Formato Ilac- Lbm Unad Versión Mayo 01 2014

8/10/2019 Formato Ilac- Lbm Unad Versión Mayo 01 2014

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UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA –UNADEscuela de Ciencias Agrícolas, Pecuarias y del Medio Ambiente-ECAPMA

Programas: Zootecnia; Agronomía; Ingeniería Agroforestal

LABORATORIOS DE BIOQUÍMICA METABÓLICA-LBMProf: Jairo Granados., MSc

1

PRÁCTICA 1

Determinación de Actividad Ureásica (AU) en suelos, pastos yForrajes

INTEGRANTES DEL GRUPO

ROSAURA ANDREA RENGIFOCODIGO: 1.062.284.022

CORREO: [email protected]

DIRECTOR DE CURSO

JAIRO GRANADOS MORENO

CEAD: SANTANDER DE QUILICHAO

PROGRAMA: ZOTECNIA

FECHA: ____________






2

RESUMEN

La ureasa es una exoenzima que cataliza la reacción de hidrólisis de la urea, elprincipal producto celular nitrogenado de la degradación de las proteínas y losácidos nucleicos, el cual es más fácil de eliminar que otras formas de nitrógeno(como el amoniaco) porque es soluble en agua y menos tóxico (Science in School,2008). En dicha reacción, la urea se rompe para formar dióxido de técnicas para elanálisis de actividad enzimática en suelos carbono y amonio.

Para medir La Actividad Ureásica, inicialmente debemos saber que la ureasa esuna enzima, la cual es una molécula de naturaleza proteínica producidas por losseres vivos y que se encargan de acelerar reacciones químicas o hacer posiblesaquellas reacciones que de otra manera no se producirían. Es decir soncatalizadores biológicos que al reducir la energía de activación necesaria para lasreacciones transforman las sustancias involucradas en el metabolismo celular.Teniendo en cuenta lo anterior expuesto se hará la descripción de laDeterminación de Actividad Ureásica (AU) y se realizara un análisis de conceptoso términos relacionados con el tema.

PALABRAS CLAVES: Ureasa, reacción, enzimas, hidrólisis, reactivos.






3

INTRODUCCIÓN

La ureasa es una enzima amidohidrolosa, cataliza la hidrólisis de la urea

produciendo gas carbónico, hidróxido de amonio, los principales inhibidores son

los metales pesados como la plata (Ag+1) el mercurio (Hg+2) también el ácido

hidroxámico y la tiourea

La enzima ureasa, hidroliza la urea produciendo amonio que contiene NNP y CO2.

A través de esta se puede tomar una muestra de la actividad ureásica (AU), a

través de este método se puede analizar el Nitrógeno No Proteico tanto en suelo,

pastos, sangre, orina y otros elementos de origen biológico.

Desde el punto de vista práctico, los conceptos bioquímicos son claves para uncorrecto análisis, interpretación y mejor comprensión de las trasformacionessufridas por los nutrientes como resultado de agentes físicos, químicos ybiológicos. Estos puntos justifican de por si la necesidad de disponer de un bagajebioquímico mínimo.

A través del presente aporte al trabajo colaborativo se hace descripción de laDeterminación de actividad Ureásica (AU) y se hizo un análisis de conceptos otérminos relacionados con el tema. Partiendo de la actividad de laboratorio.






5

1.2 Con base en la revisión detallada de los videos relacionados con actividadenzimática y mostrados en los siguientes link:

http://www.youtube.com/watch?v=CpYWD7AQEjc http://www.youtube.com/watch?v=GTTgS-xf7XI http://www.youtube.com/watch?v=UZI15VqFAq8

Deben elaborar un diagrama de flujo que integre los temas relacionados allí.

http://www.youtube.com/watch?v=CpYWD7AQEjc


http://www.youtube.com/watch?v=GTTgS-xf7XI


http://www.youtube.com/watch?v=UZI15VqFAq8










6

1.3 En este espacio, deben elaborar un Diagrama UVE Heurístico relacionado conel artículo científico anexo, denominado: Actividades Enzimáticas en ConsorciosBacterianos de Suelos Bajo Cultivo de Papa con Manejo Convencional y BajoPastizal.






