Herpesviriosis en México: situación actual y perspectivas

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Herpesviriosis en México: situación actual y perspectivas Rebeca Vásquez-Yeomans y Jorge Cáceres-Martínez ISA

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ISA. Herpesviriosis en México: situación actual y perspectivas. Rebeca Vásquez-Yeomans y Jorge Cáceres-Martínez. Características morfológicas del OsHV-1. TEGUMENTO. CÁPSIDE (116 nm). NÚCLEO. ENVOLTURA. Forma esférica poligonal, (icosaédrica) ADN lineal de doble cadena 207.4 kpb - PowerPoint PPT Presentation

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Herpesviriosis en México: situación actual y perspectivas

Rebeca Vásquez-Yeomans yJorge Cáceres-Martínez

ISA

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Forma esférica poligonal, (icosaédrica)

ADN lineal de doble cadena

207.4 kpb

38% CG

Características morfológicas del OsHV-1

NÚCLEOCÁPSIDE (116 nm)

ENVOLTURA

TEGUMENTO

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Entre las especies donde se ha encontrado tenemos:

Crassostrea virginicaCrassostrea gigasOstrea edulisOstrea angasiTiostrea chilensisRuditapes philippinarumPecten maximusNodipecten subnodosus Almejas

PectínidosOstiones

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Distribución global de Herpes virus

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5

Causa mortalidad de hasta 100 % en cultivos de larvas y juveniles de ostión

Eventos recurrentes, principalmente en verano

CAUSAS: Compleja interacción de factores tales como: incremento de la temperatura, estrés fisiológico, malas prácticas y contaminantes, entre otros

IFREMER

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Signos de la enfermedad

Larvas

Reducción en actividad de nado y alimentación

Lesiones en manto y velo

Nado errático en círculos, deposición en el fondo

Tomado de Renault y Novoa (2004)

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Impacto en la Industria ostrícola Francesa

Francia produce130,000 toneladas al año siendo el cuarto productor a nivel mundial después de China, Japón y Corea del Sur

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Problema de graves consecuencias en Francia

OsHV-1 µVar

2008-2011

OsHV-1

A herpes virus has decimated oysters along France’s 5,500- kilometer coast for a fourth season

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Vásquez-Yeomans, R., A. M. García-Ortega y J. A. Cáceres-Martínez. (2010) Gill erosion and herpesvirus in Crassostrea gigas cultured in Baja California, México. Diseases of Aquatic Organisms. 89: 137-144

Vásquez Yeomans, R., J. A. Caceres Martinez y A. Figueras Huerta. (2004) Herpes-like virus associated with eroded gills of the Pacific oyster Crassostrea gigas in Mexico.. Journal of Shellfish Research. 23(2): 417-419

Cáceres-Martínez, J. A. y R. Vásquez -Yeomans. (2003) Presence of giant polymorphic cells in Crassostrea gigas cultured in Bahia Falsa, Baja California NW Mexico . Journal of Shellfish Research. 22(3): 711-714

Chávez Romero, Y. A., J. A. Cáceres -Martínez, R. Vásquez -Yeomans y A. M. García -Ortega. (2011) Genetic characterization of ostreid herpesvirus associated with mortalities of pacific oyster Crassostrea gigas in northwestern México. En 2011 International Malacology Reunion Del 27 al 30 de junio. La Paz, Baja California Sur, México. Western Society of Malacologists. Abstract.

Estudios de herpes virus en México

Cáceres-Martínez, J. A. y R. Vásquez -Yeomans. (2010) Presence of epibionts and herpesvirus in the lion-paw scallop Nodipecten subnodosus. En Aquaculture 2010 Del 01 al 05 de marzo. San Diego, California, Estados Unidos. World Aquaculture Society. Abstract.

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1

2

3

4

Evidencias y

validación ?b

6

Mortalidades

Lesiones

Alteraciones histológicas

MET

PCR- secuenciaciónHIS

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Presencia del OsHV en Baja California

Año Mes Localidad Estadio de desarrollo Mortalidad

2002 Agosto Bahía Falsa Juvenil Sin datos

2005 Agosto Bahía Falsa Juvenil Sin estimar

2006 Abril San Quintín Semilla (20-30 mm) Sin estimar

2008 Septiembre San Quintín Adulto (115-123 mm) No

2008 Noviembre Bahía Falsa Adulto (83-110 mm) No

2009 Junio Bahía de Todos Santos Semilla (3 mm) 70%

2009 Julio Bahía Falsa Semilla (2-3 mm) 97%

2009 Julio Bahía de Todos Santos Semilla (3 mm) 40%

2009 Julio Laguna Manuela Semilla (20-37 mm) 85-95%

2009 Agosto Bahía Falsa Juvenil (48-68 mm) Sin estimar

2009 Agosto Bahía Falsa Semilla (11-20 mm) Sin estimar

2009 Agosto Laguna Manuela Juvenil (26-52 mm) Sin estimar

2009 Noviembre Laguna Manuela Semilla (5-10 mm) Sin estimar

2009 Noviembre Laguna Manuela Semilla (5- 20 mm) Sin estimar

2009 Diciembre Bahía Falsa Juvenil (30-45 mm) Sin datos

2010 Enero Laguna Manuela Semilla (15-25 mm) 70%

2010 Marzo Guerrero Negro Semilla (25-35 mm) 50%

2011 Junio Flupsy – Ensenada Semilla (2-5 mm) 100%

2011 Julio Flupsy – Ensenada Semilla (8-10 mm) 79%

2 -37 mm 73% (40-97%) Verano

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Presencia del OsHV en Baja California Sur.

