Comité Estatal de Sanidad Acuícola e Inocuidad de Baja California A.C.
Acciones Sanitarias en el
Cultivo de Moluscos.
Programa 2013
Comité Estatal de Sanidad Acuícola e Inocuidad de Baja California A.C.
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Contenido
1. INTRODUCCIÓN .......................................................................................................................... 2
2. UNIDADES DE PRODUCCION OPERANTES EN EL CICLO. ............................................................... 2
3. MAPA DE DISTRIBUCIÓN DE ZONAS Y EMPRESAS DE MOLUSCOS EN BAJA CALIFORNIA............... 4
4. ACCIONES SANITARIAS REALIZADAS EN EL CICLO 2013. ............................................................... 4
4.1 Asistencia técnica. ........................................................................................................................... 4
4.2 Vigilancia Epidemiológica ............................................................................................................... 5
5. CONTINGENCIAS SANITARIAS EN EL CICLO 2013. ...................................................................... 12
6. PRODUCCIÓN OBTENIDA. ......................................................................................................... 14
7. CAPACITACIÓN ......................................................................................................................... 15
8. PROMOCIÓN Y DIFUSIÓN .......................................................................................................... 15
9. CONCLUSIONES DEL CICLO ........................................................................................................ 16
ANEXOS............................................................................................................................................... 18
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1. INTRODUCCIÓN El cultivo de ostión japonés (Crassostrea gigas) es el cultivo comercial de moluscos mas importante en el estado de Baja California, México. Se desarrolló exitosamente a partir de su introducción a la Bahía San Quintín en la década de los 70’, para 1980 el cultivo de este organismo se había extendido a los Estados de Sonora, Baja California Sur, Sinaloa y Nayarit. Actualmente, en Baja California se tienen seis cuerpos de agua clasificados sanitariamente para exportar los moluscos bivalvos cultivados a Estados Unidos de Norteamérica. La mayor parte de las unidades de producción acuícolas (UPAs) del estado de Baja California, se dedican a la ostricultura siendo esta la industria más grande del estado. Con el paso del tiempo algunas unidades de producción han diversificado las especies de cultivo, las cuales también han tenido una notoria importancia económica, pudiendo mencionar al mejillón mediterráneo (Mytilus galloprovincialis), ostión kumamoto (Crassostrea sikamea), almeja manila (Tapes philippinarum), almeja mano de león (Lyropecten subnodosus), Almeja arenera (Chione succinta), almeja de sifón (Panopea abrupta) y abulón rojo (Haliotis rufescens). Las áreas concesionadas para el cultivo de los moluscos tienen aproximadamente una superficie total de 1600 hectáreas para cultivo de las especies antes mencionadas, de las cuales, alrededor de 600 hectáreas se tienen instaladas y en operación, mismas que son atendidas por el Comité Estatal de Sanidad Acuícola e Inocuidad de Baja California (CESAIBC). Actualmente, se tienen registradas 44 empresas dedicadas a la producción de moluscos, de las cuales 38 son UPAs y 6 laboratorios de producción comercial de larvas y semillas. Las primeras, ubicadas en Bahía de Todos Santos, Bahía San Quintín, Laguna Manuela, Laguna Guerrero Negro, San Felipe, el Rosario y en el Ejido Eréndira, de las cuales , 34 están dedicadas al cultivo de moluscos bivalvos y 7 al cultivo de abulón. Por otro lado, los 6 laboratorios de producción comercial de moluscos se encuentran localizados en la Bahía de Todos Santos, Ejido Esteban Cantú, Ejido Eréndira y Bahía Falsa en San Quintin, BC.
De las 44 empresas registradas, 39 operaron durante este ciclo, las cuales se enlistan en la tabla I.
2. UNIDADES DE PRODUCCION OPERANTES EN EL CICLO.
Tabla I. Listado y ubicación de las unidades de producción acuícola así como de los laboratorios de producción comercial que operaron en el ciclo 2013.
Unidad de producción Ubicación
1 Aqualap, S.A. de C.V. Bahía de Todos Santos
2 Acuacultura Oceánica, S de R.L.M.I Bahía de Todos Santos
3 Javier García Pamares Bahía de Todos Santos
4 Agromarinos, S.A de C.V. Bahía de San Quintín.
5 Acuícola San Quintín, S.A de C.V. Bahía de San Quintín.
6
Acuícola Chapala, S.P.R de R.L. Bahía de San Quintín.
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Unidad de producción Ubicación
7 Ana Salazar Cota Bahía de San Quintín.
8 Bañaga del Mar, S. de R.L. de C.V. Bahía de San Quintín.
9 Ostiones Guerrero, S.A de C.V. Bahía de San Quintín.
10 Max Mar Mariscos, S.A de C.V. Bahía de San Quintín.
11 Cultivadores del Pacífico, S de R.L. Bahía de San Quintín.
12 Ostiones del Noroeste, S de R.L. Bahía de san Quintín.
13 Cristóbal Murillo Villanueva Bahía de San Quintín.
14 Granja Ostrícola El Rincón, S. de R.L. de C.V. Bahía de San Quintín.
15 Maricultivos González, S.P.R de R.L. Bahía de San Quintín.
16 JC Juan Cota, S.P.R de R.L. Bahía de San Quintín.
17 Productos Marinos, S. P.R de R.L Bahía de San Quintín.
18 RL Rosales Ledezma, S.P.R de R.L Bahía de San Quintín.
19 Granja Ostrícola Nautilus, S. de R.L. de C.V. Bahía de San Quintín.
20 J. Martin Rangel Mendoza Bahía de San Quintín.
21 Brisa Marina, S.P.R de R.L. Bahía de San Quintín.
22 El Acuacultor S.P.R de RL Bahía de San Quintín.
23 Rocas de San Martín S.P.R de R.L Bahía de San Quintín.
24 Max Mar Mariscos, S.A. de CV Laguna Manuela
25 Morro Santo Domingo, S.P.R de R.I Laguna Manuela
26 SCPP Turismo y Acuícola Ostión del Pacífico S.C. de R.L de C.V S.C de R.L de C.V.
Norte de Laguna Guerrero Negro
27 Intermareal, S.A. de C.V. Norte de Laguna Guerrero Negro
28 Campo Miramar Puertecitos.
29 Campo Alejo Núñez Puertecitos.
30 Campo San Felipe. Puertecitos.
31 Abulones Cultivados, S de R. L de CV Ejido Eréndira.
32 Productores Marinos Baja, S.A. de C.V. Ejido Eréndira.
33 José Enrique Vazquez Moreno Ejido Eréndira
34 Asociación Pesquera REGASA No 2, S.P.R. de R.L El Rosario, B.C.
35 HG Sea Food, S.A de C.V (laboratorio) Ejido Esteban Cantú.
36 Productores Marinos Baja S.A de C.V (laboratorio) Ejido Eréndira.
37 Laboratorio de Biotecnología de Moluscos de la UABC Bahía de Todos Santos.
38 Productos Oceánica (laboratorio) Bahía de Todos Santos.
39 Litoral de Baja California SPR de RL (laboratorio) Bahía de San Quintín
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3. MAPA DE DISTRIBUCIÓN DE ZONAS Y EMPRESAS DE MOLUSCOS EN BAJA CALIFORNIA. En Baja California se tienen 5 zonas principales en las que se realizan actividades de acuacultura de moluscos (fig. 1).