7

2. MATERIALES Y MÉTODOS

2.1 LISTA DE MATERIALES Y EQUIPOS UTILIZADOS(completar el cuadro)

Cuadro 1. Lista de materiales y equipos utilizados en la práctica

3 CONCEPTOS

1. ¿Se cumplió la Ley de Michaellis

en este experimento? Porqué?

2. ¿Cuál es el valor de la cons-

tante de Michaellis, la velo-

cidad Máxima y el coeficien-

te de correlación ( r ), de la

cinética estudiada?

3 ¿Cual es la ecuación

de Michaellis de este

experimento?

Caracterización enzimáticade una fosfatasa, que actúa

sobre el glicero-fosfato.

DIMENSIÓN METODOLOGICA

1. ACONTECIMIENTO

Interacción

2. PREGUNTA CENTRALDIMENSIÓN CONCEPTUAL

TCA y colisiones5 TEORIAS

4. PRINCIPIOS

Describen el comportamiento ciné-

ticomolecular de la enzima fosfatasa

sobre los enlaces qcos del

glicerofosfato (sustrato).

Michaellis-MentenEstablece relación entre V de reacción

y la Concentración del sustrato.

10. CONCLUSIÓNLa cinética de la fosfatasa cumplió la Ley

de M-M, debido a la alta correlación lineal

entre los recíprocos de [s | y la V.

8.TABLA de RESULTADOS7. GRAFICAS

VARIABLE VALORKm 0.0103 M

V máx 1.012 umol/min

r 0.999

V = 1.012 [S|/0.0103 + [S|

1/V3.03

200 1/[S|

V

[S|

0.5

0.01

8.TABLA de RESULTADOS7. GRAFICAS

VARIABLE VALORKm 0.0103 M

V máx 1.012 umol/min

r 0.999

V = 1.012 [S|/0.0103 + [S|

1/V3.03

200 1/[S|

V

[S|

0.5

0.01

6. REGISTRO DE DATOS

0.100 0.910

0.050 0.830

0.020 0.670

0.010 0.5000.005 0.330

[S| (mol/lt) V (umol/min)

pH = 7.0T = 37 º

6. REGISTRO DE DATOS

0.100 0.910

0.050 0.830

0.020 0.670

0.010 0.5000.005 0.330

[S| (mol/lt) V (umol/min)

pH = 7.0T = 37 º

7. TRANSFORMACION DE DATOS (Cálculos)

1/[S| 1/V

10 1.0920 1.2050 1.49100 2.00200 3.03

Hallar: 1/[S| y 1/V (doble recíprocaPor Regresión lineal se obtieneb = 0.9873 min/umol; m= 0.0102; R = 0.999

Se calcula KM y V max; así K M = m / b = 0.0102/0.9873 = 0.0103V max = 1 / b = 1 / 0.9873 = 1.012 umol/min

7. TRANSFORMACION DE DATOS (Cálculos)

1/[S| 1/V

10 1.0920 1.2050 1.49100 2.00200 3.03

Hallar: 1/[S| y 1/V (doble recíprocaPor Regresión lineal se obtieneb = 0.9873 min/umol; m= 0.0102; R = 0.999

Se calcula KM y V max; así K M = m / b = 0.0102/0.9873 = 0.0103V max = 1 / b = 1 / 0.9873 = 1.012 umol/min

ENZIMA FOSFATASA

V max [S|V = --------------

K M + [S|

cumple

CINETICA MICHAELLIANA

Actúasobre el

GLICEROFOSFATO

produce

GLICEROL H3PO4

V [ s |

relaciona

V

[S|

Puedeser es

Dondeaparece

así

V max K M

1 / b m / b

es es

ENZIMA FOSFATASA

V max [S|V = --------------

K M + [S|

cumple

CINETICA MICHAELLIANA

Actúasobre el

GLICEROFOSFATO

produce

GLICEROL H3PO4

V [ s |

relaciona

V

[S|

Puedeser es

Dondeaparece

así

V max K M

1 / b m / b

es es

9. INTERPRETACION y DISCUSION:La Km equivale a una concent. De 0.0103 mol de

glicerofosfato por cada litro de solución.

