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UNIVERSIDAD TÉCNICA DE MACHALA
FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
ESCUELA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
TESIS SOMETIDA A CONSIDERACION DEL H CONSEJO DIRECTIVO DE LA FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS COMO REQUISITO PREVIO PARA
OPTAR AL GRADO DE
INGENIERO AGRÓNOMO
“APLICACIÓN DE MICORRIZAS Y UN MYCOBACTER EN VIVEROS DE CACAO (Theobroma cacao L)”
AUTOR
CHRISTIAN PIERO GONZÁLEZ SERRANO
DIRECTOR
ING. AGR. ABRAHAN CERVANTES ALAVA MG. SC
2014
UNIVERSIDAD TÉCNICA DE MACHALA
FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
ESCUELA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
TESIS SOMETIDA A CONSIDERACION DEL H CONSEJO DIRECTIVO DE LA FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS COMO REQUISITO PREVIO PARA
OPTAR AL GRADO DE
INGENIERO AGRÓNOMO
“APLICACIÓN DE MICORRIZAS Y UN MYCOBACTER EN VIVEROS DE CACAO (Theobroma cacao L)”
AUTOR
CHRISTIAN PIERO GONZÁLEZ SERRANO
DIRECTOR
ING. AGR. ABRAHAN CERVANTES ALAVA MG. SC
2014
ii
CERTIFICACIÓN
Este trabajo de titulación ha sido aprobado en forma presente por el tribunal de grado
nominado por el Honorable Consejo Directivo de la Facultad de Ciencias Agropecuarias de
la Universidad Técnica de Machala, como requisito parcial para optar al Título de:
INGENIERO AGRÓNOMO
____________________________________
Ing. Abrahán Cervantes Álava Mg. Sc.
DIRECTOR
___________________________________
Ing. EudaldoJadánVeriñas M. Sc.
MIEMBRO DEL TRIBUNAL.
___________________________________
Ing. Agr. Edwin Jaramillo Aguilar Mg. Sc.
MIEMBRO DEL TRIBUNAL.
iii
El contenido del presente trabajo de investigación,
resultados y conclusiones del mismo pertenece única
y exclusivamente a su autor
______________________________________
Christian P. González Serrano
iv
DEDICATORIA
Dedico este trabajo en primer lugar a mis queridos y amados padres: Sr Francisco P.
González Tigreros, y Sra. España M. Serrano Sayo, quieneshan estado a mi lado en el
transcurso de mi vida, en la cual supieron guiarme con su amor y concejos por el camino
correcto llegando así a la culminación de mi carrera universitaria, por la cual hoy estoy
seguro se sienten orgullosos. Toda la vida les estaré agradecido por ser unos excelentes
padres, ejemplos en mi vida de esfuerzo y sacrificio por sacar adelante a sus hijos.
A mi querida hermana Ing. Agr. Ruth C. González Serrano, quien con su ayuda mi trabajo
se hizo más llevadero.
A mi sobrina Nashary N. Pulecio González, a quien quiero dar un buen ejemplo de
dedicación y empeño en los estudios.
A mis abuelitos: Sr Julio B. Serrano Serrano (+) y Sra. Filomena Sallo Pacheco por el
apoyo moral y concejos que me brindaron cariñosamente.
A todos mis tíos y de manera especial al Eco. José A. Serrano Sayo MBA y a la Dra.
Blanca Serrano Sayo de quienes he recibido valiosos concejos y la ayuda oportuna para
cumplir con esta, mi meta trazada
Christian P. González Serrano
v
AGRADECIMIENTO
Expreso mis más sinceros agradecimientos a Jehová, nuestro Dios por su infinito amor y
misericordiaque ha tenido para conmigo, otorgándome la vida para ser testigo de sus
grandiosas creaciones y disfrutar de su bondad amorosa, y al haberme permitido la
culminación de mi carrera universitaria.
A mí estimado profesor y ex Director de tesis Ing. Agr. Franklin Alba Marín por compartir
sus sabios conocimientos y experiencias en la dirección del presente trabajo
A mi director de tesis Ing. Agr. Abrahán Cervantes Álava Mg. Sc, a quien le quedo
agradecido por dedicar su valioso tiempo y conocimientos en la culminación de este
trabajo
A mis apreciados profesores que son excelentes profesionales: Ing. Agrp. Julio Chabla
Carrillo, Ing. Agr. Jorge V. Cun Carrión, Arq. Jorge Moreno Carvajal y demás
profesionales que con su ayuda y concejos colaboraron en mi formación académica.
A mis recordados compañeros de estudio: Kléber Aguirre, Néstor Aguirre, Wilmer
Bastides, Carlos Cañetaco, Patricio Cañetaco, Maryuri Chapín, José Chenche (+), Jorge
Morocho, Miguel Orellana, Patricio Rodríguez, Óscar Ribera, JónathanValarezo, y demás
con quienes compartí gratos momentos y una bonita amistad a lo largo de mi carrera
universitaria.
A todos a quienes de una u otra manera colaboraron en la ejecución y culminación de este
trabajo ayudándome a cumplir con mi meta trazada.
A Todos Ustedes, ¡Gracias ¡
Christian P. González Serano
vi
ÍNDICE Capítulo Página
1. Introducción 1
2. Revisión de literatura 3
3. Materiales y métodos 10
3.1 Materiales 10
3.1.1 Localización del estudio 10
3.1.1.2 Ubicación geográfica 10
3.1.1.3 Características ecológicas y climáticas de la zona 10
3.1.2 Materiales a utilizar 11
3.1.5 Tratamientos 11
3.1.6 Variables analizadas 11
3.1.7 Medición y clasificación de las variables 12
3.1.7.1 Porcentaje de germinación 12
3.1.7.2 Porcentaje de plántulas vivas a los 30, 60 y 90 días después de la germinación.
12
3.1.7.3 Altura de las plántulas a los 30, 60 y 90 días después de la germinación. 12
3.1.7.4 Número de hojas a los 30, 60 y 90 días después de la germinación 12
3.1.7.5 Tamaño de las hojas a los 30, 60 y 90 días después de la germinación. 12
3.1.7.6 Diámetro del tallo a los 30, 60 y 90 días después de la germinación. 13
3.1.7.7 Tamaño de las raíces a los 30, 60 y 90 días después de la germinación. 13
3.1.7.8 Peso de raíces a los 30, 60 y 90 días después de la germinación. 13
3.1.7.9 Color de raíces a los 30, 60 y 90 días después de la germinación. 13
3.2 Métodos 14
3.2.1 Método para análisis de laboratorio 16
3.2.1.1 Trabajo de laboratorio 16
3.2.2 Diseño experimental 17
3.2.3 Métodos de análisis estadísticos 17
3.2.3.1 Modelo matemático 17
3.2.3.2 Hipótesis estadística 18
3.2.3.3 Cuadro de análisis de varianza 19
3.2.3.4 Análisis de varianza 19
vii
3.2.3.5 Comparación de tratamientos 19
3.2.3.6 Especificaciones del diseño 20
3.2.3.7 Croquis del ensayo 21
3.2.4 Método de análisis económico 21
3.2.4.1 Estudio económico y financiero 22
4 Resultados y discusión 23
4.1 Porcentaje de germinación en cada sustrato con diferente tratamiento 23
4.2 Porcentaje de plántulas vivas a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 24
4.3 Altura de la planta a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 25
4.4 Número de hojas a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 27
4.5 Longitud de las hojas a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 28
4.5.1 Largo de hojas a los 30, 60 y 90 días 28
4.5.2 Ancho de hojas a los 30, 60 y 90 días 30
4.6 Diámetro del tallo a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 31
4.6.1 Diámetro basal a los 30, 60 y 90 días 31
4.6.2 Diámetro medio a los 30, 60 y 90 días 31
4.7 Tamaño de raíces a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 33
4.7.1 Tamaño de raíz principal a los 30, 60 y 90 días 32
4.7.2 Tamaño de raíces secundarias a los 30, 60 y 90 días 34
4.8 Peso de raíces a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 35
4.9 Color de raíces a los 30, 60 y 90 días según la tabla Munssell 36
4.10 Análisis económico y financiero 37
5 Conclusiones 38
6 Recomendaciones 39
7 Resumen 40
8 Sumary 41
8 Bibliografía citada 42
9 Apéndice 44
viii
ÍNDICE DE FIGURAS Figuras Página
1 Cuadro de tratamientos y dosis de aplicación de productos comerciales 16
1 Diseño de campo para aplicación de microorganismos en cacao 21
2 Porcentaje de germinación en cada sustrato con diferente tratamiento 23
3 Porcentaje de plántulas vivas a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 24
4 Altura de la planta a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 25
5 Número de hojas a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 27
6 Largo de hojas a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 28
7 Ancho de hojas a los 30, 60 y 90 días 30
8 Diámetro basal a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 31
9 Diámetro medio a los 30, 60 y 90 días 31
10 Tamaño de raíz principal a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 32
11 Tamaño de raíces secundarias a los 30, 60 y 90 días 34
12 Peso de raíces a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 35
ix
INDICES DE APÉNDICES Apéndice Página
1 Aplicación de formol a razón de 1 litro por cada 20 litros de agua 44
2 Inoculación de las microorganismos 44
3 Medición de variables 45
4 Tratamientos en estudio del vivero 45
5 Observación de las muestras al microscopio 46
6 Porcentaje de germinación en cada sustrato con diferente tratamiento. 46
7 Porcentaje de plántulas vivas a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamients 47
8 Altura de plantas a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos. 47
9 Número de hojas a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 48
10 Tamaño de hojas (largo) a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos. 48
11 Tamaño de hojas (ancho) a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 49
12 Diámetro de tallo (basal) a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 49
13 Diámetro de tallo (medio) a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 50
14 Tamaño de raíces (principal) a los 30, 60 y 90 días por efecto de tratamientos 50
15 Tamaño de raíces (secundarias) a los 30, 60 y 90 días por efecto de tratamientos 51
16 Peso de raíces a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos 51
17 Gastos indirectos de fabricación 52
18 Materia prima. 53
19 Gastos operacionales. 53
20 Mano de obra directa. 54
21 Gastos financieros 54
22 Depreciaciones de activos fijos 54
23 Ingresos del proyecto 54
24 Composición de la inversión total. 55
25 Precio de venta. 55
26 Costo medio de venta. 55
x
UNIVERSIDAD TÉCNICA DE MACHALA FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
ESCUELA DE INGENIERIA AGRONÓMICA
ACTA DE SESIÓN DE DERECHOS DE TESIS DE GRADO Y TRABAJOS DE
TITULACIÓN
Consigno con el presente escrito de la cesión de los Derechos de Tesis de Grado/Trabajo de titulación, de conformidad con las siguientes cláusulas:
PRIMERA
Por sus propios derechos en calidad de Director de Tesis el Ing. Abrahán Cervantes Álava Mg. Sc., y el tesistaChristian Piero González Serrano, por sus propios derechos, en calidad de Autor de Tesis.