Fig.1 Distribución de las zonas de cultivo en el Estado de Baja California y número de empresas registradas en cada una de ellas .
4. ACCIONES SANITARIAS REALIZADAS EN EL CICLO 2013.
4.1 Asistencia técnica.
En el ejercicio del plan de trabajo 2013, se realizaron visitas de asistencia técnica a las Unidades de Producción Acuícola y laboratorios de producción comercial de larvas y semillas de moluscos en el estado (fig. 1, tabla. 2) de las zonas de Bahía de Todos Santos, Rincón de Ballenas, Bahía San Quintín, el Rosario, Laguna Manuela, Zona Norte de Laguna Guerrero Negro, Ejido Eréndira y Ejido Esteban Cantú. En cada una de las visitas se realizó la verificación sanitaria de las instalaciones, así como la observación de que el personal operativo llevara a cabo la aplicación de las buenas prácticas de sanidad acuícola. Es importante mencionar que cada una de las visitas realizadas cuentan con la documentación soporte de acuerdo al formato de verificación correspondiente a las UPA’s.
En cada una de las visitas técnicas se llenaron los formatos correspondientes de acuerdo a la zona y/o sistema de cultivo que respaldan que éstas fueron realizadas y en las cuales se evalúan las siguientes áreas de trabajo:
a) Personal e instalaciones en tierra. b) Área de maquila. c) Área de fijación. d) Balsa de prengorda. e) Área de cultivo. f) La aplicación de Buenas Prácticas en general.
Zona de cultivo No. de empresas
1 Bahía de Todos santos y Eréndira
11
2 Bahía de San Quintín y el Rosario.
25
3 Laguna Manuela 2
4 Norte de laguna Guerrero negro
3
5 San Felipe 3
TOTAL 44
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Tabla 2. Visitas de asistencia técnica programadas y realizadas en Unidades de Producción de moluscos durante el ciclo.
4.2 Vigilancia Epidemiológica Registro, monitoreo y análisis de larvas y /o semillas introducidas al Estado. En el ciclo 2013, se registró la introducción al estado de únicamente 5 lotes de semillas de moluscos bivalvos (Crassostrea gigas) a los cuales se les solicitó análisis de PCR para herpesvirus, hubo registros de lotes de larvas mas estas venían acompañados de su respectivo análisis sanitario el cual fue solicitado por el laboratorio de producción comercial de origen. (Tablas 3 y 4).
Tabla 3. Análisis programados y realizados en lotes de semillas y larvas introducidos al estado en el ciclo 2013.
Tabla 4. Resultado de los análisis realizados a lotes de semillas y larva introducidas al estado durante el ciclo 2013.
Mes Visitas programadas Visitas realizadas Observaciones
Enero 0 0
La diferencia entre lo programado y lo realizado se debe a que un productor de la Bahía de Todos Santos que dejó de operar a medio ciclo, por otro lado, con un productor de la zona de Eréndira no se concretaron todas las visitas.
Febrero 19 19
Marzo 4 5
Abril 27 23
Mayo 3 6
Junio 30 25
Julio 2 4
Agosto 29 21
Septiembre 3 0
Octubre 24 12
Noviembre 6 24
Diciembre 23 22
170 161
Determinación Programados
en el ciclo Realizados en el ciclo
Observaciones
PCR para detección de herpesvirus 15 7 La diferencia entre lo programado y lo realizado fue debido a que no se registraron las introducciones de larvas o semillas esperadas.
Fecha Procedencia Tamaño del
lote (millones)
Especie Laboratorio
de análisis
Análisis realizados
Resultados
03-may-13 Tongoy, Chile 0.120 C. gigas I.S.A PCR NO DETECTADO
14-may-13 CREMES, Son. 1.44 C. gigas I.S.A PCR NO DETECTADO
24-may-13 La Paz, BCS 0.200 C. gigas I.S.A PCR NO DETECTADO
04-jun-13 CREMES, Son. 1.00 C. gigas I.S.A PCR NO DETECTADO
06-jun-13 una Muestras de un lote de larvas y otro de semillas que se pretendía importar. Comenta el productor que por problemas con los permisos de importación no se pu- do realizar la introducción, sin embargo el análisis se llevó a cabo.
PCR NO DETECTADO
06-jun-13 PCR NO DETECTADO
21-sep-13 La Paz, BCS 0.070 C. gigas I.S.A PCR NO DETECTADO
total Semillas 2.83 millones.
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Monitoreo y análisis en laboratorios de producción comercial de moluscos bivalvos. Dentro del programa de vigilancia epidemiológica en el estado, se contempló el seguimiento sanitario de lotes de larvas y semillas producidos en laboratorios de producción comercial así como de los reproductores utilizados. Dicho seguimiento, considera análisis de larvas y semillas de moluscos bivalvos para detección de herpesvirus (OsHV-1) y Perkinsus marinus mediante la técnica de PCR, así como para detección de enfermedades certificables de acuerdo a la NOM-010-PESC-1993 mediante análisis histopatológicos. En el Estado, se tienen registrados seis laboratorios de producción, 5 operaron en el ciclo y fue a éstos a los que se les dió seguimiento sanitario en el ejercicio del programa. (Tablas 5, 6, 7 y 8). Tabla 5. Análisis de lotes de larvas o semillas programados y realizados en laboratorios de producción comercial de molusco en el estado,
hasta el ciclo 2013
Tabla 6. Seguimiento de verificación sanitaria para detección de herpesvirus (OsHV-1), Perkinsus marinus y enfermedades certificables
(OIE y NOM-010- PESC-1993) en laboratorios de producción comercial de moluscos.
Determinación Programados
en el ciclo Realizados en el ciclo
Observaciones
Labs. comerciales
PCR para herpesvirus 16 22
Se superó la meta en cuanto análisis. PCR para Perkinsus. 3 2
Histopatología 11 10
Total 30 34
Instalación Muestreada
Fecha del Muestreo
Tipo de Muestra
Tamaño de muestra.