La gráfica de la doble recíproca presentó unacorrelación lineal altamente significativa (p<0.01).

Material o Equipo (Descripción, marca,capacidad, precisión)

Aplicación Fotografía, obtenida en lapráctica

Probeta graduada de100mL; 0,1mL

Volumetría






8

Balanza analíticaOHAUS; 210; 0,0001g

Pesada(Gravimetría)

Montaje de titulación Volumen de HCl

gastados cambio decolor

Tubos de ensayo congradilla

Ensayos químicos conmuestras y reactivos

ErlenmeyerAnálisis cuantitativo

en titulaciones

Beakers 400ml

calentar sustancias,traspasar líquidos






9

Bureta 25 ml Volumetría

Reactivos Reacciones químicas

Vaso de Precipitadocalentar sustanciastransportar líquidos

Centrifuga






10

Matraz aforado de100mL

para prepararsoluciones, cajas de 2o 6 unidades

Soporte universalpieza para coger laspinzas de laboratorio

Pipetas de 10mL-5mL






11

2.2 LISTA DE REACTIVOS UTILIZADOS

Cuadro 2. Reactivos utilizados en la práctica

REACTIVO(NOMBRE) FÓRMULA MOLECULAR CONCENTRACIÓN

Urea H2N-CO-NH2 0,25M

Ureasa 480.KD pH=7.0 0,1%

Cloruro de sodio NaCl 10mL al 1%

cido clorhídrico HCl 0,1N

Cloruro de mercurio HgCl2 1%

Buffer fosfato------------- (20°C) pH 7

Indicador de Tashiro C15H14N3O2Na +

C16H18N3SCl – 3H2O+C2H

---------------

2.3 PROCEDIMIENTOS

2.3.1 Protocolos de muestras analizadas

Concentrado: comercial para ganado

Suelo

: recolectado en la hacienda san juanito en el corregimiento de Sonso en elValle, Temperatura promedio 24°C y altura de 1000 msnm.

FORRAJE: pasto estrella (Cynodon plectostachyus) hacienda san Juanito potrero

5 en el corregimiento de Sonso en el Valle, Utilizado para alimentación bovina






12

2.3.2 Flujograma general de los procedimientos desarrollados.

PROCESO DE TITULACION






13

Fotos






14






15

3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

3.1 TABLAS DE DATOS

Tubos Tipo de Muestras mL Hcl0.1N

Tiempo (s)

B Urea+ Búfer Fosfato+Hgcl2 6.5 20

St Urea + Búfer Fosfato Ureasa al 05%

10 20

1 Urea + Búfer Fosfato EHAU (mL) 6 202 Urea + Búfer Fosfato ESAU (mL) 6 203 Urea + Bufer Fosfato + EFAU (mL) 6,5 20

4 Urea + Bufer Fosfato + ESAU (mL) 5,5 20

3.2. Cálculos

a) 3.2.1 Actividad Ureásica en el tubo estándar

AU=10ml – 6.5ml *0.1*1000umol *240min

Au= 17.5 umol/min

b) Actividad Ureásica del concentrado

AU=6ml-6.5ml *0.1*1000umol * fd40 min

Fd= 10ml/5ml*10ml/7ml*100gr/1gr=

Fd= 284

6ml-6.5ml *0.1*1000umol * 28440 min

Au= 355 umol/min






16

c) Actividad Ureásica en el suelo (tubo 2)


Fd= 10ml/5ml*10ml/5ml*100gr/1grFd=400

AU=6ml-6.5ml *0.1*1000umol * 400

40 min Au= 500 umol/min

d) Actividad Ureásica del forraje


Fd= 10ml/5ml*10ml/3ml*100gr/1gr

Fd= 666

AU=6ml-6.5ml *0.1*1000umol * 66640 min

Au=1665umol/min

e) Actividad Ureásica en el suelo (tubo 4)