SEGUNDA
El tesistaChristian Piero González Serrano, realizó la tesis de grado titulada “APLICACIÓN DE MICORRIZAS Y UN MYCOBACTER EN VIVEROS DE CACAO (Theobroma cacao L)”para optar el título de INGENIERO AGRÓNOMO, en la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad Técnica de Machala, bajo la dirección del docente Ing. Abrahán Cervantes Álava Mg. Sc. Es política de la Universidad que la Tesis de grado se aplique y materialice en beneficio de la colectividad.
Los comparecientes Ing. Abrahán Cervantes Álava Mg. Sc., Director de Tesis y el tesistaChristian Piero González Serrano, como autor de la misma, por medio del presente instrumento, tiene a bien ceder en forma gratuita sus derechos en la Tesis de Grado titulada “APLICACIÓN DE MICORRIZAS Y UN MYCOBACTER EN VIVEROS DE CACAO (Theobroma cacao L)”,a favor de la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad Técnica de Machala y conceden autorización para que la Universidad pueda utilizar esta Tesis en su favor y/o de la colectividad, sin reserva alguna.
APROBACIÓN
Las partes declaran que reconocen expresamente todo lo estipulado en la presente Cesión de Derechos. Para constancia suscriben en la presente Sesión de Derechos en la Ciudad de Machala a los……….días del mes de………. Del año 2014.
DIRECTOR DE TESIS AUTOR
11
1. INTRODUCCIÓN
En el Ecuador el cultivo del cacao representa uno de los sistemas de producción agrícola
más importantes, siendo una de las principales fuentes generadoras de ingresos económicos
al país. Se caracteriza por ser una planta de tipo arbórea que pertenece a la familia de las
esterculiáceas cuyos métodos de reproducción se realizan de dos maneras: Sexual
(semillas) y Asexual: (estacas, acodos e injertos), siendo la de tipo sexual (utilización de
semillas frescas) la forma más antigua y común usada por el agricultor en el
establecimiento de sus plantaciones.
En este contexto, la multiplicación de plántulas se ha visto afectada por la baja calidad de
los sustratos en las que son reproducidas, llegando a disponer en general de un material de
baja calidad que al final produce árboles de baja productividad por el origen y
conformación del pan de tierra y su manejo. Básicamente este es el problema que se
presenta con los productores del sector la Porvenir, quienes han tenido pérdidas,
disminuyendo la calidad de plantas que al final tiene un efecto importante en sus cosechas.
Por esta razón es importante mejorar las plántulas en la etapa de vivero, fortaleciendo y
mejorando las condiciones de las mismas antes de ser llevadas al campo definitivo, razón
por la cual dentro del sistema de agricultura sostenible, se hace necesario implementar
nuevas herramientas de manejo y aplicación como es el caso de los microorganismos que
constituyen un poderoso recurso a ser utilizado para mejorar las condiciones del suelo y de
ésta manera garantizar un buen establecimiento durante su trasplante. En este caso la
presente investigación plantea el uso de las micorrizas (simbiosis entre un hongo y las
raíces de una planta) y bacterias benéficas como los agentes responsables de los procesos
químicos y biológicos que ocurren en el suelo y que constituyen parte de la micro y macro
flora, mejorando la capacidad de nutrición de los cultivos, y pudiendo tomar los nutrientes
aún en casos en que el pH no es adecuado, incluso los hongos mediante la emisión de
12
compuestos de transferencia pueden disolver sustancias que normalmente en el suelo no
son aprovechadas por las raíces de las plantas.
Con la incorporación de esta biotecnología, los productores de este sector se verán
beneficiados, ya que podrán multiplicar plántulas de cacao de alta calidad, capaces de
resistir estrés fisiológicos y asimilar eficientemente los nutrientes disponibles que
finalmente se verán reflejados en la producción mediante el uso de una biofertilización en
base a las micorrizas y a las bacterias que los proyecta hacia una agricultura limpia, meta
a la cual se quiere llegar para producir alimentos más sanos.
En base a lo expuesto y resaltando la importancia de la incorporación de las micorrizas y
las bacterias como los microorganismos benéficos en la multiplicación de plántulas de
cacao como biofertilizantes, el presente trabajo de investigación tiene como objetivos los
siguientes:
Objetivo general:
Determinar el efecto de la aplicación de microorganismos en sustratos en plántulas de
cacao multiplicadas por semilla en el vivero.
Objetivos específicos:
1.- Determinar la mejor respuesta de las plántulas de cacao a la aplicación de una sola
dosis comercial de tres productos a base de micorrizas y un producto con un complejo
de bacterias benéficas, sobre sustratos para la germinación de las semillas.
2.- Realizar un análisis económico de cada ciclo de tratamiento.
13
2. REVISIÒN DE LITERATURA
Sánchez y Sieverding (1984) indican que la palabra micorriza proviene del vocablo griego
myco (hongo) y rhyza, (raíz) y es la capacidad que tienen las plantas de establecer
relaciones compatibles con algunos hongos del suelo de forma generalizada en la
naturaleza. A este proceso se lo conoce como micorrizas, es así que dentro de los esquemas
de agricultura sostenible, conservación de los sistemas naturales y recuperación de aquellos
suelos que han sido degradados por un mal manejo las micorrizas constituyen un poderoso
recurso microbiano, de allí la necesidad de conocer y diseñar estrategias que permitan
conservar, incrementar o mejorar los suelos productivos con su implementación, como una
buena alternativa en la agricultura.
Para Agrios (1991) la clasificación de las micorrizas está de acuerdo a la forma en cómo
se encuentran dispuestas las hifas del hongo dentro de los tejidos corticales de la raíz, así:
Ectomicorrizas. Las hifas del hongo no penetran en el interior de las células de la raíz, sino
que se ubican sobre y entre los espacios que existen entre ellas, formando la red de Hrtig,
la cual se la puede ver a simple vista
Las Endomicorrizas, estas a su vez se caracterizan por que las hifas del hongo inicialmente
también se introducen entre las células de la raíz, pero luego en el interior de las células
formando vesículas y arbúsculos.
Ectendomicorrizas. Constituye una etapa intermedia entre los otros dos tipos de micorrizas,
ya que se caracterizan por formar un manto fungoso y a la misma vez penetran en la célula
formando vesículas y arbúsculos teniendo las dos características de vivir.
Las raíces nutricias de las mayoría de las angiospermas que crecen en la naturaleza son
siempre infectadas por hongos simbióticos que no le producen enfermedades pero, en lugar
de ello, benefician a las plantas hospederas.
14
Las raíces infectadas se transforman en estructuras morfológicas únicas denominadas
micorrizas, es decir, raíces fungosas, las que desde hace muchos años se saben son
comunes en árboles, hoy en día se consideran como nutricias normales en la mayoría de las
plantas, incluyendo a los cereales, hortalizas, plantas de ornato y árboles (Agrios, 1991).
Considera también que las micorrizas mejoran el crecimiento de las plantas al aumentar la
superficie de absorción del sistema radicular; absorber selectivamente y acumular ciertos
nutrientes, especialmente el fósforo; solubilizar y hacer disponibles para la planta algunos
minerales normalmente insolubles, permitir que las raíces alimentadoras funcionen durante
más tiempo y hacer que las raíces alimentadoras sean más resistentes a la infección que
ocasionan algunos hongos del suelo tales como Phytophthora, Pythium y Fusarium. En
general se considera que la simbiosis que se establece entre una planta hospedera y el
hongo micorrizal beneficia igualmente a ambos organismos; sin embargo, es muy probable
que bajo ciertas condiciones nutricionales uno de ellos domine al otro y obtenga un mayor
beneficio.
Científicos del Centro de Investigación y de Estudios Avanzados (Cinvestav) en su
desarrollo de tecnologías para la agricultura encontraron que las micorrizas impulsaron el
crecimiento de los árboles en suelos afectados por la sequía, potenciando su crecimiento
hasta en un 50 % bajo dichas condiciones Las ventajas proporcionadas por la
micorrización para las plantas son numerosas, ya que gracias a ella, la planta es capaz de
explorar más volumen de suelo del que alcanza con sus raíces normalmente, al sumársele
en esta labor las hifas del hongo; también capta con mayor faci- lidad ciertos elementos
(fósforo, nitrógeno, calcio y potasio) y agua del suelo. La protección brindada por el hongo
hace que la planta sea más resistente a los cambios de temperatura y la acidificación del
suelo derivada de la presencia de azufre, magnesio y aluminio. Algunas reacciones
fisiológicas del hongo inducen a la raíz a mantenerse activa durante más tiempo que si no
estuviese micorrizada. Todo esto redunda en una mayor longevidad de la planta: de hecho,
se ha comprobado que algunos árboles, como los pinos, son incapaces de vivir más de dos
años cuando están sin micorrizar. En otras especies, esta unión es tan estrecha que sin ella
la planta no puede subsistir, como es el caso de las orquídeas. Las plantas cuyas semillas
carecen de endosperma (sustancias alimenticias de reserva) dependen completamente del
hongo para alimentarse y germinar posteriormente. La integrante del Departamento de
15
Biotecnología y Bioingeniería, Beatriz Xoconostle Cázares, indicó que estas sustancias
descubiertas aceleran la asociación de plantas y sus hongos simbiontes conocidos como
micorrizas que aumentan las defensas y la adaptación de plantas en suelos pobres1.
De acuerdo a Bolívar et al. (2009) en sus estudios realizados sobre resultados satisfactorios
referentes al estado de las micorrizas en las plantaciones de cacao. En relación a los
resultados obtenidos, observaron que del total de raíces evaluadas por muestras, las raíces
colonizadas o micorrizadas reflejó la presencia de la simbiosis micorrízica en tres sectores
seleccionados para el estudio, corroborando la microtrofia del cacao.
Sieverding (1991) indica que los iones más móviles de la solución de suelo, como NO3,
son más fácilmente accesible para las raíces absorbentes que los poco móviles como los de
P, Zn, Cu y Mo, y en menor grado K y S. La absorción de los iones menos móviles
depende del volumen de suelo explorado por el sistema de raíces absorbentes. En este caso,
la micorriza tiene ventaja sobre la raíz no micorrizada porque el micelio externo se
extiende a mayor distancia que los pelos radicales.
Desde el punto de vista nutricional, el mayor beneficio que las plantas reciben de la
micorriza es un mayor crecimiento debido a un incremento en la absorción de P cuando
este elemento es limitante. Teniendo la mayor parte de los suelos tropicales poca
disponibilidad de P para las plantas, la utilidad de las micorrizas en estas condiciones
resulta obvia Cuando el P no es limitante, el beneficio puede ser nulo o reducido, según el
grado de dependencia micorrízica de la planta. Es conocido además que altos niveles de P
inhiben la simbiosis. Por otro lado, está demostrado que la micorriza influye en forma
directa o indirecta en la absorci6n de otros iones minerales (N, K, Ca, Mg, Fe, Mn)
(Johansen, Jakobsen y Lenssen, 1994).
