionó
1 bulto de alimento (40 kg) iniciador
para aves de engorda Unión
Tepexpan®.
El día 1 de junio del 2013 se les
aplicó un tratamiento de Tilosina
100mg/ml (T1) a un grupo de 56
pavos, a cada pavo se le peso y se
aplicó la dosis correspondiente ( 30
mg/ kg de peso), posteriormente al
otro grupo de pavos se les aplicó el
tratamiento con Enrofloxacina 50
mg/ml (T2), con la dosis
correspondiente ( 10 mg/kg), esto se
realizó con el fin de disminuir el
6
problema recurrente de
Mycoplasmosis en el rancho “El
trece”, además de conocer la eficacia
de cada tratamiento contra la
bacteria.
El día 7 de julio del 2013 se realizó el
segundo muestreo a los 116 pavos
(58=T1 y 58=T2) del mismo modo
que se realizó en el primer muestreo.
De las muestras obtenidas (3ml) se
les extrajo el suero (1 ml) y se realizó
la prueba serológica ELISA (“enzyme
linked immunosorbent assay”) en el
laboratorio de inmunología de la
Universidad Autónoma Metropolitana
unidad Xochimilco, esta prueba se
basa en el uso de un antígeno o un
anticuerpo marcado con una enzima,
al estar uno de estos componentes
marcados y fijado a un soporte, se
interrumpe la reacción antígeno-
anticuerpo, posteriormente se le
agrega un sustrato específico sobre
la enzima que producirá un color
determinado observable a simple
vista. Debido al número de placas se
limitó a usar 46 muestras al azar
pretratamiento para determinar la
presencia de Mycoplasma
meleagridis y 48 más al azar
postratamiento de los dos
tratamientos (24 del tratamiento con
tilosina y 24 con el tratamiento de
enrofloxacina), esto para observar la
eficacia de los antibióticos contra la
bacteria.
Resultados.
Se obtuvieron 322 muestras, los
cuales se sometieron a la prueba
ELISA con antígeno comercial para
este patógeno, resultando 81
muestras positivas (69.5%) a
Mycoplasma meleagridis. Con las
muestras posttratamiento se midió la
prevalencia de la enfermedad al
tratamiento, siendo 9 pavos
prevalentes (37.5%) usando Tilosina
y 10 pavos prevalentes (41.6%)
usando Enrofloxacina.
De las 46 muestras pretratamiento 20
correspondían a machos (43.5%) y
26 a hembras (56.5%), los resultados
obtenidos de la prueba ELISA
mostraron que de las 46 muestras del
primer muestreo, 32 (69.5%)
resultaron positivas a la presencia de
anticuerpos específicos para
Mycoplasma meleagridis (de las
muestras positivas 23 correspondían
a hembras (71.8%) y 9 correspondían
7
a machos (28.2%) (Cuadro 1 y 3); en
cuanto al segundo muestreo con el
tratamiento de Tilosina (T1) se
observaron 9 positivos (5 machos
(55.5%) y 4 hembras (44.5%)) y 16
negativos, y en el tratamiento con
Enrofloxacina (T2) 10 fueron positivos
(5 hembras (50%), 5 machos (50%))
y 13 negativos (Cuadro 2 y 3).
macho hembra0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
80%
90%
100%
pretratamiento negativopretratamiento positivo
Cuadro 1. Comparación entre hembras y machos positivos a Mycoplasma
pretratamiento.
tilosina enrofloxacina0%
10%
20%
30%
40%
50%
60%
70%
80%
90%
100%
postratamiento negativopostratamiento positivo
Cuadro 2. Comparación de la eficiencia entre tratamientos contra mycoplasma.
8
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
A + - + + + + + + + + + +
B - + + + + + + - + - - -
C - + + + - + + + + + - -
D - + + - - + - + + + - +
E - - + + - + - - - - - -
F + + + - + - - + + + - -
G - + + + + - - - - - - -
H - + + - + - - - - - + +
Cuadro 3. Resultados de la prueba ELISA +=antígeno positivo, - = antígeno negativo, + = positivo
a micoplasma pretratamiento, - = negativo a micoplasma pretratamiento, + = positivo a micoplasma
postratamiento, - = negativo a micoplasma postratamiento
Con los resultandos obtenidos en el
primer muestreo (pretratamiento) se
obtuvo que el 69.5% de los pavos
presentaban anticuerpos contra
Mycoplasma meleagridis por lo que
se puede decir que de los 116 pavos,
el 69.5% (81 pavos) posiblemente
presentaba los anticuerpos contra
Mycoplasma meleagridis. En el
segundo muestreo, se obtuvo que de
los 19 pavos que resultaron positivos
post tratamiento, el 47.4% fue
utilizando Tilosina y el 52.6% fue
usando Enrofloxacina (Cuadro 4 y 5),
por lo que se deduce que de los 116
pavos tratados con los dos
tratamientos, aproximadamente 46
pavos continuaron enfermos.