Fd= 10ml/5ml*10ml/5ml*100gr/1gr

Fd=400

AU=6ml-6.5ml *0.1*1000umol * 400






17

40 min

Au=1000umol/min

3.3TABLA DE RESULTADOS

Tabla 2. Actividad Ureásica de las muestras biológicas

TUBO TIPO DE MUESTRA AU(

1 Estándar 17,5

2 Suelo 500

3 Forraje 1665

3.3.1 GRÁFICAS

AU

0

500

1000

1500

2000

estandarsuelo

forraje

AU

AU






18

3.4 DISCUSIÓN DE RESULTADOS

Producir la hidrólisis de la urea por medio de la enzima amidohidrolosa

denominada ureasa.

Cuantificar la actividad ureásica (AU) en muestras de origen biológico,

mediante la técnica volumétrica de Berthelot.

Se obtiene en la solución final un color azul verdoso que indicaría Prueba

Positiva para la actividad Ureásica.

Según los resultados obtenidos la ureasa tiene un comportamiento optimo a

los 60 °C ya que a otras temperaturas es inestable y no se puede

determinar su función adecuada y no permite neutralizar el acido que se

agrega

Se obtuvieron los valores de los parámetros al evaluar la actividad ureasica, comose pudo observar en la tabla de Datos y en los de resultados donde observamos

el tiempo empleado que presenta una frecuencia igual.






19

4. CONCLUSIONES

La ureasa es una importante enzima microbiana relacionada con la

descomposición de los compuestos orgánicos. La ureasa es considerada

constitutiva debido a que es sintetizada por ciertas bacterias sin tomar en

consideración la presencia ausencia de su sustrato, la urea.

Los resultados encontrados indican la actividad enzimática en las muestras

utilizadas donde variada La actividad ureasica de acuerdo a la cantidad de materia

orgánica y al PH.

Es conveniente realizar la determinación de la actividad ureasica en muestras

fresca sin dejar secar e inmediatamente después de su muestreo ya que la

muestra fresca es más representativa por la actividad biológica presente en ella.






20

5. BIBLIOGRAFÍA

Granados, Jairo., (2011), Protocolo prácticas de laboratorio; ECAPMA;

UNAD.

Jairo Enrique Granados Moreno – Docente ECAPMA – Modulo de

Bioquímica.

Metabólica Universidad Nacional Abierta y a Distancia – UNAD.

La urea y sus diversas aplicaciones. recuperado de

http://www.quiminet.com/articulos/la-urea-y-sus-diversas-aplicaciones-

21306.htm? . (2007).






21

PRÁCTICA 2

Carbono Orgánico y Capacidad Amortiguadora de suelos

RESUMEN

Los sistemas amortiguadores nos equilibran la presencia de sustancias acidas y

básicas para mantener el pH dentro de los limites fisiológicos.

Con la práctica de laboratorio se busca conocer cual sistema tiene mayor

capacidad amortiguadora y detectar su funcionamiento.

También se le denomina soluciones “Buffer” o “tampón” y son aquellas que se

oponen a los cambios de pH, cuando se les adicionan ácidos o álcalis (hidróxidos).

Su acción se basa principalmente en la absorción de hidrógenos (H+) o iones

hidroxilo (OH).

Una solución amortiguadora está conformada por una mezcla binaria de un ácido

débil y una sal del mismo acido proveniente de base fuerte o también una base yuna sal, de esa base proveniente de un ácido fuerte.

PALABRAS CLAVES: Acidas, básicas, pH, amortiguadora y fisiológica.






22

INTRODUCCIÓN

Soluciones amortiguadoras también se le denomina soluciones “Buffer” o

“tampón” y son aquellas que se oponen a los cambios de pH, cuando se les

adicionan ácidos o álcalis (hidróxidos). Su acción se basa principalmente en la

absorción de hidrógenos (H+) o iones hidroxilo (OH).