Estudios realizados por Lynch y Whipps (1990); Finlay y Soderstrom (1992) han
indicado que las plantas micorrizadas transfieren hacia la micorriza entre 6 y 12 %
adicional del total del carbono fijado en comparación con las plantas no micorrizadas.
Esto representa un notable aumento del carbono disponible para la actividad microbiana.
Los microorganismos del suelo presentan interacciones complejas que afectan la fertilidad
del suelo y el desarrollo de las plantas. Los hongos M.A (micorrizas arbusculares) además
de su efecto directo en la nutrición de las plantas inducen cambios fisiológicos que
1Solís, G 2011. Avances Tecnológicos del agro El Universo (Guayaquil), Octubre 18 del 2011(2da Sec) p. 3.
16
comprenden un aumento en la tasa fotosintética y redistribución del carbono fijado en
mayor proporción hacia las raíces.
Isopi et al. (1995) demostraron que la inoculación con bacterias libres fijadoras de N y
hongos Micorrizas Arbusculares (MA), favorecen el crecimiento de las plantas. El
beneficio para los simbiontes no son siempre equitativos como lo demostraron Ellos
utilizaron esporas de hongos (MA) como medio de inoculación de Acetobacter
diazotrophicus y encontraron que la concentración de N aumentó conforme aumentaron las
bacterias fijadoras de nitrógeno, aunque la colonización de (MA) decreció.
Camprubí et al., 2000 y Gederman, 1968. Analizaron que las micorrizas tienen varios
efectos positivos entre los cuales están el aumento de la resistencia de la plantas al estrés
hídrico y a la salinidad; aumento de la resistencia o tolerancia a determinados patógenos
existentes en el suelo; resistencia a la sobrevivencias de plantas vivas al momento de
realizar el trasplante; fijación de nitrógeno, entre otros.
Según Graham (2001), existe una relación entre las micorrizas y las raíces de las plantas,
los cuales son casos en que se dan un sinergismo entre ellos ya que redunda en un
beneficio mutuo al intercambiar minerales y productos orgánicos considerándose que en el
proceso de colonización del hongo se hacen visibles situaciones positivas , neutrales y
también negativas las cuales de una u otra forma hacen posible la efectividad de las
micorrizas y por ende el desarrollo y crecimiento de los cultivos.
Salamanca V. y Cano C 2005 mencionan que en la evaluación realizada en cítricos de
mandarina cleopatra notaron un mayor incremento en las variables de altura de plantas,
diámetro de tallos, y volumen de raíces en las plantas que se les aplicó un tratamiento de
micorriza introducida en un sustrato de suelo-arena-compost con respecto al sustrato
conformado con suelo.
MUNDO VERDE (2012) indica que dentro de su portafolio técnico consta con los
productos comerciales Ecofungy y el Ecoflora. Del cual se destacan el Ecofungy, como
una fuente de inóculos de micorrizas que colonizan el cortex de la raíz y desarrollan una
matriz del micelio que se extiende en el suelo incrementando de esta manera el área de
absorción de las raíces con una concentración mínima garantizada de 120 000 esporas,
reduciendo los efectos estresantes en los cultivos por sequias, sales, pesticidas,
temperaturas extremas, metales pesados (Al, Cd, Cu, Co, etc.), organismos patógenos.
17
Estimulan el crecimiento de las raíces y por ende la producción, reduciendo de este manera
la aplicación de fertilizantes y plaguicidas. Estimula la propagación de bacterias fijadoras
de nitrógeno como Rizobium
Además indica que este producto está compuesto por: 4 cepas del género (Glomus spp.)
Glomus aggregatum, Glomus intaradices, Glomus mosseae, Glomus etunicatum y 5 cepas
de ectomicorrizas (Pisoltithus spp.) cuyos mecanismos de acción es producir sustancias
que estimulen el crecimiento de las raíces. Mejorando la adquisición de nutrientes
disponibles y nutrientes limitantes en la producción como lo son el P, Zn, Cu, Mn, Fe, B,
entre otros. Optimizando la estructura del suelo ya que se estimula la producción de
glomalina, la cual es la responsable de mejoran la adaptación de plántulas micro-
propagadas y plantas procedentes de viveros a las condiciones de campo Estimulan la
formación temprana de flores y frutos. Incrementan uniformidad del cultivo. La
recomendación comercial de aplicación es de 500 g/ m3 de sustrato.
Por su parte el producto denominado Ecoflora, presenta las bondades de restablecer las
poblaciones benéficas de los microorganismos benéficos solubilizando los minerales
incluyendo el fósforo, reduce las dosis de aplicación de agroquímicos en los suelos, fija
nitrógeno, inhiben los hongos patógenos, mejora la absorción de nutrientes. Este producto
está compuesto por Basilos subtilis, B polymyxa, B. pumilis, Penibasilus exotofixans, las
cuales secretan enzimas como las quitinazas las cuales degradan la materia orgánica y
producen antibióticos, cuya recomendación de aplicación es de 300/m3 de sustrato
SUMERZONE C.A. (2012) Presenta un producto a base de micorrizas y bacterias con el
nombre comercial de Mycobacter, el cual muestra beneficios a los cultivos ya que actúan
en la planta mejorando el sistema radicular aumentado el área de contacto de las raíces en
el suelo, favoreciendo la absorción del agua y demás minerales que necesitan las plantas,
aumenta también la resistencia a enfermedades. El amplio espectro de microorganismos
que presenta como lo son las 9 ectomicorrizas; Glomus Intaradices, G mosseae
aggregatum, G claurm, G desertícola, G entunicatum, entre otras. Endomicorrizas;
Rhizopogon villosullus, R luteolus, R amylopogon, R fulvigleba, R pisolithus tictorius,
entre otras. Bacterias benéficas del género; Basilus subtilis, B licheniformis, B
azotoformans, Pseutomonas aureofaciens. Cuya dosis de aplicación es de 300 g/m3 de
sustrato
18
BIOCONTROLSIENCE (2008) Destaca que la aplicación del producto Mykorriza en los
cultivos aumenta la capacidad de mejorar los mecanismos de defensa en su sistema
radicular al hacer frente a las condiciones adversas generadas por plagas y enfermedades
de los cultivos, de esta manera permite direccionar los procesos energéticos expresados
por el vegetal que normalmente son enviados para contrarrestar los síntomas de un ataque a
las funciones principales del mecanismo de desarrollo y fructificación del cultivo.
Este producto está compuesto por esporas del género Acalulospora spp., Glomus spp.,
Sclerosystis spp. Y especies nativas de micorrizas arbusculares (MA), minerales de soporte
inoculante biológico radicular cuya recomendación de aplicación es de 300 g/m3
19
3. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1 MATERIALES
3.1.1 LOCALIZACIÒN DEL ESTUDIO.
El presente trabajo de investigación se realizó en la provincia de El Oro, cantón Santa
Rosa, parroquia la Victoria , sitio La Porvenir, Ecuador, a 0.5 km de la vía La Victoria –
Bella María, punto en el cual se encuentra ubicada la Asociación de Agricultores Montubia
Bellegue. Cuya ubicación geográfica es la siguiente:
3.1.1.1 Ubicación geográfica
El sitio del ensayo se encuentra ubicado dentro de las siguientes coordenadas:
Coordenadas UTM Coordenadas Geográficas
Latitud : 0622461 S 03o 25º 32.34”
Longitud: 9621354 W 79º 53º 51.47”
Altura : 13 m snm
3.1.1.2 Características ecológicas y climáticas de la zona
De acuerdo a la zona de vida de Holdridge, Santa Rosa se encuentra ubicada dentro de la
formación ecológica bosque seco Tropical (bs-T), con un promedio anual de temperatura
de 250 C y 745 mm de precipitación anual.
20
3.1.2 MATERIALES A UTILIZAR
3.1.2.1 Materiales de campo
Como material genético se utilizó semillas frescas de cacao, “tierra dulce” arena y tamo de
arroz para preparar el sustrato, formol, fundas plásticas de polietileno de color negro
perforadas de 5”x 8”, productos comerciales de las micorrizas y la bacteria, y herramientas
menores.
3.1.3 EQUIPOS UTILIZADOS
GPS (Sistema de posicionamiento global)
3.1.4 VARIABLES ANALIZADAS
3.1.4.1 Porcentaje de germinación en cada sustrato con diferente tratamiento
3.1.4.2 Porcentaje de plántulas vivas a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos.
3.1.4.3 Altura de la planta a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos
3.1.4.4 Número de hojas a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos.
3.1.4.5 Tamaño de las hojas (largo y ancho) a los 30, 60 y 90 días por efecto de los
tratamientos
3.1.4.6 Diámetro del tallo (basal y medio) a los 30, 60 y 90 días por efecto de los
tratamientos
3.1.4.7 Tamaño de las raíces, (principales y secundarias) a los 30, 60 y 90 días por efecto
de los tratamientos
3.1.4.8 Peso de raíces a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos.
3.1.4.9 Color de raíces a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos.
3.1.5 MEDICIÓN Y CLASIFICACIÓN DE LAS VARIABLES
21
3.1.5.1 Porcentaje de germinación en cada sustrato con diferente tratamiento.
Esta variable fue evaluada en base a la germinación de las semillas a partir de los 10 días
de sembrada, para lo cual, se consideró que el 50 % de las semillas hayan abierto sus
cotiledones en cada uno de los tratamientos en estudio.
3.1.5.2 Porcentaje de plántulas vivas a los 30, 60 y 90 días por efecto de los
tratamientos.
El porcentaje de plántulas vivas se lo realizó contando en número de plántulas vivas que
existieron a los 30, 60 y 90 días en cada una de las repeticiones y se dio su resultado
directamente en porcentaje ya que cada repetición de cada tratamiento estaba conformada
por 100 plántulas.
3.1.5.3 Altura de la planta de a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos.
Se la realizó mediante un muestreo destructivo tomando 10 plantas al azar por cada
tratamiento, midiendo la longitud desde la base del tallo hasta la yema apical o ápice de la
misma, totalizando 50 por bloque y 250 por ensayo. La medición fue en cm.
3.1.5.4 Número de hojas a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos.
Para esta variable se contó el número de hojas funcionales que tuvieron cada una de las 10
plantas seleccionadas al azar para los muestreos destructivos.
3.1.5.5 Tamaño de las hojas (largo y ancho) a los 30, 60 y 90 días por efecto de los
tratamientos.