Análisis realizado Resultados HV PK HP
LABORATORIO 2
Ene-13
Almeja de sifón (semillas)
150 1 1 -
Herpesvirus (OsHV-1) No detectado.
Perkinsus marinus: No detectado
HISTOPATOLOGIA:
Enfermedades certificables :
*Bonamia exitiosa, Bonamia ostreae, Perkinsus marinus, Perkinsus olseni, Marteilia refringens, Mikrocytos mackini,
Haplosporidium nelsoni, Enfermedades bacterianas, Enfermedades virales.
No detectadas.
HV- herpesvirus PK- Perkinsus marinus.
LABORATORIO 3 Almeja de sifón.
(semillas) 60 1 1 -
LABORATORIO 1 Ostión japonés.
(semillas) 150 1 - -
LABORATORIO 4 Feb-13
Mejillón del Pacifico. (semillas)
150 1 - -
LABORATORIO 1 Ostión japonés
(semillas) 150 1 - 1
LABORATORIO 4 Mar-13 Ostión japonés
(semillas). 150 1 - -
LABORATORIO 1 Abr-13 Ostión japonés
(semillas) 150 1 - 1
LABORATORIO 1
May-13
Ostión japonés (semillas)
150 1 - 1
ostión Kumamoto (larvas)
150 1 - 1
LABORATORIO 2 Almeja de sifón.
(semillas) 150 1 - -
LABORATORIO 1 Ostión kumamoto
(semilla) 150 1 - -
LABORATORIO 1 Jun-13 Ostión japonés
(larvas) 150 1 - -
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Tabla 6. (CONTINUACIÓN)
Tabla 7. Análisis de lotes de reproductores programados y realizados en laboratorios de producción comercial de moluscos en el
estado, durante el ciclo 2013.
Tabla 8. Resultado de los análisis realizados a organismos reproductores de moluscos durante el ciclo 2013.
Instalación Muestreada
Fecha del Muestreo
Tipo de Muestra
Tamaño de muestra.
Análisis realizado Resultados
HV PK HP
LABORATORIO 3
Jul-13
Almeja de sifón. (semillas)
60 1 - -
Herpesvirus (OsHV-1) No detectado. Perkinsus marinus: No detectado
HISTOPATOLOGIA: Enfermedades certificables No detectadas.
HV- herpesvirus PK- Perkinsus marinus. HP- histopatologia.
HV- herpesvirus PK- Perkinsus marinus.
HP- histopatologia
LABORATORIO 1
Ostión japonés (semillas)
150 1 - -
Ostión kumamoto (semilla)
150 1 - 1
Ago-13 Ostión japonés
(larvas) 150 1 - 1
LABORATORIO 5
Sep-13
Ostión japonés (larvas)
150 1 - -
LABORATORIO 1
Ostión japonés (semillas)
150 1 - 1
Ostión japonés (larvas)
150 1 - 1
LABORATORIO 5 Oct-13 Ostión japonés
(larvas) 150 1 - -
LABORATORIO 1 Nov-13
Ostión japonés (semillas)
150 1 - 1
Ostión japonés (larvas)
150 1 - 1
TOTALES
22 2 10
Determinación Programados
en el ciclo Realizados en el ciclo
Observaciones
Labs. comerciales
PCR para herpesvirus 90 40 La diferencia entre lo programado y lo realizado se debió a que se redujo el tamaño de muestra en laboratorios debido a que los lotes de organismos en maduración son chicos.
PCR para Perkinsus. 90 40
Total 180 80
Nombre de la Instalación Muestreada
Fecha del Muestreo
Tipo de Muestra
Núm. de organismos
monitoreados.
Análisis Realizado
Laboratorio de Diagnóstico
Resultado
Lab. Productos Oceánica Abr-13 Almeja de sifón 5 Herpesvirus
ISA
No detectado
Perkinsus No detectado
Maxmar Mariscos(HG) May-13 ostión
kumamoto 5
Herpesvirus No detectado
Perkinsus No detectado
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Tabla 8. Continuación.
Monitoreo y análisis en zonas de cultivo de moluscos bivalvos.
En el ciclo 2013, dentro del programa de vigilancia epidemiológica se realizaron monitoreos in situ para análisis y detección de herpesvirus (OsHV-1) y Perkinsus marinus mediante la técnica de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) en semillas, organismos juveniles y adultos, además, de análisis histopatológicos para detección de enfermedades certificables de acuerdo a la NOM-010-PESC-1993 en cuerpos de agua clasificados sanitariamente para la exportación de moluscos que se encuentran en nuestra entidad (Tabla 9 y 10). Estos monitoreos se efectuaron dependiendo de la zona de cultivo así como de la especie de cultivo. De esta manera, se tomaron muestras de ostión japonés (Crassostrea gigas), mejillón mediterráneo (Mytilus galloprovincialis), ostión kumamoto (Crassostrea sikamea), almeja manila (Tapes philippinarum), Almeja arenera (Chione succinta) y abulón (Haliotis rufescens). En Bahía de Todos Santos se tienen dos unidades de producción en la zona de Rincón de Ballenas por lo que se cuenta con dos estaciones de monitoreo (una en cada Unidad de producción) (Fig.2). En Bahía de San Quintín, por ser el cuerpo de agua en el que se encuentra el mayor número de unidades de producción y en el cual se cultiva el mayor número de especies, se tienen cinco estaciones de monitoreo distribuidas en 3 zonas: boca, centro y cabeza. (Fig.2). En Laguna Manuela y en la zona Norte de Laguna Guerrero Negro se tienen 2 estaciones de monitoreo y 2 unidades de producción en cada uno de los cuerpos de agua (Fig.2).
Nombre de la Instalación Muestreada
Fecha del Muestreo
Tipo de Muestra
Núm. de org. Monitoreados.
Análisis Realizado
Laboratorio de Diagnóstico
Resultado
Maxmar Mariscos(HG) May-13 ostión japonés 5 Herpesvirus
ISA
No detectado
Perkinsus No detectado
Litoral de Baja California Jul-13 Ostión japonés 20 Herpesvirus No detectado
Perkinsus No detectado
Lab. Oceánica. (Productos Oceánica)
Nov-13 Almeja de sifón 5 Herpesvirus No detectado
Perkinsus No detectado
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Fig. 2 Estaciones de monitoreo y georreferencia de las mismas, establecidas en las cuatro zonas de cultivo de moluscos para vigilancia epidemiológica.