Una solución amortiguadora está conformada por una mezcla binaria de un ácido

débil y una sal del mismo acido proveniente de base fuerte o también una base y

una sal, de esa base proveniente de un ácido fuerte.

La aplicación más importante de estas soluciones reside en el estudio de

regulación del equilibrio acido=base en los sistemas biológicos, por eso a nivel de

experimentos bioquímicos se utilizan para controlar el pH de reacciones in vitro.

Con el uso de estas soluciones podemos subir o bajar el pH de otras soluciones, o

lo que se conoce como acido o básico, esto lo medimos con una escala de 0 a 14

lo que nos da que 7 es neutro, por debajo de 7 ácido y más de 7 básico o alcalino

a distintas temperaturas el valor del pH neutro puede variar debido a la constante

del equilibrio del agua.

1. FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA

1.1 MAPA CONCEPTUAL

CONCEPTOS CONCEPTOS

Suelo Actividad Microbiana

Aminoácidos Carbono orgánico

Grupos Funcionales Fases






23

Fertilidad Mezcla heterogénea

Ácidos Orgánicos Enzimas

Componentes Bioquímicos Humus

Materia inorgánica Materia orgánica

Reacciones Bioquímicas Enzimáticas

(RBE) Sales MineralespH Nitrógeno total

Equilibrio ácido-base Carbohidratos






24

1.2 MENTEFACTO CONCEPTUAL (Con base en los conceptos mostrados ,elaboren un mentefacto conceptual, en este espacio)

Fertilidad pH MicroorganismosBases

intercambiables

PotenciometríaTécnicasanalíticas

TitulaciónREDOX

Gravimetría

ComposiciónBioquímica

Volumetría Materia orgánicaConductividad

Eléctrica

Espectrofotometría CIC Sales Minerales Carbono orgánico

CaracterísticasFisicoquímicas

Amonio(NH4+)

FBN Suelo

1.3 Con base en la revisión detallada de los videos relacionados con análisisde suelo y mostrado en los siguientes link:

http://www.youtube.com/watch?v=Gm4Be6qHCRMhttp://www.youtube.com/watch?v=5eo-Fiuf1rY

http://www.youtube.com/watch?v=lXOAwkG_D2I


1.4 En este espacio, deben elaborar un Diagrama UVE heurístico, relacionadocon el artículo científico anexo, denominado: Evaluación de parámetros de calidadpara la determinación de carbono orgánico en suelos., J,García Galvis y

Ballesteros, M (2005), Revista Colombiana de Química

http://www.youtube.com/watch?v=Gm4Be6qHCRM

http://www.youtube.com/watch?v=5eo-Fiuf1rY




http://www.youtube.com/watch?v=5eo-Fiuf1rY

http://www.youtube.com/watch?v=Gm4Be6qHCRM






25


2.1 LISTA DE MATERIALES Y EQUIPOS UTILIZADOS (completar el cuadro)

Cuadro 1.lista de materiales y equipos utilizados en la práctica

MATERIAL Ó EQUIPO(Marca)

APLICACIÓNCapacidad y

Precisión Fotografía

Balanza analítica OhausPesada

(Gravimetría)210g;

0,0001g






26

2.2 LISTA DE REACTIVOS UTILIZADOS (Completar el cuadro)

Cuadro 2.Reactivos utilizados en la práctica

REACTIVO(NOMBRE)FÓRMULA

MOLECULARCONCENTRACIÓN

Sulfato ferroso 1N

Dicromato de potasio 1N

2.3 PROCEDIMIENTOS (Completar el cuadro)

Cuadro 3.Técnicas analíticas utilizadas en el análisis fisicoquímico de suelos

VARIABLE(INDICADOR)EVALUADA(O)

TÉCNICA ANALÍTICAUTILIZADA






27

pH Método potenciométrico

Carbono Orgánico(CO) %

Capacidad Amortiguadora

Nitrógeno total (NT) %

Materia Orgánica(MO) %

2.3.1 Protocolos de muestras analizadas (Elaborar una ficha ó formato quemuestre la información fundamental sobre el origen de cada una. Por ej:especie, nombre científico, lugar de muestreo, datos agroclimatológicos)