Se lo realizó en las hojas emitidas desde la germinación de la semilla (hojas bajeras) hasta
las hojas de la parte central del área foliar, las mediciones para el largo de las hojas se las
22
hizo desde la base del peciolo hasta la punta o ápice de la misma. Para la medida del ancho
de las hojas se procedió a medir en la parte central de las mismas, las mediciones fueron en
cm.
3.1.5.6 Diámetro del tallo (basal y medio) a los 30, 60 y 90 días por efecto de los
tratamientos.
Esta variable se la evaluó midiendo el diámetro en la base del tallo (diámetro basal) y en la
parte media del mismo (diámetro medio) con la utilización del pie de rey o vernier, las
mediciones fueron en cm.
3.1.5.7 Tamaño de las raíces (principales y secundarias) a los 30, 60 y 90 días por
efecto de los tratamientos.
Para evaluar esta variable, se procedió a retirar con cuidado la funda plástica y el pan de
tierra que recubría el sistema radicular de las plántulas, procediendo luego a medir la raíz
pivotante o principal, desde la base del tallo hasta la parte terminal o cofia, y las raíces
secundarias dese su inicio hasta su parte final en cm.
3.1.5.8 Peso de raíces a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos.
Para la evaluación de esta variable, se procedió a cortar el segmento de la raíz desde el
cuello de la misma, para luego ser lavadas con abundante agua y dejadas secar al ambiente
por 24 horas para luego ser pesadas en la balanza
3.1.5.9 Color de raíces a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos.
Esta variable se la realizó comparando los colores que presentaron las raíces de cada uno
de los tratamientos previos a la preparación de las muestras de cada planta en la tabla
Munssell.
23
3.2 MÉTODOS
Metodología de trabajo
Para cumplir el primer objetivo “Determinar el efecto de la aplicación de microorganismos
en sustratos en plántulas de cacao multiplicadas por semilla en el vivero ” se aplicó la
siguiente metodología en campo
Se procedió a limpiar el área destinada para el vivero, el mismo que tuvo las siguientes
dimensiones: 5 m x 15 m, totalizando un área de 75 m2, el mismo que se lo construyó con
caña guadua (Guadua angustifolia Kunt) obtenidas del sector para hacer la ramada, en la
que se colocaron los correspondientes 75 m2 de sarán al 65 % para controlar la intensidad
de los rayos solares.
La obtención del sustrato para el llenado de fundas se lo realizó con tierra dulce propia del
sector en mezcla con arena y tamo de arroz en porciones de 4:2:1 y se lo esterilizó con
formol a razón de 1 lt. /20 lt. de agua.
El llenado de fundas para este ensayo se lo hizo con el sustrato descrito anteriormente en
las fundas plásticas de polietileno de color negro de 5” x 8” y luego se hizo el arreglo de
las mismas dentro del vivero.
Para realizar la inoculación de los productos, se tomaron en cuenta algunos cálculos en la
que se utilizó una regla de tres simple para mantener la dosis de aplicación original ya que
los niveles de dosificación son diferentes para cada tratamiento con sus respectivas
repeticiones cumpliendo de esta manera el procedimiento de inoculación recomendado
Para los tratamientos T1, T3 y T4 la dosis de aplicación fue de 0,60 g de producto comercial
por cada funda de tratamiento. Para el T2 la dosis de aplicación fue de 1 g de producto
comercial por cada funda de tratamiento.
Una vez realizados los cálculos necesarios, se procedió a realizar la inoculación de los
productos en las 2 500 fundas previas a la siembra, manteniendo un buen estado de
humedad en el sustrato para darle las condiciones ideales a los microorganismos en su
establecimiento y desarrollo, inoculando durante las primeras horas de la mañana evitando
24
la luz solar y por ende el alza de la temperatura ya que esta afecta el normal desarrollo de
los microorganismos.
La recolección de las mazorcas para la obtención de semillas se la realizó según el proceso
selectivo para obtener semillas de buena calidad de las plantas que presentaron mejores
características (plantas élites) como; buena producción, resistencia a plagas y
enfermedades, etc. en las cuales se eligieron las mazorcas más grandes y maduras
fisiológicamente y bien constituidas, ubicadas en el tercio superior del tronco del árbol, se
eliminaron los extremos para evitar trabajar con semillas de malas características y se dejo
el centro de la vena donde se encuentran las semillas mejor constituidas.
Después de recolectar las mazorcas de acuerdo a las mejores características que éstas
presentaron, se procedió a la siembra de las mismas ubicando la semillas verticalmente con
el “botón” de la raíz hacia abajo en un pequeño hoyo de aproximadamente 0,5 cm hecho
en el sustrato de cada funda cubriéndolas con una capa o manto de pasto elefante
(Pennisetum purpureum) para evitar que estas queden descubiertas después de cada
riego, y protegerlas del ataque de pájaros.
El riego se lo realizó pasando un día durante los primeros 15 días de sembradas las
semillas, luego cada 3 días dejándolo a capacidad de campo (C.C) haciéndolo a lo largo de
todo el ensayo, manteniendo la humedad en el sustrato para beneficiar el desarrollo de los
microorganismos.
El control de malezas se lo realizó de manera manual dentro del área del ensayo y control
mecánico en los alrededores del mismo.
La aplicación del control de plagas (hormiga harriera) se lo hizo con sebo mata harriera
(Ato-kill) según la especificaciones del producto.
Tratamientos.
Para cumplir con el segundo objetivo “ Determinar la mejor respuesta de las plántulas de
cacao a la aplicación de una sola dosis comercial de tres productos a base de micorrizas y
un producto con un complejo de bacterias benéficas, sobre sustratos para la germinación de
las semillas” los tratamientos que se evaluaron fueron en base a los productos comerciales,
las dosis de aplicación recomendadas comercialmente y un testigo como referente.
25
Cuadro 1. Tratamientos y dosis en la aplicación de micorrizas y una bacteria en viveros de plántulas de cacao.
Código Tratamientos Dosis Dosis /funda
T1. Mycorriza 300 g/m3 0,60 g
T2. Ecofungy 500 g/m3 1 g
T3 Mycobacter 300 g/m3 0,60 g
T4 Ecoflora 300 g/m3 0,60 g
T5 Testigo ( Tierra dulce)
3.2.1 MÉTODO DE ANÁLISIS DE LABORATORIO
3.2.1.1 Trabajo de laboratorio
El método a utilizar para realizar el trabajo de laboratorio fue el método de Kottke (2002)
mencionado por Urgilés (2003).
Para esta etapa se realizaron los siguientes pasos:
Colecta de raicillas
Se colectaron las raicillas de 10 plantas por cada repetición en fundas de papel con sus
respectivas etiquetas de identificación, para tomar la muestra se precediendo a extraer las
raíces del sustrato.
Fase de laboratorio
o Metodología de tinción de raicillas para la observación de la colonización
de los microorganismos
Limpieza, previa la separación de las raicillas se homogenizaron las muestras recolectadas
para obtener una representativa por cada tratamiento en estudio, se las procedió a lavar con
26
abundante agua para limpiar restos de suelos presentes en las mismas, luego se las lavó con
agua destilada, se les realizaron cortes en pequeñas piezas de 2 cm de largo y con un
diámetro menor a 1 mm (medida estándar) en un total de cinco partes a todo largo de las
muestras, y finalmente se las colocó en agua destilada para evitar la desecación.
o Aclaración de raíces
Para aclarar las raíces se las sumergieron en lejía de potasio (KOH 10 %) en baño maría a
60o C por tres horas, posteriormente se las enjuagó dos veces en agua normal por dos
minutos en una solución de ácido clorhídrico (CL H 10 %), las mismas que tomaron una
coloración blanca.
o Tinción
Para la tinción se tiñeron las raicillas con una solución compuesta por azul de metileno al
0,05 % diluido en ácido láctico al 90 %, por dos horas en baño maría a 60o C.
o Montaje al microscopio
La muestra se la preparó en un portaobjeto con unas gotas de ácido láctico, las mismas que
estuvieron bien extendidas para realizar una buena observación, seguidamente se colocó el
cubre objeto quedando lista la muestra para su respectivamente observación.
3.2.2 DISEÑO EXPERIMENTAL
Los cinco tratamientos fueron arreglados en base a un diseño completamente al azar con
unidades experimentales de 100 plántulas por réplica y cinco réplicas por tratamiento,
totalizando 2 500 plántulas para todo el ensayo.
3.2.3 MÉTODOS DE ANÁLISIS ESTADÍSTICO
3.2.3.1 Modelo matemático
El modelo matemático se lo representó por la ecuación de mínimos cuadrados
27
Yij = u +
De donde:
Yij= Cuantificación de los efectos de las microorganismos
= Representa el promedio general del ensayo o centro de la curva normal de los
Errores experimentales.
= Efectos de las cuatro tipos de microorganismos
= Simboliza el error experimental
i=1, 2, 3…………………t
j =1, 2, 3………………….n
En este modelo matemático hay varias suposiciones acerca de la naturaleza de los errores
experimentales, que sirve de base para depurar valores poco probable que lleguen a
suceder.
Para los errores se espera, que éstos se ajusten a la curva normal de Gauss con promedio,
= 0 y varianza s² desconocida, pero factible de estimarse a partir del cuadrado medio de
los tratamientos en el modelo matemático antes expuesto.
3.2.3.2 Hipótesis estadística
Hipótesis nula Ho: Los microorganismos incorporados al suelo no colonizarán el sistema
radicular de las plántulas de cacao nacional, por lo tanto su efecto en el crecimiento inicial
de las plántulas será uniforme en todos los tratamientos.
Hipótesis alternativa H1: Los microorganismos incorporados al suelo si colonizarán el
sistema radicular de las plántulas de cacao, influyendo en su crecimiento inicial,
diferenciándose en al menos uno de los tratamientos aplicados.
28
3.2.3.3 Cuadro de análisis de varianza
Cuadro 2. Anova modelo fijo 1.
Fuentes de variación G.L Cuadro promedio esperado
Réplicas n -1 2+ bj/t-1
Tratamientos t -1 2+ti2/b-1
Error experimental (n-1) (t-1) 2
Total nts- 1
3.2.3.4 Análisis de varianza
Las variables relativas a la emisión de raíces, tamaño de las raíces, diámetro del tallo, solo
fueron analizadas las que cumplieron con los requisitos de homogeneidad de varianzas.
Entre los tratamientos se realizaron comparaciones para priorizar entre los productos,
conforme consta en el cuadro de Anova, las mismas que están asociadas a un grado de
libertad.
Las sumas de cuadrados de éstas comparaciones se los calculó mediante la técnica de
contrastes, donde:
Cyy= Σ (ci x Ti) 2/ Ci2 x R
La condición es que la Σ ci =0. (Cocran y cox 1970)
3.2.3.5 Comparación de tratamientos
Las comparaciones entre promedios de tratamientos especialmente las relativas a dosis, se
realizaron mediante el Test de Duncan, con mi nivel de significación del 5 %.