RINCON DE BALLENAS BAHÁ DE SAN QUINTÍN
ESTACION LATITUD LONGITUD ESTACION LATITUD LONGITUD
1 31° 45’53” 116° 39’39” 1 30° 26’ 21” 116° 00’ 48”
2 31° 44’ 16” 116° 44’ 49 2 30° 27’07” 116° 00’ 23”
LAGUNA MANUELA 3 30° 25’56” 116° 00’09”
1 28° 07' 54” 114°04’11” 4 30° 25’ 41”
115° 59’ 06”
2 28° 07’ 42” 114° 04’ 02” 5 30° 08’01” 114° 04’23”
NORTE DE LAGUNA GUERRERO NEGRO
1 28° 2.0’10.6” 114° 6.0’30.9”
2 28° 00’57” 114° 6.0’51”
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Tabla 9. Monitoreos de organismos programados y realizados en las zonas de cultivo del estado durante el ciclo 2013.
NOTA: La información de los análisis en la tabla superior, no incluye los realizados para las contingencias sanitarias del ciclo (ver tabla 13)
Tabla 10. Monitoreos, numero de organismos, especies monitoreadas y análisis realizados para la detección de herpesvirus, Perkinsus marinus y enfermedades certificables (OIE y la NOM-010-PESC-1993) en los cuerpos de agua de cultivos de moluscos del estado durante el ciclo 2013.
De acuerdo a diagnósticos emitidos por el laboratorio de análisis el Instituto de Sanidad Acuícola (I.S.A.), en los monitoreos de vigilancia realizados en el ciclo, no se presentó ningún detectado para herpesvirus en organismos adultos. En relación a los análisis histopatológicos para detección de enfermedades infecciosas certificables de acuerdo a la OIE y NOM-010-PESC-1993 como son Bonamia exitiosa, Bonamia ostreae, Perkinsus marinus, Perkinsus olseni, Marteilia refringens, Mikrocytos mackini, Haplosporidium nelsoni y Enfermedades bacterianas no se detectó ningún caso.
Determinación Rincón
de Ballenas Bahía de
San Quintín Laguna
Manuela Norte de Laguna Guerrero Negro
programados Realizados Programados Realizados Programados Realizados Programados Realizados
PCR herpesvirus 8 8 32 32 8 7 8 9
PCR Perkinsus 8 8 32 32 8 7 8 8
Histopatología 2 2 8 8 2 1 2 2
total 18 18 72 72 18 15 18 19
Cuerpo de
agua
No. de
organismos
Especie Analisis de PCR *Análisis
histopatologicos Resultados
herpesvirus Perkinsus
Bahía de Todos Santos.
75 adultos C. gigas. 8 8 2
Herpesvirus (OsHV-1): No detectado. Perkinsus marinus : No detectado
No se encontraron Enfermedades infecciosas certificables.
*Bonamia exitiosa, Bonamia ostreae, Perkinsus marinus, Perkinsus olseni, Marteilia refringens, Mikrocytos mackini, Haplosporidium nelsoni,
Enfermedades bacterianas, Enfermedades virales.
75 adultos M.
galloprovincialis
Bahía de San Quintín
120 adultos C. gigas
32 32 8 75 adultos C. sikamea
75 adultos Chione sp.
75 adultos T. philippinarum
Laguna Manuela
75 adultos C. gigas 7 7 1
Laguna Guerrero
Negro
225 adultos y juveniles
C. gigas 9 8 2
TOTAL 795 111 13
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Monitoreo y análisis de abulón rojo (Haliotis rufescens). De acuerdo al padrón de productores con el que cuenta el CESAIBC se tienen 6 Unidades de Producción dedicadas al cultivo de éste molusco, de las cuales a 4 se les dio seguimiento sanitario con visitas y monitoreo de organismos para análisis histopatológicos para detección del síndrome de deshidratación (Xenohaliotis californiensis); en cuanto a la ubicación de las unidades de producción operantes, una se localiza en San Quintin, dos más en el ejido Eréndira y una en el Rosario, BC. En el ciclo 2013, se realizaron 10 monitoreos de los 11 programados, diagnosticándose el Síndrome de deshidratación (SD) con intensidades de que van de ligera a abundante (tablas 11 y 12). El Xenohaliotis californiensis causante del síndrome de deshidratación estuvo presente en la mayoría de los organismos analizados y está asociado con eventos de mortalidad en esta especie, ya que las condiciones de estrés son las que favorecen el desencadenamiento del SD, causando la muerte de los organismos. Una vez diagnosticado y determinado el grado de afectación, el CESAIBC emite al productor sugerencias con algunas medidas de bioseguridad las cuales resultan de vital importancia para minimizar el grado de afectación, mencionando a continuación algunas de ellas como las siguientes:
a. Mejorar la calidad del agua aumentando la circulación de ésta en los estanques. b. Intensificar los cuidados sanitarios en los estanques, eliminando las heces y restos de alimentos. c. De ser posible mantener la temperatura del agua por debajo de los 18°C. d. Disminuir las densidades de los organismos en el estanque. e. Retirar o aislar organismos con signos clínicos de este síndrome (SD). f. Retirar los organismos muertos. g. Mantener un programa de monitoreo preventivo en la Unidad de Producción. h. Revisión periódica de los filtros de agua. i. Uso de buenas prácticas y aplicación de medidas de bioseguridad.
Tabla 11. Análisis Histopatológico de abulón para detección del síndrome de deshidratación (Xenohaliotis californiensis) programados y
realizados en el ciclo 2013.
Determinación Programados
en el ciclo Realizados en el ciclo
Observaciones
Abulón Histopatología
( síndrome de deshidratación) 11 10
La diferencia entre lo programado y lo realizado se debe a que un productor tuvo problemas con la aireación y liberó los organismos a su hábitat natural.
Total 11 10
Comité Estatal de Sanidad Acuícola e Inocuidad de Baja California A.C.
12
Tabla 12. Resultados de los análisis Histopatológico de abulón rojo (Haliotis rufescens) realizados en el ciclo 2013.
Se ha demostrado que la aplicación de las buenas prácticas y de medidas de bioseguridad de manera rutinaria disminuye el índice de afectación y prevalencia del patógeno en los organismos afectados y como consecuencia la posibilidad de una menor afectación económica.
5. CONTINGENCIAS SANITARIAS EN EL CICLO 2013.
De acuerdo a los registros del Comité Estatal de Sanidad Acuícola e Inocuidad de Baja California (CESAIBC), desde el año 2009 se han presentado episodios inusuales de mortalidad que han afectado a los productores ostrícolas del estado; estos eventos han sido tomados con seriedad debido a su recurrencia y su severidad. Hoy sabemos que el herpesvirus del ostión (OsHV-1) es un patógeno que hasta el momento (de acuerdo al historial del CESAIBC) ha afectado a los organismos juveniles (semillas) del ostión japonés (Crassostrea gigas) y ostión kumamoto (Crassostrea sikamea). Siendo el ostión japonés la especie más afectada, siguiendo aunque con menor grado de afectación el ostión kumamoto. Este patógeno generalmente hace su aparición entre los meses de marzo-abril y junio-julio, presentándose un solo episodio en el mes de noviembre (2009).
