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Normas de recogidade muestras
en enfermedades infecciosas
María José MonederoCentro Salud Rafalafena
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Conceptos generales
• Cómo , cuando y dónde se obtienen las muestras
• Cómo y cuanto tiempo tardan en ser remitidas al Lab Micro
• Manual de procedimientos de recogida de muestras
• Mala obtención de muestras
• Fallo recuperación microorganismo causante infección
• Aislamiento de flora contaminante
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Circuito e información de interés• Circuito
• Recogida muestra ( impresos adecuados)
• Remisión a mostrador para anotar datos
• Entrega de la muestra ( se puede posponer 24h)
• Información interés
• Lugar y teléfono de recogida/entrega de muestras en el CS
• Lugar: Consultas de extracciones y curas
• Horario: 8-8,30h
• Teléfono: 433484
• Teléfono Laboratorio microbiología : 725102
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Normas generales de recogida• Preparar material necesario: dotación adecuada en consultas medicina y enfermería
• Lavado de manos antes y después
• Antes de inicio de tratamiento antibiótico
• Recoger cantidad suficiente
• Técnica adecuada
• Cada muestra: un volante de petición
• Las muestras pueden ser conservadas a temperatura ambiente
• Remitir al laboratorio lo antes possible (24h)
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Tiempos• Cultivos: 48/72h• PCR: 7/8 días• Uñas: 4 semanas
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• Tubo con medio especial
Chlamydias
• Tubo sin medio transporte
• Tubo con medio especial para S
agalactiae ( Matronas)
• Tubo con medio habitual
(Amies) Gel o líquido
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Cultivo/exudado faríngeo
• Sirve para detectar Streptococcus y otros gérmenes menos frecuentes.
• Gold standard para diagnóstico etiológico de faringoamigdalitis. Tiempo mínimo 72h
• Tubo con medio de transporte, excepto si determinación antigénica ( tubo seco).
Temperatura ambiente 24h
• Si determinación antigénica: Strep A (TAR). Tiempo 5 min. Util en la clínica
• Toma de muestra: amígdalas y pared posterior faríngea ( evitar contacto con lengua y
saliva)
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Cultivo de esputo• Indicaciones
• Infecciones de tracto respiratorio inferior: escasa utilidad
• Tiene su principal indicación para la detección de Pneumocystis jiroveci y M. tuberculosis. Para el resto de los
microorganismos su utilidad es dudosa
• Material
• Contenedor estéril de boca ancha con tapón de rosca.
• Nebulizadores, suero salino 3-10%, Jeringa 10cc y aguja, cuando se necesite realizar inducción
• Procedimiento
• Esputo espontáneo: Primera hora de la mañana, en ayunas. Se debe extraer la dentadura postiza, en los casos que
sea utilizada, e indicar al paciente enjuague de la boca con agua o solución salina estériles antes de la recogida
de la muestra. Deben desecharse los esputos compuestos por saliva o secreciones postnasales.
• Esputo inducido: Nebulizaciones de suero fisiológico estéril (25ml de solución salina estéril al 3-10%) + drenaje
postural o fisioterapia respiratoria.
• Una muestra es suficiente excepto M tuberculosis que son 3 (días consecutivos)
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Exudado ótico y nasal
• Exudado nasal
• Portadores de Staphylococcus aureus/Bordetella pertussis/Gripe
• Introducir escobillón 1-2 cm y rotar suavemente. Tubo con medio transporte
• No sirve para diagnóstico etiológico de sinusitis
• Exudado ótico
• OMA
• Etiologia: muestra por punción timpánica
• Perforación espontánea: Exudado/pus fluyente/escobillón/tubo con medio transporte
• OED.- Muestras de mala calidad. No útiles
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Exudado conjuntival
• Obtener muestra previa instilación de tratamiento tópico con colirios. No emplear
anestésicos para la toma de muestras
• Mojar torunda con suero salino y frotar sobre conjuntiva tarsal inferior y fornix. Para
investigar Chlamydia, evertir el párpado y frotar superficie conjuntival.
• Evitar el contacto con el borde del párpado
• Utilizar una torunda para cada ojo
• Tubos con medio de transporte Amies. Si sospecha Chlamydia, tubo con medio de
transporte especial
• Hoja microbiología- frotis conjuntival- bacteriológico
• Poca utilidad clínica
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Infecciones genitalesITS
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Canal endocervical/exudado vaginal
• Canal endocervical (sospecha cervicitis)
• Limpiar exocervix de secreciones vaginales e introducir torunda en canal endocervical
• Tubo con medio de transporte Amies ( microbiología-frotis cervical-its)
• Tubo medio especial Chlamydia/tubo sin medio (mmolecular/serología-pcr
chlamydia/gonococo)
• Exudado vaginal ( sospecha vaginitis)
• Limpiar exocervix de secreciones vaginales
• Tomar muestra de la zona de mayor exudado vaginal o del fondo de saco
• Tubo con medio de transporte Amies ( microbiología-frotis vaginal-ITS)
En la literatura se contempla la posibilidad de autotoma por parte de la paciente ante sospecha de vaginitis
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No auto-toma
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Toma de muestras uretral
• No haber orinado en las 2h previas a la toma de muestra
• Toma de muestra
• Si existe secreción abundante, exprimir la uretra y tomar la muestra
• En ausencia de secreción, introducir torunda 2 cm y rotar suavemente
• Tubos
• Tubo con medio de transporte Amies- hoja microbiología-frotis uretral- bacteriológico/its
• Torunda con medio especial/sin medio- hoja mmolecular/serología- PCR exudado uretral
para Chlamydia trachomatis/N gonorrhoeae
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No auto-toma
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Toma de muestras rectal
• Introducir torunda en esfínter anal (3cm) y rotar suavemente
• Evitar contacto con heces ( invalida la muestra)
• Tubos
• Tubo con medio de transporte Amies ( gonococo)
• Tubo sin medio o con medio especial Chlamydia
• Documentos
• Microbiología- Exudado rectal- Bacteriología/ITS o PCR exudado rectal para Chlamydia
trachomatis/N gonorrhoeae
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