9
Testigo (Pre tratamiento)
Tilosina Enrofloxacina Total (Post tratamiento)
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
PositivosNegativos
Cuadro 4. Comparación del número de pavos positivos y negativos durante la experimentación.
TestigoTilosina
EnrofloxacinaTotal
0
10
20
30
40
50
60
70
PositivoNegativo
Cuadro 5. Comparación del porcentaje de pavos positivos y negativo durante la experimentación
10
Discusión
La Micoplasmosis es una enfermedad
dependiente de varios factores, no
sólo depende exclusivamente del
agente etiológico, sino que la
favorece la disminución de la
capacidad de resistencia a
consecuencia de estados de estrés,
las corrientes de aire, el calor y el frío
excesivos, los cambios de
alojamiento, el transporte y otros
factores (Kleven et al., 2001), en el
rancho “el trece”, todos estos factores
estresantes se hacen presentes lo
cual contribuye a que los pavos
puedan contraer la enfermedad.
El Mycoplasma meleagridis, no sólo
afecta al aparato respiratorio de las
aves sino que afecta a las
membranas sinoviales y
articulaciones, también al tracto
respiratorio. Este Mycoplasma
ocasiona también inmunosupresión
en las aves y facilitan la invasión de
bacterias como la E. coli,
Avibacterium paragallinarum, virus de
Bronquitis infecciosa, Newcastle,
Síndrome de cabeza hinchada entre
otras, influyendo en la severidad de la
enfermedad (Ley et al., 1997;
Feberwee et al., 2006), por lo que se
puede pensar que los pavos
presentes en el rancho no sólo
presentaran Mycoplasmosis.
Debido a que Estados Unidos es el
principal exportador de carne y huevo
fértil de pavo, la incidencia de
mycoplasmosis en México es de
alrededor del 60-65% (SAGARPA,
2010), lo cual se traduce a que
usualmente llegan a México huevos
fértiles ya infectados de Estados
Unidos. La incidencia de
Mycoplasmosis en pavos es baja en
comparación con la de las gallinas de
postura comercial al sur de Lima
utilizando pruebas serológicas de
aglutinación en placa, HI y ELISA
dieron una prevalencia de infección
de 97% (Díaz 1999; Chirinos, 1999),
en nuestro trabajo la incidencia de
Mycoplasmosis en el rancho “el trece”
fue de 69.5%, esto siendo más alto que
la incidencia de Mycoplasmosis en el
país, aunque los resultados sobre la
incidencia concuerdan con respecto
al trabajo de Yamamoto (2005) que
reportó que la prevalencia de
mycoplasma es de alrededor del 78%
de del total de criaderos de aves en
México.
11
Por lo ya antes mencionado es
importante conocer la procedencia y
manejó que ha tenido el huevo o el
recién nacido, así como la expedición
de los certificados de salud
requeridos por la Ley general de
Sanidad Agraria (SENASA, 2013), y
se debe tener en cuenta la compra de
pavipollos libres de Mycoplasma.
La prueba ELISA solo sirve para
determinar la presencia del
anticuerpo específico para el
antígeno de Mycoplasma meleagridis,
pero no indica específicamente si
están infectadas o solamente han
tenido contacto previo con el antígeno
(Lequin, 2005), (Ricci, 2006); de tal
manera que no se pudo determinar
de manera concreta si estaban
infectados, sin embargo los datos
proporcionados por el dueño del
rancho afirman que alrededor de una
cuarta de los pavos que llegan al
rancho se infectaran o están
previamente infectados. Esta
enfermedad predomina en los climas
fríos con temperaturas de 7 a 10°C
donde su incidencia es mayor a 50%
(Center for foos security & public
health, 2007), sin embargo otro punto
importante para este tipo de
infecciones son los problemas
sanitarios, estos deben tener una
prioridad y calidad de atención ya que
afecta a las parvadas, productos y
subproductos: todos estos deben de
estar libres de este tipo de
enfermedades (Teódulo, 2001), esto
concuerda con los resultados ya que
las bajas condiciones higiénicas, las
condiciones climáticas y las
deficientes instalaciones son uno de
los principales vectores posiblemente
de la mycoplasmosis en el rancho “el
trece”.