Fecha
Número de
organismos
Técnica utilizada
Observaciones
Febrero 2013
30
Histología: cortes de 5µ.
Tinción de hematoxilina-eosina/Floxina
Se detecta la presencia del Xenohaliotis californiensis causante del síndrome de deshidratación, observándose hipertrofia en células infectadas, hiperplasia de epitelios y desprendimiento de células epiteliales.
Destrucción focal en tejido renal de ligera a abundante entre el 30-70% de prevalencia.
Marzo 2013
30
No se detectaron enfermedades infecciosas certificables. Destrucción focal en tejido renal con intensidad de ligera a abundante del 30-90% de
prevalencia debido a la presencia de Pseudoklosia haliotis. Observación de ciliados tipo coccidios en estomago, inflamación del ápice branquial y
destrucción celular debido a la observación de inclusiones basófilas en branquia.
Mayo 2013
30 Se detecta la presencia del Xenohaliotis californiensis causante del síndrome de
deshidratación, por lo que se observa hipertrofia de células infectadas. Se observan ciliados en la boca del esófago.
30
No se encontraron enfermedades infecciosas certificables. Se observa destrucción focal en tejido renal debido a la presencia de Pseudoklossia haliotis.
Julio 2013
30 Hipertrofia de células infectadas e hiperplasia de epitelios, desprendimiento de células
epiteliales debido a la presencia de Xenohaliotis californiensis. Destrucción focal en tejido renal debido a la presencia de Pseudoklossia haliotis.
30 Hipertrofia de células infectadas debido a la presencia de Xenohaliotis californiensis. Destrucción focal en tejido renal por la presencia de Pseudoklossia haliotis. Hipertrofia de células infectadas en branquia debido a la presencia de ciliados.
Septiembre 2013
30 Hipertrofia de células infectadas e hiperplasia de epitelios así como desprendimiento de
células epiteliales debido a la presencia de Xenohaliotis californiensis. Destrucción focal en tejido renal debido a la presencia de Pseudoklossia haliotis.
Octubre 2013
30 Hipertrofia de células infectadas e hiperplasia de epitelios así como desprendimiento de
células epiteliales debido a la presencia de Xenohaliotis californiensis. Destrucción focal y en varios puntos del tejido renal debido a la presencia de
Pseudoklossia haliotis.
Diciembre 2013
30
Resultados en proceso en el laboratorio de análisis.
30
Resultados en proceso en el laboratorio de análisis.
Total 10
Comité Estatal de Sanidad Acuícola e Inocuidad de Baja California A.C.
13
Por otro lado, se ha demostrado, que existen varios factores coadyuvantes que pueden ser los causantes de dichos eventos de mortalidad inusual en los organismos siendo:
1. Falta de aplicación de las buenas prácticas y medidas de bioseguridad. en el manejo de los organismos. 2. El estrés al que son sometidos los organismos. 3. Cambios repentinos o bruscos en la temperatura del agua (cambios climáticos). 4. Eventos de hipoxia y anoxia en el medio.
El CESAIBC año con año, ha tomado en cuenta dentro de sus programas de trabajo, el monitoreo de organismos para el análisis de PCR para detección de herpesvirus en casos de contingencias sanitarias (tabla 13). Por otra parte, debido a la recurrencia de estos eventos, el comité ha visto en la necesidad de implementar un protocolo de acciones ante la presencia del herpesvirus en zonas de cultivo en Baja California.
Una vez que personal del CESAIBC es notificado del suceso, realiza una visita al productor afectado con la finalidad de recabar información sobre el o los lotes problema, se llena un acta de visita en la cual se dejan algunas de las sugerencias a seguir, además de que se toma una muestra de los organismos a los cuales se les solicitará un análisis de PCR para detección de herpesvirus. En el ciclo 2013, se presentó un caso de mortalidad en 9 lotes de semillas de ambas especies; esto ocurrió en el sistema de prengorda de semilla ubicado en la Bahía de Todos Santos.
Se le dio seguimiento al caso, de acuerdo al protocolo de acciones implementado para este tipo de contingencias (Anexo 1) por lo que ante la imposibilidad de la aplicación de un antibiótico o tratamiento específico a los organismos afectados, es que se le sugiere al productor la aplicación de algunas medidas de bioseguridad, las cuales se enlistan enseguida:
1. Eliminación del lote afectado. 2. No realizar movilizaciones de los organismos a otros cuerpos de agua. 3. Temporalmente, no incorporar nuevos lotes de organismos al sistema. 4. Disminuir las densidades en el sistema de prengorda. 5. Cada vez que se pretenda realizar un clareo, éste deberá realizarse de tal forma que se evite estresar a los
organismos. 6. Aplicar métodos de desinfección de los utensilios tal como cucharas, tamices, charolas, pinzas, etc. Antes
y después de iniciar a trabajar con otro lote. 7. Dar seguimiento de la mortalidad presentada en cada uno de los lotes (utilizar bitácoras) 8. Evitar mezclar los lotes entre si y mantener la ubicación de los mismos.
Para dar cumplimiento a las disposiciones de la Dirección General de Salud animal, a través de la Dirección de Vigilancia Epidemiológica del Servicio Nacional de Sanidad, Inocuidad y Calidad Agroalimentaria (SENASICA) se llenaron los formatos de notificación de caso (SIVE 01) y seguimiento (SIVE 02), actualmente está en proceso el cierre de caso (Anexo 2). Con la implementación de estos formatos, la Dirección General de Salud Animal lo que busca es establecer los procedimientos que permitan tener un registro y dar seguimiento de eventos sospechosos y la presencia de patógenos que afectan a los organismos acuáticos en los diferentes estados del país, esto, con el
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fin de elaborar los procedimientos necesarios que permitan evaluar el comportamiento de dichos patógenos para la posterior creación de zonas libres, es por esta razón que existe una coordinación entre comité y laboratorio de diagnósticos para elaborar los respectivos informes.
Tabla 13. Monitoreos y análisis de organismos para detección de herpesvirus (OsHV) mediante la técnica de PCR realizados durante las
contingencias sanitarias presentadas en el ciclo 2013.