29
Como no hubo diferencia entre promedios que excedan los valores RAD no fueron
consideradas como significativos
y1—y2 r.a.d.p < 0.05 resultado significativo
rad = sx. a.e.s
3.2.3.6 Especificaciones del diseño
Las especificaciones del diseño para el presente trabajo de investigación son:
Tratamientos 5
Réplicas 5
Plántulas por réplicas 100
Unidad experimental 100
Plántulas por tratamientos 500
Plántulas por ensayo 2 500
Ancho de la unidad experimental 0,40 m
Largo de la unidad experimental 2,50 m
Distancia de la unidad experimental (eje de las x) 0,30 m
Distancia de la unidad experimental (eje de las y) 0,30 m
Área útil de cada unidad experimental 1 m2
Área total útil del bloque de unidades experimentales 5 m2
Área total del bloque de unidades experimentales 8 m2
Área total útil de los bloques de las unidades experimentales 25 m2
Área total de los bloques 40 m2
Área total del ensayo 58,80 m2
30
3.2.3.7 CROQUIS DEL ENSAYO
Diseño de campo para aplicación de microorganismos en vivero de cacao.
3.2.4 MÉTODOS DE ANÁLISIS ECONÓMICOS
3.2.4.1 Estudio económico y financiero
El estudio económico y financiero de un proyecto, es el reflejo del proceso productivo, el
mismo que nos permite establecer los ingresos y egresos que genera un proyecto, así como
la evaluación del mismo a través de los parámetros como:
Los costos totales de producción, el capital de trabajo, inversión total y su financiamiento,
punto de equilibrio y evaluación económica y financiera.
31
El VAN, o Valor Actual Neto, que tiene como finalidad traer los valores futuros a valores
presentes y cuando estos valores son positivos el proyecto es viable
El TIR, o Tasa Interna De Retorno, el cual es el porcentaje de utilidad que rinde un
proyecto, y para el presente estudio dio un valor del 58%
La relación beneficio/costo, la cual fue de 1.91 $ indicándonos que por cada dólar invertido
existe una utilidad del 91 %
32
4 RESULTADOS Y DISCUSIÒN
4.1 PORCENTAJE DE GERMINACIÓN EN CADA SUSTRATO CON
DIFERENTE TRATAMIENTO.
Figura 1. Porcentaje de germinación con diferentes tratamientos en viveros de cacao.
En la Figura 1 se presentan los porcentajes de germinación con diferentes tratamientos, de
acuerdo el cuadrado medio de los tratamientos, estos no fueron significativos, ya que se
mantuvo la uniformidad de los valores obtenidos en los promedios de los tratamientos
frente al testigo (T5)
Estos resultados pueden ser debido a que las semillas del cacao tienen una germinación
epigea con un período de germinación que varió de entre 10 a 15 días después de ser
sembradas, por lo tanto, durante este tiempo los microorganismos no actúan en las semillas
ya que no existen raíces germinadas; una vez que las semillas han sido germinadas, la
33
plántula de cacao todavía no realiza la fotosíntesis en sus hojas emitidas (hojas no
funcionales) durante los primeros 20 días de germinación, alimentándose únicamente de
las reservas que tienen en sus cotiledones; tal como lo demuestra los resultados en los
cuales se mantiene una uniformidad de porcentajes de germinación en la figura 1 con un
mínimo porcentaje del 3.2 % de diferencia entre los tratamientos frente al T5 Testigo;
demostrando por lo tanto que la aplicación de las micorrizas y la bacteria no tiene ninguna
relevancia en la evaluación de esta variable.
4.2 PORCENTAJE DE PLÁNTULAS VIVAS A LOS 30, 60 Y 90 DÍAS
POR EFECTO DE LOS TRATAMIENTOS
Figura 2. Porcentaje de plántulas vivas a los 30, 60 y 90 días.
Según la Figura 2, en el porcentaje de plántulas vivas días por efecto de los tratamientos,
no fue significativo en ninguno de sus cuatro tratamientos frente al testigo (T5)
De acuerdo al Centro de investigaciones y de Estudios avanzados (CINESTAV) El uso de
los microorganismos en los suelos afectados por las sequias potenciaron el crecimiento de
los pinos (Pinus pinea LINNEO) hasta en un 50 % frente a los testigos no micorrizados de
las áreas afectadas bajo estudio, ya que éstas permiten la absorción de los minerales y
34
nutrientes que la planta normalmente no lo puede hacer permitiéndoles tener una mayor
longevidad.
En el presente estudio de las variables, el uso de las micorrizas y la bacteria en los
primeros estadios de las plántulas de cacao procedentes de semillas germinadas en
sustratos enriquecidos con micorrizas como son el porcentaje de germinación y el
porcentaje de plántulas vivas en las tres evaluaciones, no tuvieron los resultados esperados
como lo afirmaron los científicos del CINESTAV en sus estudios realizados, ya que al
analizar los valores obtenidos de estas variables frente al testigo (T5) no existió una
significancia estadística entre los tratamientos objeto de este estudio, esto pudo haber sido
debido a que la acción de las micorrizas se vio limitada a las propiedades física que
presento el sustrato en que se trabajó junto a las bacterias al ser desinfectado con formol
como se lo describe en los métodos con la finalidad de evitar la aparición posterior de
hongos patógenos y de poder analizar el efecto neto que tienen sobre las plántulas de una
manera más específica, pudiendo haber disminuido o incluso eliminado su presencia en el
suelo.
4.3 ALTURA DE LAS PLÁNTULAS A LOS 30, 60 Y 90 DÍAS POR
EFECTO DE LOS TRATAMIENTOS
Figura. 3 Altura de plántulas a los 30 y 60 y 90 días.
De acuerdo a los valores consignados en la Figura. 3 el comportamiento de las micorrizas y
de la bacteria no produjo mayor capacidad fisiológica referente a la altura de plantas frente
35
a las del Testigo, resultando no tener significancia estadística para ninguno de los
tratamiento en estudio quedando sin comprobar lo dicho por Camprubí et al., 2000;
Gederman, 1968. Quienes dijeron que las micorrizas tienen varios efectos positivos entre
los cuales están el aumento de la resistencia de la plantas al estrés hídrico y a la salinidad;
aumento de la resistencia o tolerancia a determinados patógenos existentes en el suelo;
resistencia a la sobrevivencias de plantas vivas al momento de realizar el trasplante;
fijación de nitrógeno, entre otros.
A los 30 días los rangos de alturas de los tratamientos (T1) Mykorriza al (T5) Testigo fue
un máximo de 17.02 cm y un mínimo de 16.46 cm respectivamente, siendo esta diferencia
de (0.56 cm; ns) entre tratamientos resultando ser inferior a los rangos de Duncan con un
nivel de significación del 0.05.
A los 60 días se obtuvo resultados similares, pues en el análisis de la varianza de
tratamientos los resultados no fueron significativos y la diferencia entre los promedios de
los tratamientos (T1) Mykorriza al (T5) Testigo fue de (0.42 cm), siendo inferior que mi
rango de Duncan (0.66 cm).
A los 90 días, la altura de plantas varió entre 19.54 a 20.05 cm, correspondiendo a los
valores extremos a los tratamientos (T1) Mykorriza y el (T5) Testigo. Respectivamente
notándose que tampoco tiene significancia estadística, pues no alcanza el rango mínimo de
la prueba de Duncan
Esto pudo haberse dado debido a que la dosis de aplicación recomendada no tuvo
influencia en el sustrato ya que al igual que en la variable analizada anteriormente, este fue
esterilizado para eliminar los patógenos y semillas de malezas proceso en el cual se reduce
o eliminan los nutrientes presentes en los suelos especialmente el fósforo, nitrógeno entre
otros; razón por la cual las plántulas no expresaron una mayor capacidad fisiológica, ya
que las micorrizas ni la bacterias no pudieron contribuir eficientemente en la búsqueda de
nutrientes para ser asimiladas por las raíces de las plantas de cacao al encontrarse el
sustrato exento de los mismos.
4.4 NUMERO DE HOJAS A LOS 30, 60 Y 90 DÍAS POR EFECTO DE
LOS TRATAMIENTOS
36
Figura. 4 Numero de hojas por planta a los 30, 60 y 90 días.
La emisión foliar de las plantas de cacao de la variedad nacional cultivadas en sustratos
enriquecidos con micorrizas y bacterias, a los 30, 60 y 90 días no tuvo significancia
estadística ya que los datos obtenidos fueron inferiores a los rangos de Duncan al 5 %
Según Graham (2001), la relación que existen entre las micorrizas y las raíces de las
plantas, son casos en que se dan un mutualismo o sinergismo entre ellos ya que redunda en
un beneficio mutuo al intercambiar minerales y productos orgánicos considerándose que en
el proceso de colonización del hongo se hacen visibles situaciones positivas , neutrales y
también negativas las cuales de una u otra forma hacen posible la efectividad de las
micorrizas y por ende el desarrollo y crecimiento de los cultivos.
En el análisis de la variable número de hojas a los 30 días, los datos obtenidos alcanzó un
techo de 5.50 hojas en el tratamiento (T1.) Mikorriza y el menor promedio en el
tratamiento (T5.) Testigo con 5.20 hojas/planta,
A los 60 días el rango de variación fue de 5.60 hojas en el (T5) Testigo a 6.30 hojas/planta
en el tratamiento (T1.) Mikorryza, manteniendo el mismo grado de uniformidad ante los
demás tratamientos del ensayo sin alcanzar la significancia estadística
37
Para la tercera evaluación se dio el mismo caso, los resultados dieron no significativos
entre el (T5) Testigo con 8.4 y el (T4.) Ecoflora con 8.7 manteniendo una similitud de los
comportamientos de cada tratamiento en las tres evaluaciones en los cuales todos fueron
inferiores a los rangos de Duncan con un nivel de significación del 5%.
Este resultado se lo puede atribuir a que las micorrizas al encontrarse en sus primeras
etapas de adaptación en el sustrato y colonización en las raíces no encontraron las
condiciones necesarias para su reproducción en los sistemas radicales de las plantas
hospederas, minimizando su campo de acción en beneficio para una buena estimulación
del crecimiento reflejada en su baja capacidad fisiológica de nutrición en las plántulas
evaluadas, y por ende un bajo porcentaje de crecimiento foliar.
La morfología de las hojas y la de los tallos al estar íntimamente relacionadas y formar en
conjunto el vástago de las plantas se ven afectadas directamente de una manera positiva o
negativa al momento de evaluar el comportamiento de un agente introducido como es el
caso de las micorrizas incorporadas al sustrato, razón por la cual de manera general el
crecimiento de las hojas y de los tallos que para esta evaluación fueron considerados como,
número de hojas y diámetros de tallos no presentaron significancia estadística para ninguno
de los cuatro tratamientos en estudio.