El control permanente de las aves y
tratar de erradicar la mycoplasmosis
es muy difícil, pero para disminuir la
incidencia de esta enfermedad se
deben de tener medidas higiénicas y
un programa de vacunación para
prevenir la enfermedad, aunque
muchos autores mencionan que el
control de las Micoplasmosis, solo es
factible a través de la eliminación y
sacrificio de los planteles infectados,
reemplazándolos por planteles libres
que deben ser tratados como tales
desde el primer día de vida a partir
del cual, el esfuerzo de saneamiento
debe estar concentrado en la
constancia de implementación de
12
medidas de bioseguridad que
apuntan a conservar el estado de
indemnidad del lote (Ortiz y Kleven,
1992), (Avakian et al., 1992).
Varios autores demostraron in-vitro la
susceptibilidad a los antibióticos de
los Mycoplasmas aviares (Newnham
y Chu, 1965; Griffin, 1969; Lin, 1987).
Basado en estos datos varios
antibióticos fueron usados durante
largo tiempo bajo condiciones
prácticas, por ejemplo la tilosina,
eritromicina, etc. y como resultado la
incidencia de Mycoplasmosis
disminuyó, esto coincide con nuestros
resultados ya que al utilizar tilosina la
prevalencia de la bacteria
Mycoplasma disminuyó de un 69.5%
a 37.5% y con el uso del antibiótico
enrofloxacina de 69.5% de incidencia
disminuyo a 41.6%; basándonos en
estos resultados podemos concluir
que el tratamiento con tilosina s más
efectivo que utilizar enrofloxacin,
aunque (Kleven y Anderson, 1971;
Newnham, 1963) mencionan que los
antibióticos como las tetraciclinas y
eritromicinas, posen una alta
actividad antimicoplásmica.
Conclusión
En los resultados de nuestro
investigación se observó que la
incidencia de micoplasmosis en esta
región fue de 69.83% lo cual es un
problema serio en las exportaciones
avícolas especialmente en áreas con
condiciones de producción no son
óptimas, lo que representa una
problemática en la disminución y la
calidad de la producción de huevos y
carne de pavos, afectando de igual
manera el crecimiento y la ganancia
de peso.
La eficacia de los antibióticos
administrados demostró que la
tilosina (T1) es más eficiente contra
las infecciones causadas por
micoplasma superandolo en un
8.62% en comparación con la
enrofloxacina (T2), de igual manera el
precio del tratamiento con tilosina es
más económico que la enrofloxacina.
Los diagnósticos médicos en la
región de Morelos deben dar a
conocer más a la población acerca de
las características de M. Meleagridis
y así poder tomar en cuenta las
ventajas que estas les confiere como
moduladores en diferentes procesos
13
celulares y/o cofactores en diversas
enfermedades. Por tanto,
consideramos que es importante
profundizar en el estudio y difusión de
ciertos padecimientos en los que
están involucrados estos
microorganismos y sobre todo
proponer tratamientos eficaces y
económicos, minimizando los riesgos
potenciales que puedan generar en la
salud del animal.
Referencias bibliográficas.
Acuña F., 2012. Mycoplasmosis, Centro diagnostico Veterinario S.A., Boletin electrónico No. 9 Septiembre 2012.
Avakian AP, Ley DH, Berkhoff JE, Fichen MD.1992. Breeder turkey hens seropositive and culture – negative for Mycoplasma synoviae. Avian Dis 36: 782-787.
Bradbury and Morrow (2008). Avian Mycoplasmas. En Poultry Diseases, 6ª Ed. Saunders Elsiever. 220-234 pp
Bradbury, J. 2008. Micoplasmas Aviares: situación epidemiológica actual, bioseguridad y diagnóstico. Departement of veterinary pathology, University of Liverpool UK.
Chirinos C. 1999. Evaluación de IH vs ELISA para la detección de anticuerpos contra Mycoplasma synoviae y Mycoplasma gallisepticum.
Tesis de Médico Veterinario. Lima: Facultad de Medicina Veterinaria, Univ Nacional Mayor de San Marcos. Lima. 31 p.