6. PRODUCCIÓN OBTENIDA.
Tabla 14. Producción acuícola de moluscos en el Estado de Baja California en el ciclo 2013
Nombre común Nombre científico producción (Ton)
ABULÒN ROJO Haliotis rufescens 48.5
ALMEJA MANILA Tapes philippinarum 17.4
ALMEJA CHIONE Chione succinta 0.2
MEJILLON Mytilus galloprovincialis 150.3
OSTION JAPONES Crassostrea gigas 1249.5
OSTION KUMAMOTO Crassostrea sikamea 23.6
TOTAL 1,489.5
Fuente: Comunicación personal productores.
Fecha Zona No. de
organismos monitoreados
Especie
No. muestras
No. Análisis
Laboratorio de
análisis Resultados
Sep-13
Bahía de todos Santos
300 C. gigas 2 2
Instituto de Sanidad Acuícola
DETECTADO
DETECTADO
300 C. gigas
2 2 DETECTADO
C. sikamea NO DETECTADO
750
C. sikamea
5 5
NO DETECTADO
C. gigas NO DETECTADO
C. gigas DETECTADO
C. gigas DETECTADO
C. gigas DETECTADO
Oct-13 450
C. gigas 3 3
NO DETECTADO
C. gigas NO DETECTADO
C. gigas NO DETECTADO
Nov-13
450
C. gigas 3 6
DETECTADO
C. gigas DETECTADO
C. gigas NO DETECTADO
450
C. gigas 3 3
NO DETECTADO
C. gigas NO DETECTADO
C. gigas NO DETECTADO
TOTAL 1800 18 21
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7. CAPACITACIÓN
Una de las actividades de gran importancia que año con año lleva a cabo el Comité Estatal de Sanidad Acuícola e Inocuidad de Baja California A.C. (CESAIBC) desde su constitución y con el apoyo de la Dirección de Sanidad Acuícola y Pesquera del SENASICA, la Secretaría de Pesca y Acuacultura del Estado de Baja California (SEPESCA), la Delegación de la SAGARPA en Baja California, el Instituto de Sanidad Acuícola A.C, el Centro de Investigación Científica de Educación Superior de Ensenada (CICESE) y el Patronato de la Baja SeaFood Expo, es encabezar la organización de en este caso el “V Simposio Internacional de Sanidad e Inocuidad Acuícola”, realizado en el marco de la Baja Expo SeaFood en la ciudad de Ensenada Baja California, los días 18 y 19 de septiembre del 2013, en el Salón de eventos del Hotel San Nicolás.
En este evento, se contó con la participación de 14 ponentes (7 extranjeros, 3 nacionales y 4 investigadores locales) quienes expusieron temas relacionados con sanidad e Inocuidad acuícola, así mismo se registró un total de 250 asistentes durante los dos días del evento entre los que destacan productores y procesadores acuícolas y pesqueros provenientes de todo el Estado, Comités de Sanidad Acuícola de los Estados de Baja California, Baja California Sur, Sonora, Puebla, Tamaulipas, Jalisco, Guerrero, Chiapas y Michoacán. También se contó con la presencia de Investigadores y estudiantes de la UABC, CICESE, Y CIBNOR, así como autoridades estatales y nacionales como la SAGARPA, SEPESCA, COFEPRIS, INAPESCA y SENASICA. (Anexo 1)
Otro evento realizado con la finalidad de Incrementar el nivel de conocimientos en materia de sanidad acuícola de moluscos, fue la realización del “2do. Encuentro de intercambio de experiencias entre productores del estado”, el cual se realizó en Guerrero Negro BCS los días 12 y 13 de diciembre del año en curso. A este evento asistieron productores acuícolas de las zonas de Ensenada, San Quintín, Laguna Manuela, de Guerrero Negro y de Baja California Sur, sin contar que hubo representación del Comité Estatal de Sanidad Acuicola de Baja California Sur (CESAIBCS) , representantes de SEPESCA y de la subdelegación Agropecuaria de la SAGARPA. (Anexo 2)
El objetivo de este curso de capacitación, el cual fue impartido por los propios productores ostrícolas, fue el que se conocieran las diversas artes de cultivo que han implementado los acuicultores en el desarrollo de su actividad, así como las técnicas aplicadas y las medidas sanitarias implementadas en sus cultivos.
8. PROMOCIÓN Y DIFUSIÓN
Participación dentro del evento “Conchas y vino” en el hotel Coral & Marina y en la “Baja Sea Food Expo” que se llevó a cabo en el mes de septiembre, donde el CESAIBC participó con un stand proporcionando y difundiendo información a través de trípticos y poster de los productos acuícolas que se cultivan en el Estado; ambos eventos se llevaron a cabo en Ensenada B.C. (Anexo 3)
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9. CONCLUSIONES DEL CICLO
Las acciones implementadas para el ciclo 2013 por el Comité Estatal de Sanidad Acuícola e Inocuidad de Baja California A.C. (CESAIBC) han permitido que se siga manteniendo el estatus sanitario en los cuerpos de agua del estado. En este ciclo, se tuvo un registro de 44 empresas en total de las cuales 38 son UPA’s y 6 son laboratorios de producción comercial de larvas y semillas de moluscos; 11 ubicadas en Bahía de Todos Santos y Eréndira, 25 en la Bahía de San Quintín y el Rosario, 2 en Laguna Manuela, 3 en la zona Norte de Laguna Guerrero Negro y 3 en San Felipe. Para el cumplimiento de las metas y objetivos del programa en este ciclo en cuanto a asistencia técnica, se realizaron 161 visitas en las cinco áreas de cultivo (fig.1, tabla 2) en cada una de las visitas realizadas en el ciclo, se realiza la verificación sanitaria de las instalaciones y de las buenas prácticas de sanidad acuícola, llenándose un formato de verificación dejándose por escrito las observaciones y sugerencias al productor, por lo que se cuenta con la documentación soporte de las mismas. En cuanto a la introducción o importación de larvas y semillas de moluscos al estado, durante este ciclo se introdujeron 5 lotes de semillas de ostión japonés con un total de 2.8 millones de organismos (tablas 3 y 4); mientras que de larvas se registraron 131 millones en 9 lotes diferentes; en relación a las larvas, todas provenían de un laboratorio de Baja California Sur , el productor no notificó oportunamente a este comité de la adquisición de las mismas, sin embargo, según se constató posteriormente, todos venían acompañados por su respectivo análisis sanitario el cual fue solicitado por el laboratorio productor de origen. En cuanto a los lotes de semillas éstos fueron monitoreados y analizados por medio de la técnica de PCR para detección de herpesvirus (OsHV-1) y Perkinsus marinus; en todos los casos el resultado de los análisis fue No Detectado.