2.3.2 Flujograma general de los procedimientos desarrollados que puedeincluír : Video ó fotografías que sustentan los procesos desarrollados ( enWord : hacer click en insertar, formas y diagrama de flujo)


3.1 TABLAS DE DATOS

*Incluír aquí las enviadas al profesor.*

3.2 ECUACIONES DE CÁLCULO

%Carbono Orgánico, Método de titulación volumétrica

%CO =(

Dónde:

%CO= porcentaje de carbono orgánico

VFeSO4= Volumen(mL) de sulfato ferroso

B = Volumen del sulfato ferroso gastado en el blanco

N = normalidad del sulfato ferroso

0.003= peso miliequivalente del carbono en gramos






28

Wm= peso de la muestra en gramo

Materia Orgánica (%MO)

%MO= %CO 1,724

Dónde:%MO = Materia orgánica

%CO= porcentaje de carbono orgánico

1,724= constante de Van Bemmelen

Nitrógeno Total ( %NT)

%NT= %MO/20Donde:

%NT= Nitrógeno total

%MO = Materia orgánica

Carbono Orgánico por método colorimétrico-espectrofotométrico

[

] [

]

Donde:






29

Sacarosa: C 12 H 22 O11

Capacidad amortiguadora (), Método Potenciométrico

Capacidad Amortiguadora ( Con respecto a NaOH, para muestras de suelos:

(

Capacidad Amortiguadora ( Con respecto a NaOH, para muestras de agua ysolución buffer

(

(

3.3 TABLAS DE RESULTADOS (Completar)

Tabla 1.Resultados obtenidos en el análisis fisicoquímico

VARIABLE

EVALUADADESCRIPCIÓN

Valor obtenido por:

Titulación Espectrofotometria

MOMateria orgánica

(%)

NTNitrógeno total

(%)

COCarbono

orgánico(%)






30

pHPotencial deHidrógenos

CapacidadAmortiguadora

3.3.1 GRÁFICAS (*POR EJEMPLO*)

3.4 . DISCUSIÓN DE RESULTADOS

*EN ESTE ESPACIO SE DEBE REALIZAR UN ANÁLISIS INTERPRETATIVO YCOMPARATIVO DE LOS RESULTADOS OBTENIDOS, TRATANDO DECONFRONTAR LOS VALORES CON LA FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA Y CONLA LITERATURA*

4. CONCLUSIONES

(Escribir mínimo Cinco)

0

1

2

3

4

5

PH CE(dS/m) CO(%) MO(%) NT(%) Ai

(%meq)

4.444.66

2.36

4.06

0.2

2.3

V a l o r

e s

p o r c e n t u a l e s

Indicadores Fisicoquímicos

Gráfica 1.Resultados análisis Fisicoquímico de suelo






31

ESTAS SE DERIVAN DE LA DISCUSIÓN DE RESULTADOS

5. BIBLIOGRAFÍA

(UTILIZADA Y CONSULTADA, MÍNIMO 6 REFERENCIAS EN NORMAS APA)

PRÁCTICA 4

Actividad Catalítica de Catalasa (ACAT) en muestras de

origen Biológico

RESUMEN






32

(Redactar en máximo 10 líneas, en un solo texto: Qué se hizo, cómo sedesarrolló, qué resultados se encontraron, cómo se interpretaron estosresultados, qué se concluyó)

(Máximo en 8 líneas):

PALABRAS CLAVES (Escribir 5):

INTRODUCCIÓN

(se debe escribir en 17 líneas)

1. FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA

1.1 MENTEFACTO CONCEPTUAL (elaboren un mentefacto conceptual, eneste espacio, con base en los siguientes conceptos)

CONCEPTO CONCEPTO






33

Desdobla el Radical H2O2 Actividad catalítica

El sustrato es el peróxido pH y T óptimos

Óxido-reductasa Catalasa (CAT)