Díaz E. 1999. Prevalencia de Mycoplasma gallisepticum y Mycoplasma synoviae en gallinas de postura comercial de la provincia de Chincha. Tesis de Médico Veterinario. Lima: Facultad de Medicina Veterinaria, Univ Nacional Mayor de San Marcos. 47 p.
Gallardo, N,J. 2006. Situación actual y perspectiva de la producción de carne de guajolote (pavo) en México. Secretaria de Agricultura, Ganadería, Desarrollo rural, Pesca y Alimentación.
Lequin, R.M, 2005) Enzyme Immunoassay (EIA)/Enzyme-Linked Immunoabsorbent Assay (ELISA). Clinical Chemistry. 51:12 2415-2418.
Manual Merck de Veterinaria. 2007.
“Afecciones generalizadas”, Ed.:
Océano, sexta edición, pp.2209.
Mardassi, A. B.; Mohamed, B. R.; Gueriri, S. 2005. Duplex PCR to Differentiate between Mycoplasma synoviae and Mycoplasma gallisepticum on the Basis of Conserved Species-Specific Sequences of Their Hemagglutinin Genes. journal of clinical microbiology. Vol 43 (2). Pp: 948–958
Nieves, M, H, Icochea, E, D, González, R,V, Falcón, P, N. 2010. Seroprevalencia de Mycoplasma synoviae en pavos reproductores criados en la zona de lima, Perú. Rev Inv Vet Perú 2010; (2):232-234.
14
Ortiz A, Kleven SH. 1992. Serological detection of Mycoplasma synoviae infection in turkeys. Avian Dis 36: 749- 752.
Ricci CM. 2006. Alternativas en la prevencióny tratamiento de los micoplasmas aviares /Internet /. 19 febrero 2009/. Disponible enwww.produccionanimal.com.ar
Quiroz, M.M. 2007. Micoplasmosis en aves. Revista Veterinaria México. Vol. 30 Núm. 2 enero-marzo 2007.
Rivera, J,A, Cedillo, R, M, Benítez, V, M. 2001. Micoplasmas y su importancia médica. Rev Biomed 2001; 12:262-271.
SAGARPA, 2012. Consultado en línea 31/05/2013 http://www.sagarpa.gob.mx/Paginas/default.aspx
Teódulo Q. T. 2001. La avicultura: su crecimiento, importancia económica, retos y perspectivas. Octavo Simposio de Investigación y desarrollo tecnológico. Aguascalientes.
The Center for food security & public health.
2007. Iowa State University, College of Veterinary Medicine. En http://www.cfsph.iastate.edu/Factsheets/es/micoplasmosis_aviar.pdf
Torres L.E,. Sánchez-Castilleja Y.M,. Olivares J.L., Rodríguez-Diego J.G. R. 2010. Mycoplasma meleagridis EN PAVOS DE UNA GRANJA EN AMECAMECA, ESTADO DE MÉXICO, Rev. Salud Anim. Vol. 32 No. 2 (2010): 121-123.
Torres, L.E, Sánchez, C.Y, Olivares, J.L, Rodríguez, J,G, Medina, R, D. 2010. Mucoplasma Meleagridis en pavos de uma granja em amecameca, estado de México. Rev Salud Anim. v.32 n.2 La Habana Mayo-ago. 2010
Villamar AL, Guzman VH. Situación Actual y Perspectiva de la Producción de Carne de Guajolote (pavo) en México 2006. Secretaria de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación (SAGARPA). 2006.
Yamamoto, R, Bigland, C, H, Ortmayer, H,B. 1965. Characteristics of Mycoplasma meleagridis sp. Isolated from Turkeys. Journal of bacteriology Vol. 90 No. 1. Pp.47-52.
Yamamoto, R, Ortmayer, H,M. 2005. Infección por Mycoplasma Meleagridis. Department of Epidemiology & Preventive Medicine School of Veterinary Medicine University of California Davis, California 95616
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ANEXOS.
Figura 1, 2, 3, 4. Fotografías de los pavos proporcionados para el trabajo de investigación.
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Figura 5. Sangrado del pavo por la vena radial
Figura 6. Pavos muestreados
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Fig. 7 Muestras de sangre en tubos vacutainer sin anticoagulante (color rojo)
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Figura 8. Colocación de comederos y bebederos en los corrales para los pavos en tratamientosFigura 9. Corral para los pavos en tratamiento ya encalado, con bebederos y comederos colocados
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Fig. 10, 11 y 12 prueba serológica ELISA
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