En el ejercicio del programa de vigilancia y seguimiento sanitario en laboratorios de producción comercial de larvas y semillas de moluscos bivalvos del estado, se tomaron muestras de organismos y reproductores para detección del herpesvirus del ostión y Perkinsus marinus mediante la técnica del PCR y para detección de enfermedades certificables de acuerdo a la OIE y NOM-010- PESC-1993 por medio de histopatología; en todos los casos el resultado de los diagnósticos fue No Detectado (tablas 5, 6,7 y 8).
Dentro del programa de vigilancia epidemiológica en organismos cultivados en los cuerpos de agua clasificados sanitariamente en el estado, se monitorearon organismos de las especies cultivadas para análisis histopatológicos para detección de enfermedades certificables, así como para detección de herpesvirus del ostión y Perkinsus marinus por medio de la técnica de PCR, En todos los casos los resultados obtenidos para los organismos monitoreados en las unidades de producción acuícola, fueron No Detectado (fig.2, tablas 9 y 10).
En cuanto a las acciones sanitarias y monitoreos realizados en abulón rojo, la rickettsia (Xenohaliotis californiensis) causante del síndrome de deshidratación (SD) o Rickettsiosis del abulón, fue detectada en todos los casos, solo que con diferentes grados de intensidad, lo cual no deja de ser un riesgo pudiendo ser mayor si no es detectado a tiempo. La experiencia obtenida por los productores en el desarrollo de sus actividades y el manejo con esta especie de cultivo, han podido reducir el impacto en la afectación por este patógeno, observando que con la aplicación de las buenas prácticas sanitarias, así como con una buena adopción de las medidas de bioseguridad es posible reducir la severidad y prevalencia del SD. (Tablas 11 y 12).
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En el ciclo 2013, se reportó un episodio de mortalidad en semillas de ostión, en el sistema de prengorda FLUPSY ubicado en la Bahía de Todos Santos; este evento se observó en el mes de septiembre en nueve lotes distintos, de los cuales 7 fueron de ostión japonés y 2 de ostión kumamoto, estos últimos fueron los menos afectados; aunque se monitorearon, no se les detectó el patógeno; no siendo así con los otro lotes de ostión japonés los cuales presentaron cuadros de mortalidad que fluctúan entre el 21 y el 94% y a los cuales les fue detectado el herpesvirus (OsHV-1). Después del diagnóstico sanitario si es detectado como positivo para herpesvirus, se emite al productor las recomendaciones y sugerencias correspondientes para tal caso, esto con la finalidad de minimizar la prevalencia del patógeno; tales recomendaciones se realizan con apego al protocolo de acciones sanitarias ante la presencia de herpesvirus el cual fue emitido y entregado por el CESAIBC a los productores del estado en el 2012 (Anexo 3).
En relación a los lotes afectados, se les dio seguimiento y actualmente están bien ubicados, por lo que próximamente se realizará un último monitoreo a un lote de organismos para realizar el cierre de foco. Fueron llenados los formatos SIVE de notificación y después de este ultimo monitoreo se llenará el requerido para el cierre de foco (Anexo 4)
De acuerdo a la información proporcionada por los productores, la producción de moluscos obtenida en el ciclo 2013, es de aproximadamente 1,489.5 toneladas en las aproximadamente 600 hectáreas de superficie instaladas, de las cuales 48.5 toneladas corresponden al abulón rojo (Haliotis rufescens), 17.4 toneladas a almeja manila (Tapes philippinarum), 0.2 toneladas a almeja Chione (Chione succinta), 23.6 toneladas al ostión kumamoto (Crassostrea sikamea), 150.3 toneladas a mejillón mediterráneo (Mytilus galloprovincialis) y aproximadamente 1,249.5 toneladas de ostión japonés (Crassostrea gigas).
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ANEXO 1.
Fig. 1 Salón de conferencias del Hotel San Nicolás, en Ensenada, BC.
Fig. 2 Mesa de registro de asistentes
Fig. 3 Inauguración y bienvenida
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1
Fig. 4 Asistentes al evento. ANEXO 2.
GALERIA DE IMÁGENES:
“2DO INTERCAMBIO DE EXPERIENCIAS ENTRE PRODUCTORES OSTRÍCOLAS DEL ESTADO DE BAJA CALIFORNIA”, DEL 11 AL 13 DE DICIEMBRE DEL 2013.
Fig. 1 y 2. Presentación de las ponencias de Intermareal SA de CV y Morro Santo Domingo SPR de RI respectivamente
Comité Estatal de Sanidad Acuícola e Inocuidad de Baja California A.C.
2
Fig. 3 y 4. Recorrido por el área de cultivo de la Empresa Morro Santo Domingo SPR de RI e Intermareal SA de CV.
Comité Estatal de Sanidad Acuícola e Inocuidad de Baja California A.C.
3
ANEXO 3.
GALERIA DEL EVENTO LA CONCHA Y EL VINO NUEVO 2013
Comité Estatal de Sanidad Acuícola e Inocuidad de Baja California A.C.
1
ANEXO 5.
Lada
X
X
Lada
x
x
15.DESCRIPCION DE LA OBRA DE TOMA DEL AGUA:
17.SIGNOS Y LESIONES MACROSCOPICAS:
8.NOMBRE COMPLETO: Intermareal, S.A de C.V.
Long. (W): 116° 39' 49.6"
TEL: (646) 152 1656
OTROS: prengorda
INTENSIVO
Número
Calle o equivalente Número Localidad/Colonia C.P. Delegación/Municipio Estado
Los organismos muertos presentan las conchas abiertas y los vivos presentan apariencia natural.
Describa
OTROS:
16.INVENTARIO DE ESPECIES SUSCEPTIBLES AL MOMENTO DE LA NOTIFICACION.
35.623
D I R E C C I O N G E N E R A L D E S A L U D A N I M A LDIRECCION DE EPIDEMIOLOGIA Y ANALISIS DE RIESGOSISTEMA NACIONAL DE VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
FORMATO DE INVESTIGACION DE CASOS EN SANIDAD DE ESPECIES ACUATICAS
Para llenado de este formato referirse al instructivo anexo al reverso de esta hoja.
Número Localidad/Colonia C.P. Delegación/Municipio EstadoCalle o equivalente
ENCARGADO RESPONSABLE TECNICO2.TIPO DE RELACION:Nombre (s)
S I V E 01 Especie D.D.R.