4.5. LONGITUD DE LAS HOJAS A LOS 30, 60 Y 90 DÍAS POR
EFECTO DE LOS TRATAMIENTOS
4.5.1 LARGO DE HOJAS A LOS 30, 60 Y 90 DÍAS
38
Figura. 5 Longitud de hojas en cm. a los 30, 60 y 90 días.
Según lo dicho por Graham 2001, al estar relacionadas directamente la capacidad que
tienen las raíces en la absorción de los minerales que servirán para la nutrición de las
plantas y su respuesta para expresar una mayor capacidad fisiológica de crecimiento, en la
variable longitud de hojas a los 30, 60 y 90 días, no se reflejó dicha capacidad esperada
con la aplicación de las micorrizas, tal es el caso que en los promedios de los tratamientos
evaluados a los 30 días indican que el tamaño de las hojas varió entre 8.2 cm de longitud
en el Testigo T5 sin la influencia de los microorganismos y el mayor promedio
correspondió al tratamiento T2 Ecofungi con 8.9 cm, dando una diferencia de 0.7 cm
siendo esta no significativo.
Para la segunda evaluación de los 60 días la diferencia estuvo entre el (T5) Testigo y el T4
Ecoflora con un 9 y un 9.7 respectivamente manteniéndose el estado de no significativo
En la tercera evaluación los resultados fueron similares, sin tener nivel significativo en los
promedios del (T5) Testigo y el (T4) Ecoflora de 0.7 coincidiendo el comportamiento de
estos dos tratamientos a los 60 y 90 días.
Estos resultados hacen notar que la aplicación de las micorrizas y las bacterias en el
crecimiento de las hojas no es significativa durante los primeros 90 días de vida de las
plántulas de cacao bajo la dosis comercial recomendada en las condiciones del sustrato en
que se trabajo.
39
4.5.2 ANCHO DE HOJAS A LOS 30, 60 Y 90 DÍAS
.
Figura. 6 Ancho de hojas en cm. a los 30, 60 y 90 días.
Los rangos de promedios en esta evaluación indican que los tratamientos (T5) Testigo y el
(T2) Ecofungy a los 30 días junto con los de la segunda evaluación no han tenido mayor
incidencia en las plántulas de cacao, frente a la lectura de los 90 días no tuvo significancia
en ningún tratamiento.
Es así que el (T2) Ecofungy con 4.3 y el (T5) Testigo con 3.9 corresponden al más alto y
bajo dentro del análisis en la que se encuentran una diferencia de 0.4 cm frente a su réplica
de los 60 días que indica un 0.50 cm de crecimiento dando la diferencia de 0.10 cm entre la
primera y la segunda evolución de estos tratamientos. Para la tercera evaluación existe
similitud en la acción de los tratamientos (T2) Ecofungy y (T3) Mycobacter de 5.40 para
cada uno de ellos notándose un mayor efecto o persistencia del (T2) Ecofungy a lo largo
del ensayo resaltando su acción en las tres evaluaciones
Es probable que el crecimiento de las hojas fue deficiente debido a que al encontrarse
estéril el sustrato, los microorganismo no pudieron tener a disposición los nutrientes entre
ellos el nitrógeno que sirve para fomentar la estimulación del crecimiento de los órganos
de las plantas en este caso las hojas objeto de esta evaluación razón por la cual en el
análisis de las variables numero de hojas y longitud de hojas no existió significancia
estadística en ninguno de los tratamientos en estudio
40
4.6 DIÁMETRO DEL TALLO A LOS 30, 60 Y 90 DÍAS POR EFECTO
DE LOS TRATAMIENTOS
4.6.1 DIÁMETRO BASAL A LOS 30, 60 Y 90 DÍAS
Figura. 7 Diámetro basal en cm. a los 30, 60 y 90 días.
4.6.2 DIÁMETRO MEDIO A LOS 30, 60 Y 90 DÍAS
Figura. 8 Diámetro medio en cm. a los 30, 60 y 90 días.
41
En la Fig. 7 y 8 se visualizan los promedios correspondientes al diámetro del tallo de las
plantas en las tres fases del desarrollo, 30 y 60 y 90 días después de la germinación.
De acuerdo a Salamanca V. y Cano C 2005 en la evaluación realizada en cítricos de
mandarina cleopatra notaron un mayor incremento de altura de plantas, diámetro de tallos,
y volumen de raíces en las plantas que se les aplicó un tratamiento de micorriza
introducida en un sustrato de suelo-arena-compost con respecto a la micorriza nativa suelo
– arena, en los cuales su acción fue notoria dentro de las variables analizadas
De acuerdo a los resultados obtenidos en la presente investigación, en las figura 7 y 8 se
visualizan los promedios de los tratamientos con micorrizas y bacterias, los que
presentaron similar crecimiento dimétrico de los tallos, los mismos que no tuvieron
significancia estadística tanto en el análisis de varianza como en la prueba de comparación
de promedios empleando el test de Duncan con un nivel de significación del 5%.
Esto pudo ser debido a que los hongos no tuvieron el tiempo adecuado para poder
proliferarse y colonizar las raíces de las plántulas de cacao dentro de los 90 días que duro
el estudio de esta aplicación razón por la cual las plántulas hospederas no manifestaron
mayor índice de diámetro de tallo así como en el resto de variables evaluadas quedando sin
corroborar los resultados obtenido por Salamanca y Cano (2005)
4.7 TAMAÑO DE LAS RAÍCES A LOS 30, 60 Y 90 DÍAS POR
EFECTO DE LOS TRATAMIENTOS
4.7.1 TAMAÑO DE RAÍZ PRINCIPAL A LOS 30, 60 Y 90 DÍAS
42
Figura. 9 Tamaño de raíz principal en cm a los 30, 60 y 90 días.
Agrios (1991) Dice que las raíces infectadas se transforman en estructuras morfológicas
únicas denominadas micorrizas, es decir, raíces fungosas, las que desde hace muchos años
se saben son comunes en árboles, hoy en día se consideran como nutricias normales en la
mayoría de las plantas, incluyendo a los cereales, hortalizas, plantas de ornato y árboles las
cuales al estar micorrizadas amplían el campo de exploración de las raíces dándoles la
capacidad de absorver más nutrientes del suelo incluso en situaciones en las que el pH no
sea el apropiado.
Según la figura 9, a los 30 días la diferencia de los rangos de crecimiento de la longitud es
de 1.60 cm con un máximo de 13.87 el tratamiento (T1) Mykorriza, para los 60 días el
tratamiento de mayor incidencia es el (T3) Mycobacter con 17.23 y una diferencia de 0.81
cm
En la evaluación realizada a las raíces de la plántulas de cacao, la longitud de la raíz
principal a los 30, 60 y 90 días no arrojó resultados significativos ni en el análisis de
varianza ni en la comparación de promedios mediante los tés de Duncan con el nivel de
significación del 5%. Estos resultados hacen notar que en la fase temprana de desarrollo de
las plantas del cacao hasta los 90 días, las micorrizas y las bacterias no influyen en dicha
variable, haciendo notar que los microorganismo tienen un mejor efecto en suelos en
condiciones normales de campo y no en la manera en cómo se lo trabajo al sustrato para
este estudio.
43
4.7.2 TAMAÑO DE RAÍCES SECUNDARIAS A LOS 30, 60 Y 90 DÍAS
Figura. 10 Tamaño de raíces secundarias en cm a los 30, 60 y 90 días.
En esta figura se visualiza que la longitud de las raíces secundarias mantienen un grado de
homogeneidad; el mayor promedio con 2.56 cm le correspondió al tratamiento (T1)
Mycorriza y el valor más bajo fue de 2.31 cm registrado para el tratamiento T5 Testigo,
dando una diferencia de 0.25 cm. Para la segunda evaluación tenemos una diferencia
ascendente de 0.90 cm. entre los tratamientos (T5) Testigo y (T2) Ecofungy; ya para la
tercera evaluación la diferencia se hace un poco más notoria con 1.16 cm de crecimiento
pero sin llegar a la significancia estadística para poder evaluar que producto es más
representativo en este ensayo.
Al igual que en la medición de la variable de la longitud de raíces principales, aquí no se
mostro significancia estadística a pesar de lo sostenido por Agrios (1991)
4.8 PESO DE RAICES A LOS 30, 60 Y 90 DÍAS POR EFECTO DE
LOS TRATAMIENTOS
44
Figura. 11 Peso de raíces en cm a los 30, 60 y 90 días.
Gianiazzi, Pearson y Gianiazzi (1981) dice que de forma general, las micorrizas presentan
altas posibilidades en las que se considera que estos hongos tienen la posibilidad de
mejorar el crecimiento de las plantas en suelos donde su capacidad de extracción de
nutrientes es relativamente baja, pero también menciona que las micorrizas dependen en su
accionar del estado nutricional que presentan los suelos para poderlo expresar en la
morfología de los cultivos
Según la Fig. 10 El peso de las raíces en las tres lecturas se noto que el comportamiento
de los microorganismos introducidos no fue significativo en la interacción de los
tratamientos en estudio, en la cual no existe mayor aporte de los hongos en los primeros
tres meses de vida de las plántulas frente al testigo, ya que el peso de las raíces a los 30
días, se mantuvo dentro del promedio de 0.37 g, para lo cual el tratamiento (T4) Ecoflora
fue el que tuvo un mayor valor con 0.34 g y los tratamientos (T1) Mykorriza y (T5) Testigo
coincidieron con un valor de 0.32 g, dando una diferencia de 0.02 g haciéndose notorio que
no existió ni siquiera significancia numérica con este producto.
A los 60 y 90 días el incremento fue nulo l incrementó a 0.03 g la diferencia existente
entre estos dos tratamientos, en los dos casos los cuadrados medios de tratamientos no
fueron significativos, por lo tanto la incorporación de productos formulados con micorrizas
y bacterias en estado de latencia, no tienen relevancia en la capacidad de expresión de
biomasa de las plántulas de cacao bajo la dosis de aplicación recomendada en sustratos
45
esterilizados existiendo una concordancia con lo registrado por Gianiazzi, Pearson y
Gianiazzi (1981).
4.9 COLOR DE LAS RAÍCES A LOS 30, 60 Y 90 DÍAS POR EFECTO
DE LOS TRATAMIENTOS SEGÚN LA TABLA MUNSELL
Color de raíces del cacao inoculadas con los productos comerciales a base de micorrizas y
bacterias.