El sustrato es la úrea Peroxidasa

Peroxisoma Produce H2O y O2

Cinética enzimática deMichaellis-Menten

Parámetros cinéticos(Km yVmáx)

Impide la acumulación deperóxido

Participa en la foto-respiración

Es amidohidrolasa RBE REDOX

1.2 MAPA CONCEPTUAL (Con base en los siguientes conceptos claveselaboren un mapa conceptual en este espacio, utilizando conectoresadecuados)

CONCEPTO CONCEPTO

Catalasa(CAT) Enzima óxido-reductasa

Familia peroxidasas Células animales y vegetales

Peroxisoma Peroxidación lipídica

RBE REDOX H2O2 H2O + O2

Cinética Michaeliana Permanganometría

Coenzima Apoenzima

Grupo Hemo(Fe+3) Proteína cuaternaria






34

Homotetramérica Grasas

Mitocondria Oxidación

1.3 Con base en la revisión detallada de los videos relacionados con actividadenzimática y mostrados en los siguientes link:

http://www.youtube.com/watch?v=WOAcp15VLJ0

http://www.youtube.com/watch?v=0Jr7gxy3bKI


1.4 En este espacio, deben elaborar un Diagrama UVE Heurístico relacionado conel artículo científico anexo, denominado: Catalasa, Peroxidasa yPolifenoloxidasa en pitaya amarilla (acanthocereus pitajaya): maduración ysenescencia


2.1 LISTA DE MATERIALES Y EQUIPOS UTILIZADOS(completar el cuadro)

Cuadro 1. Lista de materiales y equipos utilizados en la práctica

MATERIAL Ó EQUIPO(Marca)

APLICACIÓNCapacidad y

Precisión Fotografía

Balanza analítica OhausPesada

(Gravimetría)210g;

0,0001g












35

2.2 LISTA DE REACTIVOS UTILIZADOS(Completar el cuadro)

Cuadro 7. Reactivos utilizados en la práctica

REACTIVO(NOMBRE) FÓRMULA MOLECULAR CONCENTRACIÓN

Peróxido de hidrógeno H2O2 0,05M

2.3 PROCEDIMIENTOS

2.3.1 Protocolos de muestras analizadas (Elaborar una ficha ó formato quemuestre la información fundamental sobre el origen de cada una. Por ej:especie, nombre científico, lugar de muestreo, datos agroclimatológicos,animales, etapa productiva, alimentación etc.)

2.3.2 Flujograma general de los procedimientos desarrollados que puede

incluír : Video ó fotografías que sustentan los procesos desarrollados ( enWord : hacer click en insertar, formas y diagrama de flujo)


3.1 TABLAS DE DATOS (Completar)






36

INCLUÍ AQUÍ LAS ENVIADAS AL PROFESOR

3.2 CÁLCULOS

Calcular la actividad catalítica de la catalasa (ACAT) de cada una de lasmuestras trabajadas.

3.3 TABLAS DE RESULTADOS (Completar)Tabla 5. Valores de actividad de catalasa en las muestras estudiadas

TubosMuestras

AnalizadasACAT (µmoles de

H2O2 / min)

1






37

2

3

4

3.3.1 GRÁFICAS

(Realizarlas en Excel y luego importarlas a Word en este documento)

3.4 . DISCUSIÓN DE GRÁFICAS Y RESULTADOS

*EN ESTE ESPACIO SE DEBE REALIZAR UN ANÁLISIS INTERPRETATIVO YCOMPARATIVO DE LOS RESULTADOS OBTENIDOS, TRATANDO DECONFRONTAR LOS VALORES CON LA FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA Y CONLA LITERATURA*

4. CONCLUSIONES

(Escribir mínimo Cinco)






*ESTAS SE DERIVAN DE LA DISCUSIÓN DE RESULTADOS

5. BIBLIOGRAFÍA

(UTILIZADA Y CONSULTADA, MÍNIMO 6 REFERENCIAS EN NORMAS APA)

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