PROPIETARIO OTRO:
Día M es
EstadoIDENTIFICACION MOL
PARTICULAROFICIAL AUTORIZADO/APROBADO ORGANISM O AUX. (Comité)
Delegación/Municipio Estado
13.DATOS DE GEORREFERENCIACION: Lat. (N): 31° 51' 43.8"
FASE DE DESARROLLO
POBLACION TOTAL % VIVOS %
M UERTOSLOTE
Describa
MADURACION
MATERNIDAD
PRODUCCION DE LARVAS
DescribaALEVIN OSTRILLA REPRODUCTORES
9.NIVEL DE APROVECHAMIENTO: EXTENSIVO SEMINTENSIVO HIPERINTENSIVO
NúmeroII. IDENTIFICACION DE LA INSTALACION ACUICOLA
ENGORDA
OTRO:Describa
7.DOMICILIO: Agustín de Iturbide 284-8, Colonia Obrera, Ensenada, Baja California.
CORREO ELECTRONICO: [email protected]
6.TIPO DE PERSONAL:
Calle o equivalente Número Localidad/Colonia C.P.
Apellido materno
BIOLOGO ING. EN ACUACULTURA OCEANOLOGO MEDICO VETERINARIO OTRO:
Nombre (s)
NúmeroDE LA NOTIFICACION
5.PROFESION:
4.NOMBRE COMPLETO: García Hirales Rubén
2 BC12 SEP 13
Apellido paterno Apellido materno
Año
I. IDENTIFICACION DEL RESPONSABLEDE LA INSTALACION ACUICOLA
3.DOMICILIO: Blvd. Teniente Azueta 187-b Recinto portuario, Ensenada, Baja California.
TEL: (646) 203 1412 CORREO ELECTRONICO: [email protected]
Apellido paterno
FECHA
1.NOMBRE COMPLETO: Frias Diaz Roger
RIO LLUVIA OTRO: bahía
POSTLARVAS CRIAS
10.FUNCION U OBJETIVO PRODUCTIVO:
Cuerpo de agua con certificación sanitaria.
11.ESTADIO:
12.DOMICILIO: peine "F" hotel Coral y Marina
TEL: (646) 203 1412 CORREO ELECTRONICO: [email protected]
* Adjuntar mapa indicando la ubicación de la explotación y cómo llegar a ella.
RO070813 ostrilla 500 000 6440.00%HG140813 ostrilla 543 000 77
Lada
HUEVO NAUPLIO LARVAS
14.FUENTE(S) DE ABASTECIMIENTO DE AGUA: POZO MAR ABIERTO MANANTIAL
LAGUNA ESTUARINA PRESA
C. gigas 07-Ago-13C. gigas 14-Ago-13
NOMBRE CIENTIFICO O COMUN FECHA DE SIEMBRA
Comité Estatal de Sanidad Acuícola e Inocuidad de Baja California A.C.
2
Para llenado de este formato referirse al instructivo anexo al reverso de esta hoja.
Lada
X
X
Lada
X
X
15.DESCRIPCION DE LA OBRA DE TOMA DEL AGUA:
17.SIGNOS Y LESIONES MACROSCOPICAS:
POBLACION TOTAL
% ENFERM OS
% M UERTOS
una apariencia normal.
HG 140813 ostrilla 543 000 77.0 23.0RO 070813
FECHA DE SIEMBRA
Describa
Describa
MADURACION
MATERNIDAD
PRODUCCION DE LARVAS
DescribaALEVIN OSTRILLA REPRODUCTORES
9.NIVEL DE APROVECHAMIENTO: EXTENSIVO SEMINTENSIVO HIPERINTENSIVO
NúmeroII. IDENTIFICACION DE LA INSTALACION ACUICOLA
Calle o equivalente Número Localidad/Colonia C.P. Delegación/Municipio Estado
OTRO:Describa
7.DOMICILIO: Agustín de Iturbide 284-8, Colonia Obrera, Ensenada, Baja California.
Apellido paterno Apellido materno Nombre (s)
BIOLOGO ING. EN ACUACULTURA OCEANOLOGO MEDICO VETERINARIO OTRO:
NúmeroDE LA NOTIFICACION
Calle o equivalente Número Localidad/Colonia C.P. Delegación/Municipio
4.NOMBRE COMPLETO: García Hirales Rubén
3.DOMICILIO: Blvd. Teniente Azueta 187-b Recinto portuario, Ensenada, Baja California.
TEL: (646) 203 1412 CORREO ELECTRONICO: [email protected]
Estado
1.NOMBRE COMPLETO: FRIAS DIAZ ROGER
OTRO:
Día M es Año
I. IDENTIFICACION DEL RESPONSABLEDE LA INSTALACION ACUICOLA
ENCARGADO RESPONSABLE TÉCNICO2.TIPO DE RELACION:
5.PROFESION:
ENGORDA
FORMATO DE INVESTIGACION DE CASOS EN SANIDAD DE ESPECIES ACUATICASS I V E 02 Especie D.D.R. Estado
IDENTIFICACION MOL 2 BC12 SEP 13
Apellido paterno Apellido materno Nombre (s)PROPIETARIO
FECHA
Lada
HUEVO NAUPLIO
10.FUNCION U OBJETIVO PRODUCTIVO:
Número Localidad/Colonia C.P. Delegación/Municipio Estado
OTRO: Bahía
* Adjuntar mapa indicando la ubicación de la explotación y cómo llegar a ella.
07-Ago-1314-Ago-13
NOMBRE CIENTIFICO O COMUN FECHA DE C. gigasC. gigas
16.INVENTARIO DE ESPECIES SUSCEPTIBLES AL MOMENTO DE LA NOTIFICACION.
13.DATOS DE GEORREFERENCIACION:
6.TIPO DE PERSONAL: OFICIAL AUTORIZADO/APROBADO PARTICULAR ORGANISMO AUX. (Comité)
LAGUNA ESTUARINA PRESA RIO LLUVIA
CORREO ELECTRONICO: [email protected]
12.DOMICILIO: peine "F" hotel Coral y Marina
TEL: (646) 152 1656 CORREO ELECTRONICO: [email protected]
8.NOMBRE COMPLETO: Intermareal, S.A de C.V.
Long. (W): 116° 39' 49.6"
TEL: (646) 152 1656
OTROS: pre engorda
OTROS:
INTENSIVO
Número
MAR ABIERTO MANANTIAL
LARVAS POSTLARVAS CRIAS
ostrilla 500 000 64.4 35.6
LOTE FASE DE DESARROLLO
Calle o equivalente
Lat. (N): 31° 51' 43.8"
los organismos muertos presentan las valvas abiertas, mientras que los vivos presentan
D I R E C C I O N G E N E R A L D E S A L U D A N I M A LDIRECCION DE EPIDEMIOLOGIA Y ANALISIS DE RIESGOSISTEMA NACIONAL DE VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA
Cuerpo de agua con certificacion sanitaria.
11.ESTADIO:
14.FUENTE(S) DE ABASTECIMIENTO DE AGUA: POZO
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