Tratamientos 30 días 60 días 90 días
T1Mycorriza 300 g 10 YR 4/3 10 YR 4/3 10 YR 4/3
T2Ecofungy 500 10 YR 2/2 10 YR3/3 10 YR 4/3
T3Mycobacter 300 g 10 YR 3/4 10 YR 3/4 10 YR 3/3
T4Ecoflora 300 g 10 YR 5/5 10 YR 3,4 10 YR 3/4
T5 Testigo 10 YR 3,5 10 YR 3/4 10 YR 3/5
De acuerdo con los resultados obtenidos de la coloración que presentaron las raíces
después del debido proceso de laboratorio, se puede apreciar que en las tres lecturas de
datos realizadas a los 30, 60 y 90 días después de la germinación mostraron una misma
identificación de matiz observándose una leve diferencia de valor e intensidad
pudiéndosele atribuir que la acción de las micorrizas y las bacterias fue neutral ya que no
incidió en ninguno de los cuatro tratamientos en estudio, tal cual se ha demostrado en las
primeras lecturas de los variables anteriormente descritas.
4.10 ANÁLISIS ECONÓMICO Y FINANCIERO
El análisis económico y financiero de este estudio indica que el parámetro de costos de
producción fue de 4605,31 $, con una inversión total de 2664.50 $ y el punto de equilibrio
fue de 2935.91 $
46
Se destaca los valores obtenidos del flujo de caja con un valor de 5 300 $ para los 4
primeros años y un valor total de 7728.46 $ para la finalización del proyecto; también los
obtenidos en el flujo de costos netos en el presente estudio con un valor de 2990.89 $ por
cada año después de la inversión el cual fue de 2542.56 $ como año cero.
En el flujo de fondo económico, dio un valor de 2309.11 $ para cada año de inversión
realizado dando un total de 4737.57 $ al finalizar el tiempo estimado de duración del
proyecto.
En el parámetro de VAN, Valor Actual Neto, tuvimos un valor de 4689.85 $ aun
porcentaje de rentabilidad del 58 $ (TIR) y una relación beneficio/costo de 1.91 $ por
plántula., dándonos una utilidad neta de 460.58 $ en este estudio.
47
5 CONCLUSIONES
Bajo las condiciones en que se llevo el experimento, las aplicaciones de las
micorrizas y la bacteria no incidieron en el crecimiento de las plántulas de cacao,
las dosis comerciales recomendadas no mostraron significancia estadística en las
evaluaciones realizadas.
.
48
6 RECOMENDACIONES
Debo recomendar que este trabajo sirve como plataforma para las posteriores
investigaciones que se realicen dentro del área de biofertilización en cacao y el posterior
análisis de los comportamientos que muestren los microorganismos tales como las
micorrizas y las bacterias que fueron objeto de este estudio, debiéndose hacer un
seguimiento más exhaustivo en cuento a la mejor dosis de aplicación de éstos en los
sustratos del vivero como también la realización de fertilización en compensación al aporte
generado por los microorganismos y una enjertación antes de ser llevadas a campo para
poder corroborar los efectos benéficos de una manera más minuciosa que tienen estos
microorganismo en los cultivos agrícolas de importancia como lo es el cacao en el Ecuador
49
7 RESUMEN
Este trabajo de investigación se lo realizó en el sitio La Porvenir, Cantón Santa Rosa,
provincia de El Oro, Ecuador, a 0,5 km de la vía La Victoria – Bella María a la altura del
km 5 con la finalidad de evaluar el comportamiento de las micorrizas y las bacterias
benéficas en las plántulas de cacao para mejorar sus condiciones antes de ser llevadas a
campo definitivo, en busca de una solución al problema a los agricultores de este sector
quienes se ven afectados teniendo pérdidas ya que obtienen plantas débiles debido a la
mala calidad de los sustratos en las que son reproducidas, disminuyendo la calidad de
plantas que al final tiene un efecto importante en sus cosechas.
Esta investigación se la realizó mediante la aplicación de microorganismos como lo son las
micorrizas y las bacterias en plántulas en etapa de vivero, realizando tres muestreo
destructivo cada 30 días de 10 plantas escogidas al azar para evaluar parámetros como
porcentajes de germinación en cada sustrato con diferente tratamiento, porcentajes de
plántulas vivas, alturas de plantas, número de hojas, tamaño de hojas, diámetro de tallos,
tamaño de raíces, y coloración de raíces a los 30, 60 y 90 días por efecto de los
tratamientos. Este estudio dio como resultado que la incorporación de micorrizas y las
bacterias benéficas en cacao en la etapa de vivero no inciden en el comportamiento
fisiológico de las plántulas. Debiéndose hacer un seguimiento más exhaustivo en cuento a
la mejor dosis de aplicación de éstos en los sustratos.
Palabras claves: Cacao – Vivero - Micorrizas – Bacterias benéficas
50
8 SUMARY
This research work was on the future site, Canton of Santa Rosa, El Oro province,
Ecuador, on 0.5 km of the track The Victory - Bella Maria to the height of the km 5 with
the purpose of evaluating the behavior of the mycorrhizae and the beneficial bacteria in the
seedlings of In search of a solution to the problem to the farmers in this sector who are the
purpose of evaluating the behavior of the mycorrhizae and the beneficial bacteria in the
cacao seedlings to improve their conditions before being carried to definitive field, those
who are affected taking
Those who are affected taking losses they get weak plants due to the poor quality of the
substrates on which they are propagated, diminishing the quality of plants at the end that
has an important effect on their crops.
This research is conducted through the application of microorganisms as they are the
mycorrhizae and the bacteria in seedlings in nursery stage, performing three destructive
sampling every 30 days to 10 plants selected at random to evaluate parameters such as
germination percentages in each their
On each substrate with different treatment, percentages of seedlings alive, heights of
plants, number of leaves, leaf size, diameter of stems, size of roots, and coloring of roots to
the 30, 60 and 90 days by effect of the treatments. This study resulted in the incorporation
Arbuscular mycorrhizal and the beneficial bacteria in cocoa in the nursery stage did not
affect the physiological behavior of the seedlings. They should be done a more thorough
follow in story to the best dose of application of these in the substrates.
Keywords: Cocoa – Nursery - Mycorrhizae - beneficial bacteria
51
9 BIBLIOGRAFIA CITADA
AGRIOS G. 1991. Fitopatología. México D.F. de México, Ed Limusa. p. 475-477.
BIOCONTROLSIENCE 2008 Ficha técnica de productos (Versión electrónica) wwwmundoverde.com.ec recuperado 23 de Abril del 2012
BOLÍVAR, A.COPELAN, J. FORD, H.LEUSCHEN, E. 2009. Importancia ambiental y socioeconómica de las micorrizas en el cultivo de cacao: Hacienda Cata, municipio Ocumare Costa de Oro, Estado Aragua, Venezuela. p 492 – 494.
CAMPRUBÍ, A., ESTAÚN, V. 2000. Micorrizas arbusculares en producción agrícola.
Horticultura. Abril. España. P. 38-41.
GIANINAZZI; PEARSON, y. S. GIANINAZZI. S. 1981. Role of endomicorrizas fungi in
phosphorus cycling in the ecosystem. In: Wieklow, D. and G.C. Carroll (Eds). The
Fungal community, its organization and role in the ecosystem. p. 637-652.
GERDEMANN, J. W. 1968. Vesicular-arbuscular mycorrhiza and plant growth.
Annu. Rev. Phytopathology 6: p. 397-418.
GRAHAM, C. 2001 Descripción anatómica de once especies forestales de uso industrial en
Panamá. Costa Rica, Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza (CATIE),
Proyecto Cultivo de Arboles de Uso Múltiple (MADELE; A).N.2.p.61.
ISOPI, R.; FABBRI, P.; Del GALLO, M.; PUPPI, G. 1995. Dual inoculation of Sorghum bicolor (L.) Moench ssp. bicolor with vesicular arbuscular mycorrhizas and Acetobacter diazotrophicus. Symbiosis. Ed G. J U.S.A Wisconsin. p 18-43-55.
52
JOHANSEN, A.; JAKOBSEN, I.; JENSSEN, E.S. 1994. Hyphal N transport by a vesicular-arbuscular mycorrhizal fungus associated with cu cumber grown at three nitrogen levels. Plant and Soil. Brusseles, Luxembourg Ed JM p 160.
LYNCH, M.; Y WHIPPS, J.M. 1990. Substrate flow in the rhizosphere. Plant and Soil Springer-Verlag, Berlín Ed Hoock, B 129:1-10.
MUNDO VERDE MUV Cia Ltda. 2 012. (Versión electrónica) wwwmundoverde.com.ec recuperado 23 de Abril del 2012
SALAMANCA, C. y CANO, C.;,2005, efecto de las micorrizas y el sustrato en el
crecimiento vegetativo y nutrición de cuatro especies frutales y una forestal, en la fase de
vivero, en el Municipio de Restrepo-Meta, Colombia.
http://www.corpoica.org.co/sitioweb/Archivos/oferta/EfectoDeLasMicorrizasYElSustrato.
SUMERZONE Cia A. 2012. (Versión electrónica) www.orgánicosecuador.com
recuperado 23 de Abril de 2012
SANCHEZ DE P. M., y SIEVERDING, E. 1984 Estudio de la fitosanidad de inóculos de micorriza vesículo arbuscular (MVA). In: Suelos Ecuatoriales. Universidad Nacional de Colombia Bogotá, Colombia. P. 25-26.
SlEVERDlNG, E. 1991. Vesicular-arbuscular mycorrhizal management in tropical agrosystems Technical Cooperation, Ed GTZ, Alemania, Federal Republic of Germany. 371 p.
SOLIS, G 2011. Avances Tecnológicos del agro El Universo (Guayaquil), Octubre 18. (2da Sec.) p. 3.
URGILES, N 2003. Evaluación del potencial de micorrizas en la propagación de tres especies forestales. Tesis Ing. Forestal. Loja Ec. Universidad Nacional de Loja. Carrera de Ingeniería Agronómica. p 33.
53
10 APÈNDICE
Figura 12. Apliación de formol a razón de 1 litros por cada 20 litros de agua
Figura 13. Inoculación de las microorganismos
54
Figura 14. Medición de variables
Figura 15. Tratamientos en estudio del vivero
55
Figura 16. Observacion de las muestras al microscopio
Cuadro 1. Porcentaje de germinación en cada sustrato con diferente tratamiento
Tratamientos R1 R2 R3 R4 R5 Ym
T1. Mykorriza 300 g 82 47 98 78 83 77,6
T2. Ecofungy 500 g 57 81 64 83 80 73
T3 Mycobacter 300 81 54 87 95 68 77
T4 Ecoflora 300 g 52 88 70 76 74 72
T5 Testigo 95 78 91 65 41 74
Promedio general 75.8
Coeficiente de
variación 87%
56
Cuadro 2. Porcentaje de plántulas vivas a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos
Tratamientos 30 días 60 días 90 días
T1 Mykorriza 300 g 79.0 ns 90.6 ns 92.8 ns
T2 Ecofungy 500 g 75.6 ns 88.6 ns 88.8 ns
T3 Mycobacter 300 g 80.0 ns 92.4 ns 90.6 ns
T4 Ecoflora 300 g 79.8 ns 89.2 ns 87.4 ns
T5 Testigo 63.2 ns 83.0 ns 88.0 ns
Promedio general 75.5 % 88.4 % 89.5 %
Varianza de tratamientos 1.58 ns 2.34 ns 2.4 ns
Varianza del error 0.77 1.80 4.8
Cuadro 3. Altura de plantas a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos.
Tratamientos 30 días 60 días 90 días
T1 Mykorriza 300 g/ m3 17 ns 17,78 ns 19,98 ns
T2 Ecofungy 500 g/m3 16,46 ns 17,5 ns 19,54 ns
T3 Mycobacter 300 g/ m3 17 ns 17,62 ns 19,54 ns
T4 Ecoflora 300 g/m3 16,94 ns 17,82 ns 20,05 ns
T5 Testigo 17 ns 17,92 ns 19,98 ns
Varianza tratamientos 0,07 ns 0,14 ns 0,33 ns Varianza del error 0,05 0,25 0,32 Coeficiente de variación CV (%) 1,33% 2,82% 2,85%
Rangos de amplitud de Duncan 0,91 - 0,99 0,66 - 0,72 0,74 - 0,82
57
Cuadro 4. Número de hojas a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos.
Tratamientos 30 días 60 días 90 días
T1 Mykorriza 300 g/ m3 5,5 ns 6,3 ns 8,5 ns
T2 Ecofungy 500 g/m3 5,4 ns 6 ns 8,5 ns
T3 Mycobacter 300 g/ m3 5,3 ns 6,4 ns 8,5 ns
T4 Ecoflora 300 g/m3 5,4 ns 6,3 ns 8,7 ns
T5 Testigo 5,2 ns 5,6 ns 8,4 ns
Varianza tratamientos 0,094 ns 0,233 ns 0,073 ns Varianza del error 0,071 0,099 0,165 Coeficiente de variación CV (%) 4,93% 4,7 4,78%
Rangos de amplitud de Duncan 0,35 - 0,39 0,42 - 0,46 0,54 - 0,59
Cuadro 5. Tamaño de hojas (largo) a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos.
Tratamientos 30 días 60 días 90 días
T1 Mykorriza 300 g/ m3 8,7 ns 7,3 ns 9,6 ns
T2 Ecofungy 500 g/m3 8,7 ns 6 ns 9,5 ns
T3 Mycobacter 300 g/ m3 8,8 ns 7,4 ns 9,4 ns
T4 Ecoflora 300 g/m3 8,5 ns 7,3 ns 9,3 ns
T5 Testigo 9,1 ns 6,6 ns 10 ns
Varianza tratamientos 0,47 ns 0,65 ns 0,302 ns Varianza del error 0,27 0,3 0,502 Coeficiente de variación CV (%) 3,93% 4,22% 4,27%
Rangos de amplitud de Duncan 0,69 - 0,76 0,72 - 0,80 0,93 - 1,03
58
Cuadro 6. Tamaño de hojas (ancho) a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos.
Tratamientos 30 días 60 días 90 días
T1 Mykorriza 300 g/ m3 4,1 ns 4,48 ns 5,28 ns
T2 Ecofungy 500 g/m3 4,3 ns 4,78 ns 5,4 ns
T3 Mycobacter 300 g/ m3 4,1 ns 4,64 ns 5,4 ns
T4 Ecoflora 300 g/m3 4,2 ns 4,7 ns 5,36 ns
T5 Testigo 3,9 ns 4,28 ns 5,14 ns
Varianza tratamientos 0,11 ns 0,2 ns 0,06 ns Varianza del error 0,14 0,15 0,07 Coeficiente de variación CV (%) 3,13% 4,10% 4,45%
Rangos de amplitud de Duncan 0,50 - 0,55 0,52 - 0,57 0,34 - 0,37
Cuadro 7. Diámetro de tallo (basal) a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos.
Tratamientos 30 días 60 días 90 días
T1 Mykorriza 300 g/ m3 0,41 ns 0,56 ns 0,67 ns
T2 Ecofungy 500 g/m3 0,35 ns 0,51 ns 0,7 ns
T3 Mycobacter 300 g/ m3 0,42 ns 0,5 ns 0,67 ns
T4 Ecoflora 300 g/m3 0,4 ns 0,5 ns 0,65 ns
T5 Testigo 0,38 ns 0,5 ns 0,62 ns
Varianza tratamientos 0,004 ns 0,003 ns 0,005 ns
Varianza del error 0,002 0,001 0,003
Coeficiente de variación CV (%) 3,77% 4,20% 4,30%
59
Cuadro 8. Diámetro de tallo (medio) a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos.
Tratamientos 30 días 60 días 90 días
T1 Mykorriza 300 g/ m3 0,21 ns 0,34 ns 0,41 ns
T2 Ecofungy 500 g/m3 0,22 ns 0,34 ns 0,44 ns
T3 Mycobacter 300 g/ m3 0,23 ns 0,35 ns 0,43 ns
T4 Ecoflora 300 g/m3 0,26 ns 0,34 ns 0,41 ns
T5 Testigo 0,2 ns 0,32 ns 0,42 ns
Varianza tratamientos 0,003 ns 0,0005 ns 0,0009 ns
Varianza del error 0,001 0,0006 0,0013
Coeficiente de variación CV (%) 3,79% 4,20% 4,38%
Cuadro 9. Tamaño de raíces (principal) a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos.
Tratamientos 30 días 60 días 90 días
T1 Mykorriza 300 g/ m3 13,87 ns 16,99 ns 21,97 ns
T2 Ecofungy 500 g/m3 12,92 ns 16,42 ns 22,03 ns
T3 Mycobacter 300 g/ m3 13,28 ns 17,23 ns 22,07 ns
T4 Ecoflora 300 g/m3 13,56 ns 16,93 ns 21,59 ns
T5 Testigo 12,27 ns 16,99 ns 20,16 ns
Varianza tratamientos 1,91 ns 0,44 ns 3,26 ns Varianza del error 0,19 0,74 0,99 Coeficiente de variación CV (%) 3,31% 4,09% 4,70%
Rangos de amplitud de Duncan 0,58 - 0,64 1,14 - 1,25 1,31 - 1,45
60
Cuadro 10. Tamaño de raíces (secundarias) a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos.
Tratamientos 30 días 60 días 90 días
T1 Mykorriza 300 g/ m3 2,56 ns 3,42 ns 5,41 ns
T2 Ecofungy 500 g/m3 2,43 ns 4,16 ns 5,52 ns
T3 Mycobacter 300 g/ m3 2,36 ns 3,94 ns 5,43 ns
T4 Ecoflora 300 g/m3 2,39 ns 3,87 ns 5,67 ns
T5 Testigo 2,31 ns 3,26 ns 4,51 ns
Varianza tratamientos 0,044 ns 0,71 ns 1,03 ns Varianza del error 0,006 0,09 0,19 Coeficiente de variación CV (%) 3,21% 4,04% 4,21%
Rangos de amplitud de Duncan 0,92 - 0,97 0,40 - 0,45 0,58 - 0,63
Cuadro 11. Peso de raíces a los 30, 60 y 90 días por efecto de los tratamientos
Tratamientos 30 días 60 días 90 días
T1 Mykorriza 300 g/ m3 0,32 ns 0,75 ns 1,2 ns
T2 Ecofungy 500 g/m3 0,33 ns 0,73 ns 1,25 ns
T3 Mycobacter 300 g/ m3 0,33 ns 0,73 ns 1,21 ns
T4 Ecoflora 300 g/m3 0,34 ns 0,74 ns 1,25 ns
T5 Testigo 0,32 ns 0,72 ns 1,22 ns
Varianza tratamientos 0,00053 ns 0,000654 ns 0,0023 ns Varianza del error 0,0005 0,000708 0,0074 Coeficiente de variación CV (%) 3,58% 3,64% 3,99%
Rangos de amplitud de Duncan 0,029 - 0,031 0,20 - 0,22 0,113 - 0,125
61
Cuadro 12. Gastos indirectos de fabricación
A SUMINISTROS FUNGIBLES A CORTO PLAZO
CONCEPTO VALOR
Fundas plásticas 41,25
Tierra dulce 56,28
Malla metálica 140
Señalización 65
Tamo de arroz 40
Plástico negro 37,5
Piolas 1,5
Arena 40
Clavos 1,15
Formol 11,6
Pulpa de café 5
TOTAL 439,28
B SUMINISTROS FUNGIBLES A LARGO PLAZO
CONCEPTO VALOR
Palas 15
Baldes 3
Tijeras 10
Machetes 16
Carretilla 40
Escarbadora 15
Cámara fotográfica 150
SUBTOTAL 249
62
Cuadro 13. Materia prima.
CONCEPTO VALOR
Semillas 52.50
microrganismos 373.11
Total 425.61
Cuadro 14. Gastos operacionales.
Sueldo Secretaria VALOR
Valores básicos 318
13er 26.50
14to 26.50
Fondos de reserva 26.50
Vacaciones 13.25
Aporte patronal 38.64
Total remuneración 131.39
Total de complementos 449.39
Sueldo /3 meses al año 1347.00
TOTAL 16,6
Alquiler de terreno anual 50
B´ Alquiler de terreno por ciclo 16,67
Σ DE B + B´ = 33,27
TOTAL DE SUMINISTROS 472,55
63
Cuadro 15. Mano de obra directa.
CONCEPTO CANTIDAD DÍAS VALOR TOTAL
Tesista 1 120 15 1800
Ayudante 1 30 10 300
Total 2 100 Nota .-en estos valores están incluidos todo lo de ley
Cuadro 16. Gastos financieros
I = C i n CICLO
I = 4514.13 X 0.065 X 1 293.42/ 4 73.35
CONCEPTO VALOR DA UTIL TIEMPVALOR DEPRECIACIÓN CICLODreciacion de Sist riego 106 15 7,07Depresiacion de Infraestructura 160,55 15 18,03Computadora 800,00 3A;OS 89,00TOTAL DEPRECIACION 1066,55 114,10
Cuadro 6. Depreciaciones de activos fijos
Cuadro 18. Ingresos del proyecto.
INGRESOS = PRECIO POR CANTIDAD PRECIO CANTIDAD
2,12 2500
INGRESO VENTAS 5300
64
Cuadro 19. Composición de la inversión total.
Depreciación de activos fijos VALOR
Computadora 800
Sistema de riego 106.10
Ramada 160.55
Capital de trabajo 1476.56
Subtotal 2537.80
Imprevistos 5% 126.65
TOTAL DE INVERSIÓN 2664.50
Cuadro 20. Precio de venta.
CME + 15%
1,84 +(1,84*0,15)
2,12
Cuadro 22 Costo medio de venta. COSTO MEDIO O UNITARIO
C Me = CT
# Q
C Me = 4.605,31
2500
C Me = 1.84