AÑO MES LOCALIDAD ESTADIO DE DESARROLLO MORTALIDAD

2008 Noviembre Bahía Tortugas Juvenil (50-60 mm) No

2008 Noviembre Bahía Tortugas Juvenil (43-60 mm) No

2008 Diciembre Bahía Tortugas Juvenil (36- 52 mm) Sin estimar

2008 Diciembre Bahía Tortugas Juvenil (35-55 mm) Sin estimar

2009 Marzo Bahía Tortugas Adulto (55-80 mm) Sin estimar

2009 Marzo Bahía Tortugas Adulto (82-134) No

2009 Abril Bahía Tortugas Semilla (5-10 mm) Sin estimar

5 -55 mm.

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Presencia del OsHV en Sonora.

AÑO MES LOCALIDAD ESTADO DE DESARROLLO MORTALIDAD

2007 Enero El Riíto Adulto (74-90 mm) No

2007 Enero Estero Morúa Adulto (82-113 mm) No

2007 Marzo Bahía del Tobari Juvenil (36-55 mm) 80%

2007 Marzo Estero Morúa Adulto (82-13 mm) No

2007 Marzo Bahía de Kino Adulto (83-90 mm) No

2007 Marzo Bahía de Kino Semilla (5-15 mm) 75%

2007 Mayo Estero Morúa Adulto (80-100 mm) No

2007 Noviembre Estero Morúa Adulto (85-115 mm) No

2008 Marzo Bahía San Jorge Adulto (65-92 mm) No

2008 Marzo Bahía de Kino Juvenil (27-40 mm) 60-70%

2008 Marzo Bahía de Kino Semilla (15-20 mm) 70%

2009 Abril Bahía de Kino Semilla (15-20 mm) 100%

2009 Abril El Riíto Adulto (90-130 mm) 50%

2009 Mayo El Riíto Adulto (85-105 mm) Sin estimar

2009 Noviembre Estero Los Mélagos Semilla (10-15 mm) Sin estimar

2009 Noviembre Estero La Cinita Juvenil (30-47 mm) No

5-55 mm 80% (60-100%) Primavera

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Presencia del OsHV en Sonora.

AÑO MES LOCALIDAD ESTADO DE DESARROLLO MORTALIDAD

2011 Marzo Estero La Cina Juvenil (40-53 mm) Sin estimar

2011 Marzo Estero La Santa Cruz Juvenil (38-50 mm) Sin estimar

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AÑO MES LOCALIDAD ESTADO DE DESARROLLO MORTALIDAD2005 Marzo Bahía de Altata Juvenil (30-47 mm) 70-80%

Sinaloa30 a 47 mm 75% (70-80%)

Presencia del OsHV en Sinaloa.

Sinaloa

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Comparte características con el OsHV-1 y el OsHV µ var

Cuatro o más variedades Mexicanas de OsHV-1

Detection of Oyster herpesvirus (OsHV) using PCR : M) 100bp Molecular marker (Invitrogen); Line 1) Positive control (Genomic viral DNA, 100 ng per reaction; Lines 2, 8) Negative control (sterile water). Lines 3 to 7 tissue samples.

100 pb

600 pb

M 1 2 3 4 5 6 7 8 M

Tesis de Maestría de Yosef Amin Chávez Romero

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Posible ciclo de acción viral en el ambiente

Semilla

NoSi

Zona de cultivo

OSTIÓNportador

OSTIÓNsano

ESTRÉS

MORTALIDAD

Resistencia

Si

No

MERCADO

Si No

HERPESVIRUS

¿Infección?

¿Infectada?

¿Se mantiene en el ecosistema?

Si

No

¿Se mantiene en el ecosistema?

Si No

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Hospedero

Parásito Ambiente

NE

NENE

NENE

NE

E

INTERACCIÓN PARÁSITO-HOSPEDERO-AMBIENTE

Estudio del hospedero

Estudio del parásito-patógeno Estudio del ambiente

Tríada de la enfermedad

Triada de la enfermedad

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Parásito

Ambiente

INTERACCIÓN PARÁSITO-HOSPEDERO-AMBIENTE-MANEJO

Tétrada de la enfermedad

Hospedero

Manejo

E

NE

NE

NE

NE

Estudio:

I D&

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RECOMENDACIONES

1. Evitar la introducción de moluscos bivalvos provenientes de zonas con antecedentes de mortalidad asociadas al OsHV-1 y OsHV-1 µVar y evitar la exportación de organismos provenientes de zonas con antecedentes de mortalidad asociadas al OsHV-1 y OsHV-1 µVar hacia zonas libres de herpesvirus para evitar su propagación

2. Después de la aparición del OsHV-1 µVar, nuevas variantes siguen emergiendo. El número de mutaciones depende del número de ciclos de replicación durante la fase infectiva del virus, por lo tanto, es sumamente importante controlar los eventos de mortalidad ya que estos favorecen la aparición de mutantes

3. Exigir y presentar certificados de sanidad en la comercialización de moluscos bivalvos

4. Vigilar el cumplimiento de las buenas prácticas de producción acuícola

5. Evitar la introducción de especies exóticas sin un estudio previo de carga parasitaria

6. Crear un programa de selección genética de organismos resistentes al OsHV-1 y OsHV µVar

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Apoyo de:

Dr. Miguel Ángel del Río Portilla (CICESE)Dra. Carmen Paniagua Chávez (CICESE)M.C. Mauricio García Ortega (ISA)

Dr. Antonio Figueras (CSIC)Dr. Tristan Renault (IFREMER)Dra. Collen Burgen (Washington University)Dra. Carolyn Friedman (Washington University)Dr. James Moore (UC Davis)

Tesistas:

M.C. Yosef Amín Chávez Romero (CICESE)M.C. Jenniffer Villalva Vega (CICESE)

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AGRADECIMIENTOS

SUBNARGENA del CICESE

I D&

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La investigación continua

¡